WO2005029056A1 - 人工脂質二重膜の形成装置および人工脂質二重膜の形成方法、並びにその利用 - Google Patents

人工脂質二重膜の形成装置および人工脂質二重膜の形成方法、並びにその利用 Download PDF

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WO2005029056A1
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solution
forming
lipid
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PCT/JP2004/013680
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Toru Ide
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Japan Science And Technology Agency
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483Physical analysis of biological material
    • G01N33/487Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/48707Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
    • G01N33/48728Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp

Definitions

  • Apparatus for forming artificial lipid bilayer membrane method for forming artificial lipid bilayer membrane, and use thereof
  • the present invention relates to an apparatus for forming an artificial lipid bilayer and a method for forming an artificial lipid bilayer, and to its use, for example, to detect microcurrents via membrane proteins, peptides, etc.
  • the present invention relates to an apparatus and a method for forming an artificial lipid bilayer membrane suitably used for a planar lipid membrane method to be performed, and an example of typical use thereof.
  • Lipid bilayers are the basic structure of biological membranes and are found in all living biological membranes. Most biological membranes are in a state in which various membrane proteins are embedded in the lipid bilayer, and these membrane proteins transport and signal substances such as various ions, sugars, amino acids, and nucleotides. Alternatively, it is involved in lipid synthesis and the like.
  • a biological membrane is a place where a physiological function is exhibited, and plays various important roles such as recognition of external force information and transmission into the membrane, conversion and transport of substances, and the like. Also, if the functions of biological membranes are applied, the possibility of application to various industrial uses is found. Therefore, it is extremely important to create an artificial membrane as a biological membrane model.
  • An artificial lipid bilayer is a thin film in which amphipathic molecules such as phospholipids are arranged with the alkyl chains of the hydrophobic part facing inward.For example, it is used to measure ion current in ion channels. It is applied to etc.
  • a lipid planar membrane method As a method of forming an artificial lipid bilayer membrane, a lipid planar membrane method is known. Patch clamp method is used as a method to measure the ion current of a single ion channel.In order to deepen the correlation study on the structural function of the force channel, it is necessary to use a simple reconstruction system when conducting experiments. There are cases.
  • the method of forming an artificial lipid bilayer used in such a case is the lipid planar membrane method.
  • This planar lipid membrane method uses ion, water, artificial lipid bilayer membrane, and ion channels to minimize the basic structure and detailed structure-function correlation of ion channels using a minimally simple system. If you look at it, you'll find that it's a bug (see Non-Patent Document 1).
  • an ion channel 112 is incorporated into an artificial lipid bilayer membrane 111, and a current flowing through the ion channel 112 is measured.
  • the artificial lipid bilayer membrane 111 is formed in a small hole 115 formed in a partition plate 114 such as a plastic plate that partitions the aqueous solution tank 113.
  • An electrode 116 is charged into one of the two partitioned aqueous solution tanks 113, and a current measuring device 117 is provided via the electrodes 116.
  • An electrode 118 is put into the other tank, and an earth 119 is made to the aqueous solution tank 113 via the electrode 118!
  • the lipid solution 110 is applied to a small hole 115 formed in a support such as a partition plate 114 for partitioning the liquid (not shown in FIG. 14) with a thin glass tube or the like. In this state, the lipid solution 110 is raised so as to protrude from both the surface side of the partition plate 114 while closing the small holes 115.
  • This lipid solution 110 is a solution obtained by dissolving lipid in an organic solvent such as decane.
  • the lipid solution 110 moves on the surface of the partition plate 114, whereby a naturally thinned artificial lipid bilayer membrane 111 is obtained.
  • the term “thinning” refers to a process in which an organic solvent or the like moves in the central part of the applied lipid solution 110 and a lipid bilayer is formed in the central part.
  • a lipid monomolecular film 121 is developed at a gas-liquid interface in an aqueous solution tank 113 (not shown in FIG. 15). I do.
  • the gas-liquid interface is set at the same position as the lower end of the small hole 115 formed in the partition plate 114.
  • the liquid surface (gas-liquid interface) in one of the two aqueous solution tanks 113 (right side in the figure) is raised to separate the monomolecular film 121.
  • the surface of the plate 114 is opened. Thereby, one opening of the small hole 115 is formed by the monomolecular film 121. It will be in a blocked state.
  • the liquid surface (gas-liquid interface) in the other tank (left side in the figure) of the aqueous solution tank 113 divided into two is raised, whereby the monomolecular film 121 is formed. It is spread on the surface of the partition 114. As a result, the other opening of the small hole 115 is also in a state where the monomolecular film 121 is closed. As a result, the monomolecular film 121 is attached to both the openings of the small holes 115, and finally the artificial lipid bilayer membrane 111 is formed.
  • the aqueous solution tank 113 shown in FIG. 16 (a) the small holes 115 formed in the partition plate 114 are closed with the lipid solution 110, and the lipid solution 110 waits until the lipid solution 110 is naturally thinned to become the artificial lipid bilayer 111.
  • the artificial lipid bilayer membrane 111 is formed by increasing the water pressure in the tank above the small holes 115 to expand and thin the lipid solution 110 downward.
  • the artificial lipid bilayer membrane 111 is used. Formation cannot be artificially controlled at all. Therefore, thinning may take several hours or more.
  • the resulting human lipid bilayer 111 is referred to as “lipid bilayer”. This results in a thinner part and a thicker part surrounding it, called an annular Balta layer. Therefore, the artificial lipid bilayer 111 obtained by this method is based on the physical equilibrium of each part described above. The lamina 111 tears quickly . Since it is difficult to accurately control the pressure difference between the upper and lower tanks in the aqueous solution tank 113, the resulting artificial lipid bilayer membrane 111 is more likely to be unstable.
  • the present inventors have proposed a technique for improving the above-mentioned conventional problems in an artificial lipid bilayer membrane used for a current measuring device (for example, see Non-Patent Document 2).
  • a current measuring device obtained by this technology, it is possible to simultaneously measure the structure and function of ion channel molecules using an artificial lipid bilayer membrane.
  • the current measuring device includes two solution tanks, an upper solution tank 101 and a lower solution tank 102.
  • a film 103 having a small hole 105 at the center is attached to the bottom surface of the upper solution tank 101.
  • the lower solution tank 102 has an opening 104 on the bottom surface, and a cover glass 106 is fixed with an adhesive.
  • An agarose gel layer (not shown) is formed on the cover glass 106.
  • a thick film of the lipid solution is formed in the small holes 105 by moving the lower part of the upper solution tank 101 in the lipid solution.
  • the upper solution tank 101 is put into the lower solution tank 102, and the upper solution tank 101 is lowered until the thick film formed in the small hole 105 contacts the agarose gel layer formed on the cover glass 106.
  • the pressure (water pressure) of the upper solution tank 101 excess lipid solution is pushed out from between the agarose gel layers, and the thick membrane is thinned to form an artificial lipid bilayer.
  • the conventional technology for forming an artificial lipid bilayer membrane described above may have difficulty in stably forming an artificial lipid bilayer membrane, and thus has a problem that a more stable formation technology is required. are doing.
  • the present invention has been made in view of the above-mentioned conventional problems, and has an object to quickly form a stable artificial lipid bilayer membrane, for example, to simultaneously measure the structure and function of a single channel.
  • An object of the present invention is to provide an apparatus and a method for forming an artificial lipid bilayer membrane which can be used for an electric current measuring device to be measured, and an example of typical use thereof.
  • the apparatus for forming an artificial lipid membrane according to the present invention has a membrane-forming opening formed in a flat plate-shaped portion, and is capable of accumulating a membrane support and an aqueous solution.
  • a membrane-forming solution tank, and a support layer for supporting the artificial lipid bilayer membrane is provided in the membrane-forming solution tank, and the artificial lipid formed at the membrane-forming opening of the membrane support is provided.
  • a lipid solution discharging means for discharging at least one surface of the membrane-forming opening.
  • the membrane support is charged into the membrane-forming solution tank so as to be in contact with the solution, and then a lipid solution is applied to the membrane-forming opening, and the lipid solution is sandwiched between the aqueous solution and the support layer.
  • the method is characterized in that a thin artificial lipid bilayer membrane is formed at the membrane-forming opening by contacting the support layer and discharging excess lipid solution by the lipid solution removing means in this state.
  • the lipid solution discharging means since the lipid solution discharging means is provided, it is possible to discharge the excess lipid solution from the lipid solution applied to the membrane-forming opening without changing the water pressure. Therefore, since no pressure is applied from above the film, the film does not break or become unstable when thinning. Therefore, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be rapidly formed.
  • the method for forming an artificial lipid membrane according to the present invention uses a membrane support in which a membrane-forming opening is formed in a flat plate-like portion, and at least one surface of the membrane-forming opening. Is placed in contact with an aqueous solution, and a lipid solution application step of applying a lipid solution to the membrane-forming opening, and applying the lipid solution applied to the membrane-forming opening to the aqueous solution with a hydrophilic surface.
  • the lipid solution applied to the membrane-forming opening can also discharge the excess lipid solution without changing the water pressure. Therefore, since no pressure is applied from above the membrane, the membrane is not broken or becomes unstable in the lipid membrane thinning step. Therefore, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be rapidly formed.
  • the current measuring device according to the present invention is characterized by being formed using the artificial lipid bilayer forming device according to the present invention.
  • a stable artificial lipid bilayer membrane can be used for current measurement through the membrane, so that current measurement can be performed accurately.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view illustrating a configuration of an apparatus for forming an artificial lipid bilayer membrane according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 shows a portion of the apparatus for forming an artificial lipid bilayer membrane shown in FIG. 1 in which a lipid solution is applied to a small hole of an upper solution tank and excess lipid solution is sucked by a suction unit. It is a sectional view, (b) is a partial sectional view showing a state where an artificial lipid bilayer membrane was formed by sucking an excess lipid solution.
  • FIG. 3 is a cross-sectional view illustrating an example of a configuration of a suction unit in the apparatus for forming an artificial lipid bilayer shown in FIG. 1.
  • FIG. 4 (a)-(c) are cross-sectional views showing steps of a method for forming an artificial lipid bilayer membrane according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view illustrating a current measuring device according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 6 is a partial cross-sectional view of a small hole and a support layer in an artificial lipid bilayer membrane forming apparatus according to another embodiment of the present invention.
  • (B) shows a state in which the lipid solution and the support layer are in contact with each other, and
  • (c) shows a state in which an artificial lipid bilayer is formed.
  • FIG. 7 (a) Partial cross-section showing the appearance of the artificial lipid bilayer formed by pressing the membrane support coated with the lipid solution against the polymer gel and the polymer gel penetrating into the pores.
  • FIG. 3B is a partial cross-sectional view showing a state in which an artificial lipid bilayer is formed on a polymer gel in which a portion in contact with a small hole is previously formed higher than other portions.
  • FIG. 8 (a)-(c) is a cross-sectional view showing a step of a method for forming an artificial lipid bilayer membrane according to another embodiment of the present invention.
  • FIG. 9 is a photograph showing a state where the thinning of the artificial lipid bilayer membrane is completed in [Example 1].
  • FIGS. 10 (a) and (b) are diagrams showing current traces obtained in [Example 1].
  • FIG. 11 is a drawing showing potential-current characteristics obtained in [Example 1].
  • FIG. 12 (a) is a drawing showing a fluorescence image of fluorescently labeled aramethicin observed in [Example 2], and (b) is a drawing showing a current trace measured in [Example 2]. It is.
  • FIG. 13 is a schematic diagram showing a conventional lipid planar membrane method.
  • FIG. 14 is a drawing showing a conventional vertical painting method.
  • FIG. 15 is a drawing showing a conventional vertical bonding method.
  • FIG. 16 (a) and (b) are drawings showing a conventional method for forming a horizontal artificial lipid bilayer membrane.
  • FIG. 17 is a drawing showing a conventional current measuring device.
  • FIG. 18 is a drawing showing a conventional artificial lipid bilayer formed on a polymer gel layer.
  • an apparatus for forming an artificial lipid bilayer membrane according to the present invention includes at least an upper solution tank 1 and a lower solution tank (membrane forming solution tank). 2, a support layer 3, and a suction unit (suction unit) not shown.
  • the suction section functions as a lipid solution discharging means for discharging the excess lipid solution from the lipid solution applied to the film forming opening without changing the water pressure.
  • the bottom surface of the upper solution tank 1 is a membrane support 5, and an artificial lipid bilayer membrane is formed in the small holes (openings for membrane formation) 11 formed in the membrane support 5.
  • the specific configuration of the membrane support 5 is not particularly limited as long as the configuration is such that small holes 11 serving as membrane-forming openings are formed in a flat plate-like portion.
  • the membrane support 5 is a bottom portion of the upper solution tank 1 capable of storing a solution.
  • the membrane support 5 is not particularly limited as long as it has a plate shape or a film shape.
  • a small hole 11 is formed in the bottom surface of the tank 1 itself, so that the film having the small hole 11 formed in the opening is provided in the bottom of the upper solution tank 1. It may have a bonded configuration.
