WO2002002811A2 - Procede de controle de la qualite microbiologique d'un milieu aqueux et necessaire approprie - Google Patents

Procede de controle de la qualite microbiologique d'un milieu aqueux et necessaire approprie Download PDF

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WO2002002811A2
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Emmanuelle Guillot
Claude Mabilat
Carole Vachon
Bruno Lacroix
Guy Vernet
Marie-Astrid Armand
Philippe Laffaire
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Bio Merieux
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Definitions

  • the present invention relates to the field of microbiological diagnosis, detection techniques allowing the identification and the quantification of microorganisms present in fluids and products such as for example water.
  • microbiological identification methods require a culture step on selective media followed in general by identification, according to morphological, biochemical, and / or immunological characteristics.
  • faecal contamination indicators do not, however, make it possible to predict the presence of bacterial contamination of non-faecal origin (Pseudomonas aeruginosa, Legionella ”) as well as non-bacterial contamination (viruses and parasites).
  • EP-A-0 453 290 and US-A-5,558,989 describe a method for detecting the pathogenic species in humans, Giardia lamblia, based on the use of nucleic probes (DNA and / or RNA) corresponding to the sequence of 18S rRNA.
  • EP-A-0 550 883 describes a PCR test with reagents to search for G. lamblia, the sensitivity of which is 1-5 oocysts / ml of water concentrate. Molecular methods distinguishing dead parasites from viable and / or infectious parasites thus making it possible to better appreciate the real health risk posed by the presence of these parasites in water have been described.
  • WO-A-97/42349 which relates to the detection of viable Cryptosporidium and Giardia (by detection of mRNA of thermal shock proteins hsp 70) and / or infectious (cell culture and enzymatic amplification)
  • US-A-5,556,774 which relates to a method for detecting Cryptosporidium viable by combination of a PCR step and an in vitro excystation step.
  • FISH in situ hybridization technique
  • a nucleotide fragment, or an oligonucleotide, or a polynucleotide is a chain of nucleotide motifs assembled together by phosphoric ester bonds, characterized by the informational sequence of natural nucleic acids, capable of hybridizing to a nucleotide fragment under conditions predetermined, the sequence being able to contain monomers of different structures and to be obtained from a natural nucleic acid molecule and / or by genetic recombination and / or by chemical synthesis.
  • a nucleotide motif is derived from a monomer which may be a natural nucleotide of nucleic acid, the constituent elements of which are a sugar, a phosphate group and a nitrogenous base; in DNA the sugar is deoxy-2-ribose, in RNA the sugar is ribose; depending on whether it is DNA OR RNA, the nitrogen base is chosen from adenine, guanine, uracil, cytosine, thymine; or else the monomer is a nucleotide modified in at least one of the three aforementioned constituent elements; by way of example, the modification can take place either at the base level, with modified bases such as inosine, methyl-5-deoxycytidine, deoxyuridine, dimethylamino-5-deoxyuridine, diamino-2,6- purine, bromo-5-deoxyuridine or any other modified base capable of hybridization, either at the sugar level, for example the replacement of at least one deoxyribose
  • sequence is meant any ordered sequence of nucleotide type patterns, the chemical nature and order in a reference sense constitute information of the same quality as that of natural nucleic acids.
  • hybridization is meant the process during which, under appropriate conditions, two nucleotide fragments, having sufficiently complementary sequences are capable of forming a double strand with stable and specific hydrogen bonds.
  • a nucleotide fragment "capable of hybridizing" with a polynucleotide is a fragment capable of hybridizing with said polynucleotide under hybridization conditions, which can be determined in each case in a known manner.
  • the hybridization conditions are determined by the stringency, that is to say the rigor of the operating conditions. Hybridization is all the more specific as it is performed at higher stringency. Stringency is defined in particular as a function of the base composition of a probe / target duplex, as well as by the degree of mismatch between two nucleic acids.
  • the stringency can also be a function of the parameters of the reaction, such as the concentration and the type of ionic species present in the hybridization solution, the nature and the concentration of denaturing agents and / or the hybridization temperature.
  • the stringency of the conditions under which a hybridization reaction must be carried out will depend mainly on the probes used. All these data are well known and the appropriate conditions can be determined by a person skilled in the art. In general, depending on the length of the probes used, the temperature for the hybridization reaction is between about 20 and 65 ° C, in particular between 35 and 65 ° C in saline at a concentration of about 0.8 to 1 molar.
  • a probe is a nucleotide fragment comprising from 5 to 100 monomers, in particular from 6 to 35 monomers, having a specificity of hybridization under determined conditions to form a hybridization complex with a nucleotide fragment having, for example, a nucleotide sequence included in a ribosomal RNA, the DNA obtained by reverse transcription of said ribosomal RNA and the DNA (here called ribosomal DNA or rDNA) of which said ribosomal RNA is the transcription product; a probe can be used for diagnostic purposes (in particular capture or detection probes).
  • a capture probe is immobilized or immobilizable on a solid support by any appropriate means, that is to say directly or indirectly, for example by covalence or adsorption.
  • a detection probe can be labeled using a marker chosen from radioactive isotopes, enzymes (in particular a peroxidase, an alkaline phosphatase, or an enzyme capable of hydrolyzing a chromogenic, fluorigenic or luminescent substrate), chemical compounds chromophores, chromogenic compounds, fluorigenes or luminescent, analogs of nucleotide bases, and ligands such as biotin.
  • a marker chosen from radioactive isotopes, enzymes (in particular a peroxidase, an alkaline phosphatase, or an enzyme capable of hydrolyzing a chromogenic, fluorigenic or luminescent substrate), chemical compounds chromophores, chromogenic compounds, fluorigenes or luminescent, analogs of nucleotide bases, and ligands such as biotin.
  • a primer is a probe comprising from 5 to 100, preferably from 10 to 40 nucleotide units and having a specificity of hybridization under conditions determined for the initiation of an enzymatic polymerization, for example in an amplification technique such as PCR (Polymerase Chain Reaction), in a sequencing process, in a reverse transcription method, etc.
  • PCR Polymerase Chain Reaction
  • the probes and primers according to the invention are chosen from:
  • identification sequence we mean any sequence or any fragment as defined above, which can serve as a detection and / or capture probe.
  • treatment of the aqueous medium is meant any filtration and / or lysis and / or purification step.
  • lysis step we mean a step capable of releasing the nucleic acids contained in the protein and / or lipid envelopes of microorganisms (such as cellular debris which disturb subsequent reactions).
  • the lysis methods as described in the applicant's patent applications can be used:
  • WO-A-99/15321 on mechanical lysis.
  • Those skilled in the art will be able to use other well-known lysis methods such as thermal or osmotic shocks or chemical lyses with chaotropic agents such as guanidium salts (US-A-5,234,809).
  • - By purification step is meant the separation between the nucleic acids of the microorganisms and the cellular constituents released in the lysis step. This step generally makes it possible to concentrate the nucleic acids.
  • the intermediate layer is itself covered by an external layer based on a polymer capable of interacting with at least one biological molecule, the external polymer is thermosensitive and has a predetermined lower critical solubility temperature (LCST) of between 10 and 100 ° C and preferably between 20 and 60 ° C.
  • LCST lower critical solubility temperature
  • This outer layer is synthesized from cationic monomers, which generate a polymer with the ability to bind nucleic acids.
  • This intermediate layer isolates the magnetic charges from the nucleus, in order to avoid the problems of inhibiting the techniques of amplification of these nucleic acids.
  • nucleic acid purification method is the use of silica either in the form of a column (Qiagen kits for example) or in the form of inert particles [Boom R. et al., J. Clin. Microbiol., 1990, n ° 28 (3), p. 495-503] or magnetic (Merck: MagPrep ® Silica, Promega: MagneSil TM Paramagnetic particles).
  • Other widely used methods are based on ion exchange resins in columns (Qiagen kits for example) or in paramagnetic particle format (Whatman: DEAE-Magarose) [Levison PR et al., J. Chromatography, 1998, p. 337-344].
  • Another very relevant method for the invention is that of adsorption on a metal oxide support (Xtrana company: Xtra-Bind TM matrix).
  • detection step is meant either direct detection by a physical method, or a detection method using a marker.
  • a hybridization method using specific probes is implemented for the detection step.
  • This particular embodiment consists in bringing the nucleic acids, amplified or not, into contact with the microorganisms to be detected with a capture probe fixed on a solid support, and capable of specifically hybridizing with said nucleic acids; then to reveal, according to known methods, the possible presence of the nucleic acids attached to the solid support, in particular by means of at least one capture probe.
  • marker is meant a tracer capable of generating a signal.
  • a non-exhaustive list of these tracers includes the enzymes which produce a detectable signal for example by colorimetry, fluorescence or luminescence, such as horseradish peroxidase, alkaline phosphatase, beta-lactactosidase, glucose-6-phosphate dehydrogenase; chromophores such as fluorescent, luminescent or coloring compounds; groups with electron density detectable by electron microscopy or by their electrical properties such as conductivity, by amperometry or voltametry methods, or by impedance measurements; the groups detectable by optical methods such as diffraction, surface plasmon resonance, variation of contact angle or by physical methods such as atomic force spectroscopy, tunnel effect, etc.
  • the polynucleotide can be labeled during the enzymatic amplification step, for example using a labeled nucleotide triphosphate for the amplification reaction.
  • the labeled nucleotide will be a deoxyribonucleotide in DNA generating amplification systems, such as PCR, or a ribonucleotide in RNA generating amplification techniques, such as TMA or NASBA techniques.
  • the polynucleotide can also be labeled after the amplification step, for example by hybridizing a labeled probe according to the sandwich hybridization technique described in document WO-A-91/19812.
  • Another particular preferred mode of labeling nucleic acids is described in Application FR-A-2,780,059 to the Applicant.
  • Another preferred mode of detection uses the 5'-3 'exonuclease activity of a polymerase as described by Holland P.M., PNAS (1991) p 7276-7280.
  • Signal amplification systems can be used as described in WO-A-95/08000 and, in this case, the preliminary enzymatic amplification reaction may not be necessary.
  • enzymatic amplification is meant a process generating multiple copies of a particular nucleotide fragment using specific primers by the action of at least one enzyme.
