TÍTULO
BIOSENSOR BASADO EN MOLÉCULAS DE ÁCIDO NUCLEICO PEPTÍDICO (PNA) SOBRE SUPERFICIES DE ORO, PROCEDIMIENTO DE OBTENCIÓN Y SUS APLICACIONES
SECTOR DE LA TÉCNICA
La invención se centra en los sectores de la biotecnologia y la nanotecnologia. La invención se relaciona, en general, con el procedimiento de obtención y aplicaciones de un biosensor basado en la inmovilización de moléculas de ácido nucleico peptidico (PNA) sobre superficies de oro. El biosensor puede ser aplicado en la detección y caracterización de moléculas de ácidos nucleicos (DNA o RNA) de interés biotecnológico, biosanitario humano o veterinario, medioambiental, agrario o alimentario.
ESTADO DE LA TÉCNICA
En el ámbito de la biotecnologia ha supuesto un avance importante el desarrollo reciente de la tecnologia de microarrays de DNA, también llamados chips o microchips de DNA (Southern y col., 1994; para una revisión véase Nature Genetics 21, suplemento, 1999) , según la cual miles de sondas moleculares, principalmente oligonucleótidos, se pueden fijar covalentemente a un soporte sólido (vidrio, nitrocelulosa, nylon etc.) Mediante microarrays de DNA se pueden realizar experimentos de expresión génica, estudios de polimorfismos de nucleótidos (SNPs) , minisecuenciación y tipado de microorganismos. Esta técnica explota la metodologia experimental desarrollada por E. Southern (Southern, 1975), según la cual los ácidos nucleicos se pueden fijar a un soporte sólido y formar hibridos estables con sus complementarios marcados radiactiva o fluorescentemente. La estabilidad de los hibridos viene determinada por el grado de complementariedad de la secuencia de nucleótidos y por
factores externos tales como la fuerza iónica del medio, el pH o la temperatura. Es posible diseñar y sintetizar oligonucleótidos de DNA, por ejemplo de 10 a 30 nucleótidos de longitud, en los que alguna de sus posiciones, generalmente la posición central, difiere de la que está presente en la cadena complementaria de un gen determinado. Las secuencias de dicho gen (presentes en una muestra natural o de laboratorio) se marcan con radiactividad o con un compuesto fluorescente y se ponen en contacto con toda una bateria de oligonucleótidos idénticos de cuatro en cuatro excepto en la posición central o "posición interrogante", donde en cada uno de los cuatro aparece, respectivamente, el nucleótido A, C, G o T. En ciertas condiciones de fuerza iónica, pH y temperatura, sólo se formarán hibridos estables alli donde el apareamiento entre bases complementarias sea completo, es decir, no se produzca un desapareamiento en la posición central interrogante. Un resultado positivo en la hibridación identifica inmediatamente al nucleótido presente en la posición interrogada del gen (Hacia y col., 1998) . Si bien esta es la técnica más habitual para el estudio de SNPs mediante microarrays de DNA, se han descrito otras variantes metodológicas que proporcionan resultados comparables (Parinov y col., 1996; Hacia, 1999; Bulyk y col., 1999) .
A pesar de la generalización del empleo de microarrays de DNA para realizar estudios genéticos, la limitación principal de esta metodologia radica en la necesidad de marcar previamente (mediante reactivos fluorescentes o radiactivos) la molécula diana que se va a estudiar. De hecho, esto hace que el rendimiento global del método venga limitado por la eficiencia del proceso de mareaje, y por ello se han propuesto otras técnicas de detección para el trabajo con microarrays de DNA (Kambhampati y col., 2001; Buetow y col. , 2001) .
Como alternativa al uso de microarrays, durante los últimos años se ha puesto a punto distintas tecnologias basadas en la cooperación entre los métodos de la biologia molecular y las técnicas de análisis de materiales desarrolladas por la fisica de superficies y la nanotecnologia. Una de las lineas más innovadoras en este área interdisciplinar va encaminada a la sintesis de monocapas autoensambladas (SAMs) de materiales biológicos sobre superficies metálicas, basándose en el hecho de que el autoensamblado y la autoorganización son las principales estrategias usadas por la naturaleza para construir sus agregados moleculares y maquinarias celulares a partir de sus unidades constituyentes (Ulman, 1991) . En particular, se ha dedicado mucho esfuerzo a la sintesis de SAMs de ácidos nucleicos sobre superficies metálicas, de forma que mantengan su capacidad para interaccionar con ácidos nucleicos complementarios .
Debido a su importancia tecnológica, se ha investigado en profundidad las monocapas formadas por moléculas de alcanotioles sobre superficies metálicas (Schreiber, 2000; Crain y col., 2001; Lehn, 2002), A partir de tales resultados se ha intentado la formación de SAMs de DNA tiolado sobre superficies de oro (Herne, 1997) . No obstante, los resultados han sido en general negativos, ya que el DNA tiende a formar estructuras globulares desordenadas sobre la superficie, cuya bioactividad queda muy reducida. Por otra parte, la formación de monocapas de DNA requiere siempre la co-inmovilización de moléculas espaciadoras de tioles, para dar lugar a capas moleculares mixtas o mezcladas (Herne y col., 1997; Wang y col., 2001; Culha y col., 2003; Casero y col., 2003) .
Por lo tanto, como alternativa al uso de DNA, diversas moléculas artificiales análogas de los ácidos nucleicos, más rigidas y carentes de carga eléctrica, podrian ser consideradas buenas candidatas para el crecimiento de SAMs
bioactivas con eficiente capacidad de reconocimiento de ácidos nucleicos. Entre este tipo de moléculas similares al DNA destacan, por sus potenciales aplicaciones, los ácidos nucleicos peptidicos (PNAs) que son análogos de DNA aquirales y eléctricamente neutros, en los que el esqueleto de azúcar- fosfato ha sido reemplazado por un polimero de naturaleza peptidica formado por polimerización de N- (2- aminoetil) glicina, al cual las bases nucleicas están unidas mediante enlaces metilencarbonilo (Nielsen y col., 1991; Egholm y col., 1992; Egholm y col., 1993) .
El PNA se caracteriza por su capacidad para hibridarse de manera estable y especifica con DNA complementario, de acuerdo con las reglas de paridad de bases de Watson-Crick (Egholm y col., 1993) . De hecho, los PNAs de cadena sencilla (ssPNA) presentan mayor afinidad por el ssDNA complementario que el propio ssDNA de la misma secuencia. Esto se debe principalmente al carácter eléctricamente neutro del PNA, que evita fenómenos de repulsión entre cadenas (Nielsen y col., 1991; Wittung y col., 1994) . La alta afinidad del PNA por el DNA permite incluso la hibridación de ssPNA a DNA de cadena doble (dsDNA) mediante un proceso denominado "invasión de hebra" (Demidov y col., 1995; Nielsen, 2001; Demidov y col., 2002) y permite usar sondas de PNA para inducir recombinación y/o bloqueo especifico de genes concretos (Rogers y col., 2002) . Además, la interacción del PNA al DNA es muy especifica, y prácticamente para todos los pares de bases que pueden formarse, la diferencia en estabilidad térmica entre el apareamiento correcto y el incorrecto es mayor en un dúplex PNA-DNA que en el dúplex DNA-DNA (Egholm y col., 1993) . Por tanto, la diferencia de temperaturas a que se produce un apareamiento completo y uno en que una de las bases está desapareada es mayor en el caso PNA-DNA que en el DNA-DNA. Con ello, un biosensor en que las sondas inmovilizadas sean de PNA será potencialmente más eficiente
que otro basado en DNA para la detección de mutaciones y SNPs en una molécula de ácido nucleico diana.
