WO2005037866A2 - Igg3 anti rhesus-d dans la lignee yb2/0 ayant une forte activite en phagocytose - Google Patents

Igg3 anti rhesus-d dans la lignee yb2/0 ayant une forte activite en phagocytose Download PDF

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Sylvie Jorieux
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Definitions

  • the present invention relates to the use of chimeric, humanized or human IgG3 class monoclonal antibodies produced in a rat myeloma cell line, in particular YB2 / 0 (ATCC n ° CRL 1662) or a line derived or modified from YB2 / 0, for the preparation of a medicament intended for the treatment of various cancerous and infectious pathologies.
  • YB2 / 0 ATCC n ° CRL 1662
  • a line derived or modified from YB2 / 0 for the preparation of a medicament intended for the treatment of various cancerous and infectious pathologies.
  • These antibodies exhibit strong phagocytosis activity and can be administered to treat cancers and infections.
  • IgG3 notably have specific effector capacities and certainly play an important role in vivo. Although representing only 7% of IgG in human plasma, their proportion is increased during certain immune responses, for example after certain viral infections (Basic and clinical aspects of IgG subclasses. Volume editor, F. Shakib. Basel; New York: Karger, 1986 (Monographs in AUlergy; Vol 19. Pages 122-133), parasites (J Infect Dis. 2003 Mar l; 187 (5): 862-5, 2003. Immunoglobulin G (IgG) responses to Plasmodium falciparum glycosylphosphatidylinositols are short-lived and predominantly of the IgG3 subclass.
  • the YB2 / 0 line has been selected for several years for its capacity to confer on the IgG1s produced improved functional properties.
  • CD 16 Fc III receptor
  • the glycan structures of said antibodies are of the biantennary type, characterized by short chains, low sialylation and low fucosylation.
  • CD16 has the advantage of also inducing the production of cytokines, in particular the production of IFN and / or other cytokines or chemokines.
  • the two characteristics mentioned above complement each other. Indeed, the production of IFN ⁇ or other cytokines and / or chemokines by effector cells induced by the selected antibodies can reinforce the therapeutic effect by stimulating effector mechanisms of the immune system other than ADCC in the treated patients. The mechanism of action of such stimulation is probably due to an autocrine upregulation of the effector cells. It can be postulated that the antibodies binding to CD 16 induce cytotoxic activity as well as the production of IFN ⁇ or other cytokines / chemokines which ultimately leads to an even greater increase in cytotoxic activity.
  • anti-D IgG3 has been expressed in a rat myeloma line in order to assess whether this line, in particular YB2 / 0, can confer on the antibodies produced improved functional properties, as is the case for IgGl.
  • the invention relates to chimeric, humanized or human monoclonal antibodies of class IgG3 characterized in that they are produced in a rat myeloma cell line.
  • said IgG3 are produced in the line YB2 / 0 (ATCC n ° CRL 1662) or a line derived or modified from YB2 / 0.
  • the glycan structure of the Fc region corresponds to a biantennary type, with short chains, weak sialylation and weak fucosylation.
  • the level of intermediate GlcNac is not zero.
  • Such antibodies are more particularly selected from the forms:
  • the invention relates to monoclonal antibodies of class IgG3 in which the fucose content is less than 65%, 60%, 50%, 40%, or 35%.
  • the fucose content is between 20% and 45% or even between 25% and 40%.
  • the fucose content is less than 35%.
  • the invention also relates to antibodies of class IgG3 having the glycosylation profile indicated above produced in equivalent biological systems, in particular in genetically modified or transformed non-human cells, plants or animals, for example by introduction of a sequence expressing a or many glycosyl transferase (s) so as to obtain antibodies having a profile essentially similar to the glycosylation profile obtained in YB 2 / O.
  • s glycosyl transferase
  • the IgG3 produced in the YB2 / 0 line have, relative to those produced in lines like CHO for example, specific functional characteristics: a) a strong binding to CD 16 which is comparable to that of the IgG1 produced in the same cell line. b) an ability to induce an inhibition of cytokine secretion induced by IgGl. c) a greater capacity of the IgG3 produced in YB2 / 0 to induce the secretion of gamma IFN, IL6 and TNF alpha than the IgG3 produced in CHO; and a lower capacity of IgG3 YB2 / 0 to induce the secretion of TNF alpha and IFN gamma than IgG1 YB2 / 0. d) potentiation of phagocytosis.
  • the antibody of class IgG3 of the invention can be selected by way of example from the antibodies directed against: CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8, CDU, CD18, CD19, CD20, CD25, CD45 and CD52 as Campath-IH®, CD30, CD33, CD38 or CD44.
  • Other antibodies can be selected from anti Ep-CAM, anti HER2, anti HER1, anti GD3, anti CA125, anti GD, anti GD2, anti CD-23 and anti ProteinC; anti-KIR3DL2, anti-EGFR, specific anti-idiotypes of inhibitors for example of coagulation factors, anti-virals: H1N, HBN, HCN and RSN.
  • the invention relates to a process for the production of chimeric, humanized or human monoclonal antibodies of class IgG3 having the functional characteristics mentioned above comprising the transfection of a cell line of rat myeloma preferably, the line YB2 / 0 (ATCC No. CRL 1662) or a line derived or modified from YB2 / 0, with one or more vector (s) comprising the coding sequences for the heavy and light chains of antibodies to class IgG3, the expression of said antibodies in the transfected cell line, the extraction and purification of the antibodies.
  • a cell line of rat myeloma preferably, the line YB2 / 0 (ATCC No. CRL 1662) or a line derived or modified from YB2 / 0, with one or more vector (s) comprising the coding sequences for the heavy and light chains of antibodies to class IgG3, the expression of said antibodies in the transfected cell line, the extraction and purification of the antibodies.
  • a system with two expression vectors for example vectors derived from RSN
  • one coding for the heavy chains and the other coding for the light chains is used, one coding for the heavy chains and the other coding for the light chains.
  • a different selection marker is present in each vector. Specific constructions are shown in Figure 1.
  • the invention also relates to the system described above in which the heavy and light chains are produced in equimolar amount.
  • the construction of expression vectors can be implemented according to procedures known to those skilled in the art (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second
  • Co-transfection into the rat myeloma line of the two vectors can be carried out by means of equimolar amount by standard procedures of the calcium phosphate or lipofectin precipitation type. Then, the transfected lines are selected in the appropriate culture media.
  • the invention relates to rat myeloma cell lines, in particular YB2 / 0 and derived lines, transfected with one or more vector (s) allowing the expression of a functional IgG3.
  • the invention also relates to cells having been transfected with one or more vector (s) described above. These cells are characterized in that they produce IgG3 having the glycosylation profile mentioned above and at least one of the properties a) to d) described above.
  • a cell derived from a line described above is also an object of the invention.
  • the invention relates to the use of IgG3 described above, in particular of IgG3 expressed in YB2 / 0, for the preparation of a medicament.
  • the invention relates to the use of chimeric, humanized or human monoclonal antibodies of class IgG3, produced in a rat myeloma cell line, in particular YB2 / 0 (ATCC N ° CRL 1662) or a line derived or modified of YB2 / 0, for the preparation of a medicament intended for the treatment of various cancerous pathologies, or of various infectious pathologies of infectious viral, bacterial or parasitic origin.
  • these antibodies can be used for the preparation of a medicament intended for the prevention of fetal-maternal immunization.
  • the patients concerned are patients who are weak responders to treatment with an IgG1 or an IgG3 expressed in CHO.
