WO2006119860A1 - Zellkultursystem sowie verfahren zur kultivierung einer zellkultur - Google Patents

Zellkultursystem sowie verfahren zur kultivierung einer zellkultur Download PDF

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WO2006119860A1
WO2006119860A1 PCT/EP2006/003760 EP2006003760W WO2006119860A1 WO 2006119860 A1 WO2006119860 A1 WO 2006119860A1 EP 2006003760 W EP2006003760 W EP 2006003760W WO 2006119860 A1 WO2006119860 A1 WO 2006119860A1
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cells
automated
culture system
cell
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Albrecht Brandenburg
Hagen Thielecke
Christian Hoffmann
Dirk Malthan
Ron Schwarz
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Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V.
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/48—Automatic or computerized control
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/46—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of cellular or enzymatic activity or functionality, e.g. cell viability

Definitions

  • the present invention relates to a method for culturing a cell culture in an automated cell culture system and an automated cell culture system. More particularly, the present invention relates to an apparatus and method for controlling cell culture conditions and cell culturing process steps depending on the state of the biological cells.
  • Cell cultures are widely used in the pharmaceutical and biotechnology industries. In particular, for ethical and economic reasons, animal experiments have increasingly been replaced in recent years by cell culture systems and cell culture techniques. For example, the European Union and the OECD also recommend the replacement of animal tests with non-animal cell tests for the testing of medicines, chemicals and cosmetics. The use of cell cultures in the search for new active principles and active ingredients in the pharmaceutical and plant protection sector has become indispensable.
  • GLP Good Laboratory Practice
  • GCCP Good Cell Culture Practice
  • the manual change of the cell culture media leads to individual time fluctuations and thus fluctuations in the supply of the cells. There is also stress for the cells, for example due to undefined currents.
  • the characterization of the cells by the operator also influences the cells due to strong fluctuations in the cell culture conditions, for example changes in the ambient temperature of> 10K, ie an interruption of the culture conditions. Their impact on cell development is not predictable.
  • Another disadvantage is that the decision of the next step in the line cultivation process after subjective assessment (for example, depending on the operator, the day of the week or time of day, or imaging settings of the microscope) of the cell culture (for example, reviews such as "degree of confluence about 70 or 80%” , “Medium consumed approximately” or “cells during the passage now about all detached") and after planning the cell cultivating staff or his working time (for example, it is considered sufficient if “tomorrow” or "on the Monday after the weekend” or “after the public holidays "passages or a media change is made and the staff / the operator therefore does not have to perform the cell cultivation process outside of his regular working hours).
  • the culture conditions for the cells are often characterized by experience, such as the intervals between when the culture medium is changed. This complicates a possible standardization of cell cultures.
  • systems would be advantageous, which are able to carry out a regular monitoring of the cells in short time intervals.
  • the cultivation conditions would have to be readjusted if necessary.
  • the object of the invention is achieved in a procedural perspective by a method for culturing a cell culture in an automated cell culture system, wherein state data of cells detected in the cell culture and regulated at least one culture condition corresponding to the detected state of the cells in the cell culture and / or at least one determined as necessary Process step is initiated or carried out in the cell culture.
  • an automated cell culture system having at least one actuator element for handling a cell culture, at least one sensory element for detecting Condition data of the cells in the cell culture, a device for evaluating the status data of the cells and a device for regulating cell culture conditions and / or for initiating and / or carrying out further process steps in the cultivation.
  • optimized and standardized cell culture conditions are achieved by maintaining the culture in an automated cell culture system that captures (cell) data and, depending on its condition, cell culture conditions (preferably immediately) after detection regulates the state of the cell culture and / or initiates / initiates necessary process steps in the cell cultivation. This reduces the influence of the human operator and replaces it with a more precise automatic solution. It also implements a reproducible approach that takes into account the natural variability of living cell cultures.
  • a preferred embodiment of the automated cell culture system has as actuator elements an automated handling unit for transporting cell culture containers (for example cell culture bottles or microtiter plates), an automated handling device for liquids (for example the cell suspensions, fluorescent dyes and nutrient media) and a storage for temporarily unused cell culture vessels.
  • the present automated cell culture system also has an air conditioning unit for producing the external cell culture conditions, in particular an air-conditioned vertical circulation bank with defined environmental conditions.
  • the present embodiment further includes a unit for generating a laminar flow, a media supply, surface sterilization devices, and a centrifuge.
  • a unit for generating a laminar flow By appropriate design of the surfaces and the selection of the material in this case a decontamination is achieved, whereby the risk of cross-contamination is minimized. This includes, for example, the avoidance of unsealed screw connections, dead spaces or flat construction surfaces which would prevent the drainage of any rinsing liquids or production residues.
  • the state of the cells in the cell culture in the present embodiment of the automated cell culture system is detected with one or more culture information obtaining devices.
  • one or more culture information obtaining devices For this purpose (as sensory elements) an optical image acquisition and / or electrical / electrochemical sensors are provided.
  • an imaging fluorescence optics is added, with which the spatial distribution of fluorescent dyes in the cell culture is determined.
  • objective, quantifiable information is obtained by an interferometric method in which an additional reference beam path is added in addition to the microscopic beam path (measuring beam path).
  • the (single) figure shows such an optical arrangement for obtaining quantifiable spatial information about the cells and cell cultures.
  • a light beam L is generated by a light source 1, which is guided over a polarizing filter 2.
  • the polarized beam having a wavelength of ⁇ / 2 is split by means of a beam splitter 3 onto two partial beams L1, L2.
  • the partial beam L1, which forms the reference beam passes through an assembly of a telescope and a spatial filter (denoted by the reference numeral 4).
  • the partial beam L2, which forms the measuring beam is fed via a deflection device 5 and another polarizing filter 6 of the sample P. After passing through the sample P, the measuring beam L2 passes through a microscope objective 7.
  • the measuring beam leaving the microscope objective 7 is superimposed on an evaluation optics 8 (in particular a CCD image) with the reference beam L1.
  • the beam splitting on the beam parts L1 and L2 takes place here uniformly, ie the intensity L1 to L2 is 50% to 50%.
  • the reference beam L1 is superimposed with the measuring beam L2 emerging from the objective.
  • the interference pattern formed on the optical evaluation device 8 contains the information about the phase shift of the light at each location in the xy plane on the sample (in the figure, a Cartesian coordinate system is indicated).
  • the optical phase is synonymous with the product of thickness and refractive index of the observed object P. Assuming that the indices of refraction within the cells are homogeneous and identical from cell to cell, it is the thickness of the cells at each location in the xy plane predictable.