  • amplification of nucleic acids there are, among others, the following techniques: - PCR (Polymerase Chain Reaction), as described in patents US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 and US-A- 4,800,159,
  • solid support includes all materials on which a nucleic acid can be immobilized. Synthetic materials, or natural materials, optionally chemically modified, can be used as solid support, in particular polysaccharides such as cellulose-based materials, for example paper, cellulose derivatives such as cellulose acetate and nitrocellulose, or dextran; polymers, copolymers, in particular based on styrene type monomers, natural fibers such as cotton, and synthetic fibers such as nylon; mineral materials such as silica, quartz, glasses, ceramics; latexes; magnetic particles; metal derivatives, gels etc.
  • the solid support can be in the form of a microtiter plate, a membrane as described in application WO -A-94/12670, a particle or a biochip.
  • biochip a solid support of reduced size where a multitude of capture probes are fixed at predetermined positions.
  • the main characteristic of the solid support must be to retain the hybridization characteristics of the capture probes on the nucleic acids while generating minimum background noise for the detection method.
  • An advantage of biochips is that they simplify the use of numerous capture probes thus allowing multiple detection of microorganisms to be detected while taking into account the polymorphism of said microorganisms to be detected
  • the invention described below makes it possible to solve the problems posed by the methods described above, both in terms of sensitivity, specificity and multidetection capacity, while being quick and easy to implement.
  • a first object of the invention is a method for controlling the microbiological quality of an environmental aqueous medium, capable of comprising different microorganisms, comprising the following steps: - a reference set is chosen, consisting of at least three microorganisms, representative, together or separately, of a level of microbiological quality,
  • a microbiological determination kit consisting of at least three probes for specifically and respectively identifying said three microorganisms, - after treatment of the medium to be analyzed, we put - said microorganisms, or any fraction obtained from them, in contact with said determination kit, whereby we multi-determine said microorganisms, this determination being representative of the level of microbiological quality middle.
  • the invention also relates to a microbiological determination kit comprising a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes, said identification probes each being specific for a species or at least of a genus bacteria, viruses or parasites that may be present in a sample of liquid to be measured.
  • a kit designates any manual, semi-automatic or automatic method allowing the implementation of a dosing means, dosing signifying the identification and / or determination of viability and / or quantification, each of these three parameters being determined in sequence or according to combinations: identification only; identification and quantification; identification and viability; identification, quantification and sustainability.
  • This invention also relates to a multidetection method using in particular the biochip technique to search for a large number of microbiological parameters including contamination indicators required in the various legislations (USA, France, Europe) and pathogenic microorganisms including bacteria, viruses and parasites.
  • a complete microbiological analysis of a sample can be carried out quickly, for example around 4 hours, and with great sensitivity, for example of the order of 1 micro target / 101-1001 thanks to step d 'enzymatic amplification.
  • This multidetection method is specific to the species sought through the use of sequences, called identification sequences of each species, as probe, and can make it possible to determine the viability of microorganisms by the detection of viability markers such as, for example, rRNA and / or mRNA.
  • this multidetection method makes it possible to apply it indifferently to any environmental aqueous medium, ie any aqueous medium to the exclusion of any bodily fluid.
  • this method applies to all water intended for human consumption, clean industrial water, urban waste water and industrial, water for the food industry, process water and any fluid or product.
  • microorganisms sought the following microorganisms will be cited by way of example: Among the bacteria: Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157: H7,
  • Helicobacter pylori Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Staphylococcus epidermatitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter aeri, Campylobacter coli , Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, the genus Mycobacterium, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi genus, Mycobacterium marinum
  • the genus Cryptosporidium such as Cryptosporidium parvum
  • the genus Giardia such as Giardia lamblia and Microsporidia.
  • Microorganisms can be sought at the level of the genus to which they belong, either at the lower taxonomic level, ie at the level of the species, or at the level of serotypes, subtypes and in epidemiology: for example for Legionella, the determination be carried out by the identification sequence SEQ ID NO: 9 for research at the genus level and by SEQ ID NO: 10 or 11 for a determination by a specific identification sequence of the bacterium Legionella pneumophila.
  • identification sequences corresponding to the species sought will be chosen from the sequences whose list is attached in the appendix of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 104.
  • the three identification probes which it comprises have at least one sequence chosen from any one of the sequences SEQ ID Nos: 1-104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • It comprises at least one identification probe specific for a bacterium, at least one identification probe specific for a parasite and at least one identification probe specific for a virus; preferably, it comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 61, SEQ ID NO: 66 to SEQ ID NO: 69 and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence; at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 63 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence; and at least one sequence chosen from among SEQ ID NO: 50 to SEQ ID NO: 60, and SEQ ID NO: 70 to SEQ ID NO: 104, and all fragments thereof comprising at least 5
  • identification probes specific to at least four different bacteria include at least four identification probes specific to at least four different bacteria; preferably, they are chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 61, SEQ ID NO: 66 to SEQ ID NO: 69 and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • It comprises at least five identification probes specific to at least five different viruses; preferably, they are chosen from SEQ ID NO: 50 to SEQ ID NO: 60, and SEQ ID NO: 70 to SEQ ID NO: 104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in one any of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the microbiological determination kit comprises at least two identification probes specific to at least two parasites; preferably, it is chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49 and SEQ ID NO: 63 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the microbiological determination kit comprises at least one identification probe specific for a bacterium and at least one identification probe specific for at least one parasite.
  • it comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 61, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 67 to SEQ ID NO: 69, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence
  • Said microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following bacteria: Escherichia coli, genus Salmonella, Staphylococcus aureus.
  • at least one identification probe for the kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO9: 66, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 15 , SEQ ID NO: 23, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following bacteria: Escherichia coli, genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens.
  • at least one probe for identifying said kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 15 , SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% d identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Genus Cryptosporidium.
  • at least one probe of said kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 44, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Gardia lamblia, Cryptosporidium parvum.
  • at least one probe of said kit is chosen from SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 46 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 63, SEQ ID NO: 64 and SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof including at at least 5 contiguous monomers included in any of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Enterovirus, Genus Cryptosporidium, Preferably, at least one probe for identifying said kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 70 to SEQ ID NO: 75, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO : 44, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the said microorganisms for the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Escherichia coli serotype 0157: H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium stus , Enterovirus: polio virus, coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus Giardia, Giardia lamblia.
  • At least one probe for identifying the kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 25 to SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 61 to SEQ ID NO: 75, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the said microorganisms for the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Escherichia coli serotype 0157: H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium stus , Enterovirus: polio virus, coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus Giardia, Giardia lamblia, Genus Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter coli Hepatitis A, Calicivirus: Norwalk and Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus
  • At least one probe for identifying the kit is chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 9 to SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 14 to SEQ ID NO: 20 , SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 25 to SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 51, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 56 to SEQ ID NO: 104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the said microorganisms for the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Escherichia coli serotype 0157: H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium stus , Enterovirus: polio virus, coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus Giardia, Giardia lamblia, Genus Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter coli of hepatitis A, Calicivirus: Norwalk and Sapporo Virus, Adenovirus, Rot
  • At least one probe for identifying the determination kit is chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 9 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 56 to SEQ ID NO : 104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following bacteria: Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157: H7, Helicobacter pylori, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equus , Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni r _Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Mycobacterium mycobaciumia mycobacterium
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following viruses: Adenoviruses, such as Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; Astroviruses, HAstV-1-2; Enteroviruses, such as Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, Rotaviruses, Caliciviruses, such as Norwalk virus, Sapporo virus, and Hepatitis viruses such as Hepatitis A virus.
  • viruses such as Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis
  • Astroviruses such as Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, Rotaviruses, Caliciviruses, such as Norwalk virus, Sapporo virus
  • Hepatitis viruses such as Hepatitis A virus.
  • Said microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following parasites:
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Escherichia coli serotype 0157: H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis,
  • Streptococcus equinus Clostridium perfringens, Genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: polio virus, coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus
  • At least one probe for identifying the necessary is chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO:
  • SEQ ID NO: 97 and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and of which the sequence has at least 70% identity with any said sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genus Salmonella, Staphylococcus aureus , coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus Giardia, Giardia lamblia, Genus Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Hepatitis virus preferably, at least one probe for identifying the kit is chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 4,
  • microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following bacteria:
  • At least one probe for identifying the determination kit is chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 to SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 to SEQ ID NO 11, SEQ ID 23, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70 % identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from the following viruses: Hepatitis A virus, Enterovirus, and at least one virus chosen from Caliciviruses and Rotaviruses.
  • at least one probe of identification of the determination kit is chosen from SEQ ID NO 59, SEQ ID NO: 60 SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 to SEQ ID NO 96, SEQ ID NO: 98 to SEQ ID NO: 104, and all fragments of these comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following viruses:
  • at least one probe for identifying the determination kit is chosen from SEQ ID NO 98 to 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 56 to SEQ ID NO 58, SEQ ID NO: 60, SEQID NO: 97, SEQ ID NO: 70 to SEQ ID NO: 75, SEQ ID NO 76 to SEQ ID NO 96, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70 % identity with said any sequence.
  • Said microorganisms in the microbiological determination kit are chosen from the following parasites: genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genus Giardia, Giardia Lamblia.
  • at least one probe for identifying the determination kit is chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in one any of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from:
  • SEQ ID NO 75 SEQ ID NO 76 to SEQ ID NO 96, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • Said microorganisms of the microbiological determination kit are chosen from Norwalk virus, Hepatitis A virus, Enterovirus.
  • at least one identification probe chosen from among SEQ ID NO 59, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 to SEQ ID NO 75.
  • the capture probes advantageously comprise at least 10, preferably at least 13, or even at least 15, even at least 17 bases and / or at most 35, preferably at 25, or even at most 20.
  • a capture probe has between 10 and 35 bases, advantageously between 17 and 20 bases, with at least one interrogation position located in the central region of the known sequence, in 12 th position relative to the 3 ′ end of the sequence.
  • These capture probes have, depending on the case, lengths between 10 and 25 nucleotides. The interrogation positions then vary according to the length of the capture probe.
  • identification sequences have been selected by computer selection techniques and are each sufficiently specific for a species and / or for a member of a species that they make it possible to discriminate between taxonomically close genera and / or species of the same genus and to avoid cross-hybridization phenomena.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes comprising at least four identification probes specific to at least four different bacteria. In another embodiment of the invention, the microbiological determination kit comprises a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes comprising at least five identification probes specific to at least five different viruses .