  • “Weak responder patients” is understood to mean treated patients with a so-called stable condition, with less than 50% reduction and less than 25% increase in lesions, and no new lesions. This group of patients also includes patients for whom no response is observed (progression of the disease which can lead to death). For infectious diseases, these patients correspond to patients for whom the viral or bacterial load is reduced by less than 50% by conventional treatment.
  • the antibody can be used in late diagnosed patients.
  • the cancer pathologies which can be treated in a particularly advantageous manner by means of the antibodies according to the invention are chosen from the group comprising neuroectodermal tumors, colorectal cancers, melanomas, breast cancer, leukemias, in particular HCL (Hairy Cell LeuOkemia), lymphomas such as DLBCL (Primary Diffuse Large B-Cell Lympriomas), acute leukemias, osteosarcomas, cancer, in particular poximon cancer, this list is not exhaustive.
  • the cancer pathologies treated according to the invention are associated with infections of viral or bacterial origin, such as prostate cancer (Lightfoot N, Conlon M, Kreiger N, Sass-Kortsak A, Purdham J, Darlington G. Medical history, sexual, and maturational factors and prostate cancer risk. Ann Epidemiol. 2004 Oct; 14 (9): 655-662; Huycke MM, Gaskins HR. Commensal bacteria, redox stress, and colorectal cancer: mechanisms and models. Exp Biol Med (Maywood). 2004 Jul; 229 (7): 586-97), leukemia, or E aposi's sarcoma.
  • infectious agents found in infectious diseases associated with cancer can be Candida, Achromobacter or Alcaligenes (Aisenberg G, Rolston KN, Safdar A. Bacteremia caused by Achromobacter and Alcaligenes species in 46 patients with cancer (1989-2003). Cancer. 2004 Sep 23; Boktour MR, Kontoyiannis DP, Hanna HA, Hachem RY, Girgawy E, Bodey GP, Raad IL Multiple-species candidemia in patients with cancer. 2004 Aug 31;) or the Epstein Barr virus.
  • infectious pathologies advantageously treated with the antibody according to the invention, mention may be made of diphtheria, viral hemorrhagic fevers, typhoid fever, influenza, hepatitis B and C, respiratory infections due to RSN, NIH infections and at CMN, Legionellosis, Leishmaniasis, leprosy, rabies, AIDS or even tuberculosis, this list is not exhaustive.
  • the IgG3s of the invention are of interest with regard to these uses because of their strong attachment to the low affinity Fc receptor (CD 16) and / or their capacity to induce phagocytosis.
  • the medicament according to the invention is intended to be used in combination with an IgG1.
  • the use according to the invention of IgG3 as described above is particularly advantageous in this aspect of the invention for the capacity of these IgG3 to negatively modulate the secretion of cytokines induced by IgGl, in particular the levels of IFN gamma, TNF alpha and / or IL6.
  • the IgG3s as described above are used for the preparation of a medicament for the treatment of cancer pathologies in patients having a "cytokine release syndrome", in particular in patients treated with a IgGl produced in YB2 / 0.
  • This application takes advantage of the ability of said IgG3s to negatively modulate the secretion of cytokines.
  • hypothermia acute renal necrosis and liver diseases due to the “cytokine release syndrome” induced by the administration of an anti-CD3 monoclonal antibody, for example 145-2C11 ( Alegre ML et al, J Immunol. 1991 Feb 15; 146 (4): 1184-91; Chatenoud L.
  • Anti-CD3 antibodies towards clinical antigen-specific immunomodulation. Curr Opin Pharmacol. 2004 Aug; 4 (4): 403- 7; Yamada-Ohnishi Y, Azuma H, Urushibara N, Yamaguchi M, Fujihara M, Kobata T, Ikeda H. Cytotoxic Difference of T Cells Expanded with Anti-CD3 Monoclonal Antibody in the Présence and Absence of Anti- CD28 Monoclonal Antibody. Stem Cells Dev. 2004 Jun; 13 (3): 315-22.).
  • the invention relates to the use of an IgG3 described above, which can be an anti-CD20, to prevent the appearance of the "cytokine-release syndrome" in patients treated with Rituximab® (IDEC-C2B8 ); Winkler U et al, Cytokine-release syndrome in patients with B-cell chronic lymphocytic leukemia and high lymphocyte counts after treatment with an anti-CD20 monoclonal antibody, Blood. 1999 Oct 1; 94 (7): 2217-24.
  • the IgG3 of the invention is useful for preventing the undesirable effects of the CAMPATH® antibody or OKT3.
  • CAMPATH 1-H which binds to CD52 on lymphocytes and monocytes, induces the release of TNF, IFN and IL-6 leading to the "cytokine-release syndrome", Mark G. Wing et al, Mechanism of First-Dose Cytokine-Release Syndrome by CAMPATH 1-H: Involvement of CD16 (FcRIII) and CDlla / CD18 (LFA-1) on NK Cells, J. Clin. Invest, Volume 98, Number 12, December 1996, 2819-2826.
  • OKT3 which binds to CD3, has also been described as inducing cytokine secretion syndrome (First MR, Schroeder TJ, Hariharan S. OKLT3- induced cytokine-release syndrome: renal effects (cytokine nephropathy). Transplant Proc. 1993 Apr; 25 (2 Suppl l): 25-6).
  • Another object of the invention is to provide a method for modulating the secretion of cytokines induced by an IgGl by adding to the biological system containing said
  • IgGl of IgG3 produced in a rat myeloma cell line, in particular
  • the IgG1s whose cytokine secretion is modulated are produced in a rat myeloma cell line, in particular in YB2 / 0.
  • the invention relates to a pharmaceutical composition of therapeutic antibodies comprising IgG1, IgG3 and at least one excipient.
  • at least one of these IgGs is produced in a cell line of rat myeloma, in particular YB2 / 0.
  • FIG. 3 Interaction with Jurkat CD16 cells of the coated antibodies on the red cells fixed in the microtiter plate.
  • the x-axis represents the fixation of the antibodies on the red cells and the y-axis represents the fixation on the CD 16.
  • FIG. 4 IgG3 binding to Jurkat CD16 cells in the absence of targets.
  • Figure 5 IL-2 secretion induced by IgGl and IgG3 expressed in YB2 / 0 after interaction with Jurkat CD16 cells.
  • Figure 7 ADCC activity in the presence of NK cells and anti-D antibodies
  • Figure 8 Secretion of IL-2 by Jurkat CD16 cells induced by IgGl and
  • Anti-Rhesus IgG3 (red cells in suspension). Effect of the addition of the various IgG3s on the secretion of IL21 induced by the IgGl YB2 / 0.
  • NK or monocytes Figure 10 Percentage of THP 1 cells having phagocytosed one or more red blood cells
  • Example 1 Obtaining various anti-D antibodies of class IgG3.
  • the construction of the expression vectors to produce two recombinant antibodies is presented in FIG. 1.
  • transformants producing IgG3 D29 with anti-D specificity were obtained in the lines YB2 / 0 and CHO.
  • FIG. 2 The different antibodies thus produced are shown diagrammatically in FIG. 2:
  • - Antibody 2 IgG3 expressed in the CHO line (reference line for the industrial production of recombinant proteins), D29-CHO.
  • - Antibody 3 IgG3 (D29, produced by a B lymphocyte fused with P3x229), D29- P3X229
  • Example 2 Study of the binding of the three antibodies of Example 1 on Jurkat CD16 cells (CFC).
  • This test was set up to assess the ability of anti-D antibodies to bind to the CD 16 receptor (Fc gamma RHIa) expressed on Jurkat CD 16 cells.