  • phase shift of the reference beam For unambiguous determination of the phase, a component (telescope + spatial filter) for the defined phase shift of the reference beam is introduced in the present exemplary embodiment.
  • optical methods are also of importance with which the optical transmission or the fluorescence can be detected averaged over larger areas of the culture. This can be used e.g. detect the coloration of indicators added to the culture medium. As a result, methods for averaging the cell properties can be provided.
  • electrical or electrochemical measuring methods can be used, with which, for example, the local temperature, the pH or ion concentrations are determined.
  • a software for the evaluation of image data and sensor signals and for the control of the entire course of cell cultivation provided.
  • the image data of the cultured cells acquired by the system are processed via an image analysis.
  • This provides quantitative analysis results, such as cell density, number of dead cells, number of mitoses, and number of morphologically altered cells, which give a picture of the culture, which together with the history, ie earlier recorded on this culture data and together with the Protocols for cultivating the specific culture may lead to a very accurate assessment of the current state of cell culture.
  • This very accurate assessment of the condition of the cell culture is a solid basis for establishing a possible interference with the culture conditions and / or for initiating a process step into the culture process.
  • This intervention can then be carried out directly by the system or lead to a message to the outside. In this case, the system can make a message, possibly with a suggestion for an action, which is then triggered by the operator.
  • the processing of the cell images and the sensor signals is designed as trainable software.
  • the system is easily adaptable to changing tasks (such as other cell cultures or changed framework conditions).
  • the user gives e.g. by means of images, a classification of cell types or of defined states of the culture, which are then recognized during the cultivation of the image processing.
  • the image analysis software for the detection of relevant image structures can be trained by the user.
  • relevant image structures in particular healthy cells, smashed cells, detached cells
  • a training phase examples of structures to be recognized are marked in some pictures.
  • the image analysis software computes for these images a set of features (intensity, morphological features, textures) and determines those features which characterize the selected examples and, in particular, criteria that discriminate the searched structures from other structures in the feature space. After completion of the training phase, these calculated parameters can be used to automatically detect the desired structures in further images.
  • the documentation eg the control parameters, the measured values of the control, the state of the cell culture or the medium at different times, the measured values of the cultivation parameters and the state of the cell culture on the basis of which a control or a process step has been carried out .
  • the history of culture and cultivation can be traced back. This gives a time-dependent, more precise state description and, in the case of a non-optimal result, facilitates troubleshooting.
  • the composition of the differentiation medium is adapted to the degree of differentiation of the cell culture for optimal cell differentiation.
  • image data from the cell culture are continuously recorded and evaluated with the aid of the evaluation software.
  • either an automatic exchange of the medium present in the cell culture vessel is carried out by a new medium in a different composition or growth factors are added to the existing medium.
  • the above-described trainable software is used for image analysis.
  • the state of the cell culture is detected, for example, on the basis of morphological features or with the aid of minimally invasive labeling substances. Training the image analysis software can be done in preliminary experiments by experienced personnel or with the help of invasive markers.
  • the exchange of the culture medium takes place as a function of the cell function.
  • a certain cell function e.g. a contraction rate in cardiomyocytes, monitored.
  • an exchange of the cell culture medium is initiated.
  • the cultivation of a first cell type is supported by means of another cell type (feeder cells). If in mixed culture with If the first cell type is present in sufficient quantity of these two cell types, the culture medium present is automatically replaced by a culture medium which causes the second cell type to die. When all cells of the second type have died, the culture medium is automatically replaced by normal medium.
  • a process step is initiated due to a state of cell culture, e.g. Passage of the cell culture upon reaching a desired degree of coverage / confluency in further cell culture bottles or other cell containers, dispensing of the cells in microtiter plate wells or single cell extraction / handling / further processing.
  • a state of cell culture e.g. Passage of the cell culture upon reaching a desired degree of coverage / confluency in further cell culture bottles or other cell containers, dispensing of the cells in microtiter plate wells or single cell extraction / handling / further processing.
  • cells are cultured in containers (eg Petri dishes, MTP 1 cell culture bottles), test substances (eg in drug test or toxicity tests) abandoned and the cell culture in their capacity (eg growth rate, morphology, nuclear-plasma ratio, type of growth such Criss-cross growth, formation of cell function, cell count in certain areas, such as colony center / colony edge) documented time-dependent and the system a proposal for the classification (eg normal, altered, transformed, number of cells in the area, average core size, average Zellplasma Solutions, average number of neutrals etc.).
  • containers eg Petri dishes, MTP 1 cell culture bottles
  • test substances eg in drug test or toxicity tests
  • the cell culture in their capacity eg growth rate, morphology, nuclear-plasma ratio, type of growth such Criss-cross growth, formation of cell function, cell count in certain areas, such as colony center / colony edge
  • the classification eg normal, altered, transformed, number of cells in the area, average core size, average Zellplasma Solutions, average
  • a sixth application example relates to the optimization of the cell culture process in primary cell cultures, e.g. Keratinocytes from different biopsies, and / or the preservation of cell culture without further differentiation.
  • a seventh application example relates to an autonomous culturing process of a robust routine cell culture (eg HeLa, HEK, COS) including media change, passage, sowing based on the optical and / or electrical / electrochemical sensor technology (eg for screening experiments with cells of the same quality within a cell culture) independently of standard working times of laboratory staff (eg over night, over the weekend, over holidays).
  • An eighth application example concerns the standardization of a cell culture (definition of the process parameters for cell cultivation, eg time for passage or media change, seeding density, planting efficiency) with the present automated cell culture system based on the above-described documentation before this is converted into a system with rigid protocols or the cultivation in the bioreactor / fermenter is established.
  • certain areas are removed from a cell culture that have formed during cultivation and that have characteristic features. Once these areas have been created, this is detected by means of an image analysis and the cells of the areas are automatically transferred to a new culture vessel using a pipette.
  • aliquots are placed in wells of a microtiter plate from a cell suspension with very low cell concentration.
  • the regulated cell culture system only cells from wells that initially contained one cell were processed.
  • an automated cell culture system consisting of actuator elements (for handling cell culture vessels, cell suspensions, fluorescent dyes and culture media) of an air-conditioned vertical circulation bank with defined environmental conditions, sensory elements (optical image capture and / or electrical sensors) and software for the Evaluation of image data and sensor signals and to control the entire process, wherein the culture conditions regulated and / or situation-dependent process steps in the cultivation initiated and / or performed.
  • the image acquisition takes place inter alia with an interferometric method.