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes comprising at least two identification probes specific to a parasite.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites comprising at least one probe specific for a bacterium and at least one probe specific identification of a parasite.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites whose probes specific for bacteria are chosen from the probes specific for the following bacteria :
  • Escherichia coli Genus Salmonella, Staphylococcus aureus.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites whose probes specific for bacteria are chosen from the probes specific for the following bacteria :
  • Escherichia coli Escherichia coli, genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of identification probes bacteria and / or viruses and / or parasites whose specific probes for bacteria are chosen from the specific probes for the following bacteria:
  • Escherichia coli Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites whose probes specific for bacteria are chosen from the probes specific for the following bacteria : Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157: H7,
  • Helicobacter pylori Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Staphylococcus epidermitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter Aeri, Campylobacter aerospace , Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, the genus Mycobacteria, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium genenella Legion, Mycobacterium marinum
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Genus
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites chosen from the following microorganisms:
  • Genus Salmonella Staphylococcus aureus, Gardia lamblia, Cryptosporidium parvum.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, - Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium,
  • Enterococcus durans Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genus Salmonella, Staphylococcus aureus,
  • Enterovirus polio virus, coxsackie virus A and B, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia,
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium,
  • Enterococcus durans Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: polio virus, coxsackie A and B virus, Echovirus, Genus Cryptosporidium, Legptia Giella , Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Hepatitis A virus, Calicivirus: Norwalk and Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites chosen from the following microorganisms:
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identification of bacteria and / or viruses and / or parasites chosen from the following microorganisms: Escherichia coli, Enterovirus, Genus Cryptosporidium,
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of probes for identifying bacteria and / or viruses and / or parasites whose probes for specific identification of viruses are specific for the following viruses: Adenoviruses, such as Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; Astroviruses, HastV-1-2; Enteroviruses, such as Polioviruses, Coxsackieviruses, Echoviruses, Rotaviruses, Caliciviruses, such as Norwalk virus, Sapporo virus and, Hepatitis viruses such as Hepatitis A virus.
  • Adenoviruses such as Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis
  • Astroviruses HastV-1-2
  • Enteroviruses such as Polioviruses, Coxsackieviruses, Echoviruses, Rotaviruses, Caliciviruses, such as Norwalk virus, Sapporo virus and, Hepatitis viruses such as Hepatitis A virus.
  • the microbiological determination kit comprises a mixture of bacteria and / or virus and / or parasite identification probes, the parasite specific probes of which are chosen from the following parasite specific probes : The genus Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia and Microsporidia.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 61 , SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 to
  • SEQ ID NO: 69 and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence; at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 63 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in the any of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence; and at least one sequence chosen from
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least 4 identification probes chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 61 , SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 to SEQ ID NO: 69, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% d identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least 5 identification probes between SEQ ID NO: 50 to SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO70 to SEQ ID NO: 104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 63 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 61 , SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 to SEQ ID NO: 69, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% d identity with said any sequence, and at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 63 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof comprising at least at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23 , SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% d identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 , SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 , SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 44, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 66 , SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO70 to SEQ ID NO75, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 44, and all fragments of those this comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one chosen identification probe. among SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 25 to SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 61 to SEQ ID NO75, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one identification probe chosen from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 9 , SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 14 to SEQ ID NO: 20, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 25 to SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO: 51, SEQ ID NO: 53 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 56 to SEQ ID NO: 59, SEQ ID NO: 60 to SEQ ID NO: 65, and all fragments thereof including at at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one sequence between SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 9 to SEQ ID NO: 22, and SEQ ID NO: 23 to SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 56 to SEQ ID NO: 104, and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one sequence chosen from SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 to SEQ ID NO 69 , SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 to SEQ ID NO 11, SEQ ID 23. and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one sequence chosen from SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 to SEQ ID NO 75 and all fragments of these comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one sequence chosen from SEQ ID NO 98 to 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 98, SEQ ID NO 56 to SEQ ID NO 58, SEQ ID NO 76 to SEQ ID NO 96 and all fragments thereof comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and the sequence of which has at least 70% identity with said any sequence.
  • the kit for microbiological determination of a microorganism present in a sample comprises at least one sequence comprised between chosen from SEQ ID NO: 40 to SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65 and all fragments of these comprising at least 5 contiguous monomers included in any one of said sequences and whose sequence has at least 70% identity with said any sequence.
  • identification sequences allow the selective assay of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • Adenoviruses such as Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; Astroviruses, HastV-1-2; Enteroviruses, such as Polioviruses, Coxsackieviruses, Echoviruses, Rotaviruses, Caliciviruses, such as Norwalk virus, Sapporo virus, and Hepatitis viruses, such as Hepatitis A, the genus Cryptosporidium, such as Cryptosporidium parvum , Giardia lamblia and Microsporidia.
  • these identification sequences according to the invention allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • Escherichia coli Genus Salmonella, Staphylococcus aureus
  • these identification sequences according to the invention allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • Escherichia coli Escherichia coli, genus Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens.
  • these identification sequences according to the invention allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • these identification sequences according to the invention allow the selective assay of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • these identification sequences according to the invention allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • these identification sequences according to the invention allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorganisms chosen from the following microorganisms:
  • these identification sequences allow the selective dosing of a microorganism in the presence of at least 2 other microorgan
  • microbiological determination kit comprising identification sequences to identify microorganisms at the level of serotypes, subtypes and in epidemiology.
  • the method for analyzing a sample capable of containing at least one bacterium, parasite and / or virus, according to the invention uses a mixture of nucleotide sequences as identification probes specific for a serotype, a subtype , of a species or at least one kind of bacteria, virus and / or parasite likely to be present in the sample.
  • This method of analyzing a sample according to the invention is characterized by a detection step comprising the implementation of a microbiological determination kit as defined above.
  • At least one lysis step can be carried out prior to the detection step.
  • an amplification step is carried out.
  • the invention also relates to a method for controlling a liquid sample in which, prior to any detection step, a step of enriching said sample with microorganisms is carried out.
  • This enrichment step can be carried out by filtration in particular using a filtration means comprising hollow fibers and used in frontal mode making it possible to obtain, in a limited time, from a starting liquid sample of large and predetermined volume, a sample to be analyzed of a sufficiently small volume, while guaranteeing the viability of the microorganisms, so that the analysis techniques, in particular multidetection according to the invention, can then be implemented.
  • This filtration means is based on the technique of ultrafiltration on hollow fibers in frontal mode.
  • frontal mode as opposed to tangential mode, is meant any passage in one pass of a starting liquid sample in the filtration means, without recycling at least a part of the same sample at the inlet of said filtration means.
  • multi-recovery is meant the possibility of recovering from the final sample practically all the different genera or species of microorganisms present in the starting sample. These high yields are obtained due to the nonexistence of volumes, known as dead volumes, due for example on other devices to the presence of ancillary pipes, for example recycling, and by the reliability of the porosity over the entire length of hollow fiber.
  • the control method according to the invention is thus applied to a sample possibly obtained by filtration, with a volume of between 1 ml and 100 liters.
  • a step of lysis of the microorganisms is carried out, either by mechanical lysis or by chemical lysis, as described above.
  • a purification step is optionally applied, optionally using capture techniques with oligonucleotides fixed on magnetic particles, or by using silica columns, silica particles (inert or magnetic), ion exchange columns, or any other method mentioned above.
  • An enzymatic amplification step is also optionally applied, preferably using transcription techniques such as TMA, NASBA, but in particular using PCR and RT-PCR techniques.
  • An amplicon labeling step is applied, by preferential use of a fluorescent label.
  • a hybridization step is then applied, preferably using the specific identification probes or their fragments fixed on a solid support, and in particular using a biochip.
  • control method and the microbiological determination kit according to the invention using these specific sequences makes it possible to simultaneously detect a bacterium and / or a virus and / or a parasite from a fixed panel in a single final multidetection step.
  • Another subject of the invention is a process for the production and / or disinfection of a liquid, characterized in that it comprises an analysis step implementing a microbiological determination kit according to any one of Claims 35 to 48 and generating a data interpretation algorithm allowing the slaving of said production process and / or disinfection to said data generated by the microbiological determination kit.
  • FIG. 1 represents the evolution of the base call on the specific probes of Escherichia coli and Acinetobacter baumanii as a function of the number of rRNA copies of each of the partners added before amplification.
  • the area framed in the graph represents the E. coli / A proportions. baumanii from which E. coli targets can be interpreted by the chip.
  • Figure 2 shows the evolution of base call on specific E probes. coli, S. typhimurium and A. baumanii according to the proportions of the number of copies of marked transcripts representing the 3 species.
  • the strains used are:
  • Example 1 Detection and identification of a single bacterial cell in culture: case of 1 Escherichia coli (gram -) and of Enterococcus faecalis (gram +)
  • a lysis buffer containing 10mM Tris, 1mM EDTA (dilution of a TE100X solution sold by SIGMA, ref. T-9285) and lyzozyme (Sigma, ref. L-) are added 6876) whose concentration is different according to the Gram of the bacteria: 3 mg / ml for E. faecalis, 400 ⁇ g / l . for E. coli.
  • the lysis of the bacteria is carried out by leaving the tube containing the bacterial suspension in contact with the lysis buffer for 5 to 10 minutes at room temperature.
  • RT-PCR The two stages of RT and PCR will be carried out one after the other, in a single tube, using the ACCESS kit (ref A1250, Promega).
  • the buffer is added to 25 ⁇ l of the total RNA suspension.
  • the mixture is incubated for 45 minutes at 48 ° C., then 5 minutes at 94 ° C.
  • 35 cycles are then carried out, each consisting of the following 3 steps: 94 ° C 1 min, 55 ° C 1 min, 68 ° C 1 min. A final extension of 7 minutes at 68 ° C is then carried out. d) Verification of amplification
  • amplification product (amplicon) are deposited on a 1.5% agarose gel in EDTA-Tris Borate. After a migration of 20 minutes to
  • the amplification band is visualized by staining with Ethidium Bromide and by UV illumination. It is shown that the amplification is positive by the presence of a band having the expected size (450 base pairs).
  • e) Identification of the amplicon on a DNA chip (Affymetrix,
  • a biochip is synthesized on a solid glass support according to the method described in US Pat. No. 5,744,305 (Affymetrix, Fodor et al) using the resequencing strategy described in application WO 95/11995 (Affymax,
  • the oligonucleotides synthesized on the chip carry out the resequencing of the identification sequences. This process makes it possible to reduce the total number of oligonucleotides synthesized and therefore have a considerable advantage in terms of production cost and without compromising on the quality of the identification of the different microorganisms by the choice of these identification sequences.
  • the oligonucleotides have 20 bases, with an interrogation position in 12th position relative to the 3 'end of the sequence. For the E.