  • the first step consists in reacting the anti-D antibody with the Rhesus antigens expressed on the surface of Rhesus positive red cell membranes previously coated on 96-well plates with round bottom (fixation by the Fab). This fixation is simultaneously detected by an anti-human IgG antibody labeled with alkaline phosphatase.
  • the second step (after fixing the antibody to its antigen), consists in adding Jurkat CD 16 cells which will be able to interact with the Fc part of the antibodies. After centrifugation, a score (fixation index of 1 to 3) corresponding to the Jurkat CD 16 cells which are fixed on the antibodies is estimated visually.
  • an IgG3 in the YB2 / 0 line gives it an ability to bind to CD 16 which is comparable to that of an IgG1 expressed in the same cell (R297 expressed in YB2 / 0) and also comparable to that of an IgG3 purified from anti-D polyclonal antibodies.
  • Example 3 Measurement by competition of the binding of the three antibodies of Example 1 to Jurkat CD16 cells by flow cytometry.
  • Example 4 Measurement of the activation of Jurkat CD16 cells (experimental continuation of Example 2).
  • FIG. 5 show that the interaction of IgG3 with Jurkat CD16 induces a much weaker secretion of IL2 than in the presence of IgGl.
  • PIgGl YB2 / 0 opposite to IgG3 YB2 / 0 induces from the first fixation indices a secretion of IL2; however, the dose response curve obtained with IgG3 is less than that obtained with IgG1. Only a strong interaction of IgG3 YB2 / 0 with CD 16 (maximum binding index of 3) induces secretion of IL2 comparable to that obtained with the IgG1 produced by YB2 / 0.
  • Example 5 Study of the cytotoxicity induced by anti-D antibodies against Rh positive red cells in the presence of PBMC or purified NK cells.
  • PBMC cytolysis test quantifies the ability of antibodies to lyse Rhesus positive red cells in the presence of human mononuclear cells (PBMC) and polyvalent immunoglobulins (Tegeline).
  • PBMC human mononuclear cells
  • Tegeline polyvalent immunoglobulins
  • the cytolytic activity of IgG3 expressed in CHO is comparable to that obtained with the antibody expressed by the fused B lymphocyte D29-P3X229.
  • an IgG3 in YB2 / 0 potentiates its capacities to induce a lysis of red blood cells in the presence of mononucleated cells (PBL) by comparison with the same antibody produced in CHO or by heteromyeloma.
  • the increase in the cytolytic activity of IgG3 expressed in YB20 is 2.8 times greater and also comparable to that induced by the polyclonal fraction IgG3 of WinRho. Nevertheless, the cytolytic activity of the IgG3 produced in YB2 / 0 is lower than that of the IgG1 produced in YB2 / 0 and of the anti-D polyclonal antibody (Poly-D WinRho).
  • IgG3 YB2 / 0 induces lysis of red blood cells (55%) 5.5 times greater than that obtained with the same antibody produced in CHO (10%).
  • the antibody produced by heteromyeloma P3X229 gives the lowest value (4%).
  • the cytolytic activity of the IgG3 produced in YB2 / 0 is lower than that of the IgG1 produced in YB2 / 0 and of the polyclonal antibody WinRho.
  • Example 6 Measurement of IL-2 secretion by Jurkat CD16 after fixing of the antibodies on red blood cells in suspension.
  • IL2 secretion Jurkat CD 16 cells are incubated with Rhesus positive red cells, IgGl YB2 / 0 or the antibody IgG3 D29 expressed in the various expression systems (YB2 / 0, CHO, B-P3 X229). The secretion of I12 is measured in the supernatants after an overnight incubation by ELISA technique.
  • the IgG3 expressed in YB2 / 0 and CHO do not induce secretion of IL2 unlike the IgG1 YB2 / 0, that at identical antibody concentration (FIG. 8).
  • the fixation on CD 16 of an IgG3 expressed in YB2 / 0 does not induce IL2 secretion in the presence of red cells in solution and Jurkat CD16 cells .
  • Example 4 in which the red cells were coated in microplates, showed that only a strong interaction with CD16 made it possible to induce secretion of IL2.
  • the use of more physiological conditions in this example confirm the very low potential of IgG3 YB2 / 0 to induce secretion of IL2 from Jurkat CD 16, unlike IgGl YB2 / 0.
  • IgG3 produced in CHO and P3X229 have no effect on the secretion of IL2 induced by IgGl YB2 / 0.
  • PIgG3 produced in YB2 / 0 induces a reduction in the induction of IL2 ( Figure 8).
  • Example 7 Induction of the secretion of cytokines by anti-D antibodies.
  • NK cells or monocytes are incubated with Rhesus positive red cells, IgGl YB2 / 0 or the antibody IgG3 D29 expressed in YB2 / 0 or CHO.
  • the secretion of different cytokines IL1 beta, IL6, IFN gamma, TNF alpha is measured in the supernatants after overnight incubation by ELISA technique.
  • the levels of IL1 beta and of IFN gamma are identical for all the antibodies.
  • the levels of IL6 produced by the monocytes are comparable for the IgG1 and IgG3 produced in YB2 / 0 but lower for the IgG3 produced in CHO.
  • TNF alpha a slight decrease is observed in the presence of IgG3 produced by CHO.
  • Example 8 Ability of anti-D IgG3 to induce phagocytosis of Rhesus positive red cells by THP-1 cells.
  • Phagocytosis test THP-1 cells are incubated in the presence of Rhesus positive red cells and antibodies. The number of cells having phagocytosed at least one red blood cell is evaluated by counting under the microscope. The results are expressed as a percentage of cells having phagocytosed at least one red blood cell (see FIG. 10).
  • the IgG of the anti-D polyclonal antibody WinRho have the strongest capacity (43.4%) to induce phagocytosis of Rhesus positive red cells by the THP-1 cell.
  • IgGl YB2 / 0 is not very active (14.6%).
  • IgG3 YB2 / 0 induces a phagocytosis of 34.5%, superior to purified polyclonal IgG3 (IgG3 WinRlio).
  • the weakest phagocytosis activities are obtained with the IgG3 produced by the fused B lymphocyte (D29 P3 X229) and the IgG3 produced in CHO.
  • the expression of an IgG3 in YB2 / 0 potentiates its capacities to induce phagocytosis, this property being able to be particularly interesting in infectious diseases as well as in Alzeimer's disease (McGeer PL, McGeer E. Immunotherapy for Alzheimer's disease, Sci Aging Knowledge Environ. 2004 Jul 07; 2004 ⁇ _and this in comparison with an IgG3 expressed in CHO or secreted by a heteromyeloma.
  • the particular glycan profile of PIgG3 produced in YB2 / 0, that is to say, short forms, not sialylated, and with a fucose level of less than 35% gives it original properties as demonstrated above: - strong fixation CD 16 which is comparable to that of IgGl, potentiation of phagocytosis an increase in ADCC activity in the presence of PBMC or NK cells compared to IgG3 produced in CHO. an ability to compete with IgGl at the level of their binding to CD 16 and thus negatively modulate the secretion of cytokines.

Abstract

La présente invention se rapporte à des anticorps monoclonaux anti Rhesus D de classe IgG3 produits dans une lignée cellulaire de myélome de rat, la lignée YB2/0. Ces anticorps présentent une forte activité de phagocytose.

Description

Nouvelles IgG3 utiles pour stimuler la phagocytose
La présente invention se rapporte à l'utilisation d'anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains de classe IgG3, produits dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment YB2/0 (ATCC n° CRL 1662) ou une lignée dérivée ou modifiée de YB2/0, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de différentes pathologies cancéreuses et infectieuses. Ces anticorps présentent une forte activité de phagocytose et peuvent être administrés pour traiter les cancers et les infections.