  • the material of the membrane support 5 is not particularly limited, but specifically, for example, plastics such as polypropylene, polychlorinated vinyl, and polystyrene, and fluorine resin are preferably used. . Further, the thickness of the membrane support 5 is preferably 0.1 mm or more and 0.3 mm or less. By making only the periphery of the small hole 11 thinner than the other regions, a stable artificial lipid bilayer membrane can be quickly formed.
  • the pores 11 preferably have a diameter of lO / zm or more and 500 ⁇ m or less, more preferably 50 ⁇ m or more and 200 ⁇ m or less. Thereby, an artificial lipid bilayer membrane can be favorably formed.
  • the small holes 11 can be formed by, for example, a conventionally known method as described below. First, a stainless steel rod sharply cut in a conical shape to the very tip is heated with a gas burner or the like. Next, this is strongly pressed against the surface on which the small holes 11 are formed, and the pressing is continued until a small bulge is formed on the side opposite to the pressed surface. A small hole 11 is formed by cutting out the bulge with a razor. In addition, the small holes 11 are cleaned with a form-form methanol methanol to remove impurities and the like.
  • the method for forming the small holes 11 is not limited to this, and any known method can be used.
  • the upper solution tank 1 is provided above the lower solution tank 2 and is capable of storing an aqueous solution, and is not particularly limited as long as the membrane support 5 is configured to serve as the bottom surface of the upper solution tank 1. Not a thing.
  • the shape of the upper solution tank 1 is not particularly limited, and examples thereof include a cylindrical shape.
  • the size of the upper solution tank 1 is not particularly limited as long as it is larger than the small holes 11, but, for example, in the case of a cylindrical shape, the inner diameter is preferably 0.5 mm or more and 20 mm or less. Mass 1. More preferably Omm or more and 10 mm or less. Further, the size of the upper solution tank 1 can be preferably reduced to a size of several tens / zm. Further, the volume of the upper solution tank 1 is not particularly limited, but is preferably not less than 0.1 Olcm 3 and not more than 1.0 Ocm 3 . Thereby, the artificial lipid double according to the present invention A film forming apparatus can be formed on a small chip, and a smaller sensor can be manufactured.
  • the material of the upper solution tank 1 other than the portion where the small holes 11 are formed is not particularly limited.
  • glass, plastic, or the like is used. Are listed.
  • the upper solution tank 1 is capable of storing an aqueous solution.
  • Each side of the artificial lipid bilayer formed in the small hole 11 is in contact with the aqueous solution filled in the upper solution tank 1 and the lower solution tank 2.
  • the aqueous solution is not particularly limited as long as it does not contain a surfactant, an organic solvent and the like.
  • Preferred examples of the aqueous solution include aqueous solutions of potassium salt, sodium salt, calcium chloride and the like.
  • the upper solution tank 1 be capable of moving vertically.
  • the vertical movement of the upper solution tank 1 may be performed manually, or a device for movement may be used.
  • a device for movement a micro-multiplier or the like can be given.
  • the lower solution tank 2 may be disposed below the upper solution tank 1 so that the aqueous solution can be accumulated therein, and may be a film forming solution tank for forming the membrane support 5.
  • a support layer 3 for supporting the artificial lipid bilayer membrane is provided on the bottom surface of the lower solution tank 2. Then, the artificial lipid bilayer formed in the small holes 11 of the upper solution tank 1 is supported by being brought into contact with the support layer 3.
  • the volume of the lower solution tank 2 is not particularly limited as long as the bottom of the upper solution tank 1 can be put on the support layer 3 formed thereon.
  • the material of the lower solution tank 2 is not particularly limited, but examples thereof include glass and plastic such as polystyrene.
  • the aqueous solution contains a surfactant, an organic solvent, and the like, like the aqueous solution in the upper solution tank 1. It is not particularly limited unless it is inevitable.
  • Preferable examples of the aqueous solution include aqueous solutions of potassium salt sodium, sodium salt sodium, calcium salt sodium and the like.
  • the support layer 3 provided on the bottom surface of the lower solution tank 2 may have any configuration as long as it is in contact with and supports the artificial lipid bilayer membrane formed by the small holes 11 of the membrane support 5.
  • the support layer 3 is not particularly limited as long as it can penetrate an aqueous solution and can support the artificial lipid bilayer membrane 2.
  • Specific examples of the support layer 3 include a porous membrane such as a polymer gel and a cellulose membrane. Above all, it is more preferable that the support layer 3 also has a polymer gel force.
  • the polymer gel is not specifically limited, but polysaccharides such as agarose and hydrophilic resins such as polyacrylamide can be preferably used. By using these, the support layer 3 can be easily formed using an inexpensive and highly reliable material.
  • the thickness of the support layer 3 is not particularly limited, but is preferably 100 nm or more and 2 mm or less. When the thickness of the support layer 3 is within this range, the formed artificial lipid bilayer membrane is vertically stabilized.
  • the method of forming the support layer 3 is not particularly limited, and a conventionally known method may be used.
  • a dispersion of agarose is prepared, and heated to dissolve the agarose.
  • a method in which the solution is applied to the bottom of the lower solution tank 2 and dried at room temperature may be used.
  • the artificial lipid bilayer membrane is formed in the small hole 11 formed in the bottom surface 5 of the upper solution tank 1 as described above. As will be described later, the artificial lipid bilayer is formed by applying a lipid solution to the small holes 11 and then bringing the lipid solution into contact with the support layer 3 of the lower solution tank 2 and sucking excess lipid solution by the suction unit. You.
  • the lipid is not particularly limited as long as it forms an artificial lipid bilayer membrane, but phospholipids are preferably used. Specifically, for example, phosphatidylcholine, difita Nylphosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylserine, and the like.
  • the two hydrocarbon chains in these phospholipids may be saturated hydrocarbons, or may be unsaturated hydrocarbons. These lipids may be used pure or may be a mixture of at least two kinds of lipids.
  • the lipid solution refers to a solution in which the lipid is dispersed in an organic solvent.
  • the organic solvent used is not particularly limited as long as it is a non-polar organic solvent.
  • a saturated hydrocarbon such as decane, hexadecane, and hexane is suitably used.
  • the lipid concentration is more preferably 5 to 40 mg / mL, more preferably 15 to 20 mg / mL.
  • the suction unit may be configured so that the lipid solution applied to the small hole 11 can be discharged by sucking the excess lipid solution.
  • the lipid solution 13 is applied to the small holes 11 of the membrane support 5. This lipid solution 13 is brought into contact with the support layer by sandwiching it between the aqueous solution and the support layer as described later. In this state, the excess lipid solution 13 is discharged using the suction unit 12, and a thin artificial lipid bilayer membrane 14 is formed in the small holes 11.
  • the suction unit 12 is a tubular member that can suck an excess lipid solution 13 other than an amount necessary for forming a lipid bilayer from the lipid solution 13 to which the peripheral force is also applied. Anything is fine.
  • a glass tube connected to a syringe, a silicon dropper and the like can be mentioned.
  • the suction may be performed using a syringe 17 to which a glass tube 15 is stretched by heating and thinly drawn, and then attached to a lipid solution 13 and a silicon tube 16 is connected thereto.
  • a syringe 17 to which a glass tube 15 is stretched by heating and thinly drawn, and then attached to a lipid solution 13 and a silicon tube 16 is connected thereto.
  • sucking the lipid solution 13 in order to form the membrane without breaking, it is preferable to suck from the periphery of the opening, and it is particularly preferable to suck from the Balta portion.
  • the method of suction is not limited to the above.
  • an artificial lipid bilayer membrane which is useful in the present invention
  • the artificial lipid described in (1) above is used.
  • the case where a double-film forming apparatus is used will be described with reference to FIGS.
  • lipid solution application step will be described. As shown in FIG. 4 (a), a support layer 3 is previously formed at the bottom of the lower solution tank 2, and the upper solution tank 1 and the lower solution tank 2 are filled with the above aqueous solution. Then, the lipid solution 13 is applied to the small holes 11 formed in the membrane support 5 serving as the bottom surface of the upper solution tank 1.
  • the support layer contacting step will be described.
  • the bottom surface of the upper solution tank 1 is put into the lower solution tank 2 and brought into contact with the support layer 3, and the lipid solution 13 coated with the small holes 11 in the above-mentioned lipid solution coating step is lifted up. It is sandwiched between the aqueous solution in the solution tank 1 and the support layer 3. Thereby, the applied lipid solution 13 can be brought into contact with the support layer 3.
  • lipid membrane thinning step As shown in FIG. 4 (c), a suction unit 12 having a tubular member is attached to the lipid solution 13 that has been brought into contact with the support layer 3, and as described above, the excess lipid solution 13 is sucked and discharged, and the pores are removed. An artificial lipid bilayer membrane 14 thinned to 11 is formed.
  • the excess lipid solution 13 is discharged from the lipid solution 13 applied to the small holes 11 without changing the water pressure, that is, without increasing the water pressure applied to the lipid solution 13 as in the related art.
  • the artificial lipid bilayer membrane can be formed in the small holes 11 in a state of being in contact with the support layer 3.
  • the upper solution tank 1 is an open system
  • the bottom of the lower solution tank 2 is closed and not an open system. Therefore, the artificial lipid bilayer is stabilized in a direction parallel to the bottom surface, which was conventionally unstable, so that the durability of the artificial lipid bilayer can be further improved.
  • the apparatus for forming an artificial lipid bilayer membrane according to the present invention can form a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane in a short time. Further, the present invention also includes an artificial lipid bilayer formed using the apparatus for forming an artificial lipid bilayer according to the present invention.
  • any change in the artificial lipid bilayer membrane for example, change in membrane potential, electric capacity, ion permeability, luminescence, heat generation, endotherm, endotherm, etc.
  • a dissolved substance in a sample liquid And its concentration can be detected.
  • a lipid bilayer membrane include an artificial lipid bilayer membrane substantially composed of only lipids, and an artificial lipid bilayer membrane containing various molecules such as proteins and sugars without adhering thereto. be able to.
  • Examples of the membrane protein include an ion channel.
  • the method for embedding the ion channel in the artificial lipid bilayer membrane can be a conventionally known method, and is not particularly limited. Specifically, for example, there is a method in which a membrane fraction containing an ion channel is solubilized with a surfactant, reconstituted into a membrane vesicle, and fused with an artificial lipid bilayer membrane.
  • a current measuring device can be formed using the device for forming an artificial lipid bilayer membrane, and this current measuring device is also included in the present invention.
  • This current measuring device is not particularly limited as long as it can measure the current flowing through the artificial lipid duplex.
  • the current measuring device according to the present embodiment has a configuration in which the current electrically connected to the upper solution tank 1 is added to the configuration of the artificial lipid bilayer forming device shown in FIG.
  • a measuring instrument (current measuring means) 18 and an earth (earth means) 19 electrically connected to the lower solution tank 2 are provided.
  • the configuration of the current measuring device is not limited to the above.
  • An electrode 20 is supplied to the upper aqueous solution tank 1, and a current measuring device 18 is provided via the electrode 20.
  • An electrode 21 is supplied to the lower aqueous solution tank, and an earth 19 is provided to the lower aqueous solution tank 2 via the electrode 21.
  • the bottom surface of the lower solution tank 2 is made of a light-transmitting material, and below the bottom surface, optical observation is performed so that the artificial lipid bilayer membrane on the support layer 3 can be observed.
  • Means 18 may be provided.
  • Examples of the optical observation means include an optical microscope. Observation with an optical microscope includes, for example, changes in the fluorescence intensity of a fluorescently labeled ion channel due to opening and closing of the gate, movement of the ion channel, and spectrum transfer due to energy transfer between two fluorescent dyes. Observation of changes and the like. In addition, it is possible to confirm with an optical microscope that an artificial lipid bilayer is formed. Furthermore, the movement of lipid molecules can also be observed using an artificial lipid bilayer using fluorescently labeled lipids. Of course, the optical measurement is not limited to these, and any conventionally known method can be applied.
  • the apparatus for forming an artificial lipid bilayer membrane of the present invention can further stabilize the formed artificial lipid bilayer membrane. Therefore, even if the membrane protein is incorporated in the artificial lipid bilayer membrane, it can be sufficiently obtained.
  • the structure and function of a membrane protein can be simultaneously measured in a stable state.
  • Ion channel proteins are distributed in almost all cells of many types. Therefore, these are proteins that are likely to cause disease, and it is said that 30-40% of drug discovery targets are ion channel proteins.
  • the effect is measured by administering a reagent to an experimental animal, but if a stable artificial lipid bilayer membrane 2 is formed, it is possible to directly investigate the effect on the target ion channel protein in drug discovery. Screening can be performed.
  • drugs that act on the nervous system such as psychotropic drugs
  • the current measuring device of the present invention can be used for visualization analysis of protein-protein (drug) interaction on the artificial lipid bilayer membrane. Furthermore, by changing the type of molecule incorporated into the artificial lipid bilayer membrane, it can be applied to the detection of various substances.