  • oligonucleotides of 17 bases with 2 interrogation positions: one in 10 and one in 8 th position.
  • Other oligonucleotides have lengths between 10 and 25 nucleotides. The interrogation positions then vary as a function of the length of the oligonucleotide.
  • the analysis is performed on the complete GeneChip® system (reference 900228, Affymetrix, Santa Clara, CA) which includes the GeneArray® reader, the GeneChip® hybridization oven, the GeneChip® fluid station and the GeneChip® analysis software. .
  • the antisense primer S9T7 all the amplification products have a promoter for RNA polymerase T7. These amplicons will then serve as a matrix for a transcription reaction during which a fluorescent ribonucleotide will be incorporated.
  • the labeled transcripts are cleaved into fragments of approximately 20 nuceotides.
  • the 20 ⁇ l of labeled transcripts are subjected to the action of imidazole (SIGMA) 30 mM and manganese chloride (Merck) 30 mM for 30 min at 65 ° C.
  • SIGMA imidazole
  • Merck manganese chloride
  • hybridization buffer the composition of which is SSPE 6X (Eurobio), DTAB 5 mM (Sigma), Triton 0.5% (Merk Eurolab).
  • This mixture is hybridized on the chip under the following conditions: 40 min at 45 ° C. After washing, the chip is scanned, then the hybridization image obtained is analyzed by Genechip ⁇ software (Affymetrix, Santa Clara) The hybridization spots allow the amplicon sequence to be reconstructed, which is then compared to the sequences of chip references. The sequence (and therefore the species which corresponds to it) which has the best percentage of homology (base-call, in%) with the amplicon sequence is retained for identification.
  • the interpretation threshold i.e. identification level, is set at at least 70% base-call on the identification sequence. Below this threshold, the target is not identified.
  • RNA extracted from a single bacterial cell gives rise to an amplification product, then to a correct identification on the biochip.
  • Example 2 Discrimination of mixtures of 2 different bacterial species.
  • eubacterial RT-PCR was applied to synthetic targets. That is, these targets come from the amplification and then the transcription of the entire 16S ribosomal DNA. These targets are called in-vitro transcripts.
  • the target is a mixture of in vitro transcripts representing the species Escherichia coli and Acinetobacter baumanii.
  • we add the target to the RT-PCR tube we no longer resonate in terms of number of bacteria, but in number of copies of in vitro transcripts, then in number of bacteria equivalents, starting from the following assumption: 1 bacteria correspond to 10 4 copies of 16S ribosomal RNA.
  • the transcripts were dosed at 10 11 copies / ⁇ l.
  • the dilution 10 8 copies / ⁇ l is prepared.
  • the dilutions 10 3 / ⁇ l, 10 4 / ⁇ l, 10 5 / ⁇ l and 10 6 / ⁇ l are prepared.
  • the conditions of the reaction mixture for RT-PCR are identical to those described in Example 1, paragraph c), except that the target volume is no longer 25 ⁇ l of a suspension of total RNA, but 2 ⁇ l of a mixture consisting of 1 ⁇ l of each dilution of transcript representing each species in the proportions following:
  • FIG. 1 shows that by reducing the number of copies of 16S rRNA to a number of bacteria, it is therefore possible to detect, by using the DNA chip, the equivalent of 1 E. coli in the presence of 10 4 In baumanii, a proportion of 0.01%.
  • Example 3 Discrimination of a mixture of 3 different bacterial species
  • the total number of copies in a hybridization mixture is fixed at 10 13 copies.
  • transcripts corresponding to the E. coli and S. thyphimurium species are in the same number of copies. These transcripts have been added with respect to the transcripts of A. baumanii as follows:
  • Figure 2 shows that the detection of E. coli is made at lower proportions (1%) than that of S. thyphimurium (10%). This result shows that it is possible to detect on the chip 3 different bacterial species.
  • the strains are grown in Trypcase Soy broth at 37 ° C. When the culture reaches an optical density of 0.2-0.3 (10 8 bacteria / ml),
  • the 3 bacterial species are mixed using the suspensions produced in part a), so as to have: 100 Escherichia
  • the final volume will be 100 ⁇ l.
  • RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref.
  • the base call on the identification sequence corresponding to each of the taxa must be greater than 90%. Below the target is not identified.
  • Example 5 simultaneous detection of Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella enteritidis and Pseudomonas aeruginosa
  • Salmonella enteritidis ATCC 13076 Salmonella enteritidis ATCC 13076
  • the bacterial suspensions are prepared according to the protocol indicated in Example 4, part a)
  • the 4 bacterial species are mixed using the suspensions produced in part a), so as to have: 100 Escherichia coli, 100 Staphylococcus aureus, 100 Salmonella enteritidis and 100 Pseudomonas aeruginosa.
  • RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref. A1250) according to the protocol indicated in Example 1, part c).
  • the base call on the identification sequence of each of the taxa must be greater than 90%. Below the target is not identified.
  • Example 6 Simultaneous detection of Escherichia coli, Cryptosporidium parvum and Poliovirus Sabin 3.
  • the RNeasy Mini Kit (Qiagen, ref. 74104) is used according to a modified protocol. To do this, 350 ⁇ l of RLT lysis buffer from the RNeasy kit is added to the 100 ⁇ l, and 25 ⁇ l of Proteinase K at 19 mg / ml (Roche, ref. 1964372) which brings back to 1 mg / ml. Leave to act for 30 minutes at 65 ° C. We then continue according to the RNeasy Mini Kit "for bacteria" protocol.
  • Escherichia coli RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref.
  • RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref. A1250). For this, we add to the 25 ⁇ l of total RNA obtained in step b) 2,
  • reaction mixture so as to have, in the final 50 ⁇ l: the 1 ⁇ AMV / Tfl buffer, 2.5 mM MgSO4, the 200 ⁇ M dNTPs, 5 U of Tfl, 5 U of AMV, 5 U of RNAsin (Promega ref. N2111 ), and the primers XIA2F and XIA2R 200pM.
  • Poliovirus Sabin 3 For the RT stage, the mixture is incubated for 45 min at 48 ° C. For the PCR step, incubate for 5 min at 94 ° C., then carry out 30 cycles each consisting of the following 3 steps: 94 ° C 45 sec, 55 ° C 45 sec, 68 ° C 1 min. A final extension of 7 min at 68 ° C is then carried out. 3. Poliovirus Sabin 3
  • RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref. A1250). For this, we add to the 25 ⁇ l of total RNA obtained in step b) 2,
  • reaction mixture 25 ⁇ l of reaction mixture so as to have, in the final 50 ⁇ l: the AMV buffer Tfl 1X, the MgSO4 2 mM, the dNTP 300 ⁇ M, 5U of Tfl, 5U of AMV, 5U of RNAsin (Promega ref. N2111), and 200pM specific primers.
  • the mixture is incubated for 45 min at 48 ° C.
  • PCR step incubate for 2 min at 94 ° C, then 40 cycles are carried out, each of the following 3 steps: 94 ° C 15 sec, 55 ° C 30 sec, 68 ° C 1 min. A final extension of 7 min at 68 ° C is then carried out.
  • the 3 tubes containing the 20 ⁇ l of transcription are combined the purification is done using the RNeasy Mini Kit (Qiagen ref. 74104), protocol for the purification of in vitro transcripts. 20 ⁇ l of transcript are obtained
  • the base call on the signature sequence of E. coli and C. parvum must be greater than 90%.
  • the detection threshold is above 85%
  • Vaccine strain of the Hepatitis A virus at 17.5 DICC 50 / ⁇ L extraction of nucleic acids using the Qiamp Viral RNA kit from Qiagen -ref 52904- according to the supplier's instructions) 2- RT-multiplex PCR
  • RT-PCR is carried out using the ACCESS kit (Promega, ref
  • the mixture is incubated for 45 minutes at 48 ° C. After a denaturation stage of 2 minutes at 94 ° C, the
  • Complementary DNA obtained are amplified in the following ways: 45 cycles of [15 seconds at 94 ° C, 30 seconds at 55 ° C, 45 seconds at 68 ° C] with an elongation step of 7 minutes.
  • the base call on the sequence corresponding to each virus must be greater than 95%. Below this threshold, the target is not identified.

Abstract

Procédé de contrôle de la qualité microbiologique d'un milieu aqueux environnemental, susceptible de comporter différents micro-organismes, comprenant les étapes suivantes: on choisit un ensemble de référence, constitué d'au moins trois micro-organismes, représentatifs, ensemble ou séparément, d'un niveau de qualité microbiologique, on dispose d'un nécessaire de détermination microbiologique, constitué d'au moins trois sondes d'identification spécifiquement et respectivement desdits trois microorganismes, après traitement du milieu à analyser, on met lesdits microorganismes, ou toute fraction obtenue à partir de ces derniers, en contact avec ledit nécessaire de détermination, moyennant quoi on multi-détermine lesdits microorganismes, cette détermination étant représentative du niveau de qualité microbiologique du milieu. Nécessaire de détermination microbiologique approprié pour la mise en oeuvre du procédé de l'invention.

Description

PROCEDE DE CONTRÔLE DE LA QUALITE MICROBIOLOGIQUE D'UN MILIEU AQUEUX ET NECESSAIRE APPROPRIE
La présente invention relève du domaine du diagnostic microbiologique, des techniques de détection permettant l'identification et la quantification de microorganismes présents dans des fluides et produits comme par exemple les eaux.
Elle concerne également des nécessaires de dosage et des procédés, permettant ces identifications et quantifications de microorganismes sur des échantillons de volumes importants, en des temps inférieurs à la journée, et permettant éventuellement un contrôle en suivi de production, voire un asservissement des techniques de purification et de production aux résultats de ces dosages.
Les méthodes classiques d'identification microbiologique requièrent une étape de culture sur milieux sélectifs suivie en général d'une identification, selon des caractéristiques morphologiques, biochimiques, et/ou immunologiques.
Ces méthodes sont longues, un jour à plusieurs semaines pour des bactéries à croissance lente, par exemple 10 à 12 jours pour Legionella, jusqu'à un mois pour les Mycobactéries, peu spécifiques, et peu sensibles quand elles sont appliquées à un échantillon complexe polymicrobien (eau, environnement, aliments). De plus, elles ne permettent pas de détecter les bactéries viables non cultivables (VBNC) stressées par des facteurs environnementaux ou des traitements de désinfection, et ne se prêtent pas à l'automatisation. Depuis plus de dix ans, les méthodes de biologie moléculaire, en particulier celles basées sur l'amplification enzymatique in vitro (PCR) et l'utilisation de sondes oligonucléotidiques ont révolutionné le diagnostic microbiologique.