Por otra parte, dada la estructura de su esqueleto peptidomimético, el PNA no es sensible a la acción de enzimas biodegradadoras como DNasas, RNasas o proteasas, por lo que su estabilidad biológica es mucho mayor que la del DNA o RNA.
(Nielsen, 1999) . Finalmente, la insensibilidad del PNA a las variaciones de pH o de fuerza iónica hacen que posea también mucha mayor estabilidad quimica y ofrezca mayores posibilidades experimentales para su hibridación a distintas moléculas en diferentes composiciones del medio (Egholm y col., 1993; Kambhampati y col., 2001) .
Por todas estas razones, el PNA se está empleando cada vez más en diversos campos de la biotecnologia. Como ejemplo, recientemente se ha descrito la construcción de microarrays de PNA sobre vidrio activado quimicamente, siguiendo procedimientos análogos a los desarrollados en la tecnologia de microarrays de DNA (Matysiak y col., 2001) . Con ello, el estado de la técnica está suficientemente avanzado para el diseño y construcción de biosensores alternativos, basados en el uso de moléculas de PNA.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN Descripción breve La invención consiste en el desarrollo de un biosensor obtenido mediante la inmovilización de moléculas de ácido nucleico peptidico (PNA) sobre superficies de oro, y sus aplicaciones en la detección y caracterización de moléculas de ácidos nucleicos (DNA o RNA) de interés biosanitario, medioambiental o alimentario. El procedimiento de construcción de dichos biosensores se basa en la posibilidad de inmovilizar de manera controlada moléculas de PNA con un extremo tiolado sobre superficies de oro monocristalino o policristalino, de forma que se originen monocapas
autoensambladas (SAMs) . El biosensor basado en SAMs de PNA pose capacidad para unirse especificamente a DNA complementario, con elevada sensibilidad y una especificidad tal que permite discriminar entre moléculas de DNA que se diferencian en una sola mutación o polimorfismo. El seguimiento de la actividad del biosensor se efectúa mediante técnicas de caracterización molecular como microscopia de fuerza atómica (AFM) y fotoemisión de rayos X (XPS) , que a diferencia de las técnicas empleadas en los microarrays de DNA convencionales no requieren el mareaje previo de la molécula diana que se analiza.
Descripción detallada
La presente invención se enfrenta al problema de proporcionar nuevas herramientas para la identificación de material y actividad biológica, y más concretamente nuevos biosensores con capacidad de unirse a ácidos nucleicos con elevada sensibilidad y especificidad.
La invención se basa en que los inventores han observado que es posible la inmovilización de PNAs de cadena sencilla
(ssPNAs) con un extremo tiolado a una superficie de oro, de forma que las moléculas de PNA se disponen como una estructura bidimensional ordenada y autoensamblada, que permite una correcta presentación de dicha molécula a moléculas de ácidos nucleicos diana. La hibridación del PNA inmovilizado y un ácido nucleico diana puede ser determinada mediante técnicas de fisica de superficies como la microscopia de fuerza atómica (AFM) o la fotoemisión de rayos X (XPS) (Ertl y col., 1985) sin que se requiera el mareaje de las moléculas de ácidos nucleicos diana. En concreto, la técnica de XPS permite detectar el evento de hibridación por el incremento en la señal de nitrógeno (el que aporta el DNA hibridado al que ya poseia el PNA inmovilizado) o por la aparición de una señal de fósforo (producida por los grupos
fosfato del DNA o RNA diana, mientras que el PNA inmovilizado carecia de grupos funcionales con fósforo) . La especificidad del biosensor es tal que permite la identificación de un cambio de un nucleótido o mutación en el ácido nucleico diana.
En la presente invención se observa que a pesar de la longitud de hasta 7 nm de los PNAs, estas moléculas se ensamblan autónomamente de una forma ordenada sobre la superficie de oro, a través de un grupo tiol presente en el extremo de la molécula. Los PNAs autoensamblados se estabilizan sobre la superficie de oro mediante la interacción cadena-cadena por puentes de H y otros tipos de enlace no covalente entre nucleótidos no complementarios presentes en moléculas inmovilizadas vecinas. De esta forma, una realización práctica del biosensor consiste en un dispositivo formado por una placa que tipicamente tiene unas dimensiones de llxllxl mm, en una de cuyas caras mayores se ha depositado una monocapa de ssPNAs (Ejemplo 1) . Los inventores han demostrado que este biosensor es estable en aire (mantiene su estructura y funcionalidad durante al menos tres meses en aire tras su construcción) y altamente resistente a la radiación (es estable y bioactivo tras ser expuesto durante 48 horas a rayos X de una fuente sincrotrón con un flujo de 1012 fotones/cm2) . Además, las moléculas de PNA del biosensor mantienen su capacidad de reconocimiento de moléculas ssDNA complementario, lo que permite el uso de este dispositivo en la discriminación de dos moléculas de DNA diana que se diferencian únicamente en una mutación puntual ó SNP (Ejemplo 2) . Por tanto, un objeto de la presente invención lo constituye un biosensor útil para la detección y caracterización de moléculas de ácidos nucleicos diana, en adelante biosensor de la presente invención, que comprende una pequeña placa de material que aporta una superficie de
oro como soporte físico con moléculas de ácido nucleico peptídico (PNA) dispuestas en monocapas autoensambladas inmovilizadas sobre ella y donde dicha molécula de PNA está constituida por los siguientes elementos, tal como se muestra en la Figura 1 : a) una zona de unión que proporciona un grupo tiol u otro grupo que aporte un átomo de azufre reactivo, que permite la unión de dicha molécula de PNA a la superficie de oro, b) una cadena espaciadora de naturaleza orgánica y lineal, que permita una separación física de la secuencia sensora de PNA y la superficie de oro, y c) una cadena de PNA que actúa como secuencia sensora o cebo del biosensor. El término "biosensor" se refiere a un dispositivo formado por moléculas biológicas o moléculas análogas a moléculas biológicas, preferentemente moléculas PNA, inmovilizadas sobre una superficie de oro que actúa como soporte físico, con capacidad para unirse o hibridarse específicamente a otras moléculas biológicas de forma que se pueda realizar un seguimiento del proceso de unión.
El término "ácido nucleico" se refiere a una secuencia de ácido desoxirribonucleico (DNA) , ácido ribonucleico (RNA) o ácido nucleico peptídico (PNA) , de longitud igual o superior a 2 nucleótidos (abreviado como nt) que puede ser de cadena sencilla o cadena doble.