  • the artificial lipid bilayer forming apparatus has the same configuration as the artificial lipid bilayer forming apparatus shown in FIG.
  • the excess lipid solution is drained from the lipid solution applied to the opening without changing the water pressure by the membrane support having a movable part.
  • the movable membrane support functions as a lipid solution discharging unit.
  • the support layers are different as described below.
  • the movable membrane support is not particularly limited as long as it can move in the direction of pressing the support layer provided in the lower solution tank 2.
  • the movable membrane support is a bottom portion of the upper solution tank 1 in which a solution can be stored.
  • the lipid solution 13 applied to the small holes 11 of the membrane support 50 is pressed against the support layer 30 by using the movable membrane support 50 as a lipid solution discharging means, and the lipid solution 13 By pushing out, the excess lipid solution is discharged from the lipid solution 13 applied to the small holes 11 without changing the water pressure.
  • the lipid solution 13 is extruded through the gap between the movable membrane support 50 and the support layer 30, and the artificial lipid bilayer membrane is thinned.
  • the movable membrane support 50 be capable of moving up and down.
  • the membrane support 50 serves as the bottom surface of the upper solution tank 1, it can move together with the upper solution tank 1.
  • the movement of the upper solution tank 1 may be performed manually, or a device for movement may be used.
  • a micromanipulator or the like can be given.
  • the support layer 30 is provided on the bottom surface of the lower solution tank 2 as in the first embodiment, and is configured to contact and support the artificial lipid bilayer formed by the small holes 11 of the membrane support 50. Good.
  • the support layer 30 is preferably resilient because it is pressed through the movable membrane support 50.
  • a polymer gel layer may be used as the support layer 30 in the same manner as in Embodiment 1.
  • the thickness of the polymer gel layer is preferably 0.5 mm or more and 2.Omm or less. With this thickness, when the support layer 30 and the lipid solution 13 applied to the small holes 11 of the membrane support 50 are pressed, excess lipid solution 13 can be preferably extruded.
  • the support layer 30 When the movable membrane support 50 coated with the lipid solution is pressed against the support layer 30, when the support layer 30 is, for example, a polymer gel layer, the shape of the support layer 30 is deformed. As shown in FIG. 7 (a), it may enter the small hole 11. Therefore, as shown in FIG. 7 (b), the support layer 30 may be previously set to be 50 m or more and 200 m or less higher in the area in contact with the small hole 11 than in the other area. In this way, the support layer 30 can be pushed into the small holes 11 by being raised. Therefore, the support layer 30 can be in good contact with the lipid bilayer, and a stable artificial lipid bilayer can be formed.
  • FIG. 8 (a) — (c) Explain based on
  • lipid solution application step will be described. As shown in FIG. 8 (a), a support layer 30 is previously formed at the bottom of the lower solution tank 2, and the upper solution tank 1 and the lower solution tank 2 are filled with the above aqueous solution. Then, the lipid solution 13 is applied to the small holes 11 formed in the membrane support 50 serving as the bottom surface of the upper solution tank 1.
  • the support layer contacting step will be described. As shown in FIG. 8 (b), the bottom surface of the upper solution tank 1 was put into the lower solution tank 2 and was brought into contact with the support layer 30. It is sandwiched between the aqueous solution in the tank 1 and the support layer 30. Thereby, the applied lipid solution 13 can be brought into contact with the support layer 30.
  • the lipid membrane thinning step will be described.
  • the lipid solution 13 is pressed against the support layer 30 by pressing the movable membrane support 50 against the support layer 30, and the lipid solution 13 is discharged.
  • the lipid solution 13 is extruded through the gap between the membrane support 50 and the support layer 30, and the artificial lipid bilayer membrane is thinned.
  • the excess lipid solution 13 is discharged from the lipid solution 13 applied to the small holes 11 without changing the water pressure, and the artificial lipid bilayer membrane is brought into contact with the support layer 30 in the small holes 11. Can be formed.
  • the upper solution tank 1 is an open system
  • the bottom of the lower solution tank 2 is closed and not an open system. Therefore, the artificial lipid bilayer is stabilized in a direction parallel to the bottom surface, which has been unstable in the past, so that the durability of the artificial lipid bilayer can be further improved.
  • the present invention will be described in more detail with reference to Examples and FIGS. 9 to 13, but the present invention is not limited thereto.
  • the upper solution tank 1 is a polypropylene having a volume of 0.1 cm 3 , a bottom surface of 0.2 mm—0.3 mm, and a small hole 11 having a diameter of 0.15 mm.
  • An agarose gel layer having a thickness of 150 nm was formed on the bottom of the lower tub 2 and used as a support layer 3.
  • an Ag—AgCl electrode obtained by plating an Ag foil was used.
  • a glass tube connected to a silicon tube was used as a suction unit for thinning lipids.
  • the current was measured using a notch clamp amplifier (CEZ-2400, manufactured by Nihon Kohden) and recorded on a DAT tape using a DAT recorder.
  • the upper solution chamber 1 and the lower solution chamber 2 lOOmM KC1, ImM CaCl (or 10- 9 MC
  • the current was measured in the same manner as described above.
  • FIG. 10 shows a trace of the obtained current
  • FIG. 11 shows a membrane potential-current characteristic.
  • 10 (a) is, if the aqueous solution is LOOmM KC1, including 10- 9 M CaCl
  • FIG. 10 (b) an aqueous solution of 100
  • the ratio of ion channel opening increased.
  • the obtained current trace pattern was the same as the pattern that was clearly apparent from the conventional experimental results.
  • the current measuring device using the artificial lipid bilayer forming device of the present invention a stable artificial lipid bilayer membrane can be formed quickly and easily, and reliable current measurement can be performed. It turns out that a result is obtained. From Fig. 11, the magnitude of the single-channel current (single-channel inductance) agreed with the value clarified by the conventional method. This indicates that the current measurement device of the present invention can measure a current without the agarose gel layer directly below the artificial lipid bilayer affecting the properties of the channel.
  • Cy3 a methanol solution of Aramechishin fluorescently-labeled with (Amanshamu 'manufactured by Pharmacia) (manufactured by Sigma), final concentration urchin upper solution chamber 1 by which is about 10- 8 M Added to the aqueous solution.
  • the fluorescent labeling of aramethicin was performed by adding glycine to the C-terminus of aramethicin, fixing Cy3 to the amino group of the glycine using a Cy3 monoflual dye kit (manufactured by Amansham Pharmacia), and binding. .
  • Aramethicin is an amphipathic peptide that naturally migrates from the liquid phase to an artificial lipid bilayer to form an ion channel.
  • an aqueous solution to be filled in the upper and lower solution tanks an aqueous solution of 100 mM KC1 and 10 mM Hepes (pH 7.4) was used.
  • the fluorescence image and the ion current due to aramethicin were simultaneously observed and measured. The fluorescence image was measured using an objective lens type total internal reflection fluorescence microscope (TIRFM).
  • FIG. 12 (a) shows the obtained fluorescent image of fluorescent alamethicin and the locus of Brownian motion in the film
  • FIG. 12 (b) shows the current trace.
  • an opening for forming a membrane is formed in a flat plate-shaped portion, and a membrane support and an aqueous solution can be accumulated.
  • a membrane-forming solution tank, and a support layer for supporting the artificial lipid bilayer membrane is provided in the membrane-forming solution tank, and the artificial lipid formed at the membrane-forming opening of the membrane support is provided.
  • the apparatus for forming an artificial lipid bilayer which supports the bilayer by contacting the bilayer on the support layer, further comprising an excess lipid solution from the lipid solution applied to the membrane-forming opening without changing the water pressure.
  • the membrane support is put into a membrane-forming solution tank so that at least one surface of the membrane-forming opening is in contact with the aqueous solution.
  • a lipid solution is applied to the opening for formation, and the lipid solution is sandwiched between the aqueous solution and the support layer.
  • the lipid-removing means is used to discharge the excess lipid solution, thereby forming a thin artificial lipid bilayer membrane at the membrane-forming opening. It is.
  • the apparatus for forming an artificial lipid membrane according to the present invention is capable of accumulating an aqueous solution with a membrane support in which a membrane-forming opening is formed in a flat plate-like portion. And a lipid solution discharging means for discharging the lipid solution applied to the film forming opening by sucking the excess lipid solution. Configuration.
  • the artificial lipid membrane forming apparatus has a configuration in which the membrane forming solution tank is provided with a support layer that supports an artificial lipid bilayer formed at the membrane-forming opening of the membrane support. Yo Is more preferable.
  • the membrane support is charged into the membrane-forming solution tank so that at least one surface of the membrane-forming opening is brought into contact with the aqueous solution, and then the lipid solution is poured into the membrane-forming opening.
  • the lipid solution is sandwiched between the aqueous solution and the support layer and brought into contact with the support layer, and in this state, the excess lipid solution is discharged by the lipid solution removing means, thereby forming the membrane-forming opening.
  • a thin artificial lipid bilayer membrane can be formed in the part.
  • the lipid solution discharging means since the lipid solution discharging means is provided, the excess lipid solution can be discharged from the lipid solution applied to the membrane-forming opening without changing the water pressure. Therefore, since no pressure is applied from above the film, the film does not break or become unstable when thinning. Therefore, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be rapidly formed.
  • the apparatus for forming an artificial lipid membrane according to the present invention is capable of storing an aqueous solution provided above the lower solution tank when the membrane forming solution tank is a lower solution tank.
  • a liquid tank may be provided, and the support layer may be provided on a bottom surface of the lower solution tank, and the membrane support may be a bottom surface of the upper solution tank.
  • the bottom surface of the upper solution tank to which the lipid solution has been applied can be easily brought into contact with the support layer provided on the bottom surface of the lower solution. Therefore, a stable artificial lipid bilayer membrane can be quickly and easily formed with a simple configuration.
  • the lipid solution discharging means may be a suction means for suctioning the lipid solution applied to the opening for forming a membrane by a tubular member.
  • the excess lipid solution is sucked from the lipid solution applied to the forming opening by using the suction means. Therefore, the excess lipid solution can be easily discharged in a short time, and the artificial lipid bilayer can be thinned.
  • the membrane support is movable in a direction of pressing a support layer provided in the membrane forming solution tank, and is capable of moving.
  • the membrane support as the lipid solution discharging means, the lipid solution applied to the membrane-forming opening is pressed against the support layer and the lipid solution is extruded to remove excess lipid solution. May be issued.
  • the membrane support is movable in a direction of pressing a support layer provided in the membrane forming solution tank, and the movable body is movable.
  • the membrane support as the lipid solution discharging means and pressing the membrane support applied to the membrane-forming opening against the support layer, the lipid solution is applied to the membrane-forming opening and other regions. It is more preferable to separate them by ⁇ .
  • the membrane support is movable, an excess lipid solution can be discharged by pressing the lipid solution onto the support layer and pushing out the lipid solution. Therefore, since there is no need to prepare a member for discharging the excess lipid solution, the artificial lipid bilayer can be easily and inexpensively thinned.
  • the support layer is preferably made of a polymer gel.
  • the thickness of the polymer gel layer is arbitrary and does not vary.However, when the lipid solution discharging means is a suction member, it is not less than 100 nm and not more than 2.0 mm, and is a movable membrane support. Is preferably 0.5 mm or more and 2 mm or less. Further, it is preferable that the polymer gel is higher than other regions in a region in contact with the film forming opening, and is higher than 50 ⁇ m to 200 ⁇ m. Is more preferred.
  • the artificial lipid double membrane is vertically supported by the polymer gel layer when the thin film is formed.
  • the diameter of the membrane-forming opening is preferably 10 ⁇ m or more and 500 ⁇ m or less! / ⁇ .
  • an artificial lipid bilayer membrane can be formed favorably.
  • the method for forming an artificial lipid membrane according to the present invention uses a membrane support in which a membrane-forming opening is formed in a plate-like portion, and at least one surface of the membrane-forming opening is treated with an aqueous solution.
  • a lipid solution application step of applying a lipid solution to the membrane-forming opening after contacting the lipid solution, and supporting the lipid solution applied to the membrane-forming opening with the aqueous solution and a hydrophilic surface. Support layer contact between the support layer and the applied lipid solution sandwiched between the layers. Discharging the excess lipid solution from the lipid solution applied to the membrane-forming opening without changing the water pressure, thereby forming the thinned artificial lipid bilayer in the membrane-forming opening. And forming a lipid membrane thinning step.
  • the lipid solution applied to the membrane-forming opening can also discharge the excess lipid solution without changing the water pressure. Therefore, since no pressure is applied from above the membrane, the membrane is not broken or becomes unstable in the lipid membrane thinning step. Therefore, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be rapidly formed.
  • an excess lipid solution may be discharged by sucking the lipid solution by a tubular member.
  • the excess lipid solution can be easily discharged in a short time, and the artificial lipid bilayer can be thinned.
  • the lipid solution applied to the membrane-forming opening is pressed against the support layer to extrude the lipid solution.
  • the excess lipid solution may be discharged.
  • the artificial lipid bilayer membrane can be easily and inexpensively thinned.