Grâce à leur rapidité, sensibilité et spécificité, elles constituent une alternative aux méthodes classiques pour détecter en particulier des microorganismes indicateurs ou pathogènes dans des échantillons d'eau ou tout échantillon, permettant de détecter la présence de tels microorganismes dans l'environnement.
Parmi les méthodes de biologie moléculaire utilisées pour détecter en particulier des microorganismes indicateurs ou pathogènes dans des échantillons d'eau ou tout échantillon, permettant de détecter la présence de tels microorganismes, dans l'environnement, on peut citer notamment les suivantes.
Pour la détection des indicateurs de contamination fécale (conformes totaux, thermotolérants, E coli) usuellement recherchés dans le contrôle sanitaire de l'eau, des tests rapides basés sur une PCR-hybridation avec une sonde ont été développés pour des échantillons d'eau potable notamment [Bej, A.K. et al. Appl. Environ. Microbiol, 1990, n° 56, p. 307-314] [Fricker, E.J. et al., Letters in Applied icrobiology, 1994, n° 19, p. 44-46].
Ces indicateurs de contamination fécale ne permettent cependant pas de prédire la présence de contamination bactérienne d'origine non fécale {Pseudomonas aeruginosa, Legionella...) ainsi que de contaminations non bactériennes (virus et parasites).
Des tests de détection moléculaire basés sur la PCR pour rechercher spécifiquement des microorganismes pathogènes (bactéries, virus parasites) ont donc été développés.
Dans le domaine de la détection des bactéries, on notera notamment le brevet européen EP-A-0 438 115 qui décrit une méthode de détection des microorganismes pathogènes Legionella et des indicateurs de contamination fécale, via une étape d'amplification enzymatique in vitro dans des échantillons aquatiques environnementaux.
Plusieurs publications font également état de tests PCR pour détecter les Salmonelles dans l'eau et l'environnement, [Way.J.S. et al., Appl.
Environm. Microbiol., 1993, n° 59, p. 1473-1479] [Waage, A. S. et al., Appl.
Microbiol., 1999, n° 87, p. 418-428], de même que les Légionelles [Bej, A.K., Appl. Environ. Microbiol., 1991 , n° 57, p. 2429-2432],
Dans US-B-5,298,392 la détection d'indicateurs de contaminations fécales et pathogènes est décrite.
Dans le domaine de la détection des virus, leur présence n'étant pas corrélée à celle des indicateurs de contamination fécale traditionnellement recherchés dans le contrôle sanitaire de l'eau, des méthodes d'analyse rapides et efficaces sont nécessaires notamment pour le contrôle des contaminations virales des eaux.
Les méthodes conventionnelles pour détecter les virus dans l'eau et l'environnement requièrent une étape de culture cellulaire animale, méthode longue, lourde et contraignante, restreinte à quelques familles de virus. De nombreuses méthodes basées sur une- étape d'amplification enzymatique ont été décrites pour rechercher les virus pathogènes dans l'eau et l'environnement. A titre d'exemples, on pourra citer, pour la détection par RT-PCR des Enterovirus, Hépatite A et Rotavirus, dans des échantillons d'eau [Abbaszadegan M. et al., Appl. Environ. Microbiol., 1997, n° 63(1), p. 324-328] et [Gilgen M. et al. , International Journal of food Microbiology, 1997 , n° 37, p. 189-199]
Dans le domaine de la détection des parasites notamment pour la détection de Giardia et Cryptosporidium qui sont deux parasites, dont la transmission dans l'eau et l'environnement sous une forme enkystée (oocyste et cyste) les rend particulièrement résistants aux traitement classiques de désinfection comme la chloration, des méthodes conventionnelles standardisées (EPA 1622-1623 et DWI) ont été mises au point. Elles comprennent une étape de filtration suivie d'une capture immunomagnétique (IMS) des oocystes et d'une détection par immunofluorescence (IFA). Ces méthodes sont longues, fastidieuses, non spécifiques des espèces pathogènes pour l'homme (Giardia lamblia et Cryptosporidium parvum) et ne permettent pas de déterminer la viabilité des parasites détectés.
Des méthodes moléculaires plus rapides, sensibles et spécifiques basées sur une étape d'amplification enzymatique (PCR) ont été décrites.
Dans WO-A-94/02635, WO-A-97/02281 et US-A-5,693,472 des amorces et sondes pour détecter l'espèce C. parvum dans des échantillons aquatiques et/ou biologiques sont décrits.
EP-A-0 453 290 et US-A-5,558,989 décrivent une méthode de détection de l'espèce pathogène chez l'homme, Giardia lamblia, basée sur l'utilisation de sondes nucléiques (ADN et/ou ARN) correspondant à la séquence de 18S rRNA. EP-A-0 550 883 décrit un test PCR avec réactifs pour rechercher G. lamblia dont la sensibilité est de 1-5 oocystes / ml de concentrât d'eau. Des méthodes moléculaires distinguant les parasites morts des parasites viables et/ou infectieux permettant ainsi de mieux apprécier le risque sanitaire réel posé par la présence de ces parasites dans l'eau ont été décrites.
On citera notamment WO-A-97/42349 qui concerne la détection des Cryptosporidium et Giardia viables (par détection des ARNm des protéines de chocs thermiques hsp 70) et/ou infectieux (culture cellulaire et amplification enzymatique) et US-A-5,556,774 qui concerne une méthode de détection des Cryptosporidium viables par combinaison d'une étape PCR et une étape d'excystation in vitro.
Si les principales méthodes moléculaires citées ci-dessus pour rechercher des indicateurs de contamination et des microorganismes pathogènes incluant des bactéries, parasites, et virus sont beaucoup plus performantes que les méthodes classiques en termes de rapidité, sensibilité et spécificité, elles ne ciblent qu'un type de micro-organisme par test.
Aussi pour mesurer ou détecter plusieurs paramètres il faudrait mettre en œuvre autant de tests spécifiques, que de paramètres à mesurer ou détecter, ce qui rend une analyse microbiologique complète extrêmement lourde.
Quelques approches de multidétection ont été décrites mais leur capacité de multidétection est faible puisqu'elles ne détectent au maximum que
3 paramètres. On citera en particulier la technique de multiplex PCR qui consiste à réaliser plusieurs réactions PCR dans le même tube.
A titre d'exemple dans [Bej, A.K. et al., Appl. Environ. Microbiol.,
1991, n° 57, p. 597-700] on décrit la détection simultanée de Legionella et
L pneumophila et la détection simultanée sur E. coli, Salmonella et Shigella, dans [Bej, A.K. et al., Appl. Environ. Microbiol., 1991, n° 57, p. 2429-2432] la détection simultanée des conformes totaux, E coli et Shigella, et dans EP-A-
0438 115 la détection des Legionelles et indicateurs de contamination fécales. La technique d'hybridation in situ (FISH) réalisée avec deux ou au maximum trois sondes fluorescentes peut permettre de détecter plusieurs paramètres simultanément mais avec une sensibilité moins élevée que les méthodes d'amplification enzymatique citées ci-dessus.
Dans la publication [Eggers, M. et al., Presented at the 27th
International Conférence on Environmental Systems, 1997], on décrit une approche pour détecter simultanément des microorganismes de l'eau et l'air dans l'espace. Cette approche ne cible que les bactéries, par exemple E. coli et Vibrio proteolyticus, par hybridation directe de l'ARNr 16S sur un support solide (microplaque à 96 puits). Il n'y a pas d'étape d'amplification enzymatique aussi la sensibilité est peu élevée, et la capacité de multidétection est restreinte à quelques microorganismes, néanmoins une méthode de multidétection dans l'eau et l'air utilisant une technique apparentée aux biopuces est décrite. Avant de poursuivre, et pour la clarté et la bonne compréhension, différents termes utilisés dans la description et les revendications nécessitent d'être définis.
- Un fragment nucléotidique, ou un oligonucléotide, ou un polynucléotide, est un enchaînement de motifs nucléotidiques assemblés entre eux par des liaisons ester phosphorique, caractérisé par la séquence informationnelle des acides nucléiques naturels, susceptibles de s'hybrider à un fragment nucléotidique dans des conditions prédéterminées, l'enchaînement pouvant contenir des monomères de structures différentes et être obtenu à partir d'une molécule d'acide nucléique naturelle et/ou par recombinaison génétique et/ou par synthèse chimique.
- Un motif nucléotidique est dérivé d'un monomère qui peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont les éléments constitutifs sont un sucre, un groupement phosphate et une base azotée ; dans l'ADN le sucre est le désoxy-2-ribose, dans l'ARN le sucre est le ribose ; selon qu'il s'agisse de l'ADN OU de l'ARN, la base azotée est choisie parmi l'adénine, la guanine, l'uracile, la cytosine, la thymine ; ou bien le monomère est un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs précités ; à titre d'exemple, la modification peut intervenir soit au niveau des bases, avec des bases modifiées telles que l'inosine, la méthyl-5-désoxycytidine, la désoxyuridine, la diméthylamino-5-désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine ou toute autre base modifiée capable d'hybridation, soit au niveau du sucre, par exemple le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide [P.E. Nielsen et al, Science, 1991 , n° 254, p. 1497-1500], soit encore au niveau du groupement phosphate, par exemple son remplacement par des esters notamment choisis parmi les diphosphates, alkyl- et aryl- phosphonates et phosphorothioates.
- Par "séquence « informationnelle », on entend toute suite ordonnée de motifs de type nucléotidique, dont la nature chimique et l'ordre dans un sens de référence constituent une information de même qualité que celle des acides nucléiques naturels.
- Par hybridation, on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques, ayant des séquences suffisamment complémentaires sont susceptibles de former un double brin avec des liaisons hydrogène stables et spécifiques. Un fragment nucléotidique « capable de s'hybrider » avec un polynucléotide est un fragment pouvant s'hybrider avec ledit polynucléotide dans des conditions d'hybridation, qui peuvent être déterminées dans chaque cas de façon connue. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la stringence, c'est-à-dire la rigueur des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est définie notamment en fonction de la composition en bases d'un duplex sonde/cible, ainsi que par le degré de mésappariement entre deux acides nucléiques.