El término "sonda" se refiere a ácidos nucleicos, de 5- 250 nt (si son de cadena sencilla) o 5-250 pares de bases (si son de cadena doble) de longitud constituidos por secuencias de nucleótidos específicas que permiten una hibridación total o parcial con secuencias diana complementarias cuando se imponen unas condiciones definidas .
El término "diana" se refiere a una secuencia de ácido nucleico susceptible de hibridar con las sondas inmovilizadas
en el biosensor. Por tanto, una realización particular de la invención lo constituye el biosensor de la invención en el que el ácido nucleico diana es un ácido desoxirribonucleico
(DNA) , o un ácido ribonucleico (RNA) o ácido nucleico peptidico (PNA) susceptibles de hibridar con las sondas de oligonucleótidos inmovilizadas en un biosensor, preferentemente de PNA.
Tal como se utiliza en la presente invención el término "ácido nucleico peptidico (PNA) " se refiere a una molécula análoga estructuralmente al DNA en la que el esqueleto estructural es un polimero de naturaleza peptidica formado por polimerización de N- (2-aminoetil) glicina, al cual las bases nucleicas están unidas mediante enlaces metilencarbonilo. En la presente invención la molécula PNA que actúa como sonda del biosensor puede tener una longitud de entre 4 y 250 monómeros, es decir, presentar otras tantas bases nitrogenadas, y poseer orientación "amino-carboxilo"
(N-C) o bien "carboxilo-amino" (C-N) (Nielsen y col., 1991;
Egholm y col., 1992; Egholm y col., 1993) . El PNA puede ser de cadena sencilla (ssPNA) o doble (dsPNA) . Por tanto, otra realización particular de la invención lo constituye el biosensor de la invención en el que la cadena de PNA que actúa como secuencia sensora o cebo del biosensor c) es de cadena sencilla (ssPNA) o doble (dsPNA) . Se define como "monocapa autoensamblada" o "self- assembled monolayer (SAM) " a una disposición de moléculas sobre una superficie, estabilizada de manera espontánea mediante enlaces covalentes entre dichas molécula y superpie
(Ulman, 1991) . Otra realización particular de la invención lo constituye el biosensor de la invención donde el soporte fisico, a titulo ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, pertenece al siguiente grupo: un monocristal de cualquier metal noble o de silicio, bien sea de naturaleza
monocristalina, en láminas delgadas o policristalina. Entre dichos metales nobles se encuentran, además del oro, los siguientes: plata, cobre, platino y algunas de sus aleaciones. A dichos metales nobles también se ha descrito, como en el caso del oro, la unión preferencial de moléculas a través un grupo tiol reactivo, dando lugar a monocapas autoensambladas (Schreiber, 2000) . En el caso del silicio, la unión de la molécula está promovida por un grupo funcional que contenga oxigeno, como por ejemplo el grupo alcohol (Ulman, 1991) . En todos los casos, la superficie del metal noble o de silicio a la que se unirán las moléculas de PNA para originar el biosensor podrá haber sido tratada con métodos fisico-quimicos de limpieza, como ultrasonidos, ácidos o disolventes. La superficie del metal noble o del silicio puede asimismo haber sido calentada durante entre 1 y 30 minutos a una temperatura de entre 500 y 700°C para promover la formación de terrazas en el material (Ulman, 1991) .
Otra realización particular de la invención en la cual dicho metal noble es el oro.
Otra realización particular de la invención lo constituye el biosensor de la invención donde la molécula de unión de a) es una molécula, a titulo ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, perteneciente al siguiente grupo: Cisteina, Metionina, Metanotiol, Etanotiol y azufre elemental (Poirier y col., 1996; Schreiber, 2000; Lehn, 2002) .
Otra realización particular de la invención lo constituye el biosensor de la invención donde la molécula espaciadora de b) es una molécula, a titulo ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, perteneciente al siguiente grupo: alcanos de entre 4 y 12 átomos de carbono, alquenos de entre 4 y 12 átomos de carbono, acido 8-amino- 3, 6-dioxaoctanoico, pudiendo estar cualquiera de ellos en una
o más copias unidas en disposición cabeza-cola o cabeza- cabeza (Schreiber, 2000; Lehn, 2002) .
Una realización concreta de la invención lo constituye el biosensor de la invención que comprende una zona de unión que provee de un grupo tiol de a) constituida por una cisteina y una cadena espaciadora de naturaleza orgánica y lineal constituida por una molécula de ácido 8-amino-3,6- dioxaoctanoico.
Otro objeto de la presente invención lo constituye un procedimiento de fabricación del biosensor de la invención, en adelante procedimiento de fabricación de la invención, caracterizado por las siguientes fases: a) Incubación con la superficie de oro de una solución de PNA en agua o cualquier tampón adecuado, a una concentración comprendida entre 1 picomolar (pM) y 100 milimolar (mM) , de forma que se logre la inmovilización ordenada de la molécula sobre la superficie de oro que actúa como soporte fisico y donde la temperatura de inmovilización puede variar entre 4°C y 80°C, y el tiempo de inmovilización entre 1 y 600 minutos, b) Lavado en agua o cualquier tampón adecuado del exceso de PNA inmovilizado inespecificamente sobre la superficie de oro, y c) Comprobación mediante técnicas de fisica de superficies de las caracteristicas estructurales de la capa de PNA inmovilizada.
Otra realización particular de la invención lo constituye el procedimiento de fabricación de la invención en el que la molécula de PNA puede tener una longitud de entre 4 y 250 bases nitrogenadas, puede tener orientación N-C o bien C-N y donde el PNA puede ser de cadena sencilla (ssPNA) o doble (dsPNA) .
Otra realización particular de la invención lo constituye el procedimiento de fabricación de la invención en
el que la superficie de oro de a) puede ser aportada por un monocristal o bien por un policristal de oro (Schreiber, 2000) .
Otra realización particular de la invención lo constituye el procedimiento de la invención donde el soporte físico, a título ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, se selecciona entre al siguiente grupo: una estructura en forma de lámina como la utilizada como soporte para los microchips o microarrays (ver Nature Genetics 21, suplemento, 1999) .
El procedimiento de fabricación de la presente invención puede ser llevado a cabo por un experto en la materia de fabricación de biosensores, microarrays o monocapas autoensambladas con la información descrita en la presente invención
Otra realización particular de la invención lo constituye el procedimiento de la invención donde la comprobación mediante técnicas de física de superficies de c) se lleva a cabo por una técnica perteneciente al siguiente grupo: microscopía de fuerza atómica (AFM), microscopía de efecto túnel (STM) , fotoemisión de rayos X (XPS) , absorción de rayos X (XANES) , fluorescencia de rayos X (XES) , y espectroscopia Auger (AES) .