  • the artificial lipid bilayer membrane of the present invention is characterized by being formed using the above-described method for forming an artificial lipid bilayer membrane.
  • the artificial lipid bilayer membrane is formed using the above-described method.
  • the artificial lipid bilayer is stable and durable.
  • the artificial lipid bilayer membrane of the present invention has a membrane protein incorporated into the above-described artificial lipid bilayer membrane! I do not work.
  • the current measuring device according to the present invention is characterized by being formed using the artificial lipid bilayer forming device according to the present invention.
  • a stable artificial lipid bilayer membrane can be used when measuring current through a membrane, so that current measurement can be performed accurately.
  • the current measuring device is provided with a support layer for the film forming solution tank.
  • a support layer for the film forming solution tank In addition to the fact that the side surface also has a light-transmitting material, an optical observation means for observing the artificial lipid bilayer membrane on the support layer is provided outside the side surface! / ⁇ .
  • the artificial lipid bilayer membrane can be optically observed through the membrane forming solution tank and the support layer.
  • the current measuring device includes current measuring means electrically connected to the upper solution tank, and ground means electrically connected to the lower solution tank. Is preferred.
  • the current measuring device is capable of controlling the artificial lipid bilayer membrane even if the membrane protein force ion channel may be a membrane protein.
  • lipid bilayer forming apparatus of the present invention As described above, by using the lipid bilayer forming apparatus of the present invention, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be formed in a short time. Moreover, the lipid bilayer membrane of the present invention formed using the above-described artificial lipid forming apparatus is stable and has high durability.
  • the use of the current measuring device of the present invention enables the detection of various substances depending on the molecules incorporated in the stable artificial lipid bilayer membrane. For example, when an ion channel is incorporated, the state of ion transmission can be confirmed. Therefore, the above-described current measuring device can be used for functional analysis of the ion channel.
  • Ion channels are distributed in almost all types of cells and play an important role for the survival of living organisms, and thus are likely to cause diseases. For this reason, many drugs targeting the ion channel are needed. Since the present invention has a possibility that it can be used for screening pharmacology tests in drug development targeting ionic channels, it can be said that its usefulness is high.
  • lipid bilayer forming apparatus of the present invention As described above, by using the lipid bilayer forming apparatus of the present invention, a stable and highly durable artificial lipid bilayer membrane can be formed in a short time.
  • the above-described artificial lipid forming apparatus The lipid bilayer membrane of the present invention formed using a device is stable and has high durability.
  • the current measuring device of the present invention it can be used for detection of various substances depending on molecules incorporated in a stable artificial lipid bilayer membrane.
  • the present invention can be used in a wide range of fields such as bioscience, biomedical, pharmaceutical, and other life science using a biomembrane model, and the field of electronics using a biomembrane model as a device.
  • fields such as bioscience, biomedical, pharmaceutical, and other life science using a biomembrane model
  • the field of electronics using a biomembrane model as a device For example, it can be used in the development of various sensors using biological membrane models, screening and pharmacological tests in the development of drugs targeting membrane proteins.

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Abstract

    本発明の人工脂質二重膜の形成装置は、底面に小孔(11)を有する上溶液槽(1)と、支持層(3)が形成された下溶液槽(2)と脂質溶液除去手段とを備え、小孔(11)に脂質溶液を塗布し、該脂質溶液を支持層(3)に接触させた状態で、水圧を変化させることなく脂質溶液除去手段により余剰な脂質溶液を排出しすることで、小孔(11)に人工脂質二重膜を形成する。   

Description

明 細 書
人工脂質二重膜の形成装置および人工脂質二重膜の形成方法、並びに その利用
技術分野
[0001] 本発明は、人工脂質二重膜の形成装置および人工脂質二重膜の形成方法、並び にその利用に関するものであり、例えば、膜タンパク、ペプチド等を介した微小電流 の検出に利用される脂質平面膜法に好適に用いられる人工脂質二重膜の形成装置 および形成方法と、その代表的な利用の一例とに関するものである。
背景技術
[0002] 脂質二重膜 (脂質二分子膜、脂質二重層)は、生体膜の基本構造であり、全ての生 物の生体膜に見られる。大部分の生体膜は、各種の膜タンパク質が脂質二重膜に埋 め込また状態となっており、この膜タンパク質は、各種イオン、糖、アミノ酸、ヌクレオ チド等の物質の輸送やシグナル伝達、あるいは脂質の合成等に関与している。
[0003] このように、生体膜は、生理機能を発現する場であり、外部力 の情報の認識と膜 内への伝送、物質の変換、輸送など、種々の重要な役割を果たしている。また、生体 膜の機能を応用すれば、産業上の様々な用途への応用の可能性が見出される。し たがって、生体膜モデルとして、人工的な膜を作製することは極めて重要である。
[0004] 生体膜のモデルとなる人工的な膜としては、高分子キャスト膜、ラングミュア ブロジ エツ HLB)膜など種々のものが考えられているが、人工脂質二重膜が生体膜に最も 近い形態を有している。人工脂質二重膜とは、リン脂質などの両親媒性分子を疎水 部のアルキル鎖どうしを内側に向けた状態で配列させた薄膜のことであり、例えば、 イオンチャネルのイオン電流を測定する用途等に応用されて 、る。
[0005] ところで、人工脂質二重膜の形成方法としては、脂質平面膜法が知られている。単 一のイオンチャネルのイオン電流を測定する方法としてパッチクランプ法が用いられ る力 チャネルの構造機能について相関研究を深めるためには、実験を行うときに、 単純な再構成系を用いる必要が生ずる場合がある。このような場合に用いられる人 工脂質二重膜の形成方法が脂質平面膜法である。 [0006] この脂質平面膜法は、イオン、水、人工脂質二重膜、イオンチャネルと!/、う最小限 の単純系を用いて、イオンチャネルの基本的な構造や詳細な構造機能相関にっ 、 て調査すると 、うものである (非特許文献 1参照)。
[0007] 脂質平面膜法の系について具体的に説明すると、図 13に示すように、人工脂質二 重膜 111にイオンチャネル 112を組み込み、イオンチャネル 112を介して流れる電流 を計測する。上記人工脂質二重膜 111は、水溶液槽 113を仕切るプラスティック板等 の仕切り板 114に開けられた小孔 115に形成されて!ヽる。 2つに仕切られた水溶液 槽 113の一方の槽には、電極 116が投入され、この電極 116を介して電流計測器 11 7が設けられている。他方の槽には、電極 118が投入され、この電極 118を介して水 溶液槽 113に対してアース 119がなされて!/、る。
[0008] ここで、上記小孔 115に人工脂質二重膜 111を形成する方法としては、以下の (A) 垂直型ペインティング法、(B)垂直型貼り合わせ法、(C)水平型法のいずれかの方 法が挙げられる。
[0009] (A)垂直型ペインティング法では、まず、図 14の左側に示すように、水溶液槽 113
(図 14には図示せず)を仕切る仕切り板 114等の支持体に形成されて ヽる小孔 115 に、脂質溶液 110を細いガラス管等で塗りつける。この状態では脂質溶液 110は、小 孔 115をふさぐ状態で、仕切り板 114の表面側双方に突出するように盛り上がつてい る。この脂質溶液 110は、デカン等の有機溶媒に脂質を溶解してなる溶液である。塗 りつけた後、図 14の右側に示すように、脂質溶液 110が仕切り板 114の表面を移動 することにより、自然に薄化した人工脂質二重膜 111が得られる。なお、薄化とは、塗 りつけられた脂質溶液 110の中心部力 有機溶媒等が移動して、該中心部にて脂質 二重膜が形成される過程を ヽぅ。
[0010] 次に、(B)垂直型貼り合わせ法では、図 15の上段に示すように、水溶液槽 113 (図 15には図示せず)における気液界面に脂質の単分子膜 121を展開する。このとき気 液界面は、仕切り板 114に形成されている小孔 115の下方側の端部と同じ位置とし ておく。その後、図 15の中段に示すように、 2つに仕切られた水溶液槽 113の一方の 槽(図中右側)における液面 (気液界面)を上昇させることにより、単分子膜 121を仕 切り板 114の表面開させる。これにより、小孔 115の一方の開口が単分子膜 121によ り塞がれた状態になる。さらにその後、図 15の下段に示すように、 2つに仕切られた 水溶液槽 113の他方の槽(図中左側)における液面 (気液界面)を上昇させることに より、単分子膜 121を仕切り板 114の表面に展開させる。これにより、小孔 115の他 方の開口も単分子膜 121が塞がれた状態となる。その結果、小孔 115の双方の開口 において、単分子膜 121が貼り合わせられ、最終的に人工脂質二重膜 111が形成さ れる。