La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la concentration d'agents dénaturants et/ou la température d'hybridation. La stringence des conditions dans lesquelles une réaction d'hybridation doit être réalisée dépendra principalement des sondes utilisées. Toutes ces données sont bien connues et les conditions appropriées peuvent être déterminées par l'homme du métier. En général, selon la longueur des sondes utilisées, la température pour la réaction d'hybridation est comprise entre environ 20 et 65°C, en particulier entre 35 et 65°C dans une solution saline à une concentration d'environ 0,8 à 1 molaire.
- Une sonde est un fragment nucléotidique comprenant de 5 à 100 monomères, notamment de 6 à 35 monomères, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec un fragment nucléotidique ayant, par exemple, une séquence nucléotidique comprise dans un ARN ribosomique, l'ADN obtenu par transcription inverse dudit ARN ribosomique et l'ADN (appelé ici ADN ribosomique ou ADNr) dont ledit ARN ribosomique est le produit de transcription ; une sonde peut être utilisée à des fins de diagnostic (notamment sondes de capture ou de détection).
- Une sonde de capture est immobilisée ou immobilisable sur un support solide par tout moyen approprié, c'est-à-dire directement ou indirectement, par exemple par covalence ou adsorption.
- Une sonde de détection peut être marquée au moyen d'un marqueur choisi parmi les isotopes radioactifs, des enzymes (notamment une peroxydase, une phosphatase alcaline, ou une enzyme susceptible d'hydrolyser un substrat chromogène, fluorigène ou luminescent), des composés chimiques chromophores, des composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, des analogues de bases nucléotidiques, et des ligands tels que la biotine.
- Une amorce est une sonde comprenant de 5 à 100, préférentiellement de 10 à 40 motifs nucléotidiques et possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour l'initiation d'une polymérisation enzymatique, par exemple dans une technique d'amplification telle que la PCR (Polymerase Chain Reaction), dans un procédé de séquençage, dans une méthode de transcription inverse, etc..
- L'identité entre un fragment et une séquence de référence, qui caractérise le degré d'identité entre ledit fragment et ladite séquence, est mesuré par alignement dudit fragment sur ladite séquence puis détermination du nombre de monomères identiques entre les deux.
Les sondes et amorces selon l'invention sont choisies parmi :
(a) les séquences identifiées dans le listage de séquences annexé à la description,
(b) tout fragment des séquences (a), à la fois, comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque des séquences (a) et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite séquence (a) ; à titre d'exemple, un fragment (b) comporte 10 nucleotides parmi lesquels 5 nucleotides contigus appartiennent à une séquence (a) et au moins 2 nucleotides des 5 nucleotides restants sont identiques respectivement aux deux nucleotides correspondants dans la séquence de référence, après alignement.
- Par séquence d'identification, on désigne toute séquence ou tout fragment tel que défini ci-dessus, pouvant servir de sonde de détection et/ou de capture.
- Par traitement du milieu aqueux, on entend toute étape de filtration et/ou de lyse et/ou de purification.
- Par étape de lyse, on entend une étape capable de libérer les acides nucléiques contenus dans les enveloppes proteiques et/ou lipidiques des microorganismes (comme des débris cellulaires qui perturbent les réactions ultérieures). A titre d'exemple, on peut utiliser les méthodes de lyse telles que décrite dans les demandes de brevet de la Demanderesse :
WO-A-00/05338 sur la lyse mixte magnétique et mécanique, WO-A-99/53304 sur la lyse électrique, et
WO-A-99/15321 sur la lyse mécanique. L'homme du métier pourra utiliser d'autres méthodes de lyse bien connues telles que les chocs thermiques ou osmotiques ou les lyses chimiques par des agents chaotropiques tels que les sels de guanidium (US-A- 5,234,809). - Par étape de purification, on entend la séparation entre les acides nucléiques des micro-organismes et les constituants cellulaires relargués dans l'étape de lyse. Cette étape permet généralement de concentrer les acides nucléiques. A titre d'exemple, on peut utiliser des particules magnétiques éventuellement revêtues d'oligonucléotides, par adsorption ou covalence (voir à ce sujet les brevets US-A-4,672,040 et US-A-5,750,338), et ainsi purifier les acides nucléiques qui se sont fixés sur ces particules magnétiques, par une étape de lavage. Cette étape de purification des acides nucléiques est particulièrement intéressante si l'on souhaite amplifier ultérieurement lesdits acides nucléiques. Un mode de réalisation particulièrement intéressant de ces particules magnétiques est décrit dans les demandes de brevet déposées par la Demanderesse sous les références suivantes : WO-A-97/45202 et WO-A- 99/35500.
Dans la dernière de ces demandes de brevet, il s'agit de particules magnétiques thermosensibles ayant chacune un noyau magnétique recouvert d'une couche intermédiaire. La couche intermédiaire est elle-même recouverte par une couche externe à base d'un polymère susceptible d'interagir avec au moins une molécule biologique, le polymère externe est thermosensible et présente une température critique inférieure de solubilité (LCST) prédéterminée comprise entre 10 et 100°C et de préférence entre 20 et 60°C. Cette couche externe est synthétisée à partir de monomères cationiques, qui génèrent un polymère ayant la capacité de lier les acides nucléiques. Cette couche intermédiaire isole les charges magnétiques du noyau, afin d'éviter les problèmes d'inhibition des techniques d'amplification de ces acides nucléiques.
Un autre exemple intéressant de méthode de purification des acides nucléiques est l'utilisation de silice soit sous forme de colonne (kits Qiagen par exemple), soit sous forme de particules inertes [Boom R. et al., J. Clin. Microbiol., 1990, n°28(3), p. 495-503] ou magnétiques (Merck: MagPrep® Silica, Promega: MagneSil™ Paramagnetic particles). D'autres méthodes très répandues reposent sur des résines échangeuses d'ions en colonne (kits Qiagen par exemple) ou en format particulaire paramagnétique (Whatman: DEAE-Magarose) [Levison PR et al., J. Chromatography, 1998, p. 337-344]. Une autre méthode très pertinente pour l'invention est celle de l'adsorption sur support d'oxyde métallique (société Xtrana: matrice Xtra-Bind™).
- Par étape de détection on entend soit une détection directe par une méthode physique, soit une méthode de détection à l'aide d'un marqueur. De nombreuses méthodes de détection existent pour la détection des acides nucléiques. [Voir par exemple Kricka et al., Clinical Chemistry, 1999, n° 45(4), p.453-458 ou Keller G.H. et al., DNA Probes, 2nd Ed., Stockton Press, 1993, sections 5 et 6, p.173-249].
Dans un premier mode de réalisation de l'invention, une méthode d'hybridation à l'aide de sondes spécifiques est mise en œuvre pour l'étape de détection. Ce mode d'exécution particulier consiste à mettre en contact les acides nucléiques, amplifiés ou non, des micro-organismes à détecter avec une sonde de capture fixée sur un support solide, et capable de s'hybrider spécifiquement avec lesdits acides nucléiques; puis à révéler, selon les méthodes connues, la présence éventuelle des acides nucléiques fixés au support solide notamment par l'intermédiaire d'au moins une sonde de capture.
Par "marqueur", on entend un traceur capable d'engendrer un signal. Une liste non limitative de ces traceurs comprend les enzymes qui produisent un signal détectable par exemple par colorimétrie, fluorescence ou luminescence, comme la peroxydase de raifort, la phosphatase alcaline, la bêtagalactosidase, la glucose-6-phosphate déshydrogénase ; les chromophores comme les composés fluorescents, luminescents ou colorants ; les groupements à densité électronique détectable par microscopie électronique ou par leurs propriétés électriques comme la conductivité, par les méthodes d'ampérométrie ou de voltametrie, ou par des mesures d'impédance ; les groupements détectables par des méthodes optiques comme la diffraction, la résonance plasmon de surface, la variation d'angle de contact ou par des méthodes physiques comme la spectroscopie de force atomique, l'effet tunnel, etc. ; les molécules radioactives comme 32P, 35S ou 125l. Ainsi, le polynucléotide peut être marqué pendant l'étape d'amplification enzymatique, par exemple en utilisant un nucléotide triphosphate marqué pour la réaction d'amplification. Le nucléotide marqué sera un désoxyribonucléotide dans les systèmes d'amplification générant un ADN, comme la PCR, ou un ribonucléotide dans les techniques d'amplification générant un ARN, comme les techniques TMA ou NASBA. Le polynucléotide peut aussi être marqué après l'étape d'amplification, par exemple en hybridant une sonde marquée selon la technique d'hybridation sandwich décrite dans le document WO-A-91/19812.
Un autre mode particulier préférentiel de marquage d'acides nucléiques est décrit dans la demande FR-A-2 780 059 de la Demanderesse. Un autre mode préférentiel de détection utilise l'activité exonucléase 5'-3' d'une polymérase tel que décrit par Holland P.M., PNAS (1991) p 7276-7280.
Des systèmes d'amplification du signal peuvent être utilisés comme décrit dans le document WO-A-95/08000 et, dans ce cas, la réaction préliminaire d'amplification enzymatique peut ne pas être nécessaire.
- Par amplification enzymatique, on entend une processus générant de multiples copies d'un fragment nucléotidique particulier à l'aide d'amorces spécifiques par l'action d'au moins une enzyme. Ainsi, pour l'amplification des acides nucléiques, il existe, entre autres, les techniques suivantes : - PCR (Polymérase Chain Reaction), telle que décrite dans les brevets US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 et US-A-4,800,159,
- LCR (Ligase Chain Reaction), exposée par exemple dans la demande de brevet EP-A-0 201 184,
- RCR (Repair Chain Reaction), décrite dans la demande de brevet WO-A-90/01069,
- 3SR (Self Sustained Séquence Replication) avec la demande de brevet WO-A-90/06995,
- NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) avec la demande de brevet WO-A-91 /02818, et - TMA (Transcription Mediated Amplification) avec le brevet US-A-5,399,491.
On parle alors d'amplicons pour désigner les polynucléotides générés par une technique d'amplification enzymatique.
- Le terme "support solide" tel qu'utilisé ici inclut tous les matériaux sur lesquels peut être immobilisé un acide nucléique. Des matériaux de synthèse, ou des matériaux naturels, éventuellement modifiés chimiquement, peuvent être utilisés comme support solide, notamment les polysaccharides tels que les matériaux à base de cellulose, par exemple du papier, des dérivés de cellulose tels que l'acétate de cellulose et la nitrocellulose, ou le dextran ; des polymères, des copolymères, notamment à base de monomères du type styrène, des fibres naturelles telles que le coton, et des fibres synthétiques telles que le nylon ; des matériaux- minéraux tels que la silice, le quartz, des verres, des céramiques ; des latex ; des particules magnétiques ; des dérivés métalliques, des gels etc. Le support solide peut être sous la forme d'une plaque de microtitration, d'une membrane comme décrit dans la demande WO -A-94/12670, d'une particule ou d'une biopuce.