Finalmente, otro objeto de la presente invención lo constituye el uso del biosensor de la invención en un procedimiento de detección y caracterización de moléculas de ácidos nucleicos diana complementarios de interés biotecnológico, sanitario humano o veterinario, medioambiental, agrario o alimentario, que podrán ser complementarios total o parcialmente a la sonda de PNA inmovilizada sobre el oro y en los que el seguimiento del proceso de hibridación se realiza mediante técnicas de física de superficies, a título ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, al siguiente grupo: microscopía de
fuerza atómica, microscopía de efecto túnel (STM) , fotoemisión de rayos X (XPS) , absorción de rayos X (XANES) , fluorescencia de rayos X (XES) y espectroscopia Auger (AES)
Otra realización particular de la invención lo constituye el uso del biosensor de la invención en el que el procedimiento de detección y caracterización de ácidos nucleicos consiste, a titulo ilustrativo y sin que limite el alcance de la invención, en un estudio de expresión génica, un estudio de polimorfismos de nucleótidos (SNPs) para la identificación de mutaciones, minisecuenciación y tipado de microorganismos (Parinov y col., 1996; Hacia y col., 1998;
Hacia, 1999; Bulyk y col., 1999; Matysiak y col., 2001) .
Definíclones A continuación se indican otras definiciones de términos relevantes utilizados en la presente invención:
El término "posición nucleotidica" se refiere al lugar que ocupa cada uno de los nucleótidos en una secuencia de ácido nucleico. Una "mutación" es una alteración de la secuencia de nucleótidos de un ácido nucleico respecto a otro que sirve de referencia. Dicha alteración puede ser una sustitución de un nucleótido por otro, una inserción o una deleción de uno o más nucleótidos . Se define "genoma tipo" o "genoma salvaje" como el genoma de un aislado de un organismo cuya secuencia está considerada por la comunidad cientifica como de tipo salvaje, y sirve como genoma de referencia para esa especie. Como ejemplo, en el caso concreto del virus de la inmunodeficiencia humana (VIH-I) , como genoma salvaje se considera la cepa HXB2 (número de acceso en la base de datos GenBank: K03455) .
"Posición interrogada" es aquella posición nucleotidica de la secuencia de un ácido nucleico cuya composición se desea conocer.
Se define como "oligonucleótido salvaje" aquél que posee total identidad de secuencia con el genoma salvaje o genoma tipo correspondiente.
Se define como "oligonucleótido mutante" aquél que posee total identidad de secuencia con el genoma salvaje correspondiente, salvo en la/s posición/es interrogante/s, en las cuales posee la secuencia correspondiente a una cepa mutante en esa posición.
El término "hibridación" se refiere a un proceso mediante el cual, en unas condiciones definidas y adecuadas, dos cadenas complementarias de ácidos nucleicos se unen mediante la formación de puentes de hidrógeno para formar ácidos nucleicos de cadena doble, según las reglas de apareamiento entre bases nitrogenadas .
"Hibridación total" o "hibridación 100%" se refiere a la hibridación que tiene lugar cuando todos los nucleótidos de una sonda u oligonucleótido aparean con una secuencia diana, o viceversa.
Un "desapareamiento" se produce cuando en al menos una posición determinada de un ácido nucleico de doble cadena, ambas cadenas poseen dos nucleótidos no complementarios . Un "hibrido" es el resultado del proceso de hibridación entre dos ácidos nucleicos de cadena sencilla. Los desapareamientos en las posiciones centrales tienen un efecto desestabilizador mayor que cuando se localizan en los extremos . La estabilidad viene determinada por la longitud, el número de desapareamientos, y los factores externos como la temperatura, la fuerza iónica del medio o el pH aportado por la solución en la que se realiza la hibridación. Cuanto mayor sea la longitud, menor el número de desapareamientos,
menor la fuerza iónica, menor temperatura y pH cercano a la neutralidad, mayor será la estabilidad del hibrido.
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS Figura 1.- Estructura general (mostrada como estructura quimica y modelo tridimensional) de las moléculas de PNA empleadas en la invención, en la que se muestra los tres elementos que las constituyen: a) la Cisteina que aporta el grupo tiol reactivo frente al oro; b) la cadena espaciadota formada por dos moléculas de ácido 8-amino-3, 6-dioxaoctanoico y longitud total de 3 nm; c) la cadena de ssPNA que actúa como secuencia sensora o cebo del biosensor (en el esquema se muestran únicamente el primer y último monómero de una molécula de PNA con 11 monómeros) . Figura 2.- Imágenes de AFM correspondientes al biosensor de la invención, obtenido por inmovilización de PNA P-G142 a concentración de lμM sobre oro policristalino. El perfil del panel b) corresponde a la linea marcada en a) . En el panel c) se ha señalado un grupo individual de moléculas de PNA. Figura 3.- Imágenes de AFM de biosensores obtenidos mediante inmovilización de concentraciones crecientes de PNA. a) P-M41 a concentración 0.1 μM; b) y e) : P-G142 a concentración 0.5 μM; d) P-G142 a concentración 10 μM. Figura 4.- Espectro de XANES, normalizado a la intensidad del pico σ*, en el rango de los picos de NIs. Se ha trabajado a diferentes ángulos de incidencia. Los ángulos entre el vector normal a la superficie y el vector de dolarización de los rayos X es de 90° (linea discontinua) y 20° (linea continua) . Figura 5.- Espectros de XPS de alta resolución, normalizados al pico de Au4f, correspondientes a la región del NIs (a) y P2p (b) . En ambos casos, las figuras muestran el espectro antes (curva inferior) y después (curva superior) de la
hibridación del biosensor con una molécula diana de ssDNA perfectamente complementaria al PNA inmovilizado. Figura 6.- Caracterización del biosensor de la invención, en cuanto a la dependencia de la concentración de ssPNA inmovilizado en la eficiencia de la hibridación a ssDNA complementario. Se muestra la variación del pico de NIs normalizado al pico Au4f (Nls/Au4F) obtenido mediante experimentos de XPS, en función de la concentración del PNA P-G142 inmovilizada en el biosensor. En todos los casos, la concentración del ssDNA hibridado al biosensor ha sido de 100 μM.
Figura 7.- Valor del pico Nls/Au4f obtenido en experimentos de XPS antes y después de la hibridación del biosensor a una molécula diana de ssDNA perfectamente complementaria (M) y otra con una mutación o "mismatch" en su posición central
(MM) . El biosensor ha sido obtenido con ssPNA inmovilizado a concentración 1 μM. Las columnas 1 a 3 corresponden a un biosensor con PNA P-G142, un tampón de hibridación compuesto por 7 rtiM NaCl + 0.7 rtiM Na-citrato, pH 7.2, y una solución del lavado compuesta por 45 rtiM NaCl y 4.5 rtiM Na-citrato, pH 7.0. En estas columnas, se ha podido cuantificar también el pico P2p/Au4f obtenido mediante XPS de alta resolución. Las columnas 4 a 6 corresponden a un biosensor con PNA P-M41, y las soluciones de hibridación y lavado consistian en 60 rtiM NaCl + 6 rtiM Na-citrato + 0.72% laurylsarcosina.
EJEMPLOS DE REALIZACIÓN
Ejemplo 1.- Fabricación de un biosensor de la invención con ssPNA sobre una superficie de oro con una disposición en monocapas autoemsambladas.