[0011] 次に、(C)水平型法では、図 13に示す水溶液槽 113が仕切り板 114により上下に 仕切られた状態となる。このとき、図 16 (a)に示すように、仕切り板 114に形成した小 孔 115を脂質溶液 110で塞ぎ、該脂質溶液 110が自然に薄化して人工脂質二重膜 111となるのを待つ。あるいは、図 16 (b)に示すように、小孔 115より上側の槽の水圧 を上げることにより脂質溶液 110を下方に膨らませて薄化させることにより人工脂質 二重膜 111を形成する。
[0012] し力しながら、上記の何れの人工脂質二重膜の形成方法であっても、安定した人工 脂質二重膜 111を迅速に形成することが困難となっている。すなわち、上記 (A)垂直 型ペインティング法では、脂質溶液 110が仕切り板 114の表面を移動し、十分に薄 化して人工脂質二重膜 111となるまでに数分力も数十分を要する。また、(B)垂直型 貼り合わせ法では、人工脂質二重膜 111を形成する前に小孔 115をスクアレン等の 有機溶媒で前処理することが必須であり、工程の増加により形成方法が煩雑化する 。さらに、複数回、液面を上下しないと人工脂質二重膜 111が形成されていないこと がほとんどである。
[0013] さらに、(C)水平型法のうち、小孔 115を塞いだ脂質溶液 110が自然に薄化するの を待つ場合 (図 16 (a)の場合)には、人工脂質二重膜の形成が人為的には全く制御 できない。それゆえ、薄化に数時間以上を要する場合がある。また、小孔 115より上 側の槽の水圧を上げることにより薄化する場合(図 16 (b)の場合)には、得られる人 ェ脂質二重膜 111において、「脂質二重膜」となる薄い部分と、その周囲を取り囲む 環状バルタ層という厚い部分とが生じる。したがって、この方法で得られる人工脂質 二重膜 111は、上記各部分の物理ィ匕学的な平衡の上に成り立っているため、水溶液 の流動などによる振動でこの平衡が崩れると、人工脂質二重膜 111はすぐに破れる 。し力も、水溶液槽 113における上下各槽の圧力差を正確にコントロールするのは難 LV、ため、得られる人工脂質二重膜 111はより不安定になりやす 、。
[0014] このように、脂質平面膜法を用いた場合、安定で耐久性のある人工脂質二重膜を 形成することが克服すべき大きな課題となって 、る。
[0015] そこで、本発明者等は、電流測定装置に用いる人工脂質二重膜において、上記従 来の問題点を改善する技術を提案している (例えば、非特許文献 2参照)。この技術 により得られる電流測定装置では、人工脂質二重膜を用いてイオンチャネル分子の 構造と機能を同時に測定することが可能となっている。
[0016] 具体的には、この電流測定装置は、図 17に示すように、上溶液槽 101および下溶 液槽 102の 2つの溶液槽を備えている。上溶液槽 101の底面には中心部に小孔 10 5が開けられたフィルム 103が貼り付けられている。また、下溶液槽 102は底面に開 口部 104があり、カバーガラス 106が接着剤で固定されている。そしてこのカバーガ ラス 106にはァガロースゲル層(図示せず)が形成されている。
[0017] この電流測定装置では、まず、脂質溶液中で上溶液槽 101の下方部を移動させる ことにより、小孔 105に脂質溶液の厚い膜を形成する。その後、上溶液槽 101を下溶 液槽 102に投入し、小孔 105に形成された厚い膜がカバーガラス 106に形成された ァガロースゲル層に接するまで上溶液槽 101を下降させる。ここで上溶液槽 101の 圧力(水圧)を高くすることによって、余剰の脂質溶液をァガロースゲル層の間から押 し出し、厚い膜を薄化させ人工脂質二重膜を形成する。
[0018] この電流測定装置では、上溶液槽 101の圧力を高くすることにより、人工脂質二重 膜の形成 (厚い膜の薄化)に時間を要することがない。また、形成された人工脂質二 重膜は、ァガロースゲル層に支持されるので、上溶液槽 101から圧力がかけられて Vヽても人工脂質二重膜は上下方向に安定化する。
〔非特許文献 1〕
「新パッチクランプ実験技術法」、老木成稔著、吉岡書店、 2001年、 208-215頁、『1 9.チャネル研究のための脂質平面膜法』
〔非特許文献 2〕
Ide, Γ·, Takeuchi,U., Yanagida,T. Development of an Experimental Apparatus for Simultaneous Observation of Optical and Electrical Signals from Single Ion Cannels, Single Mol.3(2002)l, 33-42
しかしながら、上記従来の人工脂質二重膜の形成技術では、人工脂質二重膜を安 定して形成することが困難な場合があり、より安定した形成技術が求められていると いう課題を有している。
[0019] 具体的には、上記従来の技術では、上溶液槽 101の圧力(水圧)を高くすることに よって、余剰の脂質溶液をァガロースゲル層の間から押し出し、厚い膜を薄化させて いる。このとき、上溶液槽 101の圧力を高めると、図 18 (a)に示すように、上溶液槽 1 01の底面とァガロースゲル層 108との間にお 、て、図中矢印 R方向に余剰な脂質の 逃げていくため、膜の薄化が可能となる。ところが、図 18 (b)に示すように、上溶液槽 101の圧力が高くなることで、該上溶液槽 101から下溶液槽 102へ水溶液が移動す ることができる(図中矢印 M方向)。そのため、図 18 (c)に示すように、薄化した人工 脂質二重膜 111が過剰に膨らみ、破れやすくなる。
[0020] このように、小孔に形成された脂質溶液の厚い膜を薄化する場合、上方の圧力を 高める手法を採用すると、安定して薄化ができずに人工脂質二重膜が破れやすくな るという問題が生じていた。
発明の開示
[0021] 本発明は、上記従来の問題点に鑑みなされたものであって、その目的は、安定した 人工脂質二重膜を迅速に形成でき、例えば、単一チャネルの構造と機能を同時に測 定する電流測定装置に用いることが可能な、人工脂質二重膜の形成装置および形 成方法と、その代表的な利用の一例とを提供することにある。
[0022] 本発明にカゝかる人工脂質膜の形成装置は、平板状の部位に膜形成用開口部が形 成されて!/ヽる膜支持体と、水溶液を蓄積可能となって ヽる膜形成溶液槽とを備えて いるとともに、該膜形成溶液槽には、人工脂質二重膜を支持する支持層が設けられ ており、上記膜支持体の膜形成用開口部で形成した人工脂質二重膜を支持層上に 接触させて支持する人工脂質二重膜の形成装置において、さらに、水圧を変化させ ることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液カゝら余剰な脂質溶液を排出する 脂質溶液排出手段を備えており、上記膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶 液に接する状態となるように、膜支持体を膜形成溶液槽に投入した上で、該膜形成 用開口部に脂質溶液を塗布し、該脂質溶液を上記水溶液と支持層とで挟んで該支 持層に接触させるとともに、この状態で上記脂質溶液除去手段により余剰な脂質溶 液を排出することにより、上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重膜を形成す ることを特徴としている。
[0023] 上記構成によれば、脂質溶液排出手段を備えているため、水圧を変化させることな く膜形成用開口部に塗布した脂質溶液カゝら余剰な脂質溶液を排出することができる 。そのため、膜の上から圧力がかからないため、薄膜化させる際に、膜を破いたり、膜 を不安定な状態にするようなことはない。ゆえに、安定で耐久性が高い人工脂質二 重膜を迅速に形成することができる。
[0024] 本発明にカゝかる人工脂質膜の形成方法は、平板状の部位に膜形成用開口部が形 成されている膜支持体を用い、この膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶液 に接した状態とした上で、該膜形成用開口部に、脂質溶液を塗布する脂質溶液塗布 工程と、上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を上記水溶液と表面が親水性で ある支持層とで挟んで、上記塗布した脂質溶液を該支持層に接触させる支持層接触 工程と、水圧を変化させることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液力ゝら余 剰な脂質溶液を排出することにより、上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重 膜を形成する脂質膜薄化工程とを含むことを特徴としている。
[0025] 上記方法によれば、水圧を変化させることなく膜形成用開口部に塗布した脂質溶 液力も余剰な脂質溶液を排出することができる。そのため、膜の上から圧力がかから ないため、脂質膜薄化工程で、膜を破いたり、膜を不安定な状態にするようなことは ない。ゆえに、安定で耐久性が高い人工脂質二重膜を迅速に形成することができる
[0026] 本発明に力かる電流測定装置は、上記本発明に力かる人工脂質二重膜の形成装 置を用いて形成されて!、ることを特徴とする。
[0027] 上記構成によれば、膜を介した電流測定に際し、安定した人工脂質二重膜を用い ることができるため、精度よく電流測定を行うことができる。
[0028] 本発明のさらに他の目的、特徴、および優れた点は、以下に示す記載によって十 分わ力るであろう。また、本発明の利益は、添付図面を参照した次の説明で明白にな るであろう。
図面の簡単な説明
[図 1]本発明にかかる一実施形態の人工脂質二重膜の形成装置の構成を表す断面 図である。
[図 2] (a)は、図 1に示す人工脂質二重膜の形成装置において、脂質溶液を上溶液 槽の小孔に塗布し、余剰な脂質溶液を吸引部で吸引する様子を表す部分断面図で あり、(b)は、余剰な脂質溶液を吸引して人工脂質二重膜が形成された様子を表す 部分断面図である。
[図 3]図 1に示す人工脂質二重膜の形成装置における、吸引部の構成の一例を表す 断面図である。
[図 4] (a)一 (c)は、本発明に力かる一実施形態の人工脂質二重膜の形成方法のェ 程を表す断面図である。
[図 5]本発明にかかる一実施形態の電流測定装置を表す断面図である。
[図 6]本発明にかかる他の実施形態の人工脂質二重膜の形成装置における小孔と 支持層の部分断面図であり、(a)は、脂質溶液を上溶液槽の小孔に塗布した様子を 表し、(b)は、脂質溶液と支持層とを接触させた状態を表し、(c)は、人工脂質二重 膜が形成された様子を表して ヽる。
[図 7] (a)は、脂質溶液を塗布した膜支持体を高分子ゲルに押しつけて、高分子ゲル が小孔に入り込で、人工脂質二重膜が形成された様子を表す部分断面図であり、 (b )は、小孔に接するの部分を予め他の部分より高く形成した高分子ゲルに人工脂質 二重膜が形成された様子を表す部分断面図である。
[図 8] (a)一 (c)は、本発明に力かる他の実施形態の人工脂質二重膜の形成方法の 工程を表す断面図である。
[図 9]〔実施例 1〕において、人工脂質二重膜の薄化が完了した状態を撮影した図面 である。
[図 10] (a)、 (b)は、〔実施例 1〕において得られた電流のトレースを示す図面である。
[図 11]〔実施例 1〕において得られた電位-電流特性を示す図面である。 [図 12] (a)は、〔実施例 2〕において観察された蛍光標識したァラメチシンの蛍光像を 示す図面であり、(b)は、〔実施例 2〕において測定された電流トレースを示す図面で ある。
[図 13]従来の脂質平面膜法を示す模式図である。
[図 14]従来の垂直型ペインティング法を示す図面である。
[図 15]従来の垂直型貼り合わせ法を示す図面である。
[図 16] (a)、(b)は、従来の水平型の人工脂質二重膜形成方法を示す図面である。
[図 17]従来の電流測定装置を示す図面である。
[図 18]従来の高分子ゲル層上に形成された人工脂質二重膜を示す図面である。 発明を実施するための最良の形態
[0030] 〔実施の形態 1〕
本発明の実施の一形態について、図 1ないし 4を用いて説明すれば、以下の通りで ある。なお、本発明は、以下の本実施の形態の記載に限定されるものではない。
[0031] (1)人工脂質二重膜の形成装置の一例
本発明にかかる人工脂質二重膜の形成装置 (以下の説明では、適宜、形成装置と 略す)は、図 1に示すように、少なくとも上溶液槽 1と、下溶液槽 (膜形成溶液槽) 2と、 支持層 3と、図示しない吸引部(吸引手段)とを備えている。この吸引部は、水圧を変 ィ匕させることなく膜形成用開口部に塗布した脂質溶液カゝら余剰な脂質溶液を排出す る脂質溶液排出手段として機能する。また、上溶液槽 1の底面は膜支持体 5となって おり、この膜支持体 5に形成されている小孔 (膜形成用開口部) 11で人工脂質二重 膜が形成される。
[0032] <膜支持体 >
上記膜支持体 5の具体的な構成は、平板状の部位に膜形成用開口部である小孔 1 1が形成されて 、る構成となって 、れば特に限定されるものではな 、。本実施の形態 では、図 1に示すように、膜支持体 5は、溶液を蓄積可能な上溶液槽 1の底部分とな つている。
[0033] 上記膜支持体 5は、板状またはフィルム状であれば特に限定されるものではない。
したがって、図 1に示すような上溶液槽 1の底面となっている構成では、当該上溶液 槽 1の底面そのものに小孔 11が形成されて 、る構成となって 、てもよ 、し、上溶液槽 1の底面に開口部を設け該開口部に、小孔 11を形成したフィルムを接着した構成と なっていてもよい。
[0034] 上記膜支持体 5の材質は特に限定されるものではな 、が、具体的には、例えば、ポ リプロピレン、ポリ塩化ビュル、ポリスチレン等のプラスティック、フッ素榭脂等が好適 に用いられる。また、上記膜支持体 5の厚さは 0. 1mm以上、 0. 3mm以下であること が好ましい。なお、小孔 11周辺のみを他の領域より薄くすることにより、安定な人工 脂質二重膜を迅速に形成することができる。上記小孔 11は、直径が lO /z m以上、 5 00 μ m以下であることが好ましぐ 50 μ m以上、 200 μ m以下であることがさらに好ま しい。これにより、人工脂質二重膜を良好に形成することができる。