- Par "biopuce", on entend un support solide de dimension réduite où sont fixés une multitude de sondes de capture à des positions prédéterminées.
A titre d'illustration, des exemples de ces biopuces sont donnés dans les publications de [G. Ramsay, Nature Biotechnology, 1998, n°16, p. 40- 44 ; F. Ginot, Human Mutation, 1997, n°10, p.1-10 ; J. Cheng et al, Molecular diagnosis, 1996, n°1(3), p.183-200 ; T. Livache et al, Nucleic Acids Research, 1994, n° 22(15), p. 2915-2921 ; J. Cheng et al, Nature Biotechnology, 1998, n° 16, p. 541-546] ou dans les brevets US-A-4,981 ,783, US-A-5,700,637, US-A- 5,445,934, US-A-5,744,305 et US-A-5,807,522.
La caractéristique principale du support solide doit être de conserver les caractéristiques d'hybridation des sondes de capture sur les acides nucléiques tout en générant un bruit de fond minimum pour la méthode de détection. Un avantage des biopuces est qu'elles simplifient l'utilisation de nombreuses sondes de capture permettant ainsi la détection multiple de microorganismes à détecter tout en tenant compte du polymorphisme desdits microorganismes à détecter
L'invention décrite ci-après permet de résoudre les problèmes posés par les méthodes précédemment décrites, à la fois en terme de sensibilité, spécificité et capacité de multidétection, tout en étant rapide et facile à mettre en œuvre.
Un premier objet de l'invention est un procédé de contrôle de la qualité microbiologique d'un milieu aqueux environnemental, susceptible de comporter différents micro-organismes, comprenant les étapes suivantes : - on choisit un ensemble de référence, constitué d'au moins trois microorganismes, représentatifs, ensemble ou séparément, d'un niveau de qualité microbiologique,
- on dispose d'un nécessaire de détermination microbiologique, constitué d'au moins trois sondes d'identification spécifiquement et respectivement desdits trois microorganismes, - après traitement du milieu à analyser, on met - lesdits microorganismes, ou toute fraction obtenue à partir de ces derniers, en contact avec ledit nécessaire de détermination, moyennant quoi on multi-détermine lesdits microorganismes, cette détermination étant représentative du niveau de qualité microbiologique du milieu.
L'invention concerne aussi un nécessaire de détermination microbiologique comprenant un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites, lesdites sondes d'identification étant chacune spécifiques d'une espèce ou au moins d'un genre de bactérie, virus ou parasite susceptible d'être présent dans un échantillon de liquide à doser.
Selon l'invention, un nécessaire désigne toute méthode manuelle, semi-automatique ou automatique permettant la mise en œuvre d'un moyen de dosage, dosage signifiant l'identification et/ou la détermination de la viabilité et/ou la quantification, chacun de ces trois paramètres étant déterminés en séquence ou selon les combinaisons : identification seule ; identification et quantification ; identification et viabilité ; identification, quantification et viabilité.
Cette invention concerne également une méthode de multidétection utilisant en particulier la technique des biopuces pour rechercher un grand nombre des paramètres microbiologiques incluant des indicateurs de contamination exigés dans les différentes législations (USA, France, Europe) et des microorganismes pathogènes incluant des bactéries, virus et parasites.
En une seule mise en œuvre une analyse microbiologique complète d'un échantillon peut être réalisée avec rapidité en par exemple environ 4 heures et avec une grande sensibilité par exemple de l'ordre de 1 micro cible/101-1001 grâce à l'étape d'amplification enzymatique.
Cette méthode de multidétection est spécifique des espèces recherchées grâce à l'utilisation de séquences, dites séquences d'identification de chaque espèce, comme sonde, et peut permettre de déterminer la viabilité des microorganismes par la détection de marqueurs de viabilité comme par exemple, ARNr et/ou ARNm.
La rapidité, la sensibilité et la spécificité de cette méthode de multidétection, permettent de l'appliquer indifféremment à tout milieu aqueux environnemental, c'est à dire tout milieu aqueux à l'exclusion de tout fluide corporel. En particulier cette méthode s'applique à toute eau destinée à la consommation humaine, eaux propres industrielles, eaux résiduaires urbaines et industrielles, eaux de l'industrie agro-alimentaire, eaux de process et à tout fluide ou produit.
Cette détection simultanée en une seule étape de multiples produits d'amplifications spécifiques, est possible grâce à l'utilisation de support solide en particulier sous la forme d'un support solide de dimension réduite où sont fixées une multitude de sondes de capture à des positions prédéterminées, ou « biopuce », ces sondes de capture étant constituées par un jeu de fragments ou de la totalité de séquences nucléotidiques spécifiques dites séquences d'identification des microorganismes recherchés. Ces séquences d'identification ou ces fragments peuvent également être mis en œuvre dans toutes les techniques d'hybridation connues comme les techniques de dépôt ponctuel sur filtre dites "DOT-BLOT"[Maniatis et al, Molecular Cloning, Cold Spring Harbor, 1982], les techniques de transfert d'ADN dites "SOUTHERN BLOT" [Southern E. M., J. Mol. BioL, 1975, 98, 503], les techniques de transfert d'ARN dites "NORTHERN BLOT", ou les techniques "SANDWICH" [Dunn A.R. et al., Cell,1977, 12,23].
Parmi les microorganismes recherchés, on citera à titre d 'exemple les microorganismes suivants : Parmi les bactéries : Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7,
Helicobacter pylori, Enterococcus faecalis , Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Staphylococcus epidermatitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, le genre Mycobacterium, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, le genre Legionella, Legionella pneumophila, le genre Salmonella.
Parmi les virus et plus particulièrement parmi les Adenovirus, les Adeno virus 40, et les Adeno virus 41 bis ; les Astrovirus, HastV-1-2 ; les Enterovirus, tels que Poliovirus, Coxsackievirus, ou Echovirus, les Rotavirus, les Calicivirus, tels que Virus de Norwalk, Virus de Sapporo, et les virus de l'Hépatite tels que le virus de l'Hépatite A,
Parmi les parasites :
Le genre Cryptosporidium, tel que Cryptosporidium parvum, le genre Giardia, tel que Giardia lamblia et les Microsporidies.
Les microorganismes peuvent être recherchés au niveau du genre auquel ils appartiennent soit au niveau taxonomique inférieur c'est à dire au niveau de l'espèce, soit au niveau des sérotypes, des sous-types et en épidémiologie : par exemple pour Legionella la détermination pourra être effectuée par la séquence d'identification SEQ ID NO:9 pour la recherche au niveau du genre et par SEQ ID NO: 10 ou 11 pour une détermination par une séquence d'identification spécifique de la bactérie Legionella pneumophila.
Les séquences matérialisées sur la biopuce, dites séquences d'identification correspondant aux espèces recherchées seront choisies parmi les séquences dont la liste est jointe en annexe de SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO: 104.
Des variantes de mises en œuvre du procédé selon l'invention sont ci-après exposées.
Le nécessaire de détermination microbiologique exposé aux microorganismes du milieu aqueux répond avantageusement à l'une quelconque des présentations suivantes :
Les trois sondes d'identification qu'il comprend ont au moins une séquence choisie parmi l'une quelconque des séquences SEQ ID Nos :1-104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Il comprend au moins une sonde d'identification spécifique à une bactérie, au moins une sonde d'identification spécifique à un parasite et au moins une sonde d'identification spécifique à un virus ; de préférence, il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO :1 à SEQ ID NO :39, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:61, SEQ ID NO:66 à SEQ ID NO:69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO :63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites - séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; et au moins une séquence choisie parmi entre SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60,et SEQ ID NO:70 à SEQ ID NO:104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Il comprend au moins quatre sondes d'identification spécifiques à au moins quatre bactéries différentes ; de préférence, elles sont choisies parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:66 à SEQ ID NO:69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. II comprend au moins cinq sondes d'identification spécifiques à au moins cinq virus différents ; de préférence, elles sont choisies parmi SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, et SEQ ID NO:70 à SEQ ID NO:104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins deux sondes d'identification spécifiques à au moins deux parasites ; de préférence, elle est choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49 et SEQ ID NO:63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins une sonde d'identification spécifique à une bactérie et au moins une sonde d'identification spécifique à au moins un parasite. De préférence, il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:67 à SEQ ID NO:69, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence, et au moins une sonde d'identification comprise SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:497_ SEQ ID NO:63 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes : Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO9:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes : Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens. De préférence, au moins une sonde d'identification dudit nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:28, SEQ ID NO:29, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Genre Cryptosporidium. De préférence, au moins une sonde dudit nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Gardia lamblia, Cryptosporidium parvum. De préférence, au moins une sonde dudit nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:46 à SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO:63, SEQ ID NO:64 et SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans r'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Enterovirus, Genre Cryptosporidium, De préférence, au moins une sonde d'identification dudit nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:70 à SEQ ID NO:75, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:61 à SEQ ID NO:75, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:11 , SEQ ID NO:14 à SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:51, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO:104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, Acinetobacter baumanii, Staphylococcus epidermidis, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Astrovirus. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:6, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO: 104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes : Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157:H7, Helicobacter pylori, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens , Staphylococcus epidermitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter jejunir_Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, le genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, le genre Legionella, Legionella pneumophila, le genre Salmonella.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants : les Adenovirus, tels que Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; les Astrovirus, HAstV-1-2; les Enterovirus, tels que Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, les Rotavirus, les Calicivirus, tels que Virus de Norwalk, Virus de Sapporo, et les virus de l'Hépatite tel que le virus de l'Hépatite A.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les parasites suivants :
Le genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia,
Giardia lamblia et les Microsporidies. Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis,
Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre
Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila,
Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID
NO:4, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:11, SEQ ID NO:14 à SEQ ID NO:20, SEQ
ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:51 ,
SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO .75,
SEQ ID NO :97, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec .ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A. De préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire est choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:11 , SEQ ID NO:14 à SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:51 , SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO :68, SEQ ID NO :70 à SEQ ID NO :75, SEQ ID NO :97, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus. De préférence au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO:14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11, SEQ ID 23, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants : Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi les Calicivirus et les Rotavirus. De préférence au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO 59, SEQ ID NO :60 SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO :98 à SEQ ID NO :104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants :
Virus de l'hépatite A, Enterovirus, au moins un virus choisi parmi le virus de Norwalk et les Rotavirus. De préférence au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO :60, SEQID NO :97, SEQ ID NO :70 à SEQ ID NO :75, SEQ ID NO 76 à SEQ ID NO 96, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les parasites suivants : genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia. De préférence au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus, Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi les Calicivirus et les Rotavirus, genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia ; de préférence, au moins une sonde d'identification du nécessaire de détermination est choisie parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO :60 SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO :98, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence, ou Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre
Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus, Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi le vrius de Norwalk et les Rotavirus, genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia ; de préférence, au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23, SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO :60, SEQID NO :97, SEQ ID NO .70 à SEQ ID NO 75, SEQ ID NO 76 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi Virus de Norwalk, Virus Hepatitis A, Enterovirus. De préférence, au moins une sonde d'identification choisie parmi parmi SEQ ID NO 59, SEQ ID NO :60, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 75.