  • a reference beam is introduced, which is superimposed with the beam emerging from the microscope objective.
  • the processing of the cell images and the sensor signals is in the present case designed as trainable software.
  • the system is easily adaptable to changing tasks (other cell cultures, changing conditions).
  • the system components are of a high hygienic quality and thus prevent the contamination of the product. This concerns in particular the design of the surface roughness smaller than 20 ⁇ m, corresponding sealing elements made of PTFE or similar materials as well as a corresponding structural design.
  • the planning of automated cell cultivation is based on the desired end time of production. From a time when the cell lines are to be available, back planning is made as to when to perform media changes and passages.

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Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft eine Verfahren zur Kultivierung einer Zellkultur in einem automatisierten Zellkultursystem und eine solches automatisiertes Zellkultursystem, wobei Zustandsdaten von Zellen in der Zellkultur erfaßt und zumindest eine Kulturbedingung entsprechend dem erfaßten Zustand der Zellen in der Zellkultur geregelt und/oder zumindest ein als notwendig ermittelter Prozeßschritt in der Zellkultivierung eingeleitet oder durchgeführt wird.

Description

ZELLKULTURSYSTEM SOWIE VERFAHREN ZUR KULTIVIERUNG EINER ZELLKULTUR
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Kultivierung einer Zellkultur in einem automatisierten Zellkultursystem und ein automatisiertes Zellkultursystem. Insbesondere betrifft die vorliegende Erfindung eine Vorrichtung und ein Verfahren zur Regelung von Zellkulturbedingungen und Zellkultivierungsprozeßschritten in Abhängigkeit vom Zustand der biologischen Zellen.
Zellkulturen werden in der Pharma- und Biotechnologieindustrie vielfach verwendet. Insbesondere aus ethischen und ökonomischen Gründen werden Tierversuche in den letzten Jahren verstärkt durch Zellkultursysteme und Zellkulturtechniken ersetzt. So empfehlen beispielsweise auch die Europäische Union und die OECD den Ersatz von Tierversuchen durch tierversuchsfreie Zelltests für die Prüfung von Arzneimitteln, Chemikalien und Kosmetika. Der Einsatz von Zellkulturen bei der Suche nach neuen Wirkprinzipien und Wirkstoffen auf dem Sektor der Pharmazeutika und der Pflanzenschutzmittel ist daher mittlerweile unverzichtbar.
Außerdem wird eine Reihe von in vitro Testmethoden im Bereich der Toxikologie vermehrt in behördliche Zulassungsverfahren aufgenommen. Somit wird auch in den Sektoren Pharmakologie und Pflanzenschutzmittel nicht mehr auf die Verwendung von Zellkulturen verzichtet.
Allerdings wird eine Aussagekraft der an Zellkulturen gewonnenen Daten derzeit noch durch die vorhandene Analysetechnik begrenzt. Außerdem sind gängige manuelle Methoden in der Zellkultivierung zeitaufwendig und kostenintensiv und ihre Ergebnisse sind zudem stark benutzerabhängig.
Aufgrund dessen wurden in jüngster Zeit Initiativen gestartet, um Mindestanforderungen an Zell- und Gewebekulturen zu definieren und damit die Aussagekraft, die Vergleichbarkeit und die Reproduzierbarkeit von in vitro Arbeiten zu sichern. Dies führt dazu, daß analog zu den Good Laboratory Practice (GLP)-Richtlinien, Grundsätze für Zellkulturarbeiten unter der Bezeichnung Good Cell Culture Practice (GCCP) erlassen wurden.
Diese Richtlinien haben jedoch keine Auswirkungen darauf, daß heute in der Regel immer noch Zellkulturen mit sehr hohem Einsatz von Laborpersonal kultiviert werden. Die Kultivierung der Zellen erfolgt dabei in der Regel in Petrischalen, Mikrotiterplatten oder in Zellkulturflaschen. In den meisten Fällen werden die zur Zellkultur notwendigen Schritte, wie Animpfen der Zellen, Wechseln des Mediums oder Passage der Zellen rein manuell durchgeführt. Außerdem erfolgt die Überwachung der Zellen diskontinuierlich. Änderungen des PH-Wertes des Mediums werden durch zugegebene Farbindikatoren überwacht. Das Medium wird in regelmäßigen Zeitabständen, abhängig von der Wachstumsrate der jeweiligen Zellen der Zellkulturen gewechselt (durch manuelle Kontrolle nach Entnahme aus einem Brutschrank), um eine ausreichende Versorgung der Zellen mit Nährstoffen zu gewährleisten.
Da aus den Ergebnissen der Zellkultivierung, d.h. aus der Entwicklung der Zellkultur unter dem Einfluß bestimmter Faktoren, Rückschlüsse auf die Wirksamkeit von Medikamenten oder auf eine toxische Wirkung von Substanzen (z.B. in Kosmetika) gezogen werden können, hat die reproduzierbare Kultivierung und der standardisierte Betrieb der Zellkultur besondere Bedeutung für die genannten Anwendungsfelder.
Die Standardisierbarkeit der Zellkulturtechniken ist wegen dieser hohen Abhängigkeit von manuellen (und damit benutzerabhängigen und nicht reproduzierbaren) Methoden und des daraus resultierenden hohen Aufwandes bisher unzureichend für die Verwendung dieser Kultur in Anwendungen wie der Stammzellenforschung, dem Screening oder dem Tissue Engineering.
Voraussetzung hierfür sind vielmehr standardisierte Zellkulturverfahren, da nur diese über Jahre hinweg einen Vergleich zwischen den Substanzen und ihren Wirkprinzipien ermöglichen. Im Einzelnen bestehen dementsprechend die folgenden Probleme:
Die Anpassung der Zellkulturbedingungen erfolgt bei bestehenden Lösungen auf Grund fester Protokolle und dadurch starren Abläufen im Zellkultivierungsprozess, wobei diese Protokolle auf der manuellen Kultivierung durch das Laborpersonal und deren Erfahrungswerten sowie dem subjektiven Empfinden des Operators und den eingeschliffenen Tagesabläufen im Zellkulturlabor beruhen.
Die Kontrolle und Dokumentation des Zeilzustandes erfolgt aus Aufwandsgründen normalerweise nur im Stunden- oder Tagesabstand. Dies führt zu langen Kontrollintervallen. Bei der Kultivierung sensibler Zellen, wie insbesondere von Stammzellen, ist es oft jedoch notwendig, die Zellen in kürzeren Abständen zu kontrollieren.