A ce jour, la grande majorité des anticorps monoclonaux thérapeutiques commercialisés ou en cours d'essais cliniques appartiennent à la classe des IgGl. Cependant, en dehors des IgGl, d'autres sous-classes d'anticorps pourraient également présenter un intérêt pour le traitement de certaines pathologies.
Les IgG3 possèdent notamment des capacités effectrices particulières et jouent certainement un rôle important in vivo. Bien que ne représentant que 7% des IgG dans les plasma humains, leur proportion est augmentée au cours de certaines réponses immunitaires, par exemple après certaines infections virales (Basic and clinical aspects of IgG subclasses. Volume editor, F. Shakib. Basel; New York : Karger, 1986 (Monographs in AUlergy; Vol 19. Pages 122-133), parasitaires (J Infect Dis. 2003 Mar l;187(5):862-5, 2003. Immunoglobulin G (IgG) responses to Plasmodium falciparum glycosylphosphatidylinositols are short-lived and predominantly of the IgG3 subclass. Boutlis CS, Fagan PK, Gowda DC, Lagog M, Mgone CS, Bockarie MJ, Anstey NM) ou à la suite d'immunisations contre l'antigène Rh(D) (Iyer YS, Kulkarni SV, Gupte SC. Distribution of IgG subtypes in maternai anti-D sera and their prognostic value in Rh haemolytic disease of the new-born. Acta Haematol. 1992;88(2-3):78-81). L'utilisation thérapeutique d'IgG3 reste jusqu'à présent très limitée. Elles sont utilisées en particulier dans le traitement préventif de la maladie hémolytique du nouveau-né, puisque d'une part, les anticorps polyclonaux anti-D actuellement utilisés sont constitués d'environ 20 à 30% d'IgG3 et d'autre part, des études cliniques utilisant un anticorps monoclonal anti-D IgG3 ont déjà été réalisées avec des résultats encourageants en terme de clairance d'hématies Rh positif (Clin Exp hnmunol. 2003 Apr;132(l):81-6. Clearance of red cells by monoclonal IgG3 anti-D in vivo is affected by the VF polymorphism of Fc gamma RHIa (CD16). Kumpel BM, De Haas M, Koene HR, Nan De Winkel JG, Goodrick MJ.)
Bien que le mécanisme d'action des anticorps polyclonaux anti-D conduisant à l'absence d'immunisation de la mère ne soit pas connu, de nombreuses études se sont attachées à démontrer les rôles respectifs des IgGl et des IgG3 anti-D. Il a par exemple été montré que la formation de rosettes entre les cellules effectrices comme les monocytes, les lymphocytes T CD8, les lymphocytes B et les cellules ΝK avec des hématies Rhésus D positif, était plus rapide et plus importante avec des IgG3 anti-D en comparaison avec des IgGl. Ces différences peuvent s'expliquer par la plus longue région charnière (Hinge) des IgG3 par rapport aux IgGl. Cette structure favoriserait la formation de ponts entre les hématies chargées négativement et les cellules effectrices. (Nox Sang. 1989;56(2):101-3. Rate of interaction of IgGl and IgG3 sensitized red cells with monocytes in the phagocytosis assay, Brojer E, Merry AH, Zupanska B; Immunology. 1992 Jul;76(3):446-51. The functional activity of Fc gamma RII and Fc gamma RIII on subsets of human lymphocytes. Hadley AG, Zupanska B, Kumpel BM, Leader KA).
L'existence d'une compétition entre des IgGl et des IgG3 suggérant ainsi que ces deux sous-classes d'IgG pourraient reconnaître et activer le même récepteur Fc a été mentionnée dans d'autres études (Immunology. 1989 Apr;66(4):491-8. Distinctive rôle of IgGl and IgG3 isotypes in Fc gamma R-mediated functions. Rozsnyay Z, Sarmay G, Walker M, Maslanka K, Nalasek Z, Jefferis R, Gergely J). Au cours d'infections parasitaires comme Plasmodium falciparum, ainsi qu'au cours des infections bactériennes, une réponse de type IgG3 est observée et elle est associée à la production d'IgGl contre des antigènes protéiques. De même, dans le cas de la réponse anti-polysaccharidique d'origine bactérienne (anti-LPS), même si les IgG2 forment la sous-classe prédominante, il y a une forte réponse de type IgGl et de façon plus limitée d'IgG3.
Pour les pathologies cancéreuses, il n'y a pas de données sur la production d'IgG3 chez des patients, bien que des traitements anti-tumoraux utilisant des IgG3 couplées ou non à des cytokines aient été utilisés à titre expérimental (Kemminer SE, Conradt HS, Nimtz M, Sagi D, Peter-Katalinic J, Diekmann O, Drmic I, Muthing J Biotechnol Prog. 2001 Sep-Oct; 17(5): 809-21. Production and molecular characterization of clinical phase I anti-melanoma mouse IgG3 monoclonal antibody R24). (Peng LS, Penichet ML, Delà Cruz JS, Sampogna SL, Morrison SL. J Interferon Cytokine Res. 2001 Sep;21(9):709-20. Mechanism of antitumor activity of a single-chain interleukin- 12 IgG3 antibody fusion protein (mscIL-12.her2.IgG3)).
La lignée YB2/0 a été sélectionnée depuis plusieurs années pour sa capacité à conférer aux IgGl produites des propriétés fonctionnelles améliorées. Nous avions montré dans notre demande WO 01/77181 l'importance de sélectionner des lignées cellulaires permettant de produire des anticorps présentant une forte activité ADCC via le récepteur Fc III (CD 16). Nous avions trouvé que la modification de la glycosylation de la partie constante des anticorps produits dans des lignées de myélomes de rat telle que YB2/0 conduisait à améliorer l'activité ADCC.
Les structures glycanniques desdits anticorps sont de type biantennées, caractérisés par des chaînes courtes, une faible sialylation et une faible fucosylation. Nous avons également découvert que le fait de présenter une forte interaction avec le CD16 a l'avantage d'induire également la production de cytokines, notamment la production d'IFN et/ou autres cytokines ou chémokines.
Les deux caractéristiques précitées se complémentent. En effet, la production d' IFNγ ou autres cytokines et/ou chémokines par des cellules effectrices induite par les anticorps sélectionnés peut renforcer l'effet thérapeutique en stimulant des mécanismes effecteurs du système immunitaire autres que l'ADCC chez les patients traités. Le mécanisme d'action d'une telle stimulation tient probablement à une régulation positive autocrine des cellules effectrices. On peut postuler que les anticorps se liant au CD 16 induisent une activité cytotoxique ainsi que la production d'IFNγ ou autres cytokines/chémokines qui au final conduit à augmenter encore davantage l'activité cytotoxique.
Dans le cadre de la présente invention, une IgG3 anti-D a été exprimée dans une lignée de myélome de rat afin d'évaluer si cette lignée, notamment YB2/0, peut conférer aux anticorps produits des propriétés fonctionnelles améliorées, comme c'est le cas pour les IgGl.
Nos résultats indiquent que les IgG3 ainsi produites présentent une capacité de fixation au CD 16 comparable à celle des IgGl. Néanmoins, cette augmentation de fixation au CD 16 n'est pas corrélée à une sécrétion de cytokines et induit une potentialisation de l'ADCC plus faible que celle qui est observée avec les IgGl. Cependant, dans certaines conditions « in vitro », c'est à dire en présence d'hématies fixées et uniquement à forte concentration d'anticorps, les IgG3 produites dans YB2/0 apparaissent capables d'induire la sécrétion de cytokines. En revanche, nous avons observé de manière tout à fait inattendue que la phagocytose est augmentée. Description
Ainsi, dans un premier aspect, l'invention concerne des anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains de classe IgG3 caractérisés en ce qu'ils sont produits dans une lignée cellulaire de myélome de rat. De préférence, lesdites IgG3 sont produites dans la lignée YB2/0 (ATCC n° CRL 1662) ou une lignée dérivée ou modifiée de YB2/0.