Les sondes de capture comportent avantageusement au moins 10, de préférence au moins 13, voire au moins 15, même au moins 17 bases et/ou au plus 35, de préférence au 25, voire au plus 20. Par exemple, une sonde de capture comporte entre 10 et 35 bases, avantageusement entre 17 et 20 bases, avec au moins une position d'interrogation située dans la région centrale de la séquence connue, en 12eme position par rapport à l'extrémité 3' de la séquence. Pour les espèces E. coli et E. faecalis, il y aura de préférence des sondes de capture de 17 bases, avec 2 positions d'interrogations : une en 10eme et une en 8eme position. Ces sondes de capture ont, suivant le cas des longueurs comprises entre 10 et 25 nucleotides. Les positions d'interrogation varient alors en fonction de la longueur de la sonde de capture. Les séquences spécifiques dites séquences d'identification, ont été sélectionnées par des techniques de sélection informatique et sont chacune suffisamment spécifique d'une espèce et/ou d'un membre d'une espèce qu'elles permettent de discriminer des genres taxonomiquement proches et/ou des espèces du même genre et d'éviter les phénomènes d'hybridation croisée.
Dans un mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites comprenant au moins quatre sondes d'identification spécifiques à au moins quatre bactéries différentes. Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites comprenant au moins cinq sondes d'identification spécifiques à au moins cinq virus différents.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites comprenant au moins deux sondes d'identification spécifique à un parasite.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites comprenant au moins une sonde spécifique d'une bactérie et au moins une sonde d'identification spécifique d'un parasite.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes spécifiques des bactéries sont choisies parmi les sondes spécifiques des bactéries suivantes :
Escherichia coli, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes spécifiques des bactéries sont choisies parmi les sondes spécifiques des bactéries suivantes :
Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes spécifiques des bactéries sont choisies parmi les sondes spécifiques des bactéries suivantes :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis , Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes spécifiques des bactéries sont choisies parmi les sondes spécifiques des bactéries suivantes : Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7,
Helicobacter pylori, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens , Staphylococcus epidermitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia , le genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, le genre Legionella, Legionella pneumophila, le genre Salmonella.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants : Escherichia coli, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Genre
Cryptosporidium.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants :
Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Gardia lamblia, Cryptosporidium parvum.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants : Escherichia coli, - Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium,
Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus,
Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia,
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants : Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium,
Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, Acinetobacter baumanii, Staphylococcus epidermidis, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Astrovirus. Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites choisis les microorganismes suivants : Escherichia coli, Enterovirus, Genre Cryptosporidium,
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes d'identification spécifiques des virus sont spécifiques des virus suivants : les Adenovirus, tel que Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; les Astrovirus, HastV-1-2; les Enterovirus, tels qiue Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, les Rotavirus, les Calicivirus, tels que Virus de Norwalk, Virus de Sapporo et, les virus de l'Hépatite tel que le virus de l'Hépatite A.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention le nécessaire de détermination microbiologique comprend un mélange de sondes d'identification de bactéries et/ou de virus et/ou de parasites dont les sondes spécifiques des parasites sont choisies parmi les sondes spécifiques des parasites suivants : Le genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia et les Microsporidies.
Selon l'invention dans un mode de réalisation, le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66 à
SEQ ID NO:69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO: 63 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; et au moins une séquence choisie parmi
SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO70 à SEQ ID NO:104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins 4 sondes d'identifications choisies parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66 à SEQ ID NO:69, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins 5 sondes d'identification comprise entre SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO70 à SEQ ID NO:104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO: 63 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66 à SEQ ID NO:69, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence, et au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO: 63 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Selon l'invention dans un . mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:28, SEQ ID NO:29, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:66, SEQ ID NO:68, SEQ ID NO:69, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO70 à SEQ ID NO75, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:61 à SEQ ID NO75, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:9, SEQ ID NO:10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 14 à SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:51 , SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO:59, SEQ ID NO:60 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une séquence comprise entre SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:6, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:22, et SEQ ID NO:23 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56 à SEQ ID NO: 104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO:14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23. et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 75 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 98, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO 76 à SEQ ID NO 96 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Selon l'invention dans un mode de réalisation différent le nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon comprend au moins une séquence comprise entre choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
Ces fragments nucléotidiques, dite séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Genre Mycobacterium, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracelluiare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, Acinetobacter baumanii, Staphylococcus epidermidis, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Astrovirus.
Les Adenovirus, tel que Adeno virus 40, Adeno virus 41 bis; les Astrovirus, HastV-1-2 ; les Enterovirus, tels que Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, les Rotavirus, les Calicivirus, tels que Virus de Norwalk, Virus de Sapporo, et les virus de l'Hépatite, tel que l'Hépatite A, le genre Cryptosporidium, tels que Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia et les Microsporidies.
Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus
Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens.
Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Genre Cryptosporidium Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterovirus et Genre Cryptosporidium. Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia,
Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus. Dans un autre mode de réalisation ces séquences d'identification selon l'invention permettent le dosage sélectif d'un microorganisme en présence d'au moins 2 autres microorganismes choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus : virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, Acinetobacter baumanii, Staphylococcus epidermidis, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Astrovirus.
On pourra également concevoir et utiliser un nécessaire de détermination microbiologique selon l'invention comportant des séquences d'identification pour identifier des microorganismes au niveau des sérotypes, des sous-types et en épidémiologie. Le procédé d'analyse d'un échantillon susceptible de contenir au moins une bactérie, parasite et/ou virus, selon l'invention utilise un mélange de séquences nucléotidiques comme sondes d'identification spécifiques d'un sérotype, d'un sous-type, d'une espèce ou au moins un genre de bactérie, virus et/ou parasite susceptible d'être présent dans l'échantillon.
Ce procédé d'analyse d'un échantillon selon l'invention est caractérisé par une étape de détection comprenant la mise en œuvre d'un nécessaire de détermination microbiologique tel que défini précédemment.
Dans un mode préférentiel d'exécution préalablement à l'étape de détection, on peut effectuer au moins une étape de lyse.
Dans un autre mode d'exécution, postérieurement à cette étape de lyse, on effectue une étape d'amplification.
L'invention concerne également un procédé de contrôle d'un échantillon liquide dans lequel préalablement à toute étape de détection une étape d'enrichissement en microorganismes dudit échantillon est effectuée.
Cette étape d'enrichissement peut être effectuée par filtration notammment en utilisant un moyen de filtration comprenant des fibres creuses et utilisé en mode frontal permettant d'obtenir dans un temps limité, à partir d'un échantillon liquide de départ de volume important et prédéterminé, un échantillon à analyser d'un volume suffisamment faible, tout en garantissant la viabilité des microorganismes, pour que les techniques d'analyse, notamment la multidétection selon l'invention, puissent être ensuite mises en œuvre.
Ce moyen de filtration est basé sur la technique de l'ultrafiltration sur fibres creuses en mode frontal. Par mode frontal, par opposition au mode tangentiel, on entend tout passage en une passe d'un échantillon liquide de départ dans le moyen de filtration, sans recyclage d'au moins une partie du même échantillon à l'entrée dudit moyen de filtration.
L'utilisation de ce moyen d'ultrafiltration en mode frontal permet d'obtenir des concentrats de volume faible, d 'effectuer la concentration d'un prélèvement dans une échelle de temps de l'ordre de l'heure au plus en un seul passage, tout en garantissant la viabilité des microorganismes, la multi- récupération et des rendements de l'ordre de 100 %.
Par multi-récupération, on entend la possibilité de récupérer dans l'échantillon final pratiquement tous les différents genres ou espèces de microorganismes présents dans l'échantillon de départ. Ces rendements élevés sont obtenus en raison de l'inexistence de volumes, dits volumes morts, dus par exemple sur d'autres dispositifs à la présence de tuyauteries annexes, par exemple de recyclage, et par la fiabilité de la porosité sur toute la longueur de la fibre creuse. Le procédé de contrôle selon l'invention, est ainsi appliqué sur un échantillon obtenu éventuellement par filtration, d'un volume compris entre 1 ml et 100 litres.
Une étape de lyse des microorganismes est effectuée, soit par lyse mécanique soit par lyse chimique, telles que décrites précédemment. Une étape de purification est éventuellement appliquée, en utilisant éventuellement les techniques de capture par des oligonucleotides fixés sur des particules magnétiques, ou par utilisation de colonnes de silice, de particules de silice (inerte ou magnétique), de colonnes échangeuses d'ions, ou de toute autre méthode citée précédemment. Une étape d'amplification enzymatique est éventuellement appliquée également en utilisant préférentiellement les techniques de transcription telles que TMA, NASBA, mais en utilisant en particulier les techniques de PCR et RT-PCR.
Une étape de marquage de l'amplicon est appliquée, par utilisation préférentielle d'un marqueur fluorescent.
Une étape d'hybridation est ensuite appliquée, en utilisant préférentiellement les sondes d'identification spécifiques ou leurs fragments fixés sur un support solide, et en particulier en utilisant une biopuce.
Le procédé de contrôle et le nécessaire de détermination microbiologique selon l'invention utilisant ces séquences spécifiques permet de détecter simultanément un bactérie et/ou un virus et/ou un parasite d'un panel fixe en une seule étape de multidétection finale.
En fonction des liquides à analyser des panels fixes de microorganismes peuvent être facilement définis. Un autre objet de l'invention est un procédé de production et/ou désinfection d'un liquide, caractérisé en ce qu'il comprend une étape d'analyