WO2005001125A1 - 核酸の変異及び多型の判定方法 - Google Patents

核酸の変異及び多型の判定方法 Download PDF

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WO2005001125A1
WO2005001125A1 PCT/JP2004/009275 JP2004009275W WO2005001125A1 WO 2005001125 A1 WO2005001125 A1 WO 2005001125A1 JP 2004009275 W JP2004009275 W JP 2004009275W WO 2005001125 A1 WO2005001125 A1 WO 2005001125A1
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WO
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probe
signal
perfect match
value
correction
Prior art date
Application number
PCT/JP2004/009275
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English (en)
French (fr)
Inventor
Tomonori Nagaoka
Original Assignee
Olympus Corporation
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Filing date
Publication date
Application filed by Olympus Corporation filed Critical Olympus Corporation
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6827Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism

Definitions

  • the present invention relates to a method for determining mutations and polymorphisms in microarray mutation analysis.
  • a DNA probe complementary to each of a normal gene sequence or a gene sequence having a known mutation is prepared in advance, and the sample DNAs are separately hybridized to various probes, respectively.
  • a method for determining the presence or absence of a mutation in a sample DNA by detecting and comparing the amounts of these hybrids is used as a genetic diagnosis method.
  • a method for determining the presence or absence of a mutation in a sample DNA by detecting and comparing the amounts of these hybrids is used as a genetic diagnosis method.
  • a method is used in which a detectable label is applied to sample DNA, and the amount of DNA is indirectly detected by detecting the label.
  • fluorescent, radioactive isotopes, chemiluminescence and the like are used for such labels.
  • DNA microarrays which collectively detect information on multiple genes.
  • DNA microarrays can analyze the status of multiple genes at the same time, and are usually used for gene expression analysis, etc., but are often used for gene mutations and SNPs (base mutation polymorphisms). It is starting to be used for qualitative analysis.
  • U.S. Pat. No. 5,202,231 describes a nucleotide sequencing method using a DNA microarray, which is called a Sequence by Hybridization (SBH) method.
  • SBH Sequence by Hybridization
  • the base sequences of possible oligonucleotides of a certain length are immobilized on an array and arranged, and a completely complementary hybrid formed by the hybridization reaction with the sample DNA is detected. The sequence is determined by
  • the nucleic acid molecule used as the sample may be heterozygous (heterozygous or heterogeneous) in terms of sequence.
  • heterozygous or heterogeneous in terms of sequence.
  • there may be two types of sequence because there is a paternal sequence and a maternal sequence.
  • sequence diversity as in the case of cancer cells, it is conceivable that more types of sequences are mixed. Therefore, when performing mutation analysis of a sample containing such a heterologous nucleic acid molecule, sufficient discrimination of mutation cannot be obtained simply by distinguishing between perfect matches and incomplete matches.
  • multiple types of perfect matches are mixed at different quantitative ratios, it is difficult to determine whether a signal having a relatively low signal intensity is a perfect match or an incomplete match. It cannot be judged directly from the value Can be Disclosure of the invention
  • the present invention has been made in view of such a problem, and even when a plurality of types of perfect matches between a probe and a target sequence exist in a sample to be analyzed, a perfect match hybrid To provide a means to reliably identify
  • the method for determining mutation and polymorphism of a nucleic acid according to the present invention has the following configuration.
  • the method for determining a mutation or polymorphism of the present invention comprises a perfect match probe that perfectly matches a target nucleic acid, a base that causes at least one mismatch to the target nucleic acid, and other bases Contacting a labeled sample nucleic acid with a probe set comprising at least one incomplete match probe identical to the perfect match probe immobilized on a solid support (1); forming at each spot Measuring the signal from the extracted hybrid (2);
  • the incomplete match probe candidate is determined to be an incomplete match probe, and the first perfect match probe is Determining the first perfect match probe (5);
  • the probe in the hybrid having the first correction signal value is defined as a second perfect match probe. If the identified first corrected signal value in the correction step (b) is a signal intensity less than the threshold value C, the probe in the hybrid having the first corrected signal value is identified by a second complete matching processor. Steps to identify that they are not active (8)
  • step (4) in the step (4), there are a plurality of spots emitting a signal value of the threshold B or more, and in the step (5), the first complete If one probe has been determined, after the step (8), the plurality of probes are Step (9) of performing the correction steps (a) and (b) on the probes other than all match probes (second perfect match probe candidates) in order of increasing signal intensity.
  • the probe contained in the hybrid having the n-1st (n is an integer of 2 or more and an integer of not more than the type of probe) contained in the hybrid has a
  • the n-th correction nucleic acid consisting of only a sequence completely matching the probe in the hybrid that emits the n-th largest signal is separated from the probe set. Contacting the same probe set and measuring a signal when the probe set contacts only the n-th correction nucleic acid;
  • the probe in the hybrid having the n-th correction signal value is determined as the n-th perfect match probe, or the n-th correction signal If the signal has a signal intensity less than the threshold value C, the probe in the hybrid having the n-th corrected signal value is identified as not a perfect match probe.
  • the n-th perfect match probe is determined to be the (n-x) perfect match probe)
  • the amount of immobilization of each probe in the probe set, which has been determined in advance, is converted into a relative value, and the correction signal value is calculated based on the relative value, and
  • the method may further include a step (C) of obtaining a fixed amount correction signal value proportional to
  • all the probes in the probe set may correspond to either the sense strand or the antisense strand of the target nucleic acid. It can be.
  • the probe in the probe set may be a probe for a sense strand of a target nucleic acid, or an antisense probe. It can consist of one for the chain.
  • the first perfect match probe of each of the sense strand and the antisense strand is present, and the results differ for each of the sense strand and the antisense strand. If a negative result is obtained, a probe that produces a different result may not be identified as a perfect match probe regardless of the difference in the results between the sense strand and the antisense strand.
  • the threshold value A is an absolute value or a relative value of a signal, or both, and the threshold value B is It can be the absolute value of the signal.
  • the thresholds A and C are absolute values or relative values of a signal, or both; B can be the absolute value of the signal.
  • the threshold values A, B, and C are set to different values for each of the sense strand and the antisense strand. can do.
  • the threshold value A is a relative value and is derived from an eight-brid including a first perfect match probe. It can be less than 15% of the signal intensity. Monkey.
  • the threshold value A is a relative value
  • a signal derived from a hybrid containing the first perfect match probe It can be less than 10% of the strength.
  • the threshold C is a relative value, and a signal derived from a hybrid containing the first perfect match probe is used. It can be 20% or more of the strength.
  • the probe set comprises a set of the above probe subsets. It can consist of a probe and an overlapping probe whose base sequence is extended or shortened at both ends of the incomplete match probe.
  • the target nucleic acid may be codon 12 of the K-ras gene.
  • FIG. 1 This figure shows the arrangement of spots on the DNA microarray used to carry out the mutation determination method of the present invention.
  • FIG. 2 This figure shows that a target nucleic acid (K_ras gene 12th codon amplified by PCR) is brought into contact with a DNA microarray on which a probe set (antisense strand side) is immobilized
  • FIG. 9 shows a result obtained by measuring a signal derived from a hybrid formed in a spot.
  • Figure 3 This figure shows the signal values in Figure 2 as relative values.
  • Fig. 4 This figure shows the relative measured values of the signal when the first correction nucleic acid was brought into contact with the probe set (on the antisense strand side).
  • Figure 5 This figure shows the first capture signal as a relative value (antisense strand side).
  • the first correction signal is represented by a relative value to the signal value of the second perfect match probe candidate (the antisense strand side).
  • Figure 7 This figure shows the relative measured signal values when the second correction nucleic acid was brought into contact with the probe set (antisense strand side).
  • Figure 8 This figure shows the value of the second capture signal as a relative value.
  • Figure 9 This figure shows that a target nucleic acid (K-ras gene 12th codon amplified by PCR) is brought into contact with a DNA microarray on which a probe set (sense strand side) is immobilized, It shows the result of measuring the signal derived from the hybrid formed in each spot.
  • a target nucleic acid K-ras gene 12th codon amplified by PCR
  • FIG. 10 This figure shows the signal values in FIG. 9 as relative values.
  • Fig. 11 This figure shows the relative measured values of the signal when the first correction nucleic acid and the probe set (sense strand side) are brought into contact.
  • Figure 12 This figure shows the first correction signal as a relative value (sense strand side).
  • the first correction signal is represented by a relative value to the signal value of the second perfect match probe candidate (sense strand side).
  • FIG. 14 is a flowchart showing a procedure of the mutation or polymorphism determination method of the present invention.
  • nucleic acid means any of DNA, DNA containing artificial nucleotides, RNA, and RNA containing artificial nucleotides, PNA, and PNA containing artificial nucleotides.
  • Hybrid means a duplex formed between any of the above nucleic acids.
  • the “signal” is a signal that can be appropriately detected and measured by an appropriate means, and includes fluorescence, radioactivity, chemiluminescence and the like.
  • the method for determining mutations and polymorphisms of the present invention includes a perfect match probe that perfectly matches a target nucleic acid, and a base that generates at least one mismatch with the target nucleic acid, and the other bases are A probe set comprising at least one incomplete match probe identical to the perfect match probe is immobilized on a solid support, and a labeled sample nucleic acid is contacted with each probe in the probe set. It is used in a method for detecting a signal from a hybrid with a sample nucleic acid and determining the sequence in the target nucleic acid by comparing the signal intensities.
  • the mutation and polymorphism determination method of the present invention includes a perfect match probe that perfectly matches the target nucleic acid, a base that causes at least one mismatch with the target nucleic acid, and other bases Contacting a labeled sample nucleic acid with a probe set consisting of a perfect match probe and at least one incomplete match probe that is identical to a solid support, (1); formed at each spot Measuring a signal from the hybrid (2); determining a probe in the hybrid that emits a low-intensity signal of a predetermined signal value (threshold A) or less as an incompletely matched probe candidate (3); The probe in the hybrid that emits the strongest signal among the signals above the signal value (threshold B) is the first complete probe.
  • the step (5) of determining the first perfect match probe as the first perfect match probe is performed.
  • the sequence of these steps is, as already mentioned, the absolute signal value that is emitted when a perfect-matched hybrid is formed. Therefore, it is necessary to judge the validity of the conditions for forming a hybrid based on the relative relationship between the case where it is considered to be a perfect match and the case where it is considered to be an incomplete match.
  • the threshold value A in step (3) is an absolute value, it can be a value considered to be a non-specific signal intensity under the measurement conditions. This value should fluctuate depending on various conditions such as the type of the target nucleic acid to be used, the preparation method, and the sequence of the probe to be used, but can be determined empirically. Is self-evident.
  • the threshold value A is represented by a relative value, the magnitude is 15% or less, preferably 10% or less with respect to the signal having the highest intensity. Those with this level of signal value for the highest intensity are more likely to be from imperfect match hybrids.
  • the threshold B in step (4) is significantly larger than the non-specific signal intensity under the measurement conditions, and like the threshold A, the type of the target nucleic acid to be used, the preparation method, It should be varied according to various conditions such as the sequence of the probe used and the like, and can be determined empirically. Its value is obvious to those skilled in the art.