[0035] 上記小孔 11は、例えば、以下に示すような従来公知の方法によって形成すること ができる。まず、ごく先端まで円錐形に鋭利に削ったステンレス棒をガスバーナー等 で熱する。次にこれを、上記小孔 11を形成する面に強く押し付け、押し付けた面と反 対側にわずかに膨らみができるところまで押し付けを続ける。この膨らみを剃刀で切り 取ることで小孔 11が形成される。なお、小孔 11はクロ口ホルム Zメタノールで洗浄す ることにより不純物等を取り除く。もちろん、小孔 11を形成する方法は、これに限定さ れるものではなぐ公知のあらゆる方法を用いることができる。
[0036] <上溶液槽>
上記上溶液槽 1は、下溶液槽 2の上方に設けられ、水溶液を蓄積可能となっており 、上記膜支持体 5を上溶液槽 1の底面とする構成となっていれば特に限定されるもの ではない。
[0037] 上記上溶液槽 1の形状は特に限定されるものではないが、例えば、円筒形のものが 挙げられる。また、上記上溶液槽 1の大きさは、小孔 11より大きければ特に限定され るものではないが、例えば円筒形である場合、その内径は 0. 5mm以上、 20mm以 下であることが好ましぐ 1. Omm以上、 10mm以下であることがより好ましい。さらに 、上記上溶液槽 1の大きさとしては、好ましくは上記内径が数十/ z mまで小型化する ことができる。また、上溶液槽 1の容積は特に限定されるものではないが、 0. Olcm3 以上、 1. Ocm3以下であることが好ましい。これにより、本発明にかかる人工脂質二重 膜の形成装置を、小型のチップ上に作成することが可能となり、より小型のセンサー を製造することが可能となる。
[0038] さらに、上記上溶液槽 1の上記小孔 11を形成する部分以外 (膜支持体 5以外の部 分)の材質も、特に限定されるものではないが、例えば、ガラス、ブラスティック等が挙 げられる。
[0039] 上記上溶液槽 1は、水溶液を蓄積可能となっている。そして小孔 11に形成される人 工脂質二重膜は、上溶液槽 1および下溶液槽 2に満たされた水溶液に各側面が接し ている。これは、人工脂質二重膜の下溶液槽 2側が支持層 3に接触している場合も同 様であり、人工脂質二重膜は支持層 3を浸透した水溶液に接している。これにより人 工脂質二重膜の下方からも小分子のアクセスが可能となる。上記水溶液は、界面活 性剤、有機溶媒等を含むものでなければ特に限定されるものではない。上記水溶液 の好ましい一例としては、塩ィ匕カリウム、塩ィ匕ナトリウム、塩化カルシウム等の水溶液 が挙げられる。
[0040] また、上記上溶液槽 1は、上下方向に移動することができるものであることが好まし い。上記上溶液槽 1の上下移動は、手動で行ってもよいし、移動のための装置を用 いてもよい。移動のための装置としては、具体的には、一例として、マイクロマ-ュピレ 一ター等が挙げられる。
[0041] <下溶液槽>
上記下溶液槽 2は、上溶液槽 1の下方に配置され、上記水溶液を蓄積可能となつ ており、膜支持体 5を形成するための膜形成溶液槽となっていればよい。下溶液槽 2 の底面には、人工脂質二重膜を支持する支持層 3が設けられている。そして、上溶 液槽 1の小孔 11で形成された人工脂質二重膜は、支持層 3上に接触させて支持さ れる。
[0042] 下溶液槽 2の容積は、支持層 3を形成した上に上溶液槽 1の底を入れることができ れば、特に限定されるものではない。
[0043] 上記下溶液槽 2の材質は特に限定されるものではな 、が、例えば、ガラス、ポリスチ レン等のプラスティック等が挙げられる。
[0044] また、上記水溶液は、上溶液槽 1の水溶液と同様、界面活性剤、有機溶媒等を含 むものでなければ特に限定されるものではな 、。上記水溶液の好まし 、一例としては 、塩ィ匕カリウム、塩ィ匕ナトリウム、塩ィ匕カルシウム等の水溶液が挙げられる。
[0045] <支持層 >
上記下溶液槽 2の底面に設けられる、支持層 3は、上記膜支持体 5の小孔 11で形 成した人工脂質二重膜を接触させ支持する構成であればよい。
[0046] 上記支持層 3は、水溶液が浸透することができ、且つ、人工脂質二重膜 2を支持す ることができるものであれば特に限定されるものではない。上記支持層 3としては、具 体的には、例えば、高分子ゲル、セルロース膜等の多孔質膜を挙げることができる。 中でも、上記支持層 3は高分子ゲル力もなるものであることがより好ましい。上記高分 子ゲルとしては具体的には特に限定されるものではないが、ァガロース等の多糖類 や、ポリアクリルアミド等の親水性榭脂を好ましく用いることができる。これらを用いるこ とにより、安価かつ信頼性の高い材料を用いて簡単に支持層 3を形成することができ る。
[0047] 上記支持層 3の厚さとしては、任意でかまわないが、 lOOnm以上、 2mm以下であ ることが好ましい。支持層 3の厚みがこの範囲内であることにより、形成された人工脂 質二重膜が上下方向に安定する。
[0048] また、支持層 3の形成方法は特に限定されるものではなぐ従来公知の方法を用い ればよい。例えば、具体的な一例としては、支持層 3として、高分子ゲルであるァガロ ースを用いる場合には、ァガロースの分散液を調製し、これを加熱してァガロースを 溶解させた後、これを下溶液槽 2の底面に塗布して、室温で乾燥する方法が挙げら れる。
[0049] <人工脂質二重膜 >
上記人工脂質二重膜は、上記のように、上溶液槽 1の底面 5に開けられた小孔 11 に形成される。人工脂質二重膜は、後述するように、小孔 11に脂質溶液を添塗した 後、下溶液槽 2の支持層 3と接触させ、吸引部により余分な脂質溶液を吸引すること により形成される。
[0050] 上記脂質としては、人工脂質二重膜を形成するものであれば特に限定されな!、が 、リン脂質が好適に用いられる。具体的には、例えば、ホスファチジルコリン、ジフイタ ノィルホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールァミン、ホスファチジルセリン等 が挙げられる。
[0051] これらのリン脂質における 2本の炭化水素鎖は、飽和炭化水素であってもよ!/ヽし、不 飽和炭化水素であってもよい。これらの脂質は純粋なものを用いてもよいし、少なくと も 2種類の脂質を混合したものであってもよい。
[0052] 上記脂質溶液とは、上記脂質を有機溶媒に分散させたものをいう。用いられる有機 溶媒としては、非極性有機溶媒であれば特に限定されるものではない。具体的な一 例としては、例えば、デカン、へキサデカン、へキサン等の飽和炭化水素が好適に用 いられる。また、脂質濃度は 5— 40mgZmLであることが好ましぐ 15-20mg/mL であることがより好ましい。
[0053] <吸引部 >
上記吸引部は、上記小孔 11に塗布した脂質溶液力 余剰な脂質溶液を吸弓 Iする ことで排出できるような構成であればよ!、。
[0054] 上記吸引部による薄膜ィ匕について、図 2を用いて説明する。
[0055] 膜支持体 5の小孔 11に脂質溶液 13を塗布する。この脂質溶液 13を後述するように 水溶液と支持層とで挟んで支持層に接触させる。この状態で吸引部 12を用いて余 剰な脂質溶液 13を排出し、小孔 11に薄化した人工脂質二重膜 14を形成する。
[0056] この吸引部 12は、小孔 11周辺力も塗布された脂質溶液 13から、脂質二重膜を形 成させるために必要な量以外の余剰の脂質溶液 13を吸引できる管状部材であれば どのようなものでもかまわない。例えば、注射器に繋いだガラス管、シリコンのスポイト 等が挙げられる。
[0057] 吸引は、例えば、図 3に示すように、ガラス管 15を熱伸展して細く引いたものを脂質 溶液 13につけシリコンチューブ 16を繋いだ注射器 17を用いて行えばよい。脂質溶 液 13を吸引するとき、膜を破かずに形成させるために、開口部周辺から吸引するの が好ましぐ特にバルタ部分から吸引するのが好ましい。なお、吸引の方法は上記に 限らない。
[0058] (2)人工脂質二重膜の形成方法の一例
本発明に力かる人工脂質二重膜の形成方法として、上記(1)で説明した人工脂質 二重膜の形成装置を用いた場合にっ 、て、図 4 (a)一 (c)に基づ 、て説明する。
[0059] 初めに、脂質溶液塗布工程について説明する。図 4 (a)に示すように、予め下溶液 槽 2の底部に支持層 3を形成しておき、上溶液槽 1および下溶液槽 2を上記水溶液で 満たす。そして、上溶液槽 1の底面となっている膜支持体 5に形成された小孔 11に上 記脂質溶液 13を添塗する。
[0060] 次に、支持層接触工程について説明する。図 4 (b)に示すように、上溶液槽 1の底 面を下溶液槽 2に入れて支持層 3に接触させ、上記脂質溶液塗布工程で小孔 11〖こ 塗布した脂質溶液 13を上溶液槽 1中の水溶液と支持層 3とで挟む。これにより、塗布 した脂質溶液 13を支持層 3に接触させることができる。
[0061] 次に、脂質膜薄化工程について説明する。図 4 (c)に示すように、支持層 3に接触 させた脂質溶液 13に管状部材を有する吸引部 12をつけ、上述したように余剰な脂 質溶液 13を吸引して排出し、小孔 11に薄化した人工脂質二重膜 14を形成する。
[0062] 以上により、水圧を変化させることなぐすなわち、従来のように脂質溶液 13にかか る水圧を大きくすることなぐ小孔 11に塗布した脂質溶液 13から余剰な脂質溶液 13 を排出することにより、小孔 11に人工脂質二重膜を支持層 3と接触した状態で形成 することができる。また、上溶液槽 1が解放系であるのに対し、下溶液槽 2の底面は閉 じており、解放系ではない。そのため、従来では不安定であった底面に平行な方向 で、人工脂質二重膜が安定するので、人工脂質二重膜の耐久性をより一層向上する ことができる。
[0063] (3)本発明の用途
以上のように本発明に力かる人工脂質二重膜の形成装置は、安定で耐久性が高 い人工脂質二重膜を短時間で形成することができる。また、本発明にかかる人工脂 質二重膜の形成装置を用いて形成された人工脂質二重膜も、本発明に含まれる。
[0064] この人工脂質二分子膜の何らかの変化 (例えば、膜電位、電気容量、イオン透過性 、発光、発熱、吸熱,吸熱などの変化)を利用して、例えば、サンプル液中の溶解物 質の有無およびその濃度を検出することができる。このような脂質二分子膜としては、 実質的に脂質のみ力も構成される人工脂質二重膜、および各種のタンパク質や糖な どの分子を付着な ヽし配合した人工脂質二重膜等を例示することができる。脂質や 蛋白質、糖の種類や量並びに脂質二分子膜の作製方法などを適宜選択することに より、測定目的ないしサンプル液等の具体的内容に応じた各種のセンサを製造する ことができる。
[0065] 上述のように、各種の蛋白質や糖などの分子を付着ないし配合した人工脂質二重 膜として、膜タンパク質が組み込まれた人工脂質二重膜でもカゝまわな!/ヽ。
[0066] 膜タンパク質として、例えば、イオンチャネルが挙げられる。イオンチャネルを上記 人工脂質二重膜に埋め込む方法は、従来公知の方法を用いることができ、特に限定 されるものではない。具体的には、例えばイオンチャネルを含む膜分画を界面活性 剤で可溶化し、膜べシクルへ再構成し、人工脂質二重膜に融合させる方法が挙げら れる。
[0067] 上記人工脂質二重膜の形成装置を用いて電流測定装置を形成することができ、こ の電流測定装置も本発明に含まれる。この電流測定装置は、人工脂質二重を介して 流れる電流を計測可能となって 、る構成であれば特に限定されるものではな 、。例 えば、図 5に示すように、本実施形態の電流測定装置は、上述した図 1に示す人工 脂質二重膜の形成装置の構成に加え、上溶液槽 1に電気的に接続される電流測定 器 (電流計測手段) 18と、下溶液槽 2に電気的に接続されるアース (アース手段) 19 とを備えている。なお電流測定装置の構成は上記に限らない。上水溶液槽 1には、 電極 20が投入され、この電極 20を介して電流計測器 18が設けられている。下水溶 液槽には、電極 21が投入され、この電極 21を介して下水溶液槽 2に対してアース 19 がなされている。
[0068] さらに、上記下溶液槽 2の底面が透光性を有する材料力 なっているとともに、該底 面の下方には、支持層 3上の人工脂質二重膜を観察可能とする光学観察手段 18が 設けられていてもよい。光学観察手段 20が設けられていることにより、人工脂質二重 膜に、例えば、膜タンパク質が組み込まれていれば、該膜タンパク質の構造等を観 柳』することができる。
[0069] 光学観察手段としては、例えば、光学顕微鏡が挙げられる。光学顕微鏡による観察 としては、例えば、ゲートの開閉に伴う蛍光標識したイオンチャネルの蛍光強度の変 ィ匕、イオンチャネルの動き、 2つの蛍光染料間のエネルギー転移によるスペクトルの 変化等の観察が挙げられる。また、人工脂質二重膜が形成されていることを光学顕 微鏡により確認することも可能である。さらに、蛍光標識した脂質を用いた人工脂質 二重膜を用いて脂質分子の動きを観察することもできる。もちろん光学測定はこれら に限定されるものではなぐ従来公知のあらゆる方法が適用されうる。
[0070] 本発明の人工脂質二重膜の形成装置は、形成した人工脂質二重膜をより安定化さ せることができるので、膜タンパク質を人工脂質二重膜に組み込んだ状態でも、十分 に安定した状態で膜タンパク質の構造と機能を同時に測定することができる。
[0071] 本発明にかかる電流測定装置の具体的な用途の一例について説明すると、例えば 、疾患に関与するイオンチャネルタンパク質を用いた創薬におけるスクリーニングに 用!/、ることができる。
[0072] イオンチャネルタンパク質は、種類も多ぐ殆どすベての細胞に分布している。従つ て、これらは、疾患の原因にもなりやすいタンパク質であり、創薬のターゲットの 30— 40%がイオンチャネルタンパク質であると言われている。一般に薬理実験は、試薬を 実験動物に投与して効果をみるものであるが、安定な人工脂質二重膜 2ができれば 、標的となるイオンチャネルタンパク質に対する効果を直接調べながら、創薬におけ るスクリーニングを行うことが可能となる。特に、向精神薬など神経系に作用する薬は