Se ha construido dos biosensores mediante la deposición de capas de dos distintos oligómeros de ssPNA modificados con una cisteina: P-G142, Cys-O-O-AATCCCCGCAT, y P-M41, Cys-O-O-
GCCATCTCT (nombrados desde el grupo amino al grupo carboxilo terminal) . Estas secuencias fueron escogidas por su relevancia en virologia y medicina. P-G142 incluye tres tripletes o codones que codifican otros tantos aminoácidos que constituyen un determinante antigénico presente en la cápsida proteinica de la proteina VPl del virus de la fiebre aftosa (FMDV) (Martinez y col., 1997) . P-M41 contiene el codón número 41 del gen de la transcriptasa reversa del virus de la inmunodeficiencia humana tipo 1 (HIV-I) , una posición implicada en la resistencia al fármaco zidovudina (Yeni y col., 2002) . La cisteina anclada en el extremo amino terminal proporciona el grupo tiol (SH) que permite la inmovilización sobre superficies de oro. La unidad espaciadora abreviada como "0-0" es de 3.0 nm de longitud y corresponde a un dimero de la molécula de ácido 8-amino-3, 6-dioxaoctanoico. La longitud total del ssPNA se ha estimado que es de 7.1 nm (P- G142) y 6.4 nm (P-M41) , considerando una hélice de bucle de 4.2 nm con 13 pares de bases por vuelta (Wittung y col., 1994; Eriksson y col., 1996) . Los experimentos de inmovilización de ssPNA fueron realizados en una cámara húmeda a 22°C durante 4 horas, sobre dos substratos: capas de oro policristalino evaporadas sobre vidrio y monocristal de oro en orientación (111) . Después de la inmovilización, los cristales fueron vigorosamente lavados con agua para evitar la adsorción inespecifica de moléculas de PNA.
El análisis de la estructura de capas adsorbidas de ssPNA se realizó mediante dos técnicas complementarias: AFM y absorción de rayos X (XANES) . Los experimentos de AFM se realizaron con un equipo NANOTEC, en modo de "tapping" o "golpeo" y al aire (Meyer, 1992) . Los experimentos de XANES se realizaron empleando rayos X procedentes la linea de Super-ESCA del sincotrón ELETTRA de Trieste (Italia) , con
ángulos de incidencia sobre la muestra de 70° y 90° (Ertl, 1985) . También se realizaron experimentos de XPS de alta resolución, en la linea de Super-ESCA de ELETTRA. En los experimentos de XPS, el rango de resolución (haz en la linea + analizador) del espectro fue estimado en un valor aproximado de 80 meV. Se ha comprobado que las muestras no fueran dañadas por la radiación de rayos X incluso después de 48 horas de exposición.
La figura 2 muestra imágenes de AFM de diferentes muestras de P-G142 obtenidas después de la inmovilización de la molécula a concentración 1 μM en agua. Las protusiones ordenadas tienen 7 nm de altura respecto a la superficie descubierta de oro y su anchura de 10 a 30 nm. El radio de la punta de AFM es de en torno a 20 nm, por lo que las protuberancias pueden ser interpretadas como grupos de moléculas dispuestas perpendicularmente a la superficie. La disminución aparente de la longitud medida por AFM con respecto a la longitud teórica del PNA (Fig. 1) puede estar relacionada (aparte de con cierto grado de flexibilidad permitido por el esqueleto de la molécula de PNA) con una pequeña inclinación de la molécula sobre la superficie de oro, o bien debido a la deformación de la capa de moléculas inducida por la punta del AFM. Se debe tener en cuenta, que ambos efectos han sido anteriormente observados e inclinaciones de en torno a 30° han sido descritos en el caso de SAMs de alcanotioles (Schreiber, 2000; Lehn, 2002) . La inclinación en las cadenas de ssPNA podria facilitar la interacción cadena-cadena mendiante puentes de hidrógeno entre bases nucleicas no complementarias, emplazadas en diferentes posiciones de la cadena. Esta estabilización entre moléculas mediante contacto lateral promueve la formación y mantenimiento del patrón ordenado. Además, la altura real de la capa molecular adsorbida sobre la superficie mediante el
modo de "tapping" de AFM es un tema abierto, y deformaciones de hasta un 50% del valor nominal son a menudo descritas para materiales blandos (Wang y col., 2001; Casero y col., 2003; Culha y col., 2003) . La estructura sinuosa de las capas de ssPNA puede ser debida a la libre adsorción de moléculas sobre la superficie, con una simetria rotacional alrededor del esqueleto molecular, lo que permite a cada molécula encontrar sus vecinos más próximos para la interacción intermolecular. Se ha realizado un estudio sistemático para cuantificar la dependencia del ordenamiento con la concentración de sonda de PNA inmovilizada. Algunos de los representativos resultados se muestran en la Figura 3. La Fig. 3a, obtenida con una concentración de 0.1 μM de ssPNA, muestra muestra una estructura en forma de lineas compuestas por segmentos de una longitud hasta 10 nm (resolución del AFM) distribuidas paralelamente a las direcciones cristalográficas de la superficie del cristal. Se observan dos zonas de oro limpio, desde las cuales las lineas muestran una altura promedido menor de 1 nm, un valor similar al previamente descrito para ssDNA mediante AFM (Lyubchenko y col., 1993) . Estas lineas ordenadas pueden ser interpretadas como moléculas individuales tumbadas sobre la superficie de oro, unidas mediante un átomo de azufre y posiblemente los grupos carbonilo o amino de algunas bases nucleicas quimiadsorbidas . Diferentes grupos de experimentos muestran una transición en la estructura del biosensor desde moléculas individuales tumbadas sobre la superficie a grupos de moléculas dispuestas casi perpendicularmente o "de pie" (con un ángulo de aproximadamente 70°C) sobre la superficie de oro, una transición favorecida por el incremento de concentración. La Fig. 3b fue realizada a una concentración de 0.5 μM de ssPNA: la capa no está completa y grupos de moléculas dispuestas de
pie forman islas alineadas, que están ancladas a la parte superior de los lados de los escalones monoatómicos del oro. Se ha comprobado que estas islas corresponden a capas moleculares de material blando mediante el uso de curvas fuerza-distancia. La Fig. 3c, obtenida a la misma concentración, muestra una amplia área donde los grupos de moléculas están alineados siguiendo las direcciones cristalográficas, en tres terrazas de oro adyacentes. A concentraciones de ssPNA de 1 μM se obtiene imágenes como las mostradas en la Fig. 2. A concentraciones mayores de ssPNA, a partir de 10 μM, se obtienen por AFM imágenes como la mostrada en la Fig 3c, en las cuales por un exceso de material depositado inespecificamente se ha perdido la estructura ordenada en forma de SAM. Estas imágenes sugieren un mecanismo de crecimiento de las islas de grupos de moléculas desde las paredes de los escalones, cuando se va llegando a las concentraciones de inmovilización óptimas. Esta es también la razón del alineamiento a lo largo de las principales direcciones cristalográficas de la superficie. Por consiguiente, se propone un mecanismo en el cual la formación de bioSAM de ssPNA en el biosensor de la invención tiene lugar mediante dos diferentes etapas: i) el ssPNA se condensa sobre la superficie y es adsorbido como moléculas individuales tumbadas; ii) a cierta densidad de recubrimiento se produce una transición de fase y el esqueleto de la molécula se realinea perpendicularmente a la superficie. Un mecanismo similar fue descrita para SAMs de alcanotioles