Dans de tels anticorps, la structure glycannique de la région Fc correspond à un type biantenné, avec des chaînes courtes, une faible sialylation et une faible fucosylation.
De plus, le taux de GlcNac intermédiaire est non nul.
De tels anticorps sont plus particulièrement sélectionnés parmi les formes :
Figure imgf000006_0001
GO, GOF, Gl et GIF. B GlcNAc ζf Mannose ^ Galactose j^> Fucose
Ainsi, l'invention porte sur des anticorps monoclonaux de classe IgG3 dans lesquels la teneur en fucose est inférieure à 65%, 60%, 50%, 40%, ou 35%. De préférence, la teneur en fucose est comprise entre 20% et 45% ou encore entre 25% et 40%. A titre d'exemple, la teneur en fucose est inférieure à 35%.
L'invention porte également sur des anticorps de classe IgG3 présentant le profil de glycosylation indiqué ci-dessus produits dans des systèmes biologiques équivalents, notamment dans des cellules, plantes ou animaux non humain génétiquement modifiés ou transformés, par exemple par introduction de séquence exprimant une ou plusieurs glycosyl transférase(s) de sorte à obtenir des anticorps présentant un profil essentiellement similaire au profil de glycosylation obtenu chez YB 2/O.
Les IgG3 produites dans la lignée YB2/0 présentent par rapport à celles produites dans des lignées comme CHO par exemple, des caractéristiques fonctionnelles particulières : a) une forte fixation au CD 16 qui est comparable à celle des IgGl produites dans la même lignée cellulaire. b) une capacité à induire une inhibition de sécrétion de cytokines induite par les IgGl. c) une capacité plus importante des IgG3 produits dans YB2/0 à induire la sécrétion d'IFN gamma, d'IL6 et de TNF alpha que les IgG3 produits dans CHO ; et une plus faible capacité des IgG3 YB2/0 à induire la sécrétion de TNF alpha et d'IFN gamma que les IgGl YB2/0. d) une potentialisation de la phagocytose.
L'anticorps de classe IgG3 de l'invention peut être sélectionné à titre d'exemple parmi les anticorps dirigés contre : CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8, CDU, CD18, CD19, CD20, CD25, CD45 et CD52 comme Campath-IH®, CD30, CD33, CD38 ou CD44. D'autres anticorps peuvent être sélectionnés parmi les anti Ep-CAM, anti HER2, anti HER1, anti GD3, anti CA125, anti GD, anti GD2, anti CD-23 et anti ProteinC ; anti- KIR3DL2, anti-EGFR, des anti-idiotypes spécifiques d'inhibiteurs par exemple de facteurs de coagulation, les anti-viraux : H1N, HBN, HCN et RSN.
Dans un deuxième aspect, l'invention vise un procédé de production d'anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains de classe IgG3 présentant les caractéristiques fonctionnelles mentionnées ci-dessus comprenant la transfection d'une lignée cellulaire de myélome de rat de préférence, la lignée YB2/0 (ATCC n° CRL 1662) ou une lignée dérivée ou modifiée de YB2/0, avec un ou plusieurs vecteur(s) comprenant les séquences codantes pour les chaînes lourdes et légères d'anticorps de classe IgG3, l'expression desdits anticorps dans la lignée cellulaire transfectée, l'extraction et la purification des anticorps.
De préférence, on utilise un système à deux vecteurs d'expression (par exemple des vecteurs dérivés du RSN), l'un codant pour les chaînes lourdes et l'autre codant pour les chaînes légères. Avantageusement, un marqueur de sélection différent est présent dans chaque vecteur. Des constructions spécifiques sont présentées à la figure 1.
L'invention porte également sur le système décrit ci-dessus dans lequel les chaînes lourdes et légères sont produites en quantité équimolaire. La construction de vecteurs d'expression peut être mise en œuvre selon les procédures connue de l'homme du métier (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second
Edition, Maniatis et al, Cold Spring Harbor).
La co-transfection dans la lignée de myélome de rat des deux vecteurs peut être réalisée au moyen de quantité équimolaire par les procédures standard du type précipitation au phosphate de calcium or par la lipofectine. Ensuite, les lignées transfectées sont sélectionnées dans les milieux de culture adéquats.
Bien entendu, d'autres stratégies, notamment l'utilisation d'un seul vecteur codant pour l'ensemble des chaînes de l'anticorps, peuvent être employées.
Dans un troisième aspect, l'invention concerne des lignées cellulaires de myélome de rat, notamment YB2/0 et des lignées dérivées, transfectées par un ou plusieurs vecteur(s) permettant l'expression d'une IgG3 fonctionnelle. L'invention porte également sur les cellules ayant été transfectées par un ou plusieurs vecteur(s) décrit(s) ci-dessus. Ces cellules sont caractérisées en ce qu'elles produisent des IgG3 présentant le profil de glycosylation mentionné plus haut et au moins l'une des propriétés a) à d) décrites précédemment. Une cellule dérivée d'une lignée décrite plus haut est également objet de l'invention. Dans un quatrième aspect, l'invention porte sur l'utilisation d'IgG3 décrites précédemment, notamment d'IgG3 exprimées dans YB2/0, pour la préparation d'un médicament.
Plus spécifiquement, l'invention vise l'utilisation d'anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains de classe IgG3, produits dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment YB2/0 (ATCC N° CRL 1662) ou une lignée dérivée ou modifiée de YB2/0, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de différentes pathologies cancéreuses, ou de différentes pathologies infectieuses d'origines virales, bactériennes ou parasitaire infectieuses.
Dans un aspect particulier de l'invention, ces anticorps peuvent être utilisés pour la préparation d'un médicament destiné à la prévention de Talloimmunisation foeto- maternelle.
Préférentiellement, les patients concernés sont les patients faibles répondeurs au traitement avec une IgGl ou une IgG3 exprimée dans CHO.
On entend par "patients faibles répondeurs", des patients traités ayant un état dit stable, avec moins de 50% de réduction et moins de 25% d'augmentation des lésions, et pas de nouvelles lésions. Ce groupe de patients comprend également les patients pour lesquels aucune réponse n'est observée (progression de la maladie pouvant conduire à la mort). Pour les maladies infectieuses, ces patients correspondent à des patients pour lesquels la charge virale ou bactérienne est diminuée de moins de 50% par un traitement conventionnel.
De manière avantageuse, on peut utiliser l'anticorps chez les patients diagnostiqués tardivement.
Les pathologies cancéreuses pouvant être traitées de manière particulièrement avantageuse au moyen des anticorps selon l'invention sont choisies parmi le groupe comprenant les tumeurs neuroectodermiques, les cancers colorectaux, les mélanomes, le cancer du sein, les leucémies, en particulier la HCL (Hairy Cell LeuOkemia), les lymphomes tels que les DLBCL (Primary Diffuse Large B-Cell Lympriomas), les leucémies aiguës, les ostéosarcomes, le cancer, notamment le cancer du poximon, cette liste n'étant pas exhaustive.