、イオンチャネルタンパク質に直接働くものが多ぐこの分野の創薬に好適に用いるこ とができる。また、農薬の創薬に際しては、逆に、人間のイオンチャネルに作用しない ものを選択するために用いることができる。
[0073] また、本発明に力かる電流測定装置は、人工脂質二重膜の膜上のタンパク質-タン ノ^質 (薬物)相互作用の可視化解析に用いることができる。さらには、人工脂質二 重膜に組み込む分子の種類を変えることにより、様々な物質の検出に応用することが できる。
[0074] 〔実施の形態 2〕
本発明における実施の他の形態について説明すれば、以下の通りである。なお、 本発明は、本実施の形態の記載内容にのみ限定されるものではない。また、上記実 施の形態 1において説明した部材等と同じ機能や作用を有する部材等については、 その説明を省略する。 [0075] (1)人工脂質二重膜の形成装置の他の例
本実施の形態にカゝかる人工脂質二重膜の形成装置は、上記実施の形態 1で説明 した図 1に示す人工脂質二重膜の形成装置と同様の構成を有しているが、吸引部が 無ぐ移動可能な膜支持体によって、水圧を変化させることなく上記開口部に塗布し た脂質溶液から余剰な脂質溶液を排出する。本実施形態ではこの移動可能な膜支 持体が、脂質溶液排出手段として機能する。また、支持層が以下で説明するように異 なっている。
[0076] <移動可能な膜支持体 >
上記移動可能な膜支持体は、下溶液槽 2に設けられた支持層を押しつける方向に 移動可能となって 、る構成であれば特に限定されるものではな 、。本実施の形態で は、実施の形態 1と同様、移動可能な膜支持体は、溶液を蓄積可能な上溶液槽 1の 底部分となっている。
[0077] 図 6に示すように、移動可能な膜支持体 50を脂質溶液排出手段として用い、膜支 持体 50の小孔 11に塗布した脂質溶液 13を支持層 30に圧着させ脂質溶液 13を押 し出すことで、水圧を変化させることなく小孔 11に塗布した脂質溶液 13から余剰な 脂質溶液を排出する。脂質溶液 13を支持層 30に圧着させることで、移動可能な膜 支持体 50と支持層 30との隙間を通って、脂質溶液 13が押し出され人工脂質二重膜 が薄膜化される。
[0078] 移動可能な膜支持体 50は、上下方向に移動することができるものであることが好ま しい。本実施形態では、膜支持体 50が上溶液槽 1の底面となっているため、上溶液 槽 1と共に移動することこなる。この上記上溶液槽 1の移動は、手動で行ってもよいし 、移動のための装置を用いてもよい。移動のための装置としては、具体的には、一例 として、マイクロマ-ュピレーター等が挙げられる。
[0079] <支持層 >
支持層 30は、実施の形態 1と同様、上記下溶液槽 2の底面に設けられ、上記膜支 持体 50の小孔 11で形成した人工脂質二重膜を接触させ支持する構成であればよ い。支持層 30は、移動可能な膜支持体 50を通して加圧されるため、弾力性があるも のが好ましい。 [0080] 支持層 30として、例えば、実施の形態 1と同様に高分子ゲル層が挙げられる力 当 該高分子ゲル層の厚さは、 0. 5mm以上 2. Omm以下であれば好ましい。この厚さ であると、支持層 30と、膜支持体 50の小孔 11に塗布した脂質溶液 13とを圧着させ たとき、好適に余剰な脂質溶液 13を押し出すことができる。
[0081] なお、脂質溶液を塗布した移動可能な膜支持体 50を支持層 30に圧着させたとき、 支持層 30が例えば高分子ゲル層であった場合、支持層 30の形状が変形し、図 7 (a )のように小孔 11に入り込んでいることもある。よって、予め、上記支持層 30を、図 7 ( b)に示すように、小孔 11に接する領域で、他の領域よりも、 50 m以上 200 m以 下高くしておいてもよい。このように、高くなつていることで、支持層 30を小孔 11に押 し込むことができる。そのため、支持層 30が良好に脂質二重膜と接することができ、 安定した人工脂質二重膜を形成することができる。
[0082] (2)人工脂質二重膜の形成方法の他の例
本発明に力かる人工脂質二重膜の他の形成方法として、上記(1)で説明した人工 脂質二重膜の形成装置を用いた場合にっ 、て、図 8 (a)— (c)に基づ 、て説明する
[0083] 初めに、脂質溶液塗布工程について説明する。図 8 (a)に示すように、予め下溶液 槽 2の底部に支持層 30を形成しておき、上溶液槽 1および下溶液槽 2を上記水溶液 で満たす。そして、上溶液槽 1の底面となっている膜支持体 50に形成された小孔 11 に上記脂質溶液 13を添塗する。
[0084] 次に、支持層接触工程について説明する。図 8 (b)に示すように、上溶液槽 1の底 面を下溶液槽 2に入れて支持層 30に接触させ、上記脂質溶液塗布工程で小孔 11 に塗布した脂質溶液 13を上溶液槽 1中の水溶液と支持層 30とで挟む。これにより、 塗布した脂質溶液 13を支持層 30に接触させることができる。
[0085] 次に、脂質膜薄化工程について説明する。図 8 (c)に示すように、移動可能な膜支 持体 50を支持層 30に押しつけることで、脂質溶液 13を支持層 30に圧着させて脂質 溶液 13を排出する。脂質溶液 13を支持層 30に圧着させることで、膜支持体 50と支 持層 30との隙間を通って、脂質溶液 13が押し出され人工脂質二重膜が薄膜化され る。 [0086] 以上により、水圧を変化させることなく小孔 11に塗布した脂質溶液 13から余剰な脂 質溶液 13を排出し、小孔 11に人工脂質二重膜を支持層 30と接触した状態で形成 することができる。また、本実施の形態でも上溶液槽 1が解放系であるのに対し、下溶 液槽 2の底面は閉じており、解放系ではない。そのため、従来では不安定であった底 面に平行な方向で、人工脂質二重膜が安定するので、人工脂質二重膜の耐久性を より一層向上することができる。
〔実施例〕
以下、実施例及び 9図ないし 13図により、本発明をさらに詳細に説明するが、本発 明はこれに限定されるものではない。以下の実施例においては、上記実施の形態 1 で説明した図 5に示す人工脂質二重膜の形成装置を用いてなる電流測定装置を用 いた。図 5に基づいて説明すると、上溶液槽 1として、容積が 0. 1cm3で、底面が厚さ 0. 2mm— 0. 3mmのポリプロピレンで、直径 0. 15mmの小孔 11の開いているものを 用いた。下浴槽 2の底には、 150nmの厚さのァガロースゲル層を形成し、支持層 3と した。電極としては、 Agホイルを Agメツキした Ag— AgCl電極を用いた。また、脂質を 薄化させるための吸引部としてシリコンチューブに繋いだガラス管を用いた。電流の 測定には、ノツチクランプアンプリファイア(CEZ— 2400、 日本光電製)を用い、 DAT レコーダーを用いて DATテープに記録した。
[0087] 〔実施例 1:平滑筋 Ca2+依存性 K -チャネルの単一チャネル電流記録〕
まず、上溶液槽 1及び下溶液槽 2に、 lOOmM KC1、 ImM CaCl (又は 10— 9M C
2
aC12)、 lOmM Hepes (pH7. 4)水溶液を満たした。
[0088] その後、上溶液槽 1の膜支持体 5に形成された小孔 11に、ホスファチジルコリン (Si gma製)を 20mgZmLとなるようにデカンに溶解した脂質溶液を添塗した。添塗後、 上溶液槽 1の底面と下溶液槽 2のァガロースゲル (支持層 3)とを接触させた。そして、 ガラス管を小孔 11に塗布した脂質溶液につけ、余剰なホスファチジルコリンデカン溶 液を吸引し、人工脂質二重膜を形成した。人工脂質二重膜 2が形成されていることを 顕微鏡観察により確認した。その結果が図 9である。図 9に示すように、人工脂質二 重膜 (図中「二重膜」と表記)とその周囲を囲む環状バルタ相(図中「バルタ相」と表記 )との境界が視認できることにより、薄化が完了したことがわ力つた。 [0089] 次に、ゥシ気管平滑筋より調整した細胞膜べシクルを上記人工脂質二重膜と融合 させ、べシクル膜上の K+チャネルを人工脂質二重膜に組み込んだ。この電流測定 装置を用いて経時的に電流を測定した。
[0090] 次に、上溶液槽 1および下溶液槽 2に満たす水溶液の CaCl濃度のみを ImMに
2
変えて、上記と同様に電流の測定を行った。
[0091] 図 10に、得られた電流のトレースを、図 11に膜電位 電流特性を示す。図 10 (a) は、水溶液が lOOmM KC1、 10— 9M CaClを含む場合、図 10 (b)は、水溶液が 100
2
mM KC1、 ImM CaClを含む場合の電流のトレースを示す。 CaCl力 10— 9Mであ
2 2
るときはイオンチャネルが閉じられた状態であるのに対し、 CaCl力 ImMであるとき
2
はイオンチャネルが開く割合が増大することが確認された。得られた電流のトレース のパターンは、従来の実験結果より明ら力となっているパターンと同一であった。この ことより、本発明の人工脂質二重膜の形成装置を用いてなる電流測定装置を用いる ことにより、安定した人工脂質二重膜を迅速且つ簡単に形成でき、信頼性のある電 流の測定結果が得られることが判る。また、図 11より、単一チャンネル電流の大きさ( 単一チャンネルのインダクタンス)は、従来の方法により明らかになつている値と一致 した。このことより、本発明の電流測定装置は、人工脂質二重膜の真下のァガロース ゲル層がチャネルの性質に影響を与えることなぐ電流を測定することが可能である ことが半 Uる。
[0092] 〔実施例 2:抗生物質ァラメチシン (alamethidn)による、チャネルポアの形成(光学 計測)と単一チャネル電流の同時計測〕
上記実施例 1のべシクルの代わりに、 Cy3 (アマンシャム'フアルマシア製)で蛍光標 識したァラメチシン (Sigma製)のメタノール溶液を、最終濃度が 10— 8M程度になるよ うに上溶液槽 1の水溶液に添加した。ァラメチシンの蛍光標識は、ァラメチシンの C末 端にグリシンを付カ卩し、このグリシンのァミノ基に Cy3を Cy3 mono fonctional dye kit ( アマンシャム'フアルマシア製)を用いて固定し、結合させることで行った。ァラメチシ ンは両親媒性ペプチドであり、液相から人工脂質二重膜に自然に移行しイオンチヤ ネルを形成する。なお、上下溶液槽に満たす水溶液としては、 lOOmM KC1、 10m M Hepes (pH7. 4)水溶液を用いた。 [0093] 本発明の電流測定装置を用いてその蛍光像とァラメチシンによるイオン電流を同時 に観察、測定した。なお、蛍光像は、対物レンズ型全反射蛍光顕微鏡 (TIRFM)を 用いて測定した。
[0094] 図 12 (a)に得られた蛍光性ァラメチシンの蛍光像と膜中でのブラウン運動の軌跡を 、図 12 (b)に電流トレースを示す。このように、本発明の人工脂質二重膜の形成装置 を用いてなる電流測定装置を用いることにより、イオン電流の測定とイオンチャネルの 光学観察を同時に行うことができる。
[0095] 以上の実施例の結果から、本発明の脂質二重膜の形成装置によって、脂質二重 膜を安定に迅速に形成できることが示された。
[0096] 本発明にカゝかる人工脂質膜の形成装置は、平板状の部位に膜形成用開口部が形 成されて!/ヽる膜支持体と、水溶液を蓄積可能となって ヽる膜形成溶液槽とを備えて いるとともに、該膜形成溶液槽には、人工脂質二重膜を支持する支持層が設けられ ており、上記膜支持体の膜形成用開口部で形成した人工脂質二重膜を支持層上に 接触させて支持する人工脂質二重膜の形成装置において、さらに、水圧を変化させ ることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液カゝら余剰な脂質溶液を排出する 脂質溶液排出手段を備えており、上記膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶 液に接する状態となるように、膜支持体を膜形成溶液槽に投入した上で、該膜形成 用開口部に脂質溶液を塗布し、該脂質溶液を上記水溶液と支持層とで挟んで該支 持層に接触させるとともに、この状態で上記脂質溶液除去手段により余剰な脂質溶 液を排出することにより、上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重膜を形成す る構成である。
[0097] また、本発明にカゝかる人工脂質膜の形成装置は、平板状の部位に膜形成用開口 部が形成されている膜支持体と、水溶液を蓄積可能であり、上記膜支持体をその内 部に収容可能な膜形成溶液槽とを備えているとともに、上記膜形成用開口部に塗布 した脂質溶液力も余剰な脂質溶液を吸引することにより排出する脂質溶液排出手段 を備えている構成である。
[0098] また、上記人工脂質膜の形成装置は、上記膜形成溶液槽には、上記膜支持体の 膜形成用開口部で形成される人工脂質二重膜を支持する支持層を備える構成がよ り好ましい。
[0099] そして、上記膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶液に接する状態となるよ うに、膜支持体を膜形成溶液槽に投入した上で、該膜形成用開口部に脂質溶液を 塗布し、該脂質溶液を上記水溶液と支持層とで挟んで該支持層に接触させるととも に、この状態で上記脂質溶液除去手段により余剰な脂質溶液を排出することにより、 上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重膜を形成することができる。
[0100] 上記構成によれば、脂質溶液排出手段を備えているため、水圧を変化させることな く膜形成用開口部に塗布した脂質溶液カゝら余剰な脂質溶液を排出することができる 。そのため、膜の上から圧力がかからないため、薄膜化させる際に、膜を破いたり、膜 を不安定な状態にするようなことはない。ゆえに、安定で耐久性が高い人工脂質二 重膜を迅速に形成することができる。
[0101] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記膜形成溶液槽を下溶液槽 とした場合に、該下溶液槽の上方に設けられる水溶液を蓄積可能となっている上溶 液槽を備え、上記支持層は、該下溶液槽の底面に設けられており、上記膜支持体は 、上溶液槽の底面となっていてもよい。
[0102] 上記構成によれば、上溶液槽の脂質溶液を塗布した底面と、下溶液の底面に設け られた支持層を接触することを容易に行うことができる。よって、単純な構成で、安定 した人工脂質二重膜を迅速に容易に形成することができる。