(Poirier y col., 1996) y ello demuestra la importancia de la interacción molécula-molécula en los fenómenos de autoensamblado molecular. Cabe destacar que el incremento de recubrimiento favorece el reordenamiento de las SAMs de PNAs en la conformación de moléculas de pie sin que se requiera añadir alcanotioles u otras moléculas coadyuvantes que den
lugar a monocapas mixtas, como ha sido descrito para el ssDNA (Herne, 1997; Culha, 2003) y ssPNA en experimentos anteriores (Ozkan y col., 2002) . Imágenes de AFM obtenidas en solución acuosa muestran morfologias similares a las mostradas en las Figs . 2 y 3, si bien las moléculas tumbadas no han sido detectadas . Esto indica que los puentes de hidrógeno entre los ssPNA y las moléculas de agua podrian favorecer una geometria de moléculas de pie incluso, para moléculas individuales a bajo grado de recubrimiento. Este modelo estructural, derivado de las diferentes experimentos con imágenes de AFM, es sorprendente debido a la extraordinaria longitud de la molécula de PNA inmovilizada que genera la SAM con respecto a SAMs de alcanotioles, que tienen un rango tipico de 0.2 a 2.5 nm de altura (Schreiber, 2000; Lehn, 2002) . Para verificar la orientación preferencial de las moléculas obtenida por AFM se han realizado medidas mediante la técnica de XANES. La evolución de espectros XANES de las SAMs de PNA a concentración 1 μM fue medida en el rango del nitrógeno a distintos ángulos de incidencia (Fig. 4) . El espectro puede ser descompuesto en dos picos estrechos correspondientes a los orbitales moleculares π* y uno ancho correspondiente a los orbitales moleculares σ* . La diferencia de energia entre estos picos está de acuerdo con previamente publicado XANES de DNA sobre superficies de oro. El ángulo entre el vector de polarización de los rayos X de la fuente sincrotrón con respecto al orbital molecular que da lugar a la señal puede aumentar o disminuir una determinada transición. Asi, moléculas adsorbidas aleatoriamente y sin orientación preferencial producen espectros coincidentes para diferentes ángulos de incidencia. Por el contrario, moléculas ordenadas muestran diferencias claras entre el espectro obtenido a diferentes ángulos de emisión, lo cual principalmente influye en el ratio de π* /σ*. Esta metodologia
ha sido usada para encontrar orientaciones preferenciales en el alineamiento de cristales liquidos (Stohr y col., 2001) y para glicina seca (Gordon y col., 2003) . En este caso, los picos π* aumentan cuando el vector de polarización de los rayos X se aproxima a una incidencia normal a la superficie. Como la mayoria de los orbitales π* están ubicados a lo largo del esqueleto del PNA, mientras que los orbitales σ* son paralelos a los planos de las bases nucleicas, los resultados indican que los ejes de la molécula de PNA están perpendiculares a la superficie del oro, lo que corrobora el patrón de ordenamiento observado por AFM (Figs. 2 y 3) . Por consiguiente, las tecnologias de AFM y XANES apoyan, mediante evidencias diferentes, un modelo estructural del biosensor de la invención en el que las moléculas ssPNA se autoensamblan sobre superficies de oro de manera similar a las moléculas de alcanotioles .
Dos razones principales pueden tenerse en cuenta para explicar la ventaja clara del ssPNA sobre el ssDNA en la formación de SAMs: i) el esqueleto de PNA no está cargado eléctricamente, lo que evita las repulsiones electrostáticas entre moléculas vecinas (Nielsen y col., 1991; Egholm y col., 1993) ; ii) la molécula de PNA es mas rigida que la de DNA debido a los grupos amida planos de su esqueleto de poliamida (Nielsen y col., 1991), y las restricciones en su flexibilidad conformacional con respecto a la del ssDNA ha sido confirmada recientemente (Menchise y col., 2003) . Ejemplo 2.- Empleo del biosensor de la invención para la identificación y caracterización de la hibridación PNA-DNA, capaz de discernir una mutación puntual o SNP. Se ha estudiado la capacidad del biosensor para detectar la hibridación entre el ssPNA inmovilizado y una diana de ssDNA complementario, mediante una serie sistemática de experimentos de XPS. Las moléculas diana de ssDNA diseñadas
y sintetizadas, de 31 nucleótidos de longitud, corresponden con las secuencias de tipo salvaje y mutante de FMDV (G-142- 31 y E142-31) o HIV-I (M41-31 y L41-31) (Martinez y col., 1997; Yeni y col., 2002), y son complementarias de P-G142 o P-M41 en sus 11 y 9 bases centrales, respectivamente. G142-31 y M41-31 poseen complementariedad perfecta con los PNAs correspondientes, mientras que E142-31 y L41-31 tienen una mutación en el nucleótido central (transición G—>A y transversión A—>Tr respectivamente) . La hibridación del biosensor con el DNA fue realizada, en los experimentos iniciales, a baja fuerza iónica, en una disolución tampón que contiene 7 rtiM NaCl y 0.7 rtiM Na-citrato, pH 7.2. La concentración de la sonda de ssPNA varió en distintos experimentos desde 1 a 100 μM, mientras que la concentración de la diana de ssDNA fue fijada en un valor de 100 μM. El tiempo de hibridación fue de 1 hora, y el rango de temperaturas ensayado estuvo comprendido entre 41°C a 58°C.
Un espectro de XPS de alta resolución para el NlS de 500 eV de energia de fotón de una capa autoensamblada de ssPNA se muestra en la Fig. 5a. El máximo del pico correspondiente a NlS aparece a 400.0 eV de energia de ligadura. La energia de ligadura para un esqueleto peptidico ha sido encontrada a 400.5 eV en (Vinnichenko y col., 2002) y la de la base nucleica timina a 400.9 eV (Petrovykh y col., 2003) y un pequeño incremento de energia puede ser esperado para los átomos de nitrógeno de las diferentes bases nucleotidicas . La forma general del pico de nitrógeno es muy parecida a la recientemente publicada para el DNA (Petrovykh y col., 2003) con una pequeña componente a la izquierda del espectro que puede estar relacionada con moléculas de PNA tumbadas sobre el sustrato de oro e interaccionando con él. La Fig. 5a muestra también el espectro correspondiente después de la hibridación con DNA complementario, cuantificándose un
incremento en el área del pico normalizado de NIs de 2.6 a 3.2 veces después de la hibridación. El número de átomos de N por molécula de ssPNA es de 64, y para la hebra complementaria de DNA es de 116: por consiguiente, un incremento de la señal de N en un factor de 2.8 podria ser el esperado para un modelo aproximado basado únicamente en el reucuento de átomos de N. Asi, existe un buen acuerdo entre el incremento esperado en la señal de nitrógeno y el resultado obtenido experimentalmente, lo que sugiere que para condiciones óptimas la fracción de ssPNA hibridado con la diana de ssDNA es cercana al 100%. Este valor muestra la elevada eficiencia del biosensor de la invención, y es claramente superior al encontrado para la hibridación de DNA- DNA medida con las mismas técnicas (Casero y col., 2003; Petrovykh y col., 2003) .