Bei der Charakterisierung der Zellen erfolgt die Auswahl der untersuchten Bereiche subjektiv und zufällig durch den Operator. Dabei sind selbst Softwareunterstützungen für die optische Analyse insoweit manuell und nicht reproduzierbar.
Beim manuellem Wechsel der Zellkulturmedien kommt es zu individuellen Zeitschwankungen und dadurch zu Schwankungen bei der Versorgung der Zellen. Ebenfalls kommt es zu Streß für die Zellen, beispielsweise auf Grund Undefinierter Strömungen.
Bei der Charakterisierung der Zellen durch den Operator kommt es zudem zur Beeinflussung der Zellen auf Grund starker Schwankungen der Zellkulturbedingungen, beispielsweise Änderungen der Umgebungstemperatur von >10K, also zu einer Unterbrechung der Kulturbedingungen. Deren Auswirkung auf die Zellentwicklung ist nicht vorhersag bar.
Weiterhin besteht die Gefahr von Kontaminationen durch eine Vielzahl manueller Prozesse sowie durch Automatisierungslösungen mit geringer hygienischer Qualität. Nachteilig ist außerdem, daß die Entscheidung des nächsten Schrittes in dem Zeilkultivierungsprozeß nach subjektiver Beurteilung (beispielsweise abhängig vom Operator, vom Wochentag bzw. der Tageszeit, oder von Bildgebungseinstellungen des Mikroskops) der Zellkultur (beispielsweise Bewertungen wie „Konfluenzgrad ca. 70 oder 80 %", „Medium ungefähr verbraucht" oder „Zellen während der Passage nun ungefähr alle abgelöst") und nach Planung des Zellkultivierungspersonals bzw. dessen Arbeitszeit (es wird beispielsweise als ausreichend betrachtet, wenn „morgen" oder „am Montag nach dem Wochenende" oder „nach den Feiertagen" passagiert bzw. ein Medienwechsel vorgenommen wird und das Personal/der Operator daher nicht außerhalb seiner regulären Arbeitszeit den Zellkultivierungsprozess ausführen muss).
Bei am Markt bekannten Systemen werden Zellkulturkammern als autarke Systemkomponenten neben Automatisierungssystemen verwendet, wobei die Automatisierungssysteme beispielsweise ausschließlich für die Passage oder den Medienwechsel verwendbar sind. Die Automatisierungssysteme sind dabei kein integraler Teil des Zellkulturprozesses, da die verfügbaren Systeme z. B. Zellaussaat, Waschschritte, Mediumwechsel und Zellernte eigenständig durchführen. Je nach System können auch weitere Schritte wie Transfektion oder Zellzahlbestimmung ausgeführt werden.
Bei der Charakterisierung von Zellen durch biochemisch-molekularbiologische Methoden können derzeit nur Momentaufnahmen erhalten werden, da die Zellen durch die Darstellungsmethoden häufig abgetötet werden. Die entsprechenden Meßmethoden sind zeitaufwendig und nicht geeignet, Zellen über einen längern Zeitraum zu überwachen. Eine andauernde und lückenlose Kontrolle und Überwachung der Zellen ist mit den vorhandenen Techniken nicht möglich.
Die Kulturbedingungen für die Zellen sind vielfach durch Erfahrungswerte geprägt, so z.B. die Zeitabstände, wann das Kulturmedium gewechselt wird. Dies erschwert eine mögliche Standardisierung der Zellkulturen. Demgegenüber wären Systeme vorteilhaft, die in der Lage sind, eine regelmäßige Überwachung der Zellen in kurzen Zeitabständen durchzuführen. Darüber hinaus müssten auf Grund der erfaßten Daten die Kultivierungsbedingungen nachgeregelt werden, falls dies notwendig ist.
Auf dem Markt befindliche Bildanalysesoftware für die Analyse von Zellmikroskopiebildern ist entweder auf sehr spezielle Aufgaben abgestimmt (z.B. Zählung von gefärbten Zellen in Suspensionen) oder sie erfordert sehr gute Bildverarbeitungskenntnisse beim Anwender, um die Algorithmen und Parameter genau an die jeweilige Analyse-Aufgabe anzupassen. Bei der Bildanalyse von Zellkulturen ist eine solche Anpassung zwingend erforderlich, da verschiedene Zelltypen sehr unterschiedlich aussehen können und auch Zellen eines Typs je nach Kultivierungsstadien stark variieren. Allerdings haben Anwender in der Biologie in der Regel nicht den notwendigen technischen Hintergrund, um eine entsprechend richtige Einstellung der Software vornehmen zu können.
Ausgehend von den obigen Ausführungen ist es eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung, ein Verfahren zur Kultivierung einer Zellkultur in einem automatisierten Zellkultursystem und ein automatisiertes Zellkultursystem anzugeben, bei denen die Automatisierung Teil des Zellkulturprozesses ist, um optimierte und standardisierte Zellkulturbedingungen zu erreichen.
Die erfindungsgemäße Aufgabe wird in verfahrenstechnischer Sicht gelöst durch ein Verfahren zur Kultivierung einer Zellkultur in einem automatisierten Zellkultursystem, wobei Zustandsdaten von Zellen in der Zellkultur erfaßt und zumindest eine Kulturbedingung entsprechend dem erfaßten Zustand der Zellen in der Zellkultur geregelt und/oder zumindest ein als notwendig ermittelter Prozeßschritt in der Zellkultivierung eingeleitet oder durchgeführt wird.
In vorrichtungstechnischer Hinsicht wird die erfindungsgemäße Aufgabe gelöst durch ein automatisiertes Zellkultursystem mit zumindest einem aktorischen Element zur Handhabung einer Zellkultur, zumindest einem sensorischen Element zur Erfassung von Zustandsdaten der Zellen in der Zellkultur, einer Einrichtung zur Auswertung der Zustandsdaten der Zellen und einer Einrichtung zur Regelung von Zellkulturbedingungen und/oder zur Einleitung und/oder Durchführung weiterer Prozeßschritte in der Kultivierung.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren und dem erfindungsgemäßen Zellkultursystem werden optimierte und standardisierte Zellkulturbedingungen dadurch erreicht, daß die Kultur in einem automatisierten Zellkultursystem gehalten wird, das (Zustands-)Daten der Zelle erfaßt, und zudem abhängig von deren Zustand die Zellkulturbedingungen (vorzugsweise unmittelbar) nach Erfassung des Zustandes der Zellkultur regelt und/oder notwendige Prozeßschritte in der Zellkultivierung einleitet/einsteuert. Damit wird der Einfluß des menschlichen Operators reduziert und durch eine präzisiere automatische Lösung ersetzt. Es wird außerdem eine reproduzierbare Vorgehensweise implementiert, die den natürlichen Schwankungen der lebenden Zellkulturen Rechnung trägt.