  • the target nucleic acid is sequence-homogeneous, one maximum peak is usually measured, whereas when the target nucleic acid contains multiple sequence species, multiple relatively intense signals are measured. .
  • step (3) If it is determined in step (3) that there is something that is considered to be derived from an incompletely matched hybrid, and if it is determined in step (4) that there is at least one peak having a size significantly different from the nonspecific signal intensity From these relative relationships, it can be inferred that the hybridization has been performed under appropriate conditions, and thus it is possible to identify the incompletely matched probe and the perfectly matched probe in step (5). It becomes. If one peak is measured, identify the peak, and if multiple peaks are measured, identify the probe in the hybrid with the highest intensity as the first perfect match probe. Can be.
  • the step (3) Since it is considered that the conditions for contact and / or measurement in (1) and / or (2) were inappropriate, these conditions were changed from the initial conditions, and
  • the method consisting of (1) to (5) is performed to judge perfect match probes and incomplete match probes. If the judgment can be made, it can be said that the conditions after the change were appropriate.
  • the method for determining a mutation or polymorphism according to the present invention includes the method for determining a mutation or polymorphism described above, further comprising:
  • the probe in the hybrid having the first correction signal value is referred to as a second perfect match probe.
  • the probe in the hybrid having the first correction signal value is replaced with a second complete matching probe. Step to identify that it is not (8)
  • the threshold C can be an absolute value or a value relative to the signal value of the highest intensity. Although it is possible to use the relative value for the signal with the highest intensity, it is easier to correct the signal in the following signal correction step, and the setting of the threshold value becomes less complicated. As the relative value to be converted here, it is preferable that the relative value when the maximum intensity is 100 is expressed as a percentage. ,
  • a probe in the hybrid other than the hybrid including the first perfect match probe which emits a signal having a signal intensity equal to or more than a predetermined value (threshold C) is used as the perfect match probe.
  • Identification as a candidate is performed.
  • the threshold value C like threshold values A and B, should be varied depending on conditions such as the type of target nucleic acid used, the preparation method, and the sequence of the probe used, and should be determined empirically. The values are obvious to those skilled in the art. As a specific value, when the threshold value C is expressed as a relative value, the threshold value C can be set to 20% or more of the signal intensity derived from the hybrid including the first perfect match probe.
  • step (7) the following signal correction steps (a) and (b) are performed on the signal from the hybrid containing the second perfect match probe candidate.
  • the first correction nucleic acid consisting of only the sequence that perfectly matches the first perfect match probe is brought into contact with the same probe set as the probe set separately from the steps (1) to (6). Performing a step (a) of measuring a signal when the probe set contacts only the first correction nucleic acid;
  • the first perfect match probe is hybridized with the first correction nucleic acid consisting of only the sequence that completely matches, because the target nucleic acid contains a plurality of perfect matches. If there is a possibility that Although the signal intensity is relatively strong in the constant signal, it is sometimes unclear whether it is due to an incomplete match or other perfect match contained in a small percentage of the target nucleic acid sample. This is to clarify. Even in the case of hybridization with the first correction nucleic acid consisting only of the sequence that perfectly matches the first perfect match probe, the perfect match probe can be used for nonspecific hybridization with the correction nucleic acid. Doing so may generate a certain signal.
  • the signal value derived from this non-specific elimination is determined in the correction step (a), and in the next step (b), the signal value derived from each hybrid is subtracted from the signal value already determined.
  • Find the corrected signal value for The corrected signal value obtained by going through such a step is a value obtained by subtracting the signal generated by each hybrid generated by non-specific hybridization of each probe. The signal value is attributed only to the chillon.
  • the probe in the hybrid having the first correction signal value is If the probe is identified as the second perfect match probe or the corrected signal value in the correction step (b) is a signal intensity less than the threshold value C, the probe in the hybrid having the first corrected signal value is referred to as a second probe.
  • the present invention provides a basic method for identifying only the first perfect match, a method for re-measuring by changing the conditions when measurement conditions and the like are not appropriate, and a first perfect match.
  • a method for identifying a second perfect match In addition to the match, it also concerns a method of identifying a second perfect match.
  • the perfect match after the first perfect match a perfect match that exists at a lower abundance ratio than the first perfect match
  • the third perfect match Even in the case where there are a plurality of them, a method of sequentially identifying all of them can be provided.
  • the present invention provides a method in which, in the step (4), there are a plurality of spots emitting a signal value equal to or larger than the threshold value B, and in the step (5), the first perfect match probe is determined. This applies when there is more than one perfect match after one perfect match.
  • the first perfect match has already been identified (ie, the contact conditions have been proved to be appropriate), and it is applied when the second and subsequent perfect matches are identified.
  • step (8) the signal intensities of the plurality of probes other than the first perfect match probe (second perfect match probe candidate) are determined.
  • Step (9) of performing the above correction steps (a) and (b) in descending order is performed.
  • the probes after the second perfect match probe (second perfect match probe candidate) are contacted with an appropriate nucleic acid for correction in order from the one with the highest signal intensity, and the correction signal is obtained.
  • the second perfect match, the third perfect match, and so on More specifically, in identifying the second perfect match probe, a second correction signal value is obtained using the second correction nucleic acid, and the third perfect match probe is determined. Identification means that a third correction signal value is determined using the third correction nucleic acid.
  • the candidate for the second perfect match probe did not become the second perfect match probe because the noise due to non-specific binding was particularly large.
  • it may be necessary to correct the name of the perfect match probe because what was supposed to be the third perfect match probe may eventually be identified as the second perfect match probe. is there.
  • the n-th correction nucleic acid consisting only of a sequence that completely matches the probe in the hybrid that emits the n-th largest signal is the same as the probe set.
  • the probe set is brought into contact with the probe set, and a signal is measured when the probe set contacts only the n-th correction nucleic acid.
  • a plurality of second perfect match probe candidates are determined in the order of signal strength to determine whether they are perfect matches by essentially the same method as the correction method for the first perfect match probe.
  • n is set to 2 or more in order to distinguish it from the nth correction nucleic acid (where n is 2 or more).
  • the number of second perfect match probe candidates is up to the number equal to the type of probe, but here the “type of probe” is used to determine one mutation or polymorphic part. It indicates the number of types of probes included in the set of sense strand probes or the number of types of probes included in the set of antisense strand probes.
  • the measured signal value is subtracted from the signal values that have been cumulatively corrected using the first correction nucleic acid to the (n-1) th correction nucleic acid, respectively, and the nth correction nucleic acid is subtracted.
  • the probe in the hybrid having the n-th corrected signal value is determined to be the n-th perfect match probe, or When the n-th correction signal value has a signal intensity less than the threshold value C, the probe in the hybrid having the n-th correction signal value is identified as not a perfect match probe.
  • the threshold value and the corrected signal value it is determined whether the perfect match probe candidate can be identified as a perfect match probe or not.
  • the n-th perfect match probe candidate is finally identified as the n-th perfect match probe, and even one of the candidates for the perfect match probe is not a perfect match probe
  • n it is necessary to correct n appropriately.
  • x spots (m is an integer of 1 or more and an integer of less than n) having an m-th correction signal value having an intensity less than the threshold value C (x is 0) If there is an integer, the n-th perfect match probe is determined to be the (n-x) -th perfect match probe.
  • each probe in the probe set obtained in advance is determined.
  • the method may further include a step (c) of converting the immobilized amount into a relative value and, based on the relative value, setting the corrected signal value to a fixed amount corrected signal value proportional to the immobilized amount. it can. This makes it possible to correct a difference in the amount of immobilization of each probe on a solid phase carrier (for example, a DNA microarray, etc.) when the difference is large, and perform more accurate mutation determination.
  • the amount of the probe immobilized on the carrier can be measured by quantifying a signal emitted from a fluorescent dye or the like previously introduced into the probe.
  • all the probes in the probe set may be directed to either the sense strand or the antisense strand of the target nucleic acid, or
  • the probe in the probe set may be composed of one for the sense strand of the target nucleic acid and one for the antisense strand.
  • Use of either the sense strand or the antisense strand is advantageous in terms of the cost of preparing probes and the like, but the use of both the sense strand and the antisense strand is more effective in determining mutations and polymorphisms. It is considered to be favorable for certainty.
  • the probe set has two or more probe subsets. If each probe subset is composed of an extended or shortened overlapping probe at both ends of the perfect match probe and the incomplete match probe, more accurate mutation Alternatively, a polymorphism can be determined.
  • FIG. 1 is a diagram showing the arrangement of spots on a DNA microarray used for carrying out the mutation determination method of the present invention.
  • a probe to be immobilized on the microarray a probe for the sense strand and the antisense strand of the sequence of the 12th codon of the K_ras oncogene was used.
  • a perfect match probe (corresponding to the sense strand) shown in SEQ ID NO: 1 is arranged, and in spots 2 to 7, incomplete match probes (SEQ ID NO: 2 to 7) Corresponding to the sense strand).
  • the incomplete match probe is obtained by replacing the portion of the sequence that was GGT in the perfect match probe with CGT, TGT, AGT, GCT, GAT, and GTT, respectively.
  • a nucleic acid extracted from a cancer cell collected from a human body was used as a template.
  • This extracted nucleic acid and the K_ras oncogene primer (Takara Shuzo, Cat # 7112; those shown in SEQ ID NOs: 15 and 16) were used in PCR, and a labeled target having a 5 ′ labeled FITC was used.
  • Nucleic acids were prepared. The sample amplified by PCR was confirmed by 8% NuSieve (manufactured by FMC) agarose gel electrophoresis. About 50 tg of the amplified target nucleic acid was brought into contact with the above-mentioned DNA microarray on which each probe was immobilized.
  • the hybridization between the probe and the target nucleic acid was performed under the following conditions.
  • Hybridization solution 3 x SSPE (sodium phosphate buffer, technical data: DNA microarray and latest PCR method, refer to Cell Engineering Separate Volume Genome Science Series 1 Shujunsha), target nucleic acid to 10% (V / V) ExpressHyb (Clontech) Suspended in a 10% solution;
  • Analyzer Olympus optics B X-51 TFR An experimental system in which a cooled CCD camera is connected. (Around the reaction filter, a means for driving the sample solution and controlling the temperature is mounted. It is designed to automatically record spot images).
  • a reaction solution 501 prepared with a hybridization solution is added to the reaction portion of a dedicated chamber in which a microarray with a diameter of 6 mm is installed, and the hybridization reaction is performed at 50 ° C, and the fluorescence image is obtained. Was captured and the image was stored on the hard disk.
  • the obtained image was analyzed using analysis software programmed for mutation analysis, and the signal of the image was quantified.
  • the quantified signal was further analyzed as follows.
  • the value of the absolute intensity of the signal 15 was set as the threshold A for defining the low intensity signal.
  • the absolute intensity of the signal was set to 100.
  • the GGT probe contained in the spot emitting the highest intensity signal was determined to be the first candidate for the perfect match probe (see FIG. 2).
  • the incomplete match probe candidate was determined to be an incomplete match probe, and the first perfect match probe candidate was further identified as the first perfect match probe ( (Antisense chain side).
  • the threshold C 20% was set as a signal value for the signal intensity of the first perfect match probe.
  • the signal value of the first perfect match probe (on the antisense strand side) was set to 100%, the relative value of the signal value of each probe is shown in FIG.
  • a GAT probe which is a spot on which probes other than the first perfect match probe (on the antisense strand side) are immobilized and which is immobilized on a spot that emits a signal intensity of the threshold C or more. It was determined to be the second perfect match probe candidate (see Figure 3).
  • the first correction nucleic acid consisting of only the sequence that completely matches the first perfect match probe (antisense strand side) is used.
  • the same probe set as the probe set was contacted on each spot of the DNA microarray, and a signal was measured when the probe set contacted only the first correction nucleic acid.
  • the first correction nucleic acid is prepared by performing a PCR using a DNA sequencer whose DNA base sequence is known to have GGT in advance as a template to prepare a labeled control nucleic acid with a FITC-labeled 5 ′ end. This was used.
  • the measured values of the hybridization with the first correction nucleic acid are shown in FIG. In this figure, the signal value of the GGT probe is set to 100%, and the relative value is shown. The value obtained by subtracting this relative value from the relative value in FIG. 3 is shown in FIG.
  • the GAT probe since the signal value (relative value) of the GAT probe is equal to or greater than the threshold value C, the GAT probe is replaced with the second perfect match probe (anti-sequence). Side).
  • the GCT probe in the spot that had emitted the strongest signal next to the GAT probe had a signal intensity equal to or higher than the threshold C when the GAT probe signal was 100% (Fig. 6). The same correction as above was performed, and it was confirmed whether the GCT probe was a complete match probe.
  • a second correction nucleic acid consisting of only a sequence that perfectly matches the second perfect match probe (antisense strand side) is the same as the probe set separately from the determination of the first perfect match probe (antisense strand side).
  • the probe set was contacted on each spot of the DNA microarray, and the signal when the probe set contacted only with the second correction nucleic acid was measured.
  • the second correction nucleic acid was labeled with FITC at the end by performing PCR using a DNA whose nucleotide sequence was previously determined to have GAT as a template by a DNA sequencer.
  • a labeled control nucleic acid was prepared and used.
  • the measured values of hybridization with the second correction nucleic acid are shown in FIG. In this figure, the signal value of the GAT probe is set to 100%, and the relative value is shown.
  • FIG. 8 shows a value obtained by subtracting the relative value from the relative value in FIG.
  • the GCT probe was determined to be the third perfect match probe (antisense strand side) because the signal relative value of the GCT probe after the subtraction was equal to or higher than the threshold value C.
  • a value of the absolute intensity of the signal 15 was set as the threshold A defining the low intensity signal.
  • the CGT probe, TGT probe, and AGT probe, which show signals below the threshold A, were non-specific probes for the target nucleic acid, that is, incomplete match candidate candidates (see FIG. 9).
  • the absolute intensity of the signal was set to 90.
  • the GGT probe contained in the spot emitting the highest intensity signal was determined as the first perfect match probe candidate (see FIG. 9). Since both the probe candidate with the threshold A or less and the probe candidate with the threshold B or more were present, the incomplete match probe candidate and the incomplete match probe were determined, and the first perfect match probe candidate was further replaced with the first perfect match. It was determined as a probe (sense strand side).
  • the threshold C 20% was set as the signal value for the signal intensity of the first perfect match probe (sense strand side) in the same manner as described above.
  • the signal value of the first perfect match probe (sense strand side) is set to 100%, the relative value of the signal value of each probe is shown in FIG.
  • the GAT probe which is a spot on which a probe other than the first perfect match probe (sense strand side) is immobilized and which is immobilized on a spot that emits a signal intensity of the threshold C or more, is used. 2 It was determined to be a perfect match probe candidate (see Fig. 10).
  • the first correction nucleic acid consisting of only the sequence that completely matches the first perfect match probe (sense strand side) is converted into the same probe set as the probe set.
  • the probe set was contacted on each spot of the DNA microarray, and a signal was measured when the probe set contacted only the first correction nucleic acid.
  • the first correction nucleic acid was labeled with FITC at the 5 'end by PCR using a DNA sequencer with DNA whose nucleotide sequence is known to have GGT in advance as a template.
  • a control nucleic acid was prepared and used.
  • the measured values of the hybridization with the first correction nucleic acid are shown in FIG. In this figure, the signal value of the GGT probe is 100%, and the relative value is shown.
  • FIG. 12 shows a value obtained by subtracting the relative value from the relative value in FIG.
  • the GAT probe since the signal value (relative value) of the GAT probe was equal to or higher than the threshold value C, the GAT probe was determined to be the second perfect match probe (sense strand side).
  • the GCT probe in the spot that generated the next strongest signal after the GAT probe did not have a signal intensity above the threshold C when the GAT probe signal was 100% (Fig. 12). See) It was judged that there was no. Therefore, the GCT probe will produce different results depending on whether the probe corresponding to the antisense strand is used and the probe corresponding to the sense strand. If a criterion is set that this is not the case, it will be judged that this is not a perfect match probe.