Además, la hibridación de la diana de ssDNA al biosensor produce la aparición de un pico claro de fósforo, aportado por los grupos fosfato del DNA e inexistente en el PNA, tal como se muestra en la Fig. 5b. Esta señal de P2p, junto con un aumento de 2 a 3 veces la señal de NIs, es una prueba clara de que ha ocurrido la hibridación del complementario DNA con la SAM de PNA, y permite la detección y cuantificación de la cantidad de ácido nucleico hibridado al biosensor. El uso combinado de XPS y de AFM permite construir un modelo para explicar el mecanismo de actuación del biosensor de la invención y su optimización. La Fig. 6a representa el pico de NIs normalizado a Au4f obtenido por XPS para diferentes concentraciones de inmovilización de ssPNA, antes y después de la hibridación con ssDNA complementario. Se observa que la señal es proporcional a la concentración de ssPNA sobre la superficie, hasta un valor de saturación de 10 μM que corresponde a un bloqueo completo de los sitios de
adsorción disponibles con moléculas ssPNA vecinas. Para concentraciones entre 0.1 y 1 micromolar el aumento de la señal de N es de en torno a 3, lo que equivale al valor indicado anteriormente, que indica el rango el que el biosensor se comporta ótpimamente. Para concentraciones más altas de 5 μM, la superficie esta completamente cubierta por el ssPNA y la señal de XPS no cambia después de la hibridación, indicando que el biosensor está saturado, fuera de su rango de aplicación. Además, a estas concentraciones de saturación, el pico Nls/Au4f después de la hibridación es incluso menor que para el PNA inmovilizado, lo que indica que durante la hibridación y lavado parte de las hebras de ssPNA parcial e inespecificamente inmovilizadas son eliminadas o lavadas de la superficie. Por consiguiente, el biosensor presenta una capacidad óptima cuando el ssPNA se inmoviliza a concentraciones de hasta 1 μM. La Fig. 6b muestra imágenes tipicas de AFM correspondientes a diferentes capas inmovilizadas e hibridazas, tal y como se indican en la Fig. 6a. Se observa que tanto el biosensor después de la hibridación (II en Fig. 6) como el biosensor sin hibridar pero en el que el PNA se ha inmovilizado a concentraciones superiores al rango de empleo del biosensor (III en Fig. 6) muestran morfologias compactas y cerradas en vez de las SAMs tipicas del biosensor antes de hibridar y con ssPNA inmovilizado en concentración óptima (I en Fig. 6) .
También se ha evaluado la capacidad del biosensor para discriminar entre moléculas diana de DNA que tienen una mutación, de cara a evaluar su utilidad para emplearlo en experimentos de detección de SNPs . Para ello se probaron diferentes protocolos de hibridación y lavado, en condiciones de astringencia que permitieran llegar a un óptimo en la especificidad de la reacción de hibridación. Se ha determinado que los protocolos de lavado de posthibridación
basados en un incremento de la fuerza iónica no permiten una retirada completa del ssDNA diana que presenta una mutación o SNP. Sin embargo, la optimización de los tampones de lavado de forma que se incluyan sustancias detergentes o agentes desnaturalizados si permiten una perfecta discriminación entre hibridación perfecta (que se mantiene tras el lavado) e hibridación con una mutación en la posición central (que es eliminada por lavado) . En concreto, se ha logrado una especificidad total empleando como solución de hibridación y lavado una compuesta por 60 rtiM NaCl + 6 rtiM Na-citrato + 0.72% laurylsarcosina. Estos resultados se muestran en la Fig. 7.
La especificidad obtenida con el biosensor de la invención es la mayor que se puede conseguir en biologia y biotecnologia, puesto que permite diferenciar entre moléculas diana de ácidos nucleicos que se diferencian en una única mutación puntual o SNP. En este sentido, es equivalente a la especificidad recientemente obtenida con tecnologias convencionales (Brandt y col., 2003) . Por lo tanto, el biosensor de la invención (basado en SAMs de ssPNA) ofrece la posibilidad de ser empleado para la identificación de mutaciones y para realizar mapeos de SNPs. Estas posibilidades suponen un amplio rango de aplicaciones en biotecnologia y biomedicina.
Referencias
A continuación se muestra un listado de las referencias citadas en el texto:
1. Brandt, 0., Feldner, J., Stephan, A., Schróder, M., Schnólzer, M., Arlinghaus, H. F., Hoheisel, J. D. &
Jacob, A. PNA microarrays for hybridisation of unlabelled DNA samples . Nucleic Acids Res. 31, ell9-el27 (2003) .
2. Buetow KH, Edmonson M, MacDonald R, Clifford R, Yip P, Kelley J, Little DP, Strausberg R, Koester H, Cantor CR,
Braun A (2001) . High-throughput development and characterization of a genomewide collection of gene- based single nucleotide polymorphism markers by chip- based matrix-assisted láser desorption/ionization time- of-flight mass spectrometry. Proc Nati Acad Sci USA. 16: 581-584.
3. Bulyk, M. L., Gentalen, E. Lockhart, D. J. and Church, M. 1999. DNA-protein interactions by double-stranded DNA arryas . Nature Biotech. 17, 573-577. 4. Casero, E., Darder, M., Diaz, D. J., Pariente, F., Martin-Gago, J. A., Abruña, H., & Lorenzo, E. XPS and AFM characterization of oligonucleotides immobilized on gold substrates. Langmuir 19, 6230-6235 (2003) .
5. Crain, J. N., Kirakosian, A., Lin, J. L., Gu, Y., Shah, R. R., Abbott, N. L. & Himpsel, F. J.
Functionalization of silicon step arrays II: molecular orientation of alkanes and DNA. J. Appl. Phys . 90, 3291- 3295 (2001) .
6. Crain, J. N., Kirakosian, A., Lin, J. L., Gu, Y., Shah, R. R., Abbott, N. L. & Himpsel, F. J.
Functionalization of silicon step arrays II: molecular orientation of alkanes and DNA. J. Appl. Phys. 90, 3291- 3295 (2001) .
7. Culha, M., Stokes, D., Allain, L. R. & Vo-Dinh, T. Surface-enhanced Raman scattering substrate based on a self-assembled monolayer for use in gene diagnostics . Anal. Chem. 75, 6196-6201 (2003) . 8. Demidov W, Protozanova E, Izvolsky KI, Price C, Nielsen PE, Frank-Kamenetskii MD (2002) . Kinetics and mechanism of the DNA double helix invasión by pseudocomplementary peptide nucleic acids . Proc Nati Acad Sci USA. 99: 5953-5958. 9. Demidov W, Yavnilovich MV, Belotserkovskii BP, Frank- Kamenetskii MD, Nielsen PE (1995) . Kinetics and mechanism of polyamide ("peptide") nucleic acid binding to dúplex DNA. Proc Nati Acad Sci USA. 92: 2637-2641.