Bevorzugte Ausführungsbeispiele des erfindungsgemäßen Verfahrens und des erfindungsgemäßen automatisierten Zellkultursystems sind Gegenstand der abhängigen Ansprüche.
Die vorliegende Erfindung wird nachfolgend anhand bevorzugter Ausführungsbeispiele in Verbindung mit der zugehörigen Zeichnung näher erläutert, in der eine optische Anordnung zur Gewinnung von quantifizierbaren räumlichen Informationen der Zellen und Zellkulturen gezeigt ist.
Ein bevorzugtes Ausführungsbeispiel des automatisierten Zellkultursystems weist als aktorische Elemente eine automatisierte Handhabungseinheit zum Transport von Zellkulturbehältern (beispielsweise Zellkulturflaschen oder Mikrotiterplatten), eine automatisierte Handhabungseinrichtung für Flüssigkeiten (beispielsweise der Zellsuspensionen, Fluoreszenzfarbstoffe und Nährmedien) und einen Speicher für zeitweilig nicht verwendete Zellkulturgefäße auf. Das vorliegende automatisierte Zellkultursystem weist zudem eine Klimatisierungseinheit zur Herstellung der äußeren Zellkulturbedingungen, insbesondere eine klimatisierte Vertikalumluftbank mit definierten Umgebungsbedingungen, auf.
Das vorliegende Ausführungsbeispiel weist weiterhin eine Einheit zur Erzeugung eines Laminar Flow, eine Medienzuführung, Vorrichtungen zur Sterilisation von Oberflächen und eine Zentrifuge auf. Durch eine entsprechende Gestaltung der Oberflächen sowie die Auswahl des Materials wird hierbei eine Dekontaminierbarkeit erzielt, wodurch die Gefahr von Querkontaminationen minimiert wird. Hierzu zählt beispielsweise die Vermeidung von ungedichteten Schraubverbindungen, von Toträumen oder ebenen Konstruktionsflächen, die einen Abfluß von evtl. Spülflüssigkeiten oder Produktionsrückständen verhindern würden.
Außerdem wird der Zustand der Zellen in der Zellkultur im vorliegenden Ausführungsbeispiel des automatisierten Zellkultursystems mit einer oder mehrerer Vorrichtungen zur Gewinnung von Informationen aus der Kultur erfaßt. Hierzu sind (als sensorische Elemente) eine optische Bilderfassung und/oder elektrische/elektrochemische Sensoren vorgesehen.
Beispielsweise ist eine optische Untersuchung der Zellkultur mit verschiedenen bildgebenden mikroskopischen Verfahren, wie Durchlicht, Phasenkontrast oder differentieller Interferenzkontrast ,DIC möglich.
Gegebenenfalls kommt eine bildgebende Fluoreszenzoptik hinzu, mit der die räumliche Verteilung von Fluoreszenzfarbstoffen in der Zellkultur bestimmt wird.
Diese bildgebenden Verfahren sind an eine automatische Bildauswertung angeschlossen, welche geeignet ist, Rückschlüsse auf den Zustand einzelner Zellen oder der gesamten Kultur zu ziehen. Dabei ergibt die räumliche Struktur der Zellen und Zellkulturen eine interessante zusätzliche Information. Zur Gewinnung derartiger quantifizierbarer Informationen über eine räumliche Struktur der Zellen und Zellkulturen sind die konventionellen Methoden wie Phasenkontrast und differentieller Interferenzkontrast (DIC) jedoch ungeeignet. Diese ergeben zwar visuell einen Eindruck über die dritte Dimension (in der Beobachtungsrichtung, z-Richtung in der Figur). Diese Information ist jedoch nicht in allen Fällen eine quantitative Information, die in einer Bildauswertungssoftware weiterverarbeitet werden kann. Insbesondere sind die Bilder, die mit den genannten konventionellen Kontrastverfahren gewonnen werden, stark abhängig von der Einstellung der Optik.
Eine objektive, quantifizierbare Information erhält man dagegen durch ein interferometri- sches Verfahren, bei welchem zusätzlich zu dem mikroskopischen Strahlengang (Meßstrahlengang) ein zusätzlicher Referenzstrahlengang hinzugefügt ist.
In der (einzigen) Figur ist eine derartige optische Anordnung zur Gewinnung quantifizierbarer räumlicher Informationen über die Zellen und Zellkulturen gezeigt.
Dabei wird von einer Lichtquelle 1 ein Lichtstrahl L erzeugt, welcher über einen Polarisationsfilter 2 geführt wird. Der polarisierte Strahl mit einer Wellenlänge von λ/2 wird mittels eines Strahlteilers 3 auf zwei Teilstrahlen L1, L2 aufgeteilt. Der Teilstrahl L1, welcher den Referenzstrahl bildet, durchläuft eine Baugruppe aus einem Teleskop und einem Raumfilter (mit dem Bezugszeichen 4 bezeichnet). Der Teilstrahl L2, der den Meßstrahl bildet, wird über eine Umlenkeinrichtung 5 und einen weiteren Polarisationsfilter 6 der Probe P zugeführt. Nach Durchsetzen der Probe P durchläuft der Meßstrahl L2 ein Mikroskopobjektiv 7. Der das Mikroskopobjektiv 7 verlassende Meßstrahl wird auf einer Auswerteoptik 8 (insbesondere einem CCD-FeId) mit dem Referenzstrahl L1 überlagert.
Die Strahlaufteilung auf die Strahlteilen L1 und L2 erfolgt vorliegend gleichmäßig, d.h. ie Intensität L1 zu L2 beträgt bei 50 % zu 50 %. Wie in der (einzigen) Figur ersichtlich, wird der Referenzstrahl L1 mit dem aus dem Objektiv austretenden Meßstrahl L2 überlagert. Das auf der optischen Auswerteinrichtung 8 entstehende Interferenzmuster enthält die Information über die Phasenverschiebung des Lichtes an jedem Ort in der x-y-Ebene auf der Probe (in der Figur ist ein kartesisches Koordinatensystem angegeben). Die optische Phase ist gleichbedeutend mit dem Produkt aus Dicke und Brechungsindex des beobachteten Objektes P. Unter der Annahme, daß die Brechzahlen innerhalb der Zellen homogen und von Zelle zu Zelle identisch sind, ist daraus die Dicke der Zellen an jedem Ort in der x-y- Ebene berechenbar.