Dans un aspect particulier de l'invention, les pathologies cancéreuses traitées selon l'invention sont associées à des infections d'origine virale ou bactérienne, comme le cancer de la prostate (Lightfoot N, Conlon M, Kreiger N, Sass-Kortsak A, Purdham J, Darlington G. Médical history, sexual, and maturational factors and prostate cancer risk. Ann Epidemiol. 2004 Oct; 14(9):655-662; Huycke MM, Gaskins HR. Commensal bacteria, redox stress, and colorectal cancer: mechanisms and models. Exp Biol Med (Maywood). 2004 Jul;229(7):586-97), les leucémies, ou le sarcome de E aposi. Les agents infectieux trouvés dans les maladies infectieuses associées au cancer peuvent être Candida, Achromobacter ou Alcaligenes (Aisenberg G, Rolston KN, Safdar A. Bacteremia caused by Achromobacter and Alcaligenes species in 46 patients with cancer (1989-2003). Cancer. 2004 Sep 23 ; Boktour MR, Kontoyiannis DP, Hanna HA, Hachem RY, Girgawy E, Bodey GP, Raad IL Multiple-species candidemia in patients with cancer. Cancer. 2004 Aug 31; ) ou encore le virus d'Epstein Barr.
Parmi les pathologies infectieuses avantageusement traitées avec l'anticorps selon l'invention, on peut citer la diphtérie, les fièvres hémorragiques virales, la fièvre typhoïde, la grippe, les hépatites B et C, les infections respiratoires dues au RSN, les infections au NIH et au CMN, la Légionellose, la Leishmaniose, la lèpre, la rage, le sida ou encore la tuberculose, cette liste n'étant pas limitative.
Les IgG3 de l'invention présentent à l'égard de ces utilisations un intérêt en raison de leur forte fixation sur le récepteur Fc de basse affinité (CD 16) et/ou de leur capacité à induire une phagocytose. Dans un aspect particulier de l'invention, le médicament selon l'invention est destiné à être utilisé en combinaison avec une IgGl. L'utilisation selon l'invention des IgG3 telles que décrites précédemment est particulièrement avantageuse dans cet aspect de l'invention pour la capacité de ces IgG3 à moduler négativement la sécrétion de cytokines induite par les IgGl, notamment les taux d'IFN gamma, de TNF alpha et/ou d'IL6.
Ainsi, dans un aspect particulier de l'invention, les IgG3 tels que décrits précédemment sont utilisées pour la préparation d'un médicament pour le traitement des pathologies cancéreuses chez les patients ayant un « cytokine release syndrome », notamment chez les patients traités par une IgGl produite dans YB2/0. Cette application met à profit la capacité desdites IgG3 à moduler négativement la sécrétion de cytokines. Par exemple, on peut citer l'apparition d'hypothermie, de nécrose rénale aiguë et des maladies du foie dues au « cytokine release syndrome » induit par l'administration d'un anticorps monoclonal anti-CD3, par exemple le 145-2C11 (Alegre ML et al, J Immunol. 1991 Feb 15;146 (4):1184-91; Chatenoud L. Anti-CD3 antibodies: towards clinical antigen-specific immunomodulation. Curr Opin Pharmacol. 2004 Aug;4(4):403-7; Yamada-Ohnishi Y, Azuma H, Urushibara N, Yamaguchi M, Fujihara M, Kobata T, Ikeda H. Cytotoxic Différence of T Cells Expanded with Anti-CD3 Monoclonal Antibody in the Présence and Absence of Anti- CD28 Monoclonal Antibody. Stem Cells Dev. 2004 Jun;13(3):315-22.).
Alternativement, l'invention vise l'utilisation d'une IgG3 décrite ci-dessus, qui peut être un anti-CD20, pour prévenir l'apparition du « cytokine-release syndrome » chez les patients traités avec le Rituximab® (IDEC-C2B8) ; Winkler U et al, Cytokine-release syndrome in patients with B-cell chronic lymphocytic leukemia and high lymphocyte counts after treatment with an anti-CD20 monoclonal antibody, Blood. 1999 Oct 1;94 (7):2217-24. Alternativement, l'IgG3 de l'invention est utile pour prévenir les effets indésirables de l'anticorps CAMPATH® ou d'OKT3.
En effet, l'administration de CAMPATH 1-H, qui se lie au CD52 sur les lymphocytes et monocytes, induit la libération de TNF, d'IFN et d'IL-6 conduisant au « cytokine- release syndrome », Mark G. Wing et al, Mechanism of First-Dose Cytokine-Release Syndrome by CAMPATH 1-H: Involvement of CD16 (FcRIII) and CDlla/CD18 (LFA-1) on NK Cells, J. Clin. Invest, Volume 98, Number 12, December 1996, 2819- 2826. De même, OKT3, qui se lie au CD3 a également été décrit comme induisant le syndrome de sécrétion de cytokines (First MR, Schroeder TJ, Hariharan S. OKLT3- induced cytokine-release syndrome: rénal effects (cytokine nephropathy). Transplant Proc. 1993 Apr;25(2 Suppl l):25-6).
Un autre objet de l'invention est de fournir un procédé pour moduler la sécrétion de cytokines induite par une IgGl en ajoutant au système biologique contenant lesdites
IgGl des IgG3 produites dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment
YB2/0.
L'association d'une IgGl et d'une IgG3 est en effet d'un intérêt thérapeutique important puisqu'elle permet de diminuer les effets secondaires dus à l'IgGl sans affecter sigmficativement ses capacités cytotoxiques, et d'accroître l'effet thérapeutique via la phagocytose.
Dans un aspect particulier de l'invention, les IgGl dont la sécrétion de cytokines est modulée sont produites dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment dans YB2/0.
Dans un dernier aspect, l'invention a pour objet une composition pharmaceutique d'anticorps thérapeutiques comprenant des IgGl, des IgG3 et au moins un excipient. De manière avantageuse, l'une au moins de ces IgG (IgGl ou IgG3) est produite dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment YB2/0.
Légendes et titres des figures
Figure 1: Schéma des vecteurs d'expression
Figure 2 : Illustration des anticorps produits
Figure 3 : Interaction avec les cellules Jurkat CD16 des anticorps coatés sur les hématies fixées dans la plaque de microtitration.
L'axe des x représente la fixation des anticorps sur les hématies et l'axe des y représente la fixation sur le CD 16.
Figure 4 : Fixation des IgG3 aux cellules Jurkat CD16 en absence de cibles.
Figure 5 : Sécrétion d'IL-2 induite par les IgGl et les IgG3 exprimés dans YB2/0 après interaction avec les cellules Jurkat CD16.
Figure 6 : Activité ADCC des anticorps anti-D IgGl et IgG3 en présence de
PBMC et d'immunoglobulines polyvalentes
Figure 7 : Activité ADCC en présence de cellules NK et d'anticorps anti-D IgGl et IgG3 Figure 8 : Sécrétion d'IL-2 par les cellules Jurkat CD16 induite par les IgGl et
IgG3 anti-Rhésus (hématies en suspension). Effet de l'ajout des différentes IgG3 sur la sécrétion d'IL21 induite par les IgGl YB2/0.
Figure 9 : Sécrétion de cytokines induites par les anticorps en présence de cellules
NK ou de monocytes Figure 10 : Pourcentage de cellules THP 1 ayant phagocytés une ou plusieurs hématies
Exemples
Exemple 1 : Obtention de différents anticorps anti-D de classe IgG3. La construction des vecteurs d'expression pour produire deux anticorps recombinants est présentée à la figure 1. Après la construction de ces vecteurs d'expression, des transformants producteurs d'IgG3 D29 de spécificité anti-D ont été obtenus dans les lignées YB2/0 et CHO.
Les différents anticorps ainsi produits sont schématisés à la figure 2 :
- Anticorps 1: IgG3 D29 dans la lignée YB2/0, D29-YB2/0
- Anticorps 2: IgG3 exprimée dans la lignée CHO (lignée de référence pour la production industrielle de protéines recombinantes), D29-CHO. - Anticorps 3: IgG3 (D29, produite par un lymphocyte B fusionné avec P3x229), D29- P3X229
Exemple 2 : Etude de la fixation des trois anticorps de l'exemple 1 sur les ceUules Jurkat CD16 (CFC).
Ce test a été mis en place pour évaluer la capacité des anticorps anti-D à se fixer sur le récepteur CD 16 (Fc gamma RHIa) exprimé sur les cellules Jurkat CD 16.
La première étape consiste à faire réagir l'anticorps anti-D avec les antigènes Rhésus exprimés à la surface de membranes d'hématies Rhésus positif préalablement coatées sur des plaques de 96 puits à fond rond (fixation par le Fab). Cette fixation est parallèlement détectée par un anticorps anti-IgG humaine marqué à la phosphatase alcaline.
La deuxième étape (après la fixation de l'anticorps sur son antigène), consiste à ajouter des cellules Jurkat CD 16 qui vont pouvoir interagir avec la partie Fc des anticorps . Après centrifugation, un score (index de fixation de 1 à 3) correspondant aux cellules Jurkat CD 16 qui se sont fixées sur les anticorps est estimé visuellement.
Les résultats sont présentés figure 3. On peut conclure des résultats que l'expression d'une IgG3 dans la lignée cellulaire YB2/0 lui confère une meilleure capacité à se fixer sur les CD 16 via son Fc, tandis que la même séquence exprimée dans la lignée CHO ou exprimée par le lymphocyte B fusionné (D29-P3X229) se fixe moins bien.
Par ailleurs, l'expression d'une IgG3 dans la lignée YB2/0 lui confère une capacité à se fixer sur CD 16 qui est comparable à celle d'une IgGl exprimée dans la même cellule (R297 exprimé dans YB2/0) et aussi comparable à celle d'une IgG3 purifiée à partir d'anticorps polyclonal anti-D.
Exemple 3 : Mesure par compétition de la fixation des trois anticorps de l'exemple 1 sur les cellules Jurkat CD16 par cytométrie de flux.
Différentes dilutions des anticorps sont incubés en présence des cellules Jurkat CD 16 et de l'anticorps anti-CD16 3G8 marqué PE. La réactivité des anticorps à évaluer avec CD 16 est inversement proportionnelle à la fixation du 3G8 marqué PE qui reconnaît le site de fixation des IgG sur le récepteur Fc CD 16. Ainsi, la fixation sur le CD 16 des anticorps non marqués à évaluer va induire une diminution de la fixation de l'anticorps 3G8 marqué PE. Les données sont interprétées et les résultats finaux donnés en pourcentage de fixation sur CD 16. La figure 4 que les anticorps IgGl et IgG3 produits dans YB2/0 se fixent d'une façon comparable sur CD 16 mais plus fortement que les anticorps IgG3 produits dans CHO ou par le lymphocyte B (D29-P3X229).
Exemple 4 : Mesure de l'activation des cellules Jurkat CD16 (suite expérimentale de l'exemple 2).
Après l'évaluation de la fixation des anticorps sur Jurkat CD 16, les plaques sont ensuite incubées une nuit à 37°C, puis centrifugées. La quantité d'IL2 sécrétée par Jurkat CD 16 dans les milieux de culture est évaluée par une technique ELIS A. Les résultats sont donnés en quantité d'IL2 en fonction de la fixation sur CD 16 déterminée (exemple 2). La figure 5 montrent que l'interaction des IgG3 avec Jurkat CD16 induit une sécrétion d'IL2 beaucoup plus faible qu'en présence des IgGl. Ainsi PIgGl YB2/0 à l'opposé de l'IgG3 YB2/0 induit dès les premiers indices de fixation une sécrétion d'IL2 ; cependant, la courbe dose réponse obtenue avec les IgG3 est inférieure à celle obtenue avec les IgGl. Seule une forte interaction des IgG3 YB2/0 avec CD 16 (indice de fixation maximal de 3) induit une sécrétion d'IL2 comparable à celle obtenue avec les IgGl produites par YB2/0.
Exemple 5 : Etude de la cytotoxicité induite par des anticorps anti-D contre des hématies Rh positif en présence de PBMC ou de cellules NK purifiées.
Le test de cytolyse PBMC, quantifie la capacité des anticorps à lyser des hématies Rhésus positif en présence de cellules mononucléées humaines (PBMC) et d'immunoglobulines polyvalentes (Tégéline).
Les résultats sont présentés à la Figure 6.
L'activité cytolytique de l'IgG3 exprimée dans CHO, est comparable à celle obtenue avec l'anticorps exprimé par le lymphocyte B fusionné D29-P3X229.
Par contre, l'expression d'une IgG3 dans YB2/0 potentialise ses capacités à induire une lyse des hématies en présence de cellules mononucléées (PBL) par comparaison au même anticorps produit dans CHO ou par l'hétéromyélome.
Par rapport à l'activité de l'IgG3 produite dans CHO, l'augmentation de l'activité cytolytique de l'IgG3 exprimée dans YB20 est 2,8 fois plus importante et également comparable à celle induite par la fraction polyclonale IgG3 de WinRho. Néanmoins, l'activité cytolytique des IgG3 produites dans YB2/0 est inférieure à celle des IgGl produites dans YB2/0 et de l'anticorps polyclonal anti-D (Poly-D WinRho).
En présence de cellules NK purifiées (figure 7), l'IgG3 YB2/0 induit une lyse des hématies (55%) 5,5 fois plus importante que celle obtenue avec le même anticorps produit dans CHO (10%). L'anticorps produit par l'hétéromyélome P3X229 donne la valeur la plus faible (4%).
Néanmoins, l'activité cytolytique des IgG3 produites dans YB2/0 est inférieure à celle des IgGl produites dans YB2/0 et de l'anticorps polyclonal WinRho.
Exemple 6 : Mesure de sécrétion d'IL-2 par Jurkat CD16 après fixation des anticorps sur hématies en suspension..
Etude de l'inhibition de l'activation induite par les IgGl YB2/0 par addition d'IgG3.
Sécrétion d'IL2 : Les cellules Jurkat CD 16 sont incubées avec des hématies Rhésus positif, l'IgGl YB2/0 ou l'anticorps IgG3 D29 exprimédans les différents systèmes d'expression (YB2/0, CHO, B-P3 X229). La sécrétion d'I12 est mesurée dans les surnageants après une nuit d'incubation par technique ELISA.
Résultats :
Les IgG3 exprimées dans YB2/0 et CHO n'induisent pas de sécrétion d'IL2 contrairement aux IgGl YB2/0, cela à concentration d'anticorps identique (figure 8). Nous pouvons en déduire que contrairement aux IgGl exprimées dans YB2/0, la fixation sur le CD 16 d'une IgG3 exprimée dans YB2/0 n'induit pas de sécrétion d'IL2 en présence d'hématies en solution et de cellules Jurkat CD16. Ainsi, l'exemple 4, dans lequel les hématies étaient coatées en microplaques, montrait que seule une forte interaction avec CD16 permettait d'induire une sécrétion d'IL2. L'utilisation de conditions plus physiologiques dans cet exemple, confirment le très faible potentiel des IgG3 YB2/0 à induire une sécrétion d'IL2 à partir de Jurkat CD 16, contrairement aux IgGl YB2/0.