[0103] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記脂質溶液排出手段が、上 記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を管状部材により吸引する吸引手段であつ てもよい。
[0104] 上記構成によれば、吸引手段を用いて、形成用開口部に塗布した脂質溶液から余 剰な脂質溶液を吸引する。それゆえ、短時間で容易に余剰名脂質溶液を排出し、人 ェ脂質二重膜を薄膜ィ匕することができる。
[0105] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記膜支持体が、上記膜形成 溶液槽に設けられた支持層を押しつける方向に移動可能となっており、当該移動可 能な膜支持体を上記脂質溶液排出手段として用い、上記膜形成用開口部に塗布し た脂質溶液を上記支持層に圧着させ脂質溶液を押し出すことで、余剰な脂質溶液を 出してもよい。
[0106] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記膜支持体が、上記膜形成 溶液槽に設けられた支持層を押しつける方向に移動可能となっており、当該移動可 能な膜支持体を上記脂質溶液排出手段として用い、上記膜形成用開口部に塗布し た膜支持体を上記支持層に圧着させることにより、脂質溶液を上記膜形成用開口部 とそれ以外の領域とで分離する構成がより好まし ヽ。
[0107] 上記構成によれば、膜支持体が、移動可能となっているため、脂質溶液を上記支 持層に圧着させ脂質溶液を押し出すことで、余剰な脂質溶液を排出することができる 。よって、余剰な脂質溶液を排出するための部材を用意する必要がないため、安価 に容易に人工脂質二重膜を薄膜ィ匕することができる。
[0108] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記支持層が、高分子ゲルか らなっていることが好ましぐ上記高分子ゲルとして、ァガロースまたはポリアクリルアミ ドが用いられることがより好ましい。また、上記高分子ゲル層の厚さは任意で力まわな いが、上記脂質溶液排出手段が、吸引部材である場合には lOOnm以上 2. Omm以 下、移動可能な膜支持体である場合には 0. 5mm以上 2mm以下であることが好まし い。さらに、上記高分子ゲルは、上記膜形成用開口部に接する領域で、他の領域よ りも高くなつて 、ることが好ましく、 50 μ m以上 200 μ m以下高くなつて!/、ることがより 好ましい。
[0109] 上記の構成によれば、薄膜ィ匕する際に、高分子ゲル層に支えられて、人工脂質二 重膜が上下方向に安定する。
[0110] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成装置は、上記膜形成用開口部の直径が 、 10 μ m以上 500 μ m以下であることが好まし!/ヽ。
[0111] 上記構成によれば、人工脂質二重膜を、良好に形成することができる。
[0112] 本発明にかかる人工脂質膜の形成方法は、平板状の部位に膜形成用開口部が形 成されている膜支持体を用い、この膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶液 に接した状態とした上で、該膜形成用開口部に、脂質溶液を塗布する脂質溶液塗布 工程と、上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を上記水溶液と表面が親水性で ある支持層とで挟んで、上記塗布した脂質溶液を該支持層に接触させる支持層接触 工程と、水圧を変化させることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液力ゝら余 剰な脂質溶液を排出することにより、上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重 膜を形成する脂質膜薄化工程とを含むことを特徴としている。
[0113] 上記方法によれば、水圧を変化させることなく膜形成用開口部に塗布した脂質溶 液力も余剰な脂質溶液を排出することができる。そのため、膜の上から圧力がかから ないため、脂質膜薄化工程で、膜を破いたり、膜を不安定な状態にするようなことは ない。ゆえに、安定で耐久性が高い人工脂質二重膜を迅速に形成することができる
[0114] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成方法は、上記脂質膜薄化工程では、管 状部材により脂質溶液を吸引することで、余剰な脂質溶液を排出してもよい。
[0115] 上記方法によれば、短時間で容易に余剰名脂質溶液を排出し、人工脂質二重膜 を薄膜ィ匕することができる。
[0116] さらに、本発明にかかる人工脂質膜の形成方法は、上記脂質膜薄化工程では、上 記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を上記支持層に圧着させ脂質溶液を押し出 すことで、余剰な脂質溶液を排出してもよい。
[0117] 上記方法によれば、安価で容易に人工脂質二重膜を薄膜ィ匕することができる。
[0118] 本発明に力かる人工脂質二重膜は、上記人工脂質二重膜の形成方法を用いて、 形成されて 、ることを特徴とする。
[0119] 上記構成によれば、上記人工脂質二重膜の形成方法を用いて形成されているため
、人工脂質二重膜は、安定で耐久性が高い。
[0120] さらに、本発明にかかる人工脂質二重膜は上記人工脂質二重膜には、膜タンパク 質が組み込まれて!/、てもよ 、し、この膜タンパク質がイオンチャネルであっても力まわ ない。
[0121] 本発明にかかる電流測定装置は、上記本発明にかかる人工脂質二重膜の形成装 置を用いて形成されて!、ることを特徴とする。
[0122] 上記構成によれば、膜を介した電流測定に際し、安定した人工脂質二重膜を用い ることができるため、精度よく電流測定を行うことができる。
[0123] さらに、本発明にかかる電流測定装置は、上記膜形成溶液槽の支持層が設けられ る側面が透光性を有する材料力もなつているとともに、該側面の外側には、支持層上 の人工脂質二重膜を観察可能とする光学観察手段が設けられて!/ヽてもよ!/ヽ。
[0124] 上記構成によれば、膜形成溶液槽と支持層とを通して、人工脂質二重膜を光学的 に観測することができる。
[0125] さらに、本発明にかかる電流測定装置は、上記上溶液槽に電気的に接続される電 流計測手段と、上記下溶液槽に電気的に接続されるアース手段とを備えているのが 好ましい。
[0126] さらに、本発明にかかる電流測定装置は、上記人工脂質二重膜には、膜タンパク 質が組み込まれてもよぐ該膜タンパク質力イオンチャネルであっても力まわな!/、。
[0127] 以上のように、本発明の脂質二重膜の形成装置を用いれば、安定で耐久性が高い 人工脂質二重膜を短時間で形成することができる。また、上記の人工脂質の形成装 置を用いて形成される本発明の脂質二重膜は、安定で耐久性が高い。
[0128] さらに、本発明の電流測定装置を用いれば、安定な人工脂質二重膜に組み込まれ た分子によって、様々な物質の検出に用いることができる。例えば、イオンチャネルを 組み込んだ場合、イオン透過の様子を確認することができる。それゆえ、上記の電流 測定装置は、イオンチャネルの機能解析に役立てることができる。
[0129] イオンチャネルは、種類も多ぐほとんどすべての細胞に分布して生体が生存する ために重要な役割を果たすことから、疾患の原因にもなりやすい。このことから、ィォ ンチャネルをターゲットとする薬剤が多く必要とされている。本発明は、イオンチャン ネルをターゲットとする薬剤開発におけるスクリ一-ングゃ薬理試験にも利用できる 可能性を有して 、るため、その有用性は高 、と言える。
[0130] 尚、発明を実施するための最良の形態の項においてなした具体的な実施態様また は実施例は、あくまでも、本発明の技術内容を明らかにするものであって、そのような 具体例にのみ限定して狭義に解釈されるべきものではなぐ本発明の精神と次に記 載する特許請求の範囲内で、いろいろと変更して実施することができるものである。 産業上の利用の可能性
[0131] 以上のように、本発明の脂質二重膜の形成装置を用いれば、安定で耐久性が高い 人工脂質二重膜を短時間で形成することができる。また、上記の人工脂質の形成装 置を用いて形成される本発明の脂質二重膜は、安定で耐久性が高い。また、本発明 の電流測定装置を用いれば、安定な人工脂質二重膜に組み込まれた分子によって 、様々な物質の検出に用いることができる。
従って、本発明は、生体膜モデルを用いるバイオ、医療、医薬等の生命科学の分 野、生体膜モデルをデバイスとして適用するエレクトロニクスの分野等の広 、範囲で 利用が可能である。例えば、生体膜モデルを用いた各種センサの開発、膜タンパク 質をターゲットとする薬剤開発におけるスクリーニングや薬理試験等において利用す ることがでさる。

Claims

請求の範囲
[1] 平板状の部位に膜形成用開口部が形成されて!ヽる膜支持体と、水溶液を蓄積可 能となっている膜形成溶液槽とを備えているとともに、該膜形成溶液槽には、人工脂 質二重膜を支持する支持層が設けられており、上記膜支持体の膜形成用開口部で 形成した人工脂質二重膜を支持層上に接触させて支持する人工脂質二重膜の形成 装置において、
さらに、水圧を変化させることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液力 余 剰な脂質溶液を排出する脂質溶液排出手段を備えており、
上記膜形成用開口部の少なくとも一方の面を水溶液に接する状態となるように、膜 支持体を膜形成溶液槽に投入した上で、該膜形成用開口部に脂質溶液を塗布し、 該脂質溶液を上記水溶液と支持層とで挟んで該支持層に接触させるとともに、 この状態で上記脂質溶液除去手段により余剰な脂質溶液を排出することにより、上 記膜形成用開口部に人工脂質二重膜を形成することを特徴とする人工脂質二重膜 の形成装置。
[2] さらに、上記膜形成溶液槽を下溶液槽とした場合に、該下溶液槽の上方に設けら れる水溶液を蓄積可能となっている上溶液槽を備え、上記支持層は、該下溶液槽の 底面に設けられており、上記膜支持体は、上溶液槽の底面となっていることを特徴と する請求項 1に記載の人工脂質二重膜の形成装置。
[3] 上記脂質溶液排出手段は、上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を管状部材 により吸引する吸引手段であることを特徴とする請求項 1または 2に記載の人工脂質 二重膜の形成装置。
[4] 上記膜支持体は、上記膜形成溶液槽に設けられた支持層を押しつける方向に移 動可能となっており、
当該移動可能な膜支持体を上記脂質溶液排出手段として用い、上記膜形成用開 口部に塗布した脂質溶液を上記支持層に圧着させ脂質溶液を押し出すことで、余剰 な脂質溶液を排出することを特徴とする請求項 1または 2に記載の人工脂質二重膜 の形成装置。
[5] 上記支持層は、高分子ゲル力 なっていることを特徴とする請求項 1ないし 4の何れ 力 1項に記載の人工脂質二重膜の形成装置。
[6] 上記高分子ゲルとして、ァガロースまたはポリアクリルアミドが用いられることを特徴 とする請求項 5に記載の人工脂質二重膜の形成装置。
[7] 上記高分子ゲル層の厚さは、上記脂質溶液排出手段が、吸引部材である場合に は lOOnm以上 2mm以下、移動可能な膜支持体である場合には 0. 5mm以上 2mm 以下であることを特徴とする請求項 5または 6に記載の人工脂質二重膜の形成装置。
[8] 上記高分子ゲルは、上記膜形成用開口部に接する領域で、他の領域よりも 50 μ m 以上 200 m以下高くなつていることを特徴とする請求項 5または 6に記載の人工脂 質二重膜の形成装置。
[9] 上記膜形成用開口部の直径は、 10 μ m以上 500 μ m以下であることを特徴とする 請求項 1ないし 8の何れか 1項に記載の人工脂質二重膜の形成装置。
[10] 平板状の部位に膜形成用開口部が形成されて ヽる膜支持体を用い、この膜形成 用開口部の少なくとも一方の面を水溶液に接した状態とした上で、該膜形成用開口 部に、脂質溶液を塗布する脂質溶液塗布工程と、
上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を上記水溶液と表面が親水性である支 持層とで挟んで、上記塗布した脂質溶液を該支持層に接触させる支持層接触工程と 水圧を変化させることなく上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液力 余剰な脂 質溶液を排出することにより、上記膜形成用開口部に薄化した人工脂質二重膜を形 成する脂質膜薄化工程とを含むことを特徴とする人工脂質二重膜の形成方法。
[11] 上記脂質膜薄化工程では、管状部材により脂質溶液を吸引することで、余剰な脂 質溶液を排出することを特徴とする請求項 10に記載の人工脂質二重膜の形成方法
[12] 上記脂質膜薄化工程では、上記膜形成用開口部に塗布した脂質溶液を上記支持 層に圧着させ脂質溶液を押し出すことで、余剰な脂質溶液を排出することを特徴とす る請求項 10に記載の人工脂質二重膜の形成方法。
[13] 請求項 1ないし 9の何れか 1項に記載の人工脂質二重膜の形成装置を用いて、形 成された人工脂質二重膜。
[14] 上記人工脂質二重膜には、膜タンパク質が組み込まれて 、ることを特徴とする請求 項 13に記載の人工脂質二重膜。
[15] 上記膜タンパク質はイオンチャネルであることを特徴とする請求項 14に記載の人工 脂質二重膜。
[16] 請求項 1ないし 9の何れか 1項に記載の人工脂質二重膜の形成装置を用いてなる 電流測定装置。
[17] 上記膜形成溶液槽の支持層が設けられる側面が透光性を有する材料カゝらなってい るとともに、該側面の外側には、支持層上の人工脂質二重膜を観察可能とする光学 観察手段が設けられていることを特徴とする請求項 16に記載の電流測定装置。
[18] 上記上溶液槽に電気的に接続される電流計測手段と、上記下溶液槽に電気的に 接続されるアース手段とを備えていることを特徴とする請求項 16または 17に記載の 電流測定装置。
[19] 上記人工脂質二重膜には、膜タンパク質が組み込まれて 、ることを特徴とする請求 項 16ないし 18の何れか 1項に記載の電流測定装置。
[20] 上記膜タンパク質力 オンチャネルであることを特徴とする請求項 19に記載の電流 測定装置。
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