Zur eindeutigen Bestimmung der Phase wird beim vorliegenden Ausführungsbeispiel eine Komponente (Teleskop + Raumfilter) zur definierten Phasenverschiebung des Referenzstrahles eingeführt. Aus mehreren Bilder, die mit verschiedenen Referenzphasen aufgenommen wurden, wird eindeutig zwischen Phasen- und Intensitätsinformation unterschieden. Gleichzeitig erhält man einen innerhalb eines Bereiches von 2π eindeutigen Phasenwert. Über eine Interferenzordnung (Phasenänderung von 2π) hinaus ist die Phase mit Hilfe bekannter „unwrapping"-Techniken zu korrigieren.
Neben den vorgenannten bildgebenden Verfahren sind außerdem optische Verfahren von Bedeutung, mit denen die optische Transmission oder die Fluoreszenz über größere Bereiche der Kultur gemittelt erfaßt werden können. Damit kann man z.B. die Färbung von Indikatoren erfassen, die dem Kulturmedium zugesetzt werden. Hierdurch können Methoden zur Mittlung der Zelleigenschaften zur Verfügung gestellt werden.
Weiterhin können elektrische bzw. elektrochemische Meßverfahren zum Einsatz kommen, mit denen z.B. die lokale Temperatur, der pH-Wert oder lonenkonzentratio- nen bestimmt werden.
Um den Zustand der Zellkultur automatisch bestimmen zu können, ist eine Software für die Auswertung von Bilddaten und Sensorsignalen und zur Steuerung des gesamten Ablaufs der Zellkultivierung vorgesehen. Mit dieser werden die vom System erfaßten Bilddaten der kultivierten Zellen über eine Bildanalyse verarbeitet. Diese liefert quantitative Analyseergebnisse, wie beispielsweise Zelldichte, Zahl der toten Zellen, Zahl der Mitosen, und Zahl der morphologisch veränderten Zellen, welche ein Bild von der Kultur ergeben, das zusammen mit der Vorgeschichte, d.h. früher an dieser Kultur erfaßten Daten und zusammen mit den Protokollen zur Kultivierung der speziellen Kultur zu einer sehr genauen Bewertung des aktuellen Zustandes der Zellkultur führen können. Diese sehr genaue Bewertung des Zustandes der Zellkultur ist eine solide Grundlage für die Feststellung eines möglichen Eingriffs in die Kulturbedingungen und/oder für die Initiierung eines Prozeßschrittes in den Kultivierungsprozeß. Dieser Eingriff kann dann direkt durch das System erfolgen oder zu einer Meldung nach außen führen. Das System kann in diesem Fall eine Meldung, ggf. mit einem Vorschlag für eine Aktion machen, die dann vom Operator ausgelöst wird.
Die Verarbeitung der Zellbilder und der Sensorsignale ist als trainierbare Software ausgeführt. Damit ist das System leicht an veränderte Aufgabenstellungen (wie andere Zellkulturen oder veränderte Rahmenbedingungen) anpaßbar. Der Nutzer gibt z.B. anhand von Bildern eine Klassifizierung von Zelltypen oder von definierten Zuständen der Kultur vor, die anschließend während der Kultivierung von der Bildverarbeitung erkannt werden.
Insbesondere kann dabei die Bildanalysesoftware für die Erkennung von relevanten Bildstrukturen, wie insbesondere gesunde Zellen, zertrümmerte Zellen, abgelöste Zellen durch den Anwender trainiert werden. Dazu werden in einer Trainingsphase in einigen Bildern Beispiele für zu erkennende Strukturen markiert. Die Bildanalysesoftware berechnet für diese Bilder einen Satz von Merkmalen (Intensität, morphologische Merkmale, Texturen) und bestimmt diejenigen Merkmale, welche die ausgewählten Beispiele auszeichnen, und insbesondere Kriterien, die im Merkmalsraum die gesuchten Strukturen von anderen Strukturen diskriminieren. Nach Abschluß der Trainingsphase können diese berechneten Parameter verwendet werden, um in weiteren Bildern die gewünschten Strukturen automatisch zu erkennen. Neben der automatischen Datenerfassung und Regelung ist die Dokumentation (z.B. der Regelparameter, der Meßwerte der Regelung, des Zustands der Zellkultur bzw. des Mediums zu verschiedenen Zeitpunkten, der Meßwerte der Kultivierungsparameter und des Zustands der Zellkultur auf deren Basis eine Regelung oder ein Prozeßschritt durchgeführt wurde) von großer Bedeutung. Auf diesem Wege können die Vorgeschichte der Kultur und der Kultivierung zurückverfolgt werden. Damit wird eine zeitlich abhängige präzisere Zustandsbeschreibung gegeben und im Falle eines nicht optimalen Ergebnisses die Fehlersuche erleichtert.
Bei einem ersten Anwendungsbeispiel des vorliegenden automatisierten Zellkultursystems wird für eine optimale Zelldifferenzierung die Zusammensetzung des Differenzierungsmediums an den Differenzierungsgrad der Zellkultur angepaßt. Dazu werden kontinuierlich Bilddaten von der Zellkultur aufgenommen und mit Hilfe der Auswertesoftware ausgewertet. Bei bestimmten Zuständen der Zellen, die von der Software erkannt werden, erfolgt entweder ein automatischer Austausch des im Zellkulturgefäß vorhandenen Mediums durch ein neues Medium in anderer Zusammensetzung oder es werden zum vorhandenen Medium Wachstumsfaktoren zugegeben. Vorzugsweise kommt für die Bildanalyse die vorstehend beschriebene trainierbare Software zum Einsatz. Der Zustand der Zellkultur wird beispielsweise anhand von morphologischen Merkmalen oder mit Hilfe minimal invasiver Markierungssubstanzen erfaßt. Ein Trainieren der Bildanalysesoftware kann in Vorversuchen durch erfahrenes Personal oder auch mit Hilfe der invasiven Markierungssubstanzen erfolgen.
Bei einem zweiten Anwendungsbeispiel erfolgt der Austausch des Kulturmediums in Abhängigkeit von der Zellfunktion. Dabei wird quasi kontinuierlich eine bestimmte Zellfunktion, z.B. eine Kontraktionsrate bei Kardiomyozyten, überwacht. Sobald die Parameter der gewählten Zellfunktion einen zuvor definierten Bereich verlassen, wird ein Austausch des Zellkulturmediums veranlasst.
Bei einem dritten Anwendungsbeispiel wird die Kultivierung eines ersten Zelltyps mit Hilfe eines weiteren Zelltyps (Feederzellen) unterstützt. Wenn in der Mischkultur mit diesen beiden Zelltypen der erste Zelltyp in ausreichender Menge vorhanden ist, wird das vorhandene Kulturmedium automatisch durch ein Kulturmedium ersetzt, welches dazu führt, daß der zweite Zelltyp abstirbt. Wenn alle Zellen des zweiten Typs abgestorben sind, wird das Kulturmedium automatisch durch Normalmedium ersetzt.
Bei einem vierten Anwendungsbeispiel wird auf Grund eines Zustands der Zellkultur ein Prozeßschritt eingeleitet, wie z.B. Passage der Zellkultur bei Erreichen eines angestrebten Bedeckungs-/Konfluenzgrades in weitere Zellkulturflaschen oder andere Zellcontainer, Dispensieren der Zellen in Mikrotiterplattenwells oder Einzelzellenent- nahme-/handling/-weiterverarbeitung.
Bei einem fünften Anwendungsbeispiel werden Zellen in Containern (z.B. Petrischalen, MTP1 Zellkulturflaschen) kultiviert, Prüfsubstanzen (z.B. bei Wirkstofftest oder Toxizitätstests) aufgegeben und die Zellkultur in ihrer Eigenschaft (z.B. Wachstumsrate, Morphologie, Kern-Plasma-Verhältnis, Art des Wachstums wie beispielsweise Criss-cross-Wachstum, Ausbildung der Zellfunktion, Zellzahlbestimmung in bestimmten Arealen, beispielsweise Koloniemitte/Kolonierand) zeitabhängig dokumentiert und dem System ein Vorschlag für die Klassifikation (z.B. normal, verändert, transformiert, Zellzahl im Areal, mittlere Kerngröße, mittlere Zellplasmafläche, mittlere Neutritenanzahl etc.) gemacht.
Ein sechstes Anwendungsbeispiel betrifft die Optimierung des Zellkulturprozesses bei Primärzellkulturen, z.B. Keratinozyten aus unterschiedlichen Biopsien, und/oder den Erhalt der Zellkultur ohne weiteres Ausdifferenzieren.
Ein siebtes Anwendungsbeispiel betrifft einen autonomen Kultivierungsprozeß einer robusten Routinezellkultur (z.B. HeLa, HEK, COS) einschließlich Medienwechsel, Passage, Aussäen basierend auf der optischen und/oder elektrischen/elektrochemischen Sensorik (z.B. für Screeningexperimente mit Zellen gleicher Qualität innerhalb einer Zellkultur) unabhängig von Regelarbeitszeiten des Laborpersonals (z.B. über Nacht, über das Wochenende, über Feiertage). Ein achtes Anwendungsbeispiel betrifft die Standardisierung einer Zellkultur (Definition der Prozeßparameter für die Zellkultivierung, z.B. Zeitpunkt für Passage oder Medienwechsel, Seeding Density, Planting Efficiency (Wieviele Zellen wachsen an?)) mit dem vorliegenden automatisierten Zellkultursystem auf Grund der schon vorstehend erläuterten Dokumentation, bevor dies in ein System mit starren Protokollen überführt wird oder die Kultivierung im Bioreaktor/Fermenter etabliert wird.
Bei einem neunten Anwendungsbeispiel werden bestimmte Bereiche aus einer Zellkultur entnommen, die sich während der Kultivierung gebildet haben und charakteristische Merkmale aufweisen. Sobald diese Bereiche entstanden sind, wird das mit Hilfe einer Bildanalyse erkannt und die Zellen der Bereiche automatisch mit Hilfe einer Pipette in ein neues Kulturgefäß überführt.
Bei einem zehnten Anwendungsbeispiel werden aus einer Zellsuspension mit sehr geringer Zellkonzentration Aliquote in Wells einer Mikrotiterplatte gegeben. In dem geregelten Zellkultursystem werden nur Zellen aus Wells weiterverarbeitet, in denen sich anfangs genau eine Zelle befand.
Aus der vorstehenden Beschreibung ergibt sich insbesondere ein automatisiertes Zellkultursystem, bestehend aus aktorischen Elementen (zur Handhabung von Zellkulturgefäßen, Zellsuspensionen, Fluoreszenzfarbstoffen und Nährmedien) einer klimatisierten Vertikalumluftbank mit definierten Umgebungsbedingungen, sensorischen Elementen (optische Bilderfassung und/oder elektrische Sensorik) und einer Software für die Auswertung von Bilddaten und Sensorsignalen und zur Steuerung des gesamten Ablaufes, wobei die Kulturbedingungen geregelt und/oder situationsabhängig Prozeßschritte in der Kultivierung initiiert und/oder durchgeführt werden.
Die Bildaufnahme erfolgt dabei u.a. mit einer interferometrischen Methode. Dabei wird zusätzlich zu dem mikroskopischen Strahlengang ein Referenzstrahl eingeführt, der mit dem Strahlenbündel überlagert wird, das aus dem Mikroskopobjektiv austritt. Die Verarbeitung der Zellbilder und der Sensorsignale ist vorliegend als trainierbare Software ausgeführt. Damit ist das System leicht an veränderte Aufgabenstellungen (andere Zellkulturen, veränderte Rahmenbedingungen) anpaßbar.
Die Systemkomponenten sind in einer hohen hygienischen Qualität ausgeführt und verhindern dadurch die Kontamination des Produktes. Dies betrifft insbesondere die Gestaltung der Oberflächenrauhigkeit kleiner als 20 μm, entsprechende Dichtungselemente aus PTFE oder ähnlichen Materialien sowie eine entsprechende konstruktive Auslegung.
Die Planung der automatisierten Zellkultivierung erfolgt bezogen auf den gewünschten Endzeitpunkt der Produktion. Ausgehend von einem Zeitpunkt, zu dem die Zelllinien verfügbar sein sollen, wird eine rückwärtige Planung durchgeführt, wann Medienwechsel und Passagen durchgeführt werden sollen.

Claims

Patentansprüche:
1. Verfahren zur Kultivierung einer Zellkultur in einem automatisierten Zellkultursystem, wobei Zustandsdaten von Zellen in der Zellkultur erfaßt und zumindest eine Kulturbedingung entsprechend dem erfaßten Zustand der Zellen in der Zellkultur geregelt und/oder zumindest ein als notwendig ermittelter Prozeßschritt in der Zellkultivierung eingeleitet oder durchgeführt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, daß zur Ermittlung der Zustandsdaten zumindest eine Eigenschaft zumindest eines Teils der Zellen in der Zellkultur mit einem bildgebenden Verfahren erfaßt und eine Klassifizierung der Zellen aufgrund der erfaßten Eigenschaft durch ein Auswerteprogramm durchgeführt wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß zur Regelung der Kulturbedingungen auf zumindest einen Prozeßparameter für die Zellkultivierung entsprechend der vom Auswerteprogramm vorgenommenen Klassifizierung durch ein Regelungsprogramm zur Optimierung des Zellkulturprozeßes Einfluß genommen wird.
4. Automatisiertes Zellkultursystem mit zumindest einem aktorischen Element zur Handhabung einer Zellkultur, zumindest einem sensorischen Element zur Erfassung von Zustandsdaten der Zellen in der Zellkultur, einer Einrichtung zur Auswertung der Zustandsdaten der Zellen und einer Einrichtung zur Regelung von Zellkulturbedingungen und/oder zur Einleitung und/oder Durchführung weiterer Prozeßschritte in der Kultivierung.
5. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß das aktorische Element zum Handling der Zellkulturgefäße, der Zellsuspensionen, der Fluoreszenzfarbstoffe und/oder der Nährmedien vorgesehen ist.
6. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 4 oder 5, gekennzeichnet durch eine klimatisierte Vertikalumluftbank mit definierten Umgebungsbedingungen.
7. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß als sensorische Elemente eine optische Bilderfassung zum zwei- und/oder dreidimensionalen Darstellen der Zellen und/oder eine elektrische oder elektrochemische Sensorik vorgesehen sind.
8. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß als optische Bilderfassung ein bildgebendes mikroskopisches Verfahren, insbesondere Durchlicht, Phasenkontrast, oder Differenzieller Interferenzkontrast vorgesehen ist.
9. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 7 oder 8, dadurch gekennzeichnet, daß als optische Bilderfassung ein interferometrisches Verfahren vorgesehen ist, bei dem zusätzlich zu einem mikroskopischen Strahlengang ein Referenzstrahl vorgesehen ist, wobei der mikroskopische Strahlengang als Meßstrahl mit dem Referenzstrahl überlagerbar ist.
10. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 7 bis 9, dadurch gekennzeichnet, daß als optische Bilderfassung eine bildgebende Fluoreszenzoptik vorgesehen ist, mit der eine räumliche Verteilung von Fluoreszenzfarbstoffen in der Zellkultur bestimmbar ist.
11. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 7 bis 10, gekennzeichnet durch eine Einrichtung zur Mittlung der mit der optischen Bilderfassung ermittelten Daten über größere Bereiche der Zellkultur hinweg, insbesondere eine Einrichtung zur Bestimmung der optischen Transmission oder der Fluoreszenz.
^. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 11 , gekennzeichnet durch elektrische und/ oder elektrochemische Sensoren zur Ermittlung von Prozeßbedingungen, insbesondere zur Bestimmung einer lokalen Temperatur, eines pH-Wertes oder einer lonenkonzentration.
13. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 12, dadurch gekennzeichnet, daß die Einrichtungen zur Auswertung der Zustandsdaten der Zellen und zur Regelung von Zellkulturbedingungen und/oder zur Einleitung und/oder Durchführung weiterer Prozeßschritte als ein Softwareprogramm für die Auswertung von Bilddaten und Sensorsignalen und zur Steuerung des gesamten Ablaufes ausgebildet sind.
14. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß ein Bildanalyseprogrammteil des Softwareprogramms für die Erkennung von relevanten Bildstrukturen, insbesondere von gesunden Zellen, Zelltrümmern und abgelösten Zellen, durch den Anwender trainierbar ist, wobei ein Nutzer anhand von Bildern eine Klassifizierung von Zelltypen oder von definierten Zuständen der Kultur vornimmt, welche anschließend während der automatischen Kultivierung von der Bildverarbeitung erkennbar sind.
15. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, daß in der Trainingsphase einige der Bilder als Beispiele für zu erkennende Strukturen markierbar sind, wobei der Bildanalyseprogrammteil für diese Bilder einen Satz von Merkmalen, der insbesondere Intensität, morphologische Merkmale und Texturen umfaßt, berechnet und diejenigen Merkmale bestimmt, welche die ausgewählten Beispiele auszeichnen sowie Kriterien bestimmt, die im Merkmalsraum die gesuchten Strukturen von anderen Strukturen diskriminieren, und wobei nach Abschluss der Trainingsphase diese berechneten Parameter verwendet werden, um in weiteren Bildern die gewünschten Strukturen automatisch zu erkennen.
16. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 15, gekennzeichnet durch eine Speichereinrichtung, mit der an der Zellkultur erfaßte Daten und/oder Protokolle zur Kultivierung der Zellkulturen speicherbar und abrufbar sind.
17. Automatisiertes Zellkultursystem nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, daß die Einrichtung zur Regelung von Zellkulturbedingungen dazu vorgesehen ist, einen aktuellen Zustand der Zellkultur auf Basis der an der Zellkultur erfaßten Daten und gespeicherter Protokolle früherer Kultivierungen zur Kultivierung der aktuellen Zellkulturen zu bewerten, wobei diese Bewertung Grundlage für eine Festlegung eines möglichen Eingriffs in die Kulturbedingungen ist.
18. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 17, dadurch gekennzeichnet, daß die Einrichtung zur Regelung von Zellkulturbedingungen dazu vorgesehen ist, den Eingriff direkt im System mit den automatischen aktorischen Elementen zur Handhabung und zum Betrieb der Zellkultur automatisch durchzuführen und/oder eine Meldung nach außen zu geben, insbesondere zusammen mit einem Vorschlag für mögliche Eingriffe an das Bedienpersonal.
19. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 18, dadurch gekennzeichnet, daß eine Planung der automatisierten Zellkultivierung bezogen auf einem gewünschten Endzeitpunkt der Produktion erfolgt, wobei ausgehend von dem Zeitpunkt, zu dem die Zelllinien verfügbar sein sollen, eine rückwärtige Planung durchgeführt wird, wann Medienwechsel und Passagen durchgeführt werden sollen.
20. Automatisiertes Zellkultursystem nach einem der Ansprüche 4 bis 19, dadurch gekennzeichnet, daß die Systemkomponenten in einer hohen hygienischen Qualität ausgeführt sind, wobei eine Oberflächenrauhigkeit kleiner als 20 μm ist, und wobei insbesondere Dichtungselemente aus PTFE oder ähnlichen Materialien ausgebildet sind.
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