10. Egholm, M., Buchardt, 0., Christensen, L., Behrens, C, Freier, S. M., Driver, D. A., Berg, R.H., Kim, S.K.,
Norden, B. & Nielsen, P. E. PNA hybridizes to complementary oligonucleotides obeying the Watson-Crick hydrogen-bonding rules. Nature 365, 566-568 (1993) .
11. Egholm, M., Buchardt, 0., Nielsen, P. E., & Berg, R. H. Peptide nucleic acids (PNA) . Oligonucleotide analogues with an achiral backbone. J. Am. Chem. Soc. 114, 1895-1898 (1992) .
12. Ertl, G., Kuppers, J. Low energy electrons and surface chemistry, VCH verlagsgesellschaft, Weinheim, Germany (1985) .
13. Gordon, M. L., Cooper, G., Morin, C, Araki, T., Turci, C. C, Kaznatcheev, K. & Hitchock, A. P. Inner- shell excitation spectroscopy of the peptide bond: comparison of the C Is, N Is, and 0 Is spectra of glycine, glycil-glycine, and glycil-glycil-glycine. J. Phys. Chem. A 107, 6144-6159 (2003) .
14. Hacia JG, Makalowski W, Edgemon K, Erdos MR, Robbins CM, Fodor SP, Brody LC, Collins FS (1998) . Evolutionary
sequence comparisons using high-density oligonucleotide arrays. Nat Genet. 18: 155-158.
15. Hacia, J.G. (1999) . Resequencing and mutational analysis using oligonucleotide microarrays . Nature Genetics 21, 42-47.
16. Herne, T. M. & Tarlov, M. J. Characterization of DNA probes immobilized on gold surfaces . J. Am. Chem. Soc. 119, 8916-8920 (1997) .
17. Kambhampati D, Nielsen PE, Knoll W (2001) . Investigating the kinetics of DNA-DNA and PNA-DNA interactions using surface plasmon resonance-enhanced fluorescence spectroscopy. Biosens Bioelectron. 16: 1109-1118.
18. Lehn, J. M. Toward self-organization and complex matter. Science, 295, 2400-2403 (2002) .
19. Lyubchenko, Y., Shlyakhtenko, L., Harrington, R., Oden, P. & Lindsay, S. Atomic forcé microscopy of long DNA: imaging in air and under water. Proc. Nati. Acad. Sci. USA 90, 2137-2140 (1993) . 20. Martinez, M. A., Verdaguer, N., Mateu, M. G. & Domingo, E. Evolution subverting essentiality: dispensability of the cell attachment Arg-Gly-Asp motif in multiply passaged foot-and-mouth disease virus. Proc. Nati. Acad. Sci. USA 94, 6798-6802 (1997) . 21. Matysiak S, Reuthner F, Hoheisel, JD (2001) .
Automating parallel peptide synthesis for the production of PNA library arrays. BioTechniques 31: 896-904.
22. Menchise, V., de Simone, G., Tedeschi, T., Corradini,
R., Sforza, S., Marchelli, R., Capasso, D., Saviano, M. & Pedone, C. Insights into peptide nucleic acid (PNA) structural features : the crystal structure of a D- lysine-based chiral PNA-DNA dúplex. Proc. Nati. Acad. Sci. USA 100, 12021-12026 (2003) .
23. Meyer E. Atomic forcé microscopy, Progress in Surf. Sci. 41, 3 (1992) .
24. Nielsen PE (1999) . Applications of peptide nucleic acids . Curr Opin Biotechnol. 10: 71-75. 25. Nielsen PE (2001) . Peptide nucleic acid targeting of double stranded DNA. Methods Enzymol. 340: 329-340.
26. Nielsen, P. E., Egholm, M., Berg, R. H. & Buchardt, 0. Sequence-selective recognition of DNA by strand displacement with a thymine-substituted polyamide. Science 254, 1497-1500 (1991) .
27. Parinov, S., Barsky, V., Yershov, G., Kirillov, E., Timofeev, E., Belgovskiy, A. and Mirzabekov, A. 1996. DNA sequencing by hybridisation to microchip acto- and decanucleotides extended by stacked pentanucleotides . Nucleic Acids Res. 24, 2998-3004.
28. Petrovykh, D. Y., Kimura-Suda, H. L., Whitman, J. & Tarlov, M. J. Quantitative analysis and characterization of DNA immobilized on gold. J. Am. Chem. Soc. 125, 5219- 5226 (2003) . 29. Poirier, G. E. & Pylant, E. D. The self-assembly mechanism of alkanothiols on Au(IIl) . Science 272,1145- 1148 (1996) .
30. Poirier, G. E. & Pylant, E. D. The self-assembly mechanism of alkanothiols on Au(IIl) . Science 272,1145- 1148 (1996) .
31. Rogers FA, Vasquez KM, Egholm M, Glazer PM (2002) . Site-directed recombination via bifunctional PNA-DNA conjugates. Proc Nati Acad Sci USA 99: 16695-16700.
32. Schreiber, F. Structure and growth of self-assembling monolayers. Prog. Surf. Sci. 65,151-256 (2000) .
33. Southern E. M. (1975) Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis . J Mol Biol. 98(3) :503-17.
34. Southern y col. 1994. Arrays for complementary oligonucleotides for analysing the hybridization behavior of nucleic acids . Nucleic Acids Res. 22, 1368- 1373, 1994. 35. Stohr, J., Samant, M.G., Luning, J., Callegari, A. C, Chaudhari, P., Doyle, J. P., Lacey, J. A., Lien, S. A., Purushothaman, S. & Speidell, J. L. Liquid crystal alignement on carbonaceous surfaces with orientational order. Science 292, 2299-2302 (2001) . 36. Ulman, A. An Introduction to Ultrathin Organic Films, from Langmuir-blodgett to Self-assembly. (Academic Press, San Diego, 1991) .
37. Wang, H., Tang, Z., Li, Z. & Wang, E. SeIf-assembled monolayer of ssDNA on Au(IIl) substrate. Surf. Sci. 480, L389-L394 (2001) .
38. Wittung, P., Nielsen, P. E., Buchardt, 0., Egholm, M. & Norden, B. DNA-like double helix formed by peptide nucleic acid. Nature 368: 561-563 (1994) .
39. Yeni, P. G., Hammer, S. M., Carpenter, C. C, Cooper, D. A., Fischl, M. A., Gatell, J. M., Gazzard, B. G.,
Hirsch, M. S., Jacobsen, D. M., Katzenstein, D. A.,
Montaner, J. S., Richman, D. D., Saag, M. S., Schechter,
M., Schooley, R.T., Thompson, M. A., Vella, S. &
Volberding, P. A. Antiretroviral treatment for adult HIV infection in 2002: updated recommendations of the
International AIDS Society-USA Panel. JAMA 288, 222-235
(2002) .