  • a DNA microarray in which probes are immobilized on a substrate and the type of probe is identified by position is described as an example.
  • the present invention can be applied as long as it has a configuration that can perform such operations.
  • the probe is immobilized on a substrate, and the probe is immobilized using glass, a silicon wafer, various porous substrates, gels, microplates, beads, etc. It can be used in phase.
  • the measured signal is completely compatible with the probe. Since it is possible to more reliably determine whether the result is due to a match or an incomplete match, a more accurate determination of the nucleic acid sequence in the sample can be made as compared with the conventional mutation and polymorphism analysis methods. Enable to get information. Sequence listing

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Abstract

本発明は、DNAマイクロアレイを利用して変異又は多型の解析を行う場合に試料となる核酸分子が、配列に関してヘテロ(heterozygous / heterogeneous)である場合であっても、DNAマイクロアレイ上の各スポットからのシグナルがプローブと標的核酸との間の完全にマッチしたものなのか、又は不完全にマッチしたものなのかを同定する手段を提供することを課題とする。本発明は、完全マッチプローブの候補と、完全にマッチする核酸のみからなる試料を用いて得られたシグナル値を、生データより差し引くことにより非特異的ハイブリダイゼーションに起因するシグナル分の補正を行い、その補正シグナル値が一定値以上である場合に、完全マッチに由来するシグナルと同定することを特徴とする。

Description

明細書 核酸の変異及び多型の判定方法 技術分野
本発明は、 マイクロアレイによる変異解析における変異及び多型の判定方 法に関する。 背景技術
遺伝子の突然変異情報の解析、 疾病の予知や診断、 ウィルスのタイピング等を 行う遺伝子診断に関する技術が近年大幅に進歩している。 例えば、 正常な遺伝子 配列又は既知の突然変異を有する遺伝子配列のそれぞれに相補的な DN Aプロ一 ブを予め用意しておき、 ここに、 試料 DN Aを各種プローブにそれぞれ別個にハ イブリダィズさせ、 これらのハイブリッド量を検出 '比較することにより、 試料 DN A中の変異の有無を判断する方法が、 遺伝子診断法として行われている。 ハイブリツドの検出には、.例えば試料 DNAに検出可能な標識を施し、 その標 識を検出することで間接的に DN A量を検出する方法がとられている。 一般にこ のような標識には、 蛍光や放射性同位体、 化学発光等が用いられている。
また、 このような DN Aの持つ相補性を利用したハイブリダィズ反応をベース とし、 数百個乃至数万個の DNAプローブを格子状に 2次元的に配列させ、 試料 溶液中の D N Aをこのアレイ上でハイブリダィズさせることで、 複数の遺伝子の 情報を一括して検出する DN Aマイクロアレイと呼ばれるシステムが普及し始め ている。
D N Aマイクロアレイにおいては複数の遺伝子の状態を同時に解析することが 可能であり、 通常は遺伝子の発現解析等に利用されることが多いが、 遺伝子の突 然変異や SNP (—塩基変異多型) の定性的な解析にも利用されはじめている。
例えば、 米国特許第 5 , 2 0 2 , 2 3 1号明細書には、 Sequence by Hybridization (S BH)法と呼ばれる、 D N Aマイクロアレイを利用した塩 基配列決定法が記載されている。 S BH法においては、 ある長さについて可能なオリゴヌクレオチドの塩基 配列をアレイ上に固相化して並べ、 検体 DNAとのハイプリダイゼ一ション 反応によって形成される、 完全に相補的なハイプリッドを検出することによ つて配列を決定するものである。
また、 Science(l 99 6)、 274巻、 p p.6 1 0- 6 14は、 プローブと 標的配列との間のハイブリダィゼーシヨンは、 完全にマッチする場合と、 1 塩基のミスマッチを含む場合とではハイブリダイズ強度が異なることを示し、 更にシグナル強度の差異が生じることを利用した配列判定方法を開示してい る。
一般に、 S BHに限らず、 オリゴヌクレオチドと検体 DNAとの間の相補 性を調べる場合には、 1種類のプローブによってハイプリッドの有無を検査 することは困難である。 なぜならば、 ハイブリッドの安定性はその配列によ つて影響を受けるために、 完全に相補的であると判断できる、 絶対的なシグ ナル値が存在しないからである。 そのため、 上記文献 (Science) に記載の方 法では、 1 5merのオリゴヌクレオチドのプローブ配列の中心部分に、 標的配 列と 1塩基ミスマッチを生じる塩基を配置した配列を用意し、 これを用いて 完全マッチと 1塩基ミスマッチに由来するシグナルの強度を比較して、 完全 マッチの有無が判定されている。
DNAマイクロアレイを利用して変異解析を行う場合に試料となる核酸分 子は、 配列に関してへテロである場合 (heterozygousな場合、 及び heterogeneousな場合) がある。 例えば、 哺乳類の細胞には、 父系の配列と母 系の配列とが存在しているから 2種類の配列種が存在する場合がある。 また、 癌細胞の場合のように配列の多様性がある場合には、 更に多くの種類の配列 が混在することが考えられる。 従ってこのようなヘテロな核酸分子を含む試 料の変異解析を行う場合には、 単純に完全マッチと不完全マッチとを区別す るだけでは、 変異に関する十分な知見が得られることにはならない。 また、 複数種類の完全マッチが、 異なる量比で混在する場合には、 比較的シグナル 強度の弱いものが、 完全マッチのものなのか、 それとも不完全マッチのもの なのかを判定することは、 シグナル値からは直接的には判断できないと考え られる。 発明の開示
本発明は斯かる問題点に鑑みてなされたものであり、 解析しょうとする試 料中に、 プローブと標的配列との完全マッチが複数種類存在するような場合 であっても、 完全マッチのハイブリッドを確実に同定することを可能にする 手段を提供するものである。
即ち本発明の、 核酸の変異及び多型の判定方法は、 以下のような構成をと る。
( i) 本発明の変異又は多型の判定方法は、 標的核酸に対して完全にマッチ する完全マッチプローブと、 標的核酸に対して少なくとも 1塩基のミスマツ チを生じる塩基を含み、 それ以外の塩基は当該完全マッチプローブと同一で ある少なくとも 1の不完全マッチプローブとからなるプロ一ブセットを固相 担体に固相化したものに、 標識済試料核酸を接触させるステップ ( 1 ) ; 各スポットにおいて形成されたハイプリッドからのシグナルを測定するス テツプ (2 ) ;
所定のシグナル値 (閾値 A) 以下の低強度シグナルを発するハイブリッド 中のプローブを不完全マッチプローブ候補と判定するステップ (3 ) ; 別の所定のシグナル値 (閾値 B ) 以上のシグナルの中で最高強度のシグナ ルを発するハイプリッド中のプロ一ブを第 1完全マッチプローブ候補と判定 するステップ (4 ) ;及び
前記の不完全マッチプロ一ブ候補と第 1完全マッチプロ一ブ候補とがとも に存在する場合に、 前記不完全マッチプローブ候補を不完全マッチプローブ と判定し、 更に前記第 1完全マッチプローブを第 1完全マッチプローブと判 定するステップ (5 ) ;
を含むことを特徴とする。
( i i)上記(i)の変異又は多型の判定方法においては、前記のステップ(3 ) において不完全マツチプロ一ブ候補を判定できない場合、 及び/又は前記のス テツプ (4 ) において完全マッチプローブ候補を判定できない場合に、 前記 ステップ ( 1) 及び/又は (2) において接触及び/又は測定する条件を当初 の条件から変更してから再度、 前記ステップ ( 1 ) 乃至 (5) からなる方法 を実施することを含むことができる。
(iii) 上記 (i) 又は (ii) の変異又は多型の判定方法にておいては、 前 記ステップ (5) の後に、
前記第 1完全マッチプローブ以外のプローブであって、 所定の値 (閾値 C) 以上のシグナル強度の中で最大のシグナルを発する八ィプリッド中のプロ一 ブを第 2完全マッチプローブ候補と同定するステップ (6) ;
前記第 2完全マッチプロ一ブ候補を含むハィブリッド中のシグナルについ て、 下記のシグナル補正ステップ (a) 、 及び (b) を行うステップ (7) : 前記第 1完全マッチプローブと完全マッチする配列のみからなる第 1 補正用核酸を、 前記ステップ ( 1) 乃至 (6) とは別個に、 前記プローブセ ットと同一のプローブセットに対して接触させて、 当該プローブセットが当 該第 1補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定するステップ (a) ; 及び
前記ステップ (a) で求めたシグナル値を、 前記ステップ (1) で測定 したシグナル値から差し引いて、 各ハイプリッドに由来するシグナルについ ての第 1補正シグナル値を求めるステップ (b) ;
前記補正ステップ (b) における第 1補正シグナル値が、 前記の閾値 C以 上のシグナル強度である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリ ッド中のプローブを、 第 2完全マッチプローブと同定し、 又は前記補正ステ ップ (b) における当該第 1補正シグナル値が、 閾値 C未満のシグナル強度 である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリッド中のプローブ を第 2完全マツチプロ一ブではないと同定するステップ ( 8 )
を更に含めることができる。
(iv) 上記の (iii) の変異又は多型の判定方法においては、 前記ステップ (4) において閾値 B以上のシグナル値を発するスポットが複数個あり、 前 記ステップ( 5 )において第 1完全マツチプロ一ブが判定されている場合に、 前記ステップ (8) の後で、 当該複数個のプローブであって、 当該第 1完 全マッチプローブ以外のプローブ(第 2完全マッチプロ一ブ候補)について、 そのシグナル強度が大きいものから順に、 上記補正ステップ (a) 及び (b ) を行うステップ (9 )
(伹し、 このステップにおいては、
当該複数個ある第 2完全マッチプロ一ブ候補の中で第 n - 1番目 (nは 2以上、 プローブの種類以下の整数) に大きいシグナル値を有するハイプリッド中に含ま れるプローブに対しては、
当該第 n - 1番目に大きいシグナルを発するハイプリッド中のプローブと完 全マッチする配列のみからなる第 n補正用核酸を、 前記ステップ (1 ) 乃至(6 ) とは別個に、 前記プローブセッ卜と同一のプロ一ブセッ卜に対して接触させて、 当該プローブセットが当該第 n補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定 し;
当該測定されたシグナル値を、 第 1補正用核酸から第 n - 1補正用核酸までを それぞれ利用して補正を累積的に行ったシグナル値から差し引いて、 第 n補正シ グナル値を求め;そして
当該第 n補正シグナル値が、前記の閾値 C以上のシグナル強度である場合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイプリッド中のプローブを、 第 n完全マッチ プローブと判定し、 又は当該第 n補正シグナル値が、 前記の閾値 C未満のシグナ ル強度である場合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイプリッド中のプロ一 ブを完全マッチプロ一ブではないと同定する
(但し、 第 n完全マッチプローブの判定前に、 閾値 C未満の強度の第 m補正シグ ナル値 (mは、 1以上、 n未満の整数) を有するハイブリッドが X個 (Xは 0以 上の整数) ある場合には、 上記第 n完全マッチプローブを、 第 (n - x ) 完全マツ チプローブと判定する) )
を更に含めることができる。
( V ) 前記 (i i i ) 又は (i v) の変異又は多型の判定方法においては、 前記 の補正ステップ (b ) の後、 且つ前記ステップ (8 ) の前に、
予め求めておいた、 前記のプローブセット中の各プローブの固相化量を相 対値に変換し、 この相対値に基づいて前記補正シグナル値を、 当該固相化量 に比例する固定化量補正シグナル値とするステップ (C ) を更に含めること ができる。
(vi) 上記の (i) 乃至 (V) の何れの変異又は多型の判定方法において も、 前記プローブセット中の全プローブが、 標的核酸のセンス鎖又はアンチ センス鎖の何れかの配列に対するものとすることができる。
(vii) また上記の (i) 乃至 (V) の何れの変異又は多型の判定方法に おいても、 前記プロ一ブセット中のプローブが、 標的核酸のセンス鎖に対す るもの、 及びアンチセンス鎖に対するものからなるものとすることができる。
(viii) 上記 (vii) の変異又は多型の判定方法においては、 センス鎖、 及びアンチセンス鎖のそれぞれの第一完全マッチプローブが存在し、 かつセ ンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれにおいて異なる結果が出た場合に、 そ の異なる結果を出したプローブを、 センス鎖及びアンチセンス鎖における結 果の相違に関わらず、 完全マッチプローブとは同定しないこととしてもよい。
(ix) 上記 (i) 乃至 (viii) の何れかの変異又は多型の判定方法におい ては、 センス鎖、 又はアンチセンス鎖に第一完全マッチプローブが存在しな い場合、 第一完全マッチプローブが存在しない鎖の結果を判定に使用しない こととしてもよい。
(x) 上記 (i) 乃至 (ix) の何れかの変異又は多型の判定方法において は、 前記の閾値 Aが、 シグナルの絶対値若しくは相対値、 又は両方であり、 前記の閾値 Bが、 シグナルの絶対値とすることができる。
(xi) 上記 (iii) 乃至 (ix) の何れかの変異又は多型の判定方法におい ては、 前記の閾値 A及び Cが、 シグナルの絶対値若しくは相対値、 又は両方 であり、 前記の閾値 Bが、 シグナルの絶対値とすることができる。
(xii) 上記 (iii) 乃至 (xi) の何れかの変異又は多型判定方法におい ては、 前記の閾値 A、 B、 及び Cを、 センス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞ れについて異なる値とすることができる。
(xiii) 上記 (X) 乃至 (xii) の何れかの変異又は多型の判定方法にお いては、 前記の閾値 Aが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含む八イブ リッドに由来するシグナル強度に対して 1 5 %以下の大きさとすることがで さる。
(xiv) 上記 (x) 乃至 (xiii) の何れかの変異又は多型の判定方法にお いては、 前記の閾値 Aが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含むハイブ リッドに由来するシグナル強度に対して 1 0 %以下の大きさとすることがで さる。
(XV) 上記 (X) 乃至 (xiv) の何れかの変異又は多型の判定方法におい ては、 前記の閾値 Cが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含むハイプリ ッドに由来するシグナル強度に対して 2 0 %以上の大きさとすることができ る。
(xvi) 上記 (i) 乃至 (XV) の何れかの変異又は多型の判定方法におい ては、前記のプローブセットは、以上のプローブサブセッ卜の集合からなり、 各プローブサブセットは、 当該完全マッチプローブ及び当該不完全マッチプ ローブの両端において塩基配列を伸張するか、 又は短縮したオーバーラッピ ングプローブからなることができる。
(xvii) 上記 (i) 乃至 (XV) の何れかの変異又は多型の判定方法は、 S NPのタイビングのためとすることができる。
(xviii) 上記 (xvii) の SNPのタイピングは、 完全マッチプローブと 判定する判定順位を上位から二つまでとすることができる。
(xix) 上記 (i) 乃至 (xviii) の何れかの変異又は多型の判定方法にお いては、前記の標的核酸を、 K- r a s遺伝子コドン 1 2とすることができる。 図面の簡単な説明
図 1 この図は、 本発明の変異判定方法を実施するために使用した DNA マイクロアレイ上のスポットの配置を示す図である
図 2 この図は、 プローブセット (アンチセンス鎖側) が固相化されてい る DN Aマイクロアレイに標的核酸 (K_ras遺伝子第 1 2コドンを PCRで増幅 したもの) を接触させ、 DNAマイクロアレイ上の各スポットにおいて形成 されたハイブリッドに由来するシグナルを測定したものを示すものである。 図 3 この図は、 図 2におけるシグナル値を相対値で表したものである。 図 4 この図は、 第 1補正用核酸とプローブセット (アンチセンス鎖側) を接触させた場合のシグナル測定値を相対値で表したものである。
図 5 この図は、 第 1捕正シグナルを相対値で表したものである (アンチ センス鎖側) 。
図 6 この図は、 第 1補正シグナルを、 第 2完全マッチプローブ候補のシ グナル値に対する相対値で表したものである (アンチセンス鎖側) 。
図 7 この図は、 第 2補正用核酸と、 プローブセット (アンチセンス鎖側) を接触させた場合のシグナル測定値を相対値で表したものである。
図 8 この図は、 第 2捕正シグナル値を相対値で表したものである。
図 9 この図は、 プローブセット (センス鎖側) が固相化されている D N Aマイクロアレイに標的核酸 (K-ras遺伝子第 1 2コドンを PCRで増幅したも の) を接触させ、 D N Aマイクロアレイ上の各スポットにおいて形成された ハイプリッドに由来するシグナルを測定したものを示すものである。
図 1 0 この図は、 図 9におけるシグナル値を相対値で表したものである。 図 1 1 この図は、 第 1補正用核酸とプロ一ブセット (センス鎖側) を接 触させた場合のシグナル測定値を相対値で表したものである。
図 1 2 この図は、 第 1補正シグナルを相対値で表したものである (セン ス鎖側) 。
図 1 3 この図は、 第 1補正シグナルを、 第 2完全マッチプローブ候補の シグナル値に対する相対値で表したものである (センス鎖側) 。
図 1 4 この図は、 本発明の変異又は多型判定方法における手順をフローチヤ 一卜にしたものである。 発明を実施するための最良の形態
(定義)
本願明細書においては、 以下の用語を以下に定義した意味において用いる。 「核酸」 とは、 D N A、 人工的ヌクレオチドを含む D N A、 R N A、 及び人工 的ヌクレオチドを含む R NA、 P N A、 人工ヌクレオチドを含む P N Aの何れを も意味する。 「ハイブリッド」 とは、 上記の核酸の何れかの間に形成される二重鎖を意味す る。
「シグナル」 とは、 適当な手段により適宜検出 ·測定可能な信号であって、 蛍 光、 放射能、 化学発光等が含まれる。
以下においては、 本発明の実施態様についての、 構成、 実施方法、 効果等につ いて、 適宜、 図を参照しながら説明する。
本発明の変異及び多型の判定方法は、 標的核酸に対して完全にマッチする完 全マッチプローブと、 標的核酸に対して少なくとも 1塩基のミスマッチを生 じる塩基を含み、 それ以外の塩基は当該完全マッチプローブと同一である少 なくとも 1の不完全マッチプローブとからなるプローブセットを固相担体に 固相化したものに、 標識済試料核酸を接触させ、 当該プローブセット中の各 プローブと試料核酸とのハイプリッドからのシグナルを検出し、 そのシグナ ル強度を比較することにより標的核酸中の配列を決定する方法において用い られるものである。 本発明の変異及び多型の判定方法においては、 標的核酸 に対して完全にマッチする完全マッチプローブと、 標的核酸に対して少なく とも 1塩基のミスマッチを生じる塩基を含み、 それ以外の塩基は当該完全マ ツチプローブと同一である少なくとも 1の不完全マッチプローブとからなる プローブセットを固相担体に固相化したものに、 標識済試料核酸を接触させ るステップ ( 1 ) ;各スポットにおいて形成されたハイブリッドからのシグ ナルを測定するステップ (2 ) ;所定のシグナル値 (閾値 A ) 以下の低強度 シグナルを発するハイプリッド中のプローブを不完全マッチプローブ候補と 判定するステップ (3 ) ;別の所定のシグナル値 (閾値 B ) 以上のシグナル の中で最高強度のシグナルを発するハイプリッド中のプローブを第 1完全マ ツチプローブ候補と判定するステップ (4 ) ;及び前記の不完全マッチプロ ーブ候補と第 1完全マッチプローブ候補とがともに存在する場合に、 前記不 完全マッチプローブ候補を不完全マッチプローブと判定し、 更に前記第 1完 全マッチプローブを第 1完全マッチプローブと判定するステップ (5 ) を行 う。 これら一連のステップを行うのは、 すでに述べたように、 完全マッチの ハイプリッドが形成された場合に発する絶対的なシグナル値というものがな いため、 完全マッチと考えられる場合と、 不完全マッチと考えられる場合と の相対的関係によりハイプリッドの形成条件の妥当性の判断を行う必要性が あるためである。
ステップ (3 ) における閾値 Aは、 絶対値である場合には、 測定条件下に おいて非特異的なシグナル強度と考えられる値とすることができる。 この値 は、 使用する標的核酸の種類、 調製方法、 及び使用するプローブの配列等の 諸条件によって変動させるべきものであるが、 経験的に定めることができる ものであり、 その値は当業者らには自明である。 また、 閾値 Aを相対値で表 す場合には、 最高強度のシグナルに対して 1 5 %以下、 好ましくは 1 0 %以 下の大きさとする。 最高強度に対してこのレベルのシグナル値を有するもの であれば、 不完全マッチハイブリッドに由来するものである確率が高い。 一 方、 ステップ (4 ) における閾値 Bは、 測定条件下において非特異的なシグ ナル強度と比較して有意に大きい値であり、 閾値 Aと同様に、 使用する標的 核酸の種類、 調製方法、 及び使用するプローブの配列等の諸条件によって変 動させるべきものであって、 経験的に定めることができるものである。 その 値は当業者らには自明である。 標的核酸が配列に関して均質である場合には 通常、 一つの最大ピークが測定されるのに対し、 標的核酸に複数の配列種が 混在する場合には、 比較的強度の強いシグナルが複数測定される。
ステップ (3 ) において不完全マッチハイブリッドに由来すると考えられ るものがあること、 及びステップ (4 ) において非特異的なシグナル強度と は有意に異なる大きさのピークが少なくとも 1つあることが判定できれば、 これらの相対的関係から、 ハイブリダィゼ一シヨンが適切な条件で行われた と推定することができ、 よって、 ステップ (5 ) において不完全マッチプロ —ブと完全マッチプローブとを同定することが可能となる。 一つの最大ピー クが測定された場合には、 そのピークを、 そして複数測定された場合には、 その中で最高強度を発するハイプリッド中のプローブを、 第 1完全マッチプロ ーブと同定することができる。 ここで、 前記のステップ (3 ) において不完 全マッチプローブ候補を判定できない場合、 及び/又は前記のステップ (4 ) において完全マッチプローブ候補を判定できない場合には、 前記ステツプ ( 1 ) 及び/又は (2 ) において接触及び/又は測定する条件が不適切であつ たと考えられるから、 この条件を当初の条件から変更し、 再度前記ステップ
( 1 ) 乃至 (5 ) からなる方法を実施して、 完全マッチプローブ及び不完全 マッチプローブの判定を行う。 判定ができれば、 変更後の条件が適切であつ たといえる。
本発明の変異及び多型の判定方法は、 上述の変異又は多型の判定方法にお いて、 更に、
前記ステップ (5 ) の後に、
前記第 1完全マッチプローブ以外のプローブであって、 所定の値 (閾値 C ) 以上のシグナル強度の中で最大のシグナルを発するハイブリッド中のプロ一 ブを第 2完全マッチプローブ候補と同定するステップ (6 ) ;
前記第 2完全マツチプロ一ブ候補を含むハイブリッド中のシグナルについ て、 下記のシグナル補正ステップ (a) 、 及び (b ) を行うステップ (7 ) : 前記第 1完全マッチプローブと完全マッチする配列のみからなる第 1 補正用核酸を、 前記ステップ ( 1 ) 乃至 (6 ) とは別個に、 前記プローブセ ットと同一のプローブセットに対して接触させて、 当該プローブセットが当 該第 1補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定するステップ ) ; 及び
前記ステップ (a) で求めたシグナル値を、 前記ステップ ( 1 ) で測定 したシグナル値から差し引いて、 各ハイプリッドに由来するシグナルについ ての第 1補正シグナル値を求めるステップ (b ) ;
前記補正ステップ (b ) における第 1補正シグナル値が、 前記の閾値 C以 上のシグナル強度である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリ ッド中のプローブを、 第 2完全マッチプローブと同定し、 又は前記補正ステ ップ (b ) における当該第 1補正シグナル値が、 閾値 C未満のシグナル強度 である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリッド中のプローブ を第 2完全マツチプローブではないと同定するステップ ( 8 )
を更に含むことができる。
閾値 Cは、 絶対値とすることも、 最高強度のシグナル値に対する相対値と することも可能であるが、 最高強度のシグナルに対する相対値を用いた方が、 下記のシグナル補正ステップにおいて、 シグナルの補正を行いやすくなり、 また閾値の設定がより煩雑でなくなる。 ここで変換する相対値としては、 最 高強度を 1 0 0としたときの相対値を百分率で表すものであることが好まし い。 ,
ステップ (6 ) においては、 前記第 1完全マッチプローブを含むハイブリツ ド以外のハイブリッド中のプローブであって、 所定の値 (閾値 C ) 以上のシ グナル強度を有するシグナルを発するハイブリッドを完全マッチプロ一ブ候 補と同定することが行われる。 ここで、 閾値 Cは、 閾値 A及び Bと同様に、 使用する標的核酸の種類、 調製方法、 及び使用するプローブの配列等の諸条 件によって変動させるべきものであって、 経験的に定めることができるもの であり、 その値は当業者らには自明である。 具体的な値としては、 閾値 Cは 相対値で表すと、 第 1完全マッチプローブを含むハイプリッドに由来するシグ ナル強度に対して 2 0 %以上の大きさとすることができる。
ステップ (7 ) においては、 前記第 2完全マッチプロ一ブ候補を含むハイ ブリツドからのシグナルについて、 下記のシグナル補正ステップ (a) 、 及び ( b ) が行われる。
ここで補正ステツプは、
前記第 1完全マッチプローブと完全マッチする配列のみからなる第 1補 正用核酸を、 前記ステップ ( 1 ) 乃至 (6 ) とは別個に、 前記プローブセッ トと同一のプローブセットに対して接触させて、 当該プローブセットが当該 第 1補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定するステップ (a) を行 い;そして
前記ステップ (a) で求めたシグナル値を、 前記ステップ (1 ) で測定し たシグナル値から差し引いて、 各ハイプリッドに由来するシグナルについて の第 1補正シグナル値を求めるステップ (b ) を行うものである。
上記の補正ステップ (a) において、 第 1完全マッチプローブと完全マッチ する配列のみからなる第 1補正用核酸とのハイプリダイゼーシヨンを行わせ るのは、 標的核酸中に複数の完全マッチが含まれる可能性がある場合に、 測 定シグナルに比較的シグナル強度が強いものの、 それが不完全マツチによる ものなのか、 それとも標的核酸試料中に少量の割合で含まれるその他の完全 マッチによるものなのかが不明のことがあるが、 それを明確にするためであ る。 第 1完全マッチプローブと完全マッチする配列のみからなる第 1補正用 核酸とのハイブリダィゼ一ションの場合であっても、 当該完全マッチプロ一 ブは、 補正用核酸と非特異的なハイプリダイゼーションを行うことにより、 ある一定のシグナルを発生することがある。 そのため、 この非特異的八イブ リダィゼ一シヨンに由来するシグナル値を補正ステップ (a) において求めて おき、 次のステップ (b ) において、 すでに求めたシグナル値から差し引い て、 各ハイプリッドに由来するシグナルについての補正シグナル値を求める。 このようなステップを経ることにより得られた補正シグナル値は、 各プロ一 ブが非特異的にハイブリダイズすることにより生じた八ィブリッドが発する シグナル分を差し引いたものとなり、 特異的なハイプリダイゼーシヨンのみ に起因したシグナル値となる。
補正ステップを行った後、 前記補正ステップ (b ) における第 1補正シグ ナル値が、 前記の閾値 C以上のシグナル強度である場合に、 当該第 1補正シ グナル値を有するハイプリッド中のプローブを、 第 2完全マッチプローブと 同定し、 又は前記補正ステップ (b ) における補正シグナル値が、 閾値 C未 満のシグナル強度である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリ ッ ド中のプローブを第 2完全マツチプロ一ブではないと伺定するステップ ( 8 ) を行う。 第 1完全マッチプローブの場合には、 それが最強のシグナル を発するハイブリッドに含まれていて、 且つ、 少なくとも 1の不完全マッチ が存在することにより相対的に同定することが可能であった。 しかし、 これ らの中間レベルのシグナル強度の場合、 即ち、 第 1完全マッチプローブを含 むハイプリッド由来のシグナルよりも弱いが、 非特異的シグナル値よりも大 きいと考えられるシグナルの場合には、 それが標的核酸中に少ない割合で含 まれる完全マッチによるものなのか、 それともあくまで通常よりも少し高い レベルの非特異的シグナルであるのかを識別する必要が生じる。 そしてこの 識別は、 非特異的ハイプリダイゼ一ションが比較的高頻度で生じている条件 下で測定を行っている場合には、 非常に重要である。 本発明においては、 標 的核酸と各完全マッチプロ一ブとの間において生じる非特異的ハイブリダィ ゼ一ションに起因するシグナルを差し引いた補正値を用いているから、 この 補正値が閾値 C以上の相対強度である場合には、 そのシグナルを発するハイ ブリツドには、 非特異的なハイブリダィゼーシヨンにも由来せず、 またパッ クグラウンドでもない、 完全マッチプローブが含まれると判定することが可 能になる。
本発明は上記したとおり、第 1完全マッチのみを同定する基本的な方法、測定条 件などが適切でなかった場合に、 条件の変更を行って再度測定しなおす方法、 そ して第 1完全マッチ以外に、 第 2完全マッチも同定する方法に関するものとなつ ている。 本発明は更に、 「第 2完全マッチ、 第 3完全マッチ、 · · ·」 のように、 第 1完全マッチ以降の完全マツチ (第 1完全マツチよりも低存在率で存在する完 全マッチ) が複数個存在する場合にも、 これらの全てを順次同定していく方法を 提供することができる。
この態様において本発明は、 前記ステップ (4 ) において閾値 B以上のシグ ナル値を発するスポットが複数個あり、 前記ステップ (5 ) において第 1完 全マッチプローブが判定されている場合、 即ち、 第 1完全マッチ以降の完全マ ツチが複数ある場合において適用されるものである。 すでに第 1完全マッチが同 定されていて (即ち、 接触の条件が適切であったことが証明されていて) 、 次に 第 2完全マッチ以降を同定する場合に適用されるものである。
この態様においては次に、 前記ステップ (8 ) の後で、 当該複数個のプロ一 ブであって、 当該第 1完全マッチプローブ以外のプローブ (第 2完全マッチ プローブ候補) について、 そのシグナル強度が大きいものから順に、 上記補 正ステップ (a) 及び (b ) を行うステップ (9 ) を行う。 このステップ (9 ) において、 第 2完全マッチプローブ以降のプローブ (第 2完全マッチプローブ候 補) については、 そのシグナル強度の強いものから順に、 適切な補正用核酸との 接触を行い、 補正シグナルを求め、 第 2完全マッチ、 第 3完全マッチ、 · · · と 同定していくことになる。より具体的には、第 2完全マッチプローブの同定には、 第 2補正用核酸を用いて第 2補正シグナル値を求め、 第 3完全マツチプローブの 同定には、 第 3補正用核酸を用いて第 3補正シグナル値を求めていくことを意味 する。
しかしながらこの態様においては、 第 2完全マッチプローブ候補であったもの が、 非特的結合等によるノイズが特別に大きかったために、 第 2完全マッチプロ —ブとはならず、 当初、 シグナルの大きさから言って第 3完全マッチプローブと なるはずであつたものが、 結果的に第 2完全マツチプローブと同定されるような 場合があるために、 完全マツチプローブの名称についての修正が必要となること がある。 例えば上記の場合には、 当初の第 3完全マッチの 「3」 の部分の数字を 適宜調節して、 第 2完全マッチとする必要がある。 これには次の操作を行う。 まず、 当該複数個ある第 2完全マッチプローブ候補の中で第 n - 1番目 (nは 2 以上、 プローブの種類以下の整数) に大きいシグナル値を有するハイブリッドに 含まれるプローブに対しては、当該第 n - 1番目に大きいシグナルを発するハイブ リッド中のプローブと完全マッチする配列のみからなる第 n補正用核酸を、 前記 ステップ (1 ) 乃至 (6 ) とは別個に、 前記プローブセットと同一のプローブセ ッ卜に対して接触させて、 当該プローブセッ卜が当該第 n補正用核酸のみと接触 した場合のシグナルを測定する。 ここでは、 複数個ある第 2完全マッチプローブ 候補をシグナルの強い順に、 第 1完全マッチプローブの場合の補正方法と本質的 に同様の方法により、 完全マッチであるかどうかを判定している。 また、 「nは 2以上、 プローブの種類以下の整数」 とあるのは、 第 2完全マッチプローブで 1 番目にシグナルの強いものは、 2- 1 = 1であり、 第 1番目に大きいシグナルとする ためである。 そして、 補正用核酸については、 すでに第 1補正用核酸が使われて いるので、それとは区別するために第 n ( nは 2以上)補正用核酸とするために、 nは 2以上としている。 nの上限値については、 第 2完全マッチプローブ候補の 数は最大でプローブの種類と等しい数までであるが、 ここで 「プローブの種類」 とは、 一つの変異や多型部分を判定するためのセンス鎖プローブのセット中に含 まれるプローブの種類の数、 又はアンチセンス鎖プローブのセット中に含まれる プローブの種類の数を示すものである。
次に、 当該測定されたシグナル値を、 第 1補正用核酸から第 n -1補正用核酸ま でをそれぞれ利用して補正を累積的に行ったシグナル値から差し引いて、 第 n補 正シグナル値を求める。 ここでは補正用核酸で測定したシグナルを使って補正シ グナル値を求めている。 例えば、 第 3完全マッチを同定しょうとする場合 (即ち n = 3の場合) を例にあげると、 第 3完全マッチプローブの同定に至るまでに、 すでに、 第 1及び第 2完全マッチプローブの同定を行っていて、 それぞれの同定 の工程においては、 第 1及び第 2補正用核酸を利用した補正工程にかけられてお り、 シグナル値がその分だけ累積的に補正されているはずであることを考慮して いることになる。
次に、 当該第 n補正シグナル値が、 前記の閾値 C以上のシグナル強度である場 合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイブリッド中のプローブを、 第 n完全 マッチプローブと判定し、 又は当該第 n補正シグナル値が、 前記の閾値 C未満の シグナル強度である場合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイプリッド中の プローブを完全マッチプローブではないと同定する。 ここでは、 閾値と補正シグ ナル値との比較により、 完全マッチプローブ候補が、 完全マッチプローブと同定 できるのか、 そうでないのかを判定している。 この工程を経ることにより、 最終 的に第 n完全マッチプローブ候補が、 第 n完全マッチプローブと認定されること になり、 完全マツチプロ一ブ候補となっていたものの一つでも完全マツチプロ一 ブではないと同定された場合には、 「第 n」 の nを適宜補正する必要が生じる。 その補正のためには、 第 n完全マッチプローブの判定前に、 閾値 C未満の強度の 第 m補正シグナル値(mは、 1以上、 n未満の整数) を有するスポットが x個(x は 0以上の整数) あった場合には、 上記第 n完全マッチプローブを、 第 (n - x ) 完全マッチプローブと判定する。 これは、 例えば第 3完全マッチプローブの判定 前に行った、 第 2完全マッチプローブの同定工程において (n = 3の場合) 、 結 果的に第 2完全マッチプロ一ブ候補が、 完全マッチではないと同定されていた場 合には、 x = lであり (即ち閾値 C未満の強度の第 2補正シグナル値を有するスポ ットが 1個あった場合) 、 従ってここで判定しょうとしている第 3完全マッチプ ローブとは、 最終的には第 2完全マッチプローブとして判定すべきであることを 意味する(3 - 1 = 2なので)。また、第 4完全マッチプローブの判定前に、第 2、 第 3完全マッチプローブの候補が共に完全マッチではないと同定されていた場合 には、 x = 2であり、ここで判定しょうとしている第 4完全マッチプローブとは、 最終的には第 2完全マッチプローブとして判定すべきであることを意味する(4 - 2 = 2なので) 。
本発明の変異及び多型の判定方法においては更に、 前記の補正ステツプ ( b ) の後、 且つ前記ステップ (8 ) の前に、 予め求めておいた、 前記のプ ローブセット中の各プローブの固相化量を相対値に変換し、 この相対値に基 づいて前記補正シグナル値を、 当該固相化量に比例する固定化量補正シグナ ル値とするステップ (c ) を更に含めることができる。 これは、 各プローブ の固相担体 (例えば D N Aマイクロアレイなど) への固相化量の違いが大き い場合に、 その差異を補正して、 より正確な変異判定を行うことを可能にす る。
ここで、 担体に固相化されたプローブの量を測定するには、 プローブに予 め導入しておいた蛍光色素等から発せられるシグナルを定量することにより 行うことができる。
本発明の変異及び多型の判定方法においては、 前記プロ一ブセット中の全 プロ一ブが、 標的核酸のセンス鎖又はアンチセンス鎖の何れかの配列に対す るものとしてもよいし、 又は、 前記プローブセット中のプローブが、 標的核 酸のセンス鎖に対するもの、 及びアンチセンス鎖に対するものからなるもの としてもよい。 プロ一ブ等の調製コストの点においては、 センス鎖又はアン チセンス鎖の何れかを用いる方に利点があるが、 センス鎖及びアンチセンス 鎖の双方を使用する方が、 変異及び多型の判定の確実性にとって好ましいと 考えられる。 この場合、 センス鎖、 及びアンチセンス鎖のそれぞれの第一完 全マッチプロ一ブが存在し、 かつセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれに おいて異なる結果が出たときは、 その異なる結果を出したプローブを、 セン ス鎖及びアンチセンス鎖における結果の相違に関わらず、 完全マッチプロ一 ブとは同定しないことが可能である。 更に、 センス鎖、 又はアンチセンス鎖 に第一完全マッチプローブが存在しない場合には、 第一完全マッチプローブ が存在しない鎖の結果を判定に使用しないことも可能である。 このように確 実性の高い結果のみを利用して測定結果の信頼性を高めることができる。 より具体的には、 前記のプローブセットが、 2以上のプローブサブセット の集合からなり、 各プローブサブセットが、 当該完全マッチプローブ及び当 該不完全マッチプローブの両端において塩基配列を伸張するか、 又は短縮し たオーバ一ラッピングプローブからなるものを利用すると、 より正確な変異 又は多型の判定が可能となる。
本発明の変異又は多型の判定方法は、 SNPのタイピングや、 癌遺伝子の 変異の判定、 例えば K- ras遺伝子のコドン 1 2を標的核酸として使用するこ とができる。 K_ras遺伝子のコドン 1 2を使用した具体例については、 下記の 実施例において記載する。 実施例
以下においては、 より具体的な配列を用いて本発明の変異判定方法を説明 する。 '
図 1は、 本発明の変異判定方法を実施するために使用した DN Aマイクロ アレイ上のスポットの配置を示す図である。 このマイクロアレイに固相化す るプローブとしては、 K_ras癌遺伝子の第 1 2コドンの配列の、 センス鎖及 びアンチセンス鎖に対するプロ一ブを用いた。 図中のスポット 1には、 配列 番号 1に示される完全マッチプローブ (センス鎖に対応) を配置し、 スポッ ト 2乃至 7においては、 配列番号 2乃至 7に示される不完全マッチプロ一ブ (センス鎖に対応) を配置した。 不完全マッチプローブは、 完全マッチプロ —ブにおいて GGTであった配列部分を、 それぞれ、 C GT、 TGT、 AG T、 GCT、 GAT、 及び GTTとしたものである。 スポット 8乃至 14に おいては、 同様にしてアンチセンス鎖に対する完全マッチプローブ及び不完 全マッチプローブ (それぞれ配列番号 8乃至 14の配列を有する) を配置し た。 以下においては、 センス鎖及びアンチセンス鎖の両方における不完全マ ツチプローブ (配列番号 2乃至 7) のそれぞれを、 CGTプローブ、 TGT プローブ、 AGTプローブ、 GCTプローブ、 G ATプローブ、 及び GTT プローブと呼ぶことがある。 これらのプローブ群の設計 ·合成は、 G e nB a n kなどのデータベースから入手可能な配列を基にして行った。
各プローブの、 DNAマイクロアレイへの固相化には、 当該技術分野で既 知の方法により行った。 具体的には、 ピエゾ素子を利用した微量分注システ ムによりスポットした。
標識核酸の調製にあたっては、 テンプレ一トとして人体より採取した癌細 胞から抽出した核酸を使用した。 この抽出核酸、 及び K_ras癌遺伝子プライ マー (宝酒造社製、 Cat#7112;配列番号 1 5及び 1 6に示されるもの) を P CRにおいて使用し、 5 ' に F I TCが標識された標識済標的核酸を調製し た。 P C Rにより増幅した試料は、 8 %NuSieve (FMC社製) ァガロース電 気泳動により確認した。 増幅した標的核酸約 5 0 t gを、 各プローブが固相 化された上記の DN Aマイクロアレイに接触させた。
プローブと標的核酸との間の八ィブリダイゼーションは、 次の条件におい て行った。
ハイブリダイゼーション溶液: 3 xSSPE (燐酸ナトリゥム緩衝液、 技術資料: DNAマイクロアレイと最新 PCR法、細胞工学別冊ゲノムサイエンスシリーズ 1秀 潤社参照)、 10 %(V/V)ExpressHyb(Clontech社)に標的核酸を 10%溶液となるよ うに懸濁したもの;
分析器:ォリンパス光学社製 B X-51 TFRに冷却 C C Dカメラを接続した 実験システム (反応フィルタ一の周りに、 試料溶液駆動と温度制御とを可能にす る手段が実装されており、 更に蛍光スポットの画像の記録を自動的に行うことが できるように設計されたものである) ;
操作:直径 6mmのマイクロアレイが設置されている専用チャンバ一の反応 部分に、 ハイブリダィゼ一シヨン溶液で調製された反応溶液 50 1を加え、 5 0°Cでハイブリダィゼーシヨン反応を行い、 蛍光画像を撮像し、 その画像をハー ドディスクに保存した。
得られた画像を、 変異判解析用にプログラムされた解析ソフトウエアを使 用して解析し、 画像のシグナルを数値化した。 数値化されたシグナルを、 以 下のようにして更に解析した。
低強度シグナルを規定する閾値 Aとして、 シグナルの絶対強度 1 5の値を 設定した。 閾値 A以下のシグナルを示す、 CGTプローブ、 TGTプローブ 及び AGTプローブを、 標的核酸に対する非特異的なプロ一ブ、 即ち不完全 マッチプローブ候補とした (図 2参照) 。
一方、 閾値 Bとしては、 シグナルの絶対強度 1 0 0を設定した。 最高強度 のシグナルを発しているスポットに含まれる G G Tプローブを第 1完全マツ チプローブ候補と判定した (図 2参照) 。
閾値 A以下のプローブ候補、 及び閾値 B以上のプローブ候補が共に存在し ていたから、不完全マッチプローブ候補を、不完全マッチプローブと判定し、 更に第 1完全マッチプローブ候補を、 第 1完全マッチプローブ (アンチセン ス鎖側) と判定した。
次に、 閾値 Cとして、 第 1完全マッチプローブのシグナル強度に対するシ グナル値として 2 0 %を設定した。 第 1完全マッチプローブ (アンチセンス 鎖側) のシグナル値を 1 0 0 %とした時の、 各プローブのシグナル値の相対 値を図 3に示した。 第 1完全マッチプローブ (アンチセンス鎖側) 以外のプロ 一ブが固相化されたスポットであって、 当該閾値 C以上のシグナル強度を発 するスポットに固相化されたプローブである G A Tプローブを第 2完全マッ チプローブ候補と判定した (図 3参照) 。
次に、 前記第 1完全マッチプローブ (アンチセンス鎖側) と完全マッチす る配列のみからなる第 1補正用核酸を、 第 1完全マッチプローブ (アンチセ ンス鎖側) の判定とは別個に、 前記プローブセットと同一のプローブセット に対して D N Aマイクロアレイの各スポット上で接触させて、 当該プローブ セットが当該第 1補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定した。 第 1補正用核酸は、 D N Aシークェンサによって塩基配列が G G Tを持つこと が予めわかっている D N Aをテンプレートに用いて P C Rを行うことにより、 5 ' 末端に F I T C標識された、 標識済コントロール核酸を調製し、 これを 用いた。 第 1補正用核酸とのハイブリダィゼーシヨンの測定値は、 図 4に示 した。 この図においては、 G G Tプローブのシグナル値を 1 0 0 %として、 これに対する相対値で示してある。 この相対値を、 図 3の相対値から差し引 いた値を、 図 5に示した。
図 5においては、 G A Tプローブのシグナル値 (相対値) が、 閾値 Cの値 以上であることから、 G A Tプローブを第 2完全マッチプローブ (アンチセ ンス鎖側) と判定した。
G ATプローブの次に強いシグナルを発していたスポット中の GCTプロ ーブは、 GATプローブのシグナルを 1 0 0 %とした場合に、 閾値 C以上の シグナル強度を有しているから (図 6参照) 、 上記と同様の補正を行い、 G C Tプロ一ブが完全マツチプロ一ブであるか否かを確認した。
第 2完全マッチプローブ (アンチセンス鎖側) と完全マッチする配列のみ からなる第 2補正用核酸を、 第 1完全マッチプローブ (アンチセンス鎖側) の判定とは別個に、 前記プロ一ブセットと同一のプロ一ブセットに対して D N Aマイクロアレイの各スポット上で接触させて、 当該プロ一ブセットが当 該第 2補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定した。 第 2補正用核 酸は、 DN Aシ一クェンサによって塩基配列が G ATを持つことが予めわか つている DNAをテンプレートに用いて P CRを行うことにより、 5, 末端 に F I TC標識された、 標識済コントロール核酸を調製し、 これを用いた。 第 2補正用核酸とのハイブリダィゼーシヨンの測定値は、 図 7に示した。 こ の図においては、 GATプローブのシグナル値を 1 0 0 %として、 これに対 する相対値で示してある。 この相対値を、図 6の相対値から差し引いた値を、 図 8に示した。
図 8においては、 差し引き後の GCTプローブのシグナル相対値が、 閾値 C以上であることから、 GCTプローブを第 3完全マッチプローブ (アンチ センス鎖側) と判定した。
以下の工程は、 アンチセンス鎖に対するプローブの代わりにセンス鎖に対 するプローブを使用する以外は上記と同様にして、 行ったものである。
上記と同様に、 低強度シグナルを規定する閾値 Aとして、 シグナルの絶対 強度 1 5の値を設定した。 閾値 A以下のシグナルを示す、 CGTプローブ、 TGTプローブ、 及び AG Tプローブを、 標的核酸に対する非特異的なプロ ーブ、 即ち不完全マッチプロ一プ候補とした (図 9参照) 。
一方、 閾値 Bについては、 アンチセンスの場合とは異なり、 シグナルの絶 対強度 9 0を設定した。 最高強度のシグナルを発しているスポットに含まれ る GGTプローブを第 1完全マッチプローブ候補と判定した (図 9参照) 。 閾値 A以下のプロ一ブ候補、 及び閾値 B以上のプローブ候補が共に存在し ていたから、不完全マッチプローブ候補と、不完全マッチプローブと判定し、 更に第 1完全マッチプローブ候補を、 第 1完全マッチプローブ (センス鎖側) と判定した。
次に、 閾値 Cとして、 上記と同様に第 1完全マッチプローブ (センス鎖側) のシグナル強度に対するシグナル値として 2 0 %を設定した。 第 1完全マツ チプローブ (センス鎖側) のシグナル値を 1 0 0 %とした時の、 各プローブ のシグナル値の相対値を図 1 0に示した。 第 1完全マッチプローブ (センス鎖 側) 以外のプローブが固相化されたスポットであって、 当該閾値 C以上のシ グナル強度を発するスポッ トに固相化されたプローブである G ATプローブ を第 2完全マッチプローブ候補と判定した (図 1 0参照) 。
次に、 前記第 1完全マッチプローブ (センス鎖側) と完全マッチする配列 のみからなる第 1補正用核酸を、 第 1完全マッチプローブの同定とは別個に、 前記プローブセットと同一のプローブセットに対して DN Aマイクロアレイ の各スポット上で接触させて、 当該プローブセットが当該第 1補正用核酸の みと接触した場合のシグナルを測定した。 第 1補正用核酸は、 DNAシーク ェンサによって塩基配列が GGTを持つことが予めわかっている DN Aをテ ンプレートに用いて P CRを行うことにより、 5 ' 末端に F I TC標識され た、 標識済コントロール核酸を調製し、 これを用いた。 第 1補正用核酸との ハイブリダィゼーシヨンの測定値は、 図 1 1に示した。 この図においては、 GGTプローブのシグナル値を 1 0 0 %として、 これに対する相対値で示し てある。 この相対値を、 図 1 0の相対値から差し引いた値を、 図 1 2に示し た。
図 1 2においては、 GATプローブのシグナル値 (相対値) が、 閾値 Cの 値以上であることから、 GATプローブを第 2完全マッチプローブ (センス 鎖側) と判定した。
G A Tプローブの次に強いシグナルを発していたスポット中の G C Tプロ ーブは、 GATプローブのシグナルを 1 0 0 %とした場合に、 閾値 C以上の シグナル強度を有していないから (図 1 2参照) 、 完全マッチプロ一ブでは ないと判定した。 従って、 GCTプローブは、 アンチセンス鎖に対応するプ 口一ブを用いた場合と、 センス鎖に対応するプローブを用いた場合とで、 結 果がことなるから、 予めそのような場合は完全マッチとしないという基準を 設けておいた場合には、 これは完全マッチプローブでないと判定することに なる。
以上の結果より、 GGTプローブ及び G ATプローブのみが完全マッチで あり、 これらの配列に対応した標的核酸が試料中に含まれていたということ がわかった。
以上の説明は、 基板にプローブを固相化して位置によりプローブの種類を 特定する DN Aマイクロアレイを例にとって説明したが、 複数種類のプロ一 ブが識別可能な状態でハイプリダイズ反応の検出を行うことができる構成で あれば、 本発明を適用することが可能である。 具体的には、 プローブを基板 に固相化したものであれば特に制限はなく、 ガラス、 シリコンウェハ、 各種 の多孔質基板、 ゲル、 マイクロ夕イタ一プレートやビーズなどを基材として プローブを固相化して用いることができる。 産業上の利用性
本発明は、 核酸の変異及び多型の解析を行う場合に試料となる核酸分子が その配列に関してへテロ (heterozygous/heterogeneous) である場合であつ ても、 測定したシグナルがプロ一ブとの完全マッチによるものなのか、 又は 不完全マッチによるものなのかをより確実に判定することができるため、 従 来の変異及び多型の解析方法と比較して、 試料中の核酸配列に関してより正 確な情報を得ることを可能にする。 配列表
<110> Olympus Optical Co., Ltd.