Etude d'inhibition : Les cellules Jurkat CD 16 sont incubées avec des hématies Rhésus positif et un mélange IgGl YB2/0 avec les différentes IgG3 D29 exprimées dans les différents systèmes d'expression (YB2/0, CHO, B-P3 X229). La sécrétion d'I12 est mesurée dans les surnageants après une nuit d'incubation par technique ELISA. Résultats :
Les IgG3 produites dans CHO et P3X229 n'ont pas d'effet sur la sécrétion d'IL2 induite par l'IgGl YB2/0. Par contre, PIgG3 produite dans YB2/0 induit une diminution de l'induction d'IL2 (figure 8).
L'expression d'une IgG3 dans YB2/0 induit donc une modulation négative de l'activité activatrice des IgGl.
Exemple 7 : Induction de la sécrétion de cytokines par les anticorps anti-D.
Les cellules NK ou les monocytes sont incubés avec des hématies Rhésus positif, l'IgGl YB2/0 ou l'anticorps IgG3 D29 exprimés dans YB2/0 ou CHO. La sécrétion de différentes cytokines (ILl béta, IL6, IFN gamma, TNF alpha) est mesurée dans les surnageants après une nuit d'incubation par technique ELISA.
Les résultats sont présentés sur la figure 9. En présence de cellules NK, les taux d'ILl béta et d'IL6 sont comparables pour, tous les anticorps. Par contre, les taux de TNF alpha et d'IFN gamma produits par les cellules NK en présence de l'IgG3 exprimée par YB2/0 sont inférieurs à ceux induits par l'IgGl exprimée dans YB2/0 (figure 9). Néanmoins, cette sécrétion est supérieure à celle observée avec l'IgG3 produite par CHO.
En présence de monocytes, les taux d'ILl béta et d'IFN gamma (nuls) sont identiques pour tous les anticorps. Les taux d'IL6 produits par les monocytes sont comparables pour les IgGl et IgG3 produites dans YB2/0 mais inférieurs pour l'IgG3 produite dans CHO. Pour le TNF alpha, on observe une légère baisse en présence de l'IgG3 produite par CHO.
Exemple 8 : Capacité des IgG3 anti-D à induire une phagocytose d'hématies Rhésus positif par les cellules THP-1.
Test de phagocytose : les cellules THP-1 sont incubées en présence d'hématies Rhésus positif et d'anticorps. Le nombre de cellules ayant phagocyté au moins une hématie est évalué par comptage au microscope. Les résultats sont exprimés en pourcentage de cellules ayant phagocyté au moins une hématie (voir figure 10).
Les IgG de l'anticorps polyclonal anti-D WinRho ont la capacité (43.4%) la plus forte à induire la phagocytose des hématies Rhésus positif par la cellule THP-1. L'IgGl YB2/0 est peu active (14.6%). Au niveau des IgG3, l'IgG3 YB2/0 induit une phagocytose de 34.5%, supérieure aux IgG3 polyclonales purifiées (IgG3 WinRlio).
Les plus faibles activités de phagocytose sont obtenues avec les IgG3 produites par le lymphocyte B fusionné (D29 P3 X229) et l'IgG3 produite dans CHO. On peut conclure que l'expression d'une IgG3 dans YB2/0 potentialise ses capacités à induire la phagocytose, cette propriété pouvant être particulièrement intéressante dans les maladies infectieuses ainsi que dans la maladie d'Alzeimer (McGeer PL, McGeer E. Immunotherapy for Alzheimer's disease. Sci Aging Knowledge Environ. 2004 Jul 07;2004}_et ceci en comparaison avec une IgG3 exprimée dans CHO ou sécrétée par un hétéromyélome.
Conclusion
Les profil glycanique particulier de PIgG3 produite dans YB2/0, c'est à dire, des formes courtes, non sialylées, et avec un taux de fucose inférieur à 35% lui confère des propriétés originales comme démontrées ci-dessus : - une forte fixation au CD 16 qui est comparable à celle des IgGl, une potentialisation de la phagocytose une augmentation de l'activité ADCC en présence de PBMC ou cellules NK par rapport aux IgG3 produites dans CHO. une capacité à entrer en compétition avec les IgGl au niveau de leur fixation au les CD 16 et ainsi moduler négativement la sécrétion de cytokines.

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation d'anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains de classe IgG3, produits dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment YB2/0 (ATCC n° CRL 1662) ou une lignée dérivée ou modifiée de YB2/0, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de différentes pathologies cancéreuses ou infectieuses.
2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle a lieu chez les patients faibles répondeurs au traitement avec une IgGl ou une IgG3 exprimée dans CHO.
3. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce qu'elle a lieu chez les patients diagnostiqués tardivement.
4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que lesdites pathologies cancéreuses sont choisies parmi le groupe comprenant les tumeurs neuroectodenniques, les cancers colorectaux, les mélanomes, le cancer du sein, les leucémies, en particulier la HCL (Hairy Cell Leukemia), les lymphomes tels que les DLBCL (Primary Diffuse Large B-Cell Lymphomas), les leucémies aiguës, les ostéosarcomes.
5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que lesdites pathologies cancéreuses sont associées à des infections d'origine virale ou bactérienne.
6. Utilisation selon la revendication 5, caractérisée en ce que lesdites infections d'origine virale ou bactérienne sont choisies parmi le groupe comprenant le cancer de la prostate, les leucémies et le sarcome de Kaposi.
7. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que lesdites pathologies infectieuses sont choisies parmi le groupe comprenant la diphtérie, les fièvres hémorragiques virales, la fièvre typhoïde, la grippe, les hépatites B et C, les infections respiratoires dues au RSN, les infections au NIH, la Légionellose, la Leishmaniose, la lèpre, la rage, le sida ou la tuberculose.
8. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, pour la capacité dudit anticorps à induire une phagocytose.
9. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ledit médicament est destiné à être utilisé en combinaison avec une IgGl .
10. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, pour la capacité dudit anticorps à moduler négativement la sécrétion de cytokines induite par les IgGl, notamment les taux d'IFΝ gamma, de TΝF alpha et/ou d'IL6.
11. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 9 ou 10, pour la préparation d'un médicament pour le traitement des pathologies cancéreuses chez les patients ayant un « cytokine release syndrome ».
12. Utilisation selon la revendication 11, pour la préparation d'un médicament pour traiter les patients atteints d'hypothermie, de nécrose rénale aiguë ou des maladies du foie dues au « cytokine release syndrome ».
13. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 11 ou 12, caractérisée en ce que ledit « cytokine release syndrome » a été induit par l'administration d'un anticorps monoclonal anti-CD3.
14. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 11 ou 12, caractérisée en ce que ledit anticorps de classe IgG3 est un anti-CD20, pour prévenir l'apparition du « cytokine-release syndrome » chez les patients traités avec le Rituximab® (IDEC- C2B8).
15. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 11 ou 12 pour prévenir les effets indésirables de l'anticorps CAMPATH® ou d'OKT3.
16. Procédé pour moduler la sécrétion de cytokines induite par une IgGl caractérisé en ce qu'on ajoute au système biologique contenant lesdites IgGl des IgG3 produites dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment YB2/0.
17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que lesdites IgGl sont produites dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment dans YB2/0.
18. Composition pharmaceutique d'anticorps thérapeutiques comprenant des IgGl, des IgG3 et au moins un excipient.
19. Composition selon la revendication 18, caractérisée en ce que l'une au moins desdites IgG est produite dans une lignée cellulaire de myélome de rat, notamment
YB2/0.
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