<120> A Method of Deciding Mutations and SNPs <130> 03P01005
<160> 16
<210> SEQ ID NO: 1
<211> 17
<212> DNA
く 213> artificial sequence <400> 1
ttggagctgg tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :2
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 2
ttggagctcg tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :3
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence
<400> 3
ttggagcttg tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :4
<211> 17 <212> DNA
<213> artificial sequence <400> 4
ttggagctag tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :5
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 5
ttggagctgc tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :6
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 6
ttggagctga tggcgta 17
<210> SEQ ID NO :7
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence
<400> 7
ttggagctgt tggcgta 17 <210> SEQ ID NO :8 <211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 8
tacgccacca gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 9
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 9
tacgccacga gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 10
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 10
tacgccacaa gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 11
<211> 17
<212> DNA <213> artificial sequence <400> 11
tacgccacta gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 12
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 12
tacgccagca gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 13
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 13
tacgccatca gctccaa 17
<210> SEQ ID NO: 14
<211> 17
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 14
tacgccaaca gctccaa 17 <210> SEQ ID NO: 15
<211> 20
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 15
gactgaatat aaacttgtgg 20
<210> SEQ ID NO: 16
<211> 20
<212> DNA
<213> artificial sequence <400> 16
ctattgttgg atcatattcg 20

Claims

請求の範囲
1. 標的核酸に対して完全にマッチする完全マッチプローブと、 標的核 酸に対して少なくとも 1塩基のミスマッチを生じる塩基を含み、 それ以外の 塩基は当該完全マッチプローブと同一である少なくとも 1の不完全マッチプ ローブとからなるプローブセットを固相担体に固相化したものに、 標識済試 料核酸を接触させるステップ (1) ;
各スポットにおいて形成されたハイプリッドからのシグナルを測定するス テツプ (2) ;
所定のシグナル値 (閾値 A) 以下の低強度シグナルを発する八イブリツド 中のプローブを不完全マッチプローブ候補と判定するステップ (3) ; 別の所定のシグナル値 (閾値 B) 以上のシグナルの中で最高強度のシグナ ルを発するハイプリッド中のプローブを第 1完全マッチプローブ候補と判定 するステップ (4) ;及び
前記の不完全マッチプロ一ブ候補と第 1完全マッチプロ一ブ候補とがとも に存在する場合に、 前記不完全マッチプローブ候補を不完全マッチプロ一ブ と判定し、 更に前記第 1完全マッチプロ一ブを第 1完全マッチプローブと判 定するステップ (5) ;
を含む、 変異又は多型の判定方法。
2. 前記のステップ (3) において不完全マッチプローブ候補を判定で きない場合、 及び/又は前記のステップ (4) において完全マッチプローブ候 補を判定できない場合に、 前記ステップ ( 1) 及び/又は (2) において接触 及び/又は測定する条件を当初の条件から変更してから再度、 前記ステップ
( 1) 乃至 ( 5) からなる方法を実施することを含む、 請求項 1に記載の変 異又は多型の判定方法。
3. 前記ステップ (5) の後に、
前記第 1完全マッチプローブ以外のプローブであって、 所定の値 (閾値 C) 以上のシグナル強度の中で最大のシグナルを発するハイブリッド中のプロ一 ブを第 2完全マッチプローブ候補と同定するステップ (6) ; 前記第 2完全マッチプローブ候補を含むハイプリッド中のシグナルについ て、 下記のシグナル補正ステップ (a) 、 及び (b ) を行うステップ (7 ) : 前記第 1完全マッチプローブと完全マッチする配列のみからなる第 1 補正用核酸を、 前記ステップ ( 1 ) 乃至 (6 ) とは別個に、 前記プローブセ ットと同一のプローブセットに対して接触させて、 当該プローブセッ卜が当 該第 1補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定するステップ (a) ; 及び
前記ステップ (a) で求めたシグナル値を、 前記ステップ (1 ) で測定 したシグナル値から差し引いて、 各ハイプリッドに由来するシグナルについ ての第 1補正シグナル値を求めるステップ (b ) ;
前記補正ステップ (b ) における第 1補正シグナル値が、 前記の閾値 C以 上のシグナル強度である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリ ッド中のプローブを、 第 2完全マッチプローブと同定し、 又は前記補正ステ ップ (b ) における当該第 1捕正シグナル値が、 閾値 C未満のシグナル強度 である場合に、 当該第 1補正シグナル値を有するハイプリッド中のプローブ を第 2完全マッチプローブではないと同定するステップ ( 8 )
を更に含む、 請求項 1又は 2に記載の変異又は多型の判定方法。
4 . 前記ステップ (4 ) において閾値 B以上のシグナル値を発するスポ ットが複数個あり、 前記ステップ (5 ) において第 1完全マッチプローブが 判定されている場合に、
前記ステップ (8 ) の後で、 当該複数個のプローブであって、 当該第 1完 全マッチプローブ以外のプローブ(第 2完全マッチプローブ候補)について、 そのシグナル強度が大きいものから順に、 上記補正ステップ (a) 及び (b ) を行うステップ (9 )
(但し、 このステップにおいては、
当該複数個ある第 2完全マッチプローブ候補の中で第 n - 1番目 (nは 2以上、 プローブの種類以下の整数) に大きいシグナル値を有するハイプリッド中に含ま れるプローブに対しては、
当該第 n - 1番目に大きいシグナルを発するハイプリッド中のプローブと完 全マッチする配列のみからなる第 n補正用核酸を、 前記ステップ(1 ) 乃至 (6 ) とは別個に、 前記プローブセットと同一のプローブセットに対して接触させて、 当該プローブセットが当該第 n補正用核酸のみと接触した場合のシグナルを測定 し;
当該測定されたシグナル値を、 第 1補正用核酸から第 n -1補正用核酸までを それぞれ利用して補正を累積的に行ったシグナル値から差し引いて、 第 n補正シ グナル値を求め;そして
当該第 n補正シグナル値が、前記の閾値 C以上のシグナル強度である場合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイプリッド中のプローブを、 第 n完全マッチ プローブと判定し、 又は当該第 n補正シグナル値が、 前記の閾値 C未満のシグナ ル強度である場合に、 当該第 n補正シグナル値を有するハイブリツド中のプロ一 ブを完全マツチプロ一ブではないと同定する
(伹し、 第 n完全マッチプローブの判定前に、 閾値 C未満の強度の第 m補正シグ ナル値 (mは、 1以上、 n未満の整数) を有するハイブリッドが X個 (Xは 0以 上の整数) ある場合には、 上記第 n完全マッチプローブを、 第 (n - x ) 完全マツ チプロ一ブと判定する) )
を更に含む、 請求項 3に記載の変異又は多型の判定方法。
5 . 前記の補正ステップ (b ) の後、 且つ前記ステップ (8 ) の前に、 予め求めておいた、 前記のプロ一ブセット中の各プローブの固相化量を相 対値に変換し、 この相対値に基づいて前記補正シグナル値を、 当該固相化量 に比例する固定化量補正シグナル値とするステップ (c )
を更に含むことを特徴とする、 請求項 3又は 4に記載の変異又は多型の判定 方法。
6 . 前記プローブセット中の全プローブが、 標的核酸のセンス鎖又はァ ンチセンス鎖の何れかの配列に対するものである、 請求項 1乃至 5の何れか 一項に記載の変異又は多型の判定方法。
7 . 前記プローブセット中のプローブが、 標的核酸のセンス鎖に対する もの、 及びアンチセンス鎖に対するものからなる、 請求項 1乃至 5の何れか 一項に記載の変異又は多型の判定方法。
8 . センス鎖、 及びアンチセンス鎖のそれぞれの第一完全マッチプロ一 ブが存在し、 かつセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれにおいて異なる結 果が出た場合に、 その異なる結果を出したプローブを、 センス鎖及びアンチ センス鎖における結果の相違に関わらず、 完全マッチプローブとは同定しな いことを特徴とする、 請求項 7に記載の変異又は多型の判定方法。
9 . センス鎖、 又はアンチセンス鎖に第一完全マッチプローブが存在し ない場合、 第一完全マッチプローブが存在しない鎖の結果を判定に使用しな いことを特徴とする、 請求項 1乃至 8の何れか一項に記載の変異又は多型の 判定方法。
1 0 . 前記の閾値 Aが、 シグナルの絶対値若しくは相対値、 又は両方で あり、 前記の閾値 Bが、 シグナルの絶対値であることを特徴とする、 請求項 1乃至 9の何れか一項に記載の変異又は多型の判定方法。
1 1 . 前記の閾値 A及び Cが、 シグナルの絶対値若しくは相対値、 又は 両方であり、 前記の閾値 Bが、 シグナル の絶対値であることを特徴とする、 請求項 3乃至 9の何れか一項に記載の変異又は多型の判定方法。
1 2 . 前記の閾値 A、 B、 及び Cを、 センス鎖及びアンチセンス鎖のそ れぞれについて異なる値とすることを特徴とする請求項 3乃至 1 1の何れか 一項に記載の変異又は多型の判定方法。
1 3 . 前記の閾値 Aが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含むハ イブリッドに由来するシグナル強度に対して 1 5 %以下の大きさであること を特徴とする請求項 1 0乃至 1 2の何れか一項に記載の変異又は多型の判定 方法。
1 4 . 前記の閾値 Aが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含むハ ィプリッドに由来するシグナル強度に対して 1 0 %以下の大きさであること を特徴とする請求項 1 0乃至 1 3の何れか一項に記載の変異又は多型の判定 方法。
1 5 . 前記の閾値 Cが相対値であり、 第 1完全マッチプローブを含むハ イブリッドに由来するシグナル強度に対して 2 0 %以上の大きさであること を特徴とする請求項 1 0乃至 1 4の何れか一項に記載の変異又は多型の判定 方法。
1 6. 前記のプローブセットが、 2以上のプローブサブセットの集合か らなり、 各プローブサブセットが、 当該完全マッチプローブ及び当該不完全 マッチプローブの両端において塩基配列を伸張するか、 又は短縮したオーバ ーラッピングプローブからなることを特徴とする請求項 1乃至 1 5の何れか 一項に記載の変異又は多型の判定方法。 '
1 7. SNPのタイピングのための、 請求項 1乃至 1 5の何れか一項に 記載の多型の判定方法。
1 8. 前記の SNPのタイピングが、 完全マッチプローブと判定する判 定順位を上位から二つまでとすることを特徴とする請求項 1 7に記載の S N Pタイビングのための多型の判定方法。
1 9. 前記の標的核酸が、 K-r a s遺伝子コドン 1 2である事を特徴 とする、 請求項 1乃至 1 8の何れか一項に記載の変異又は多型の判定方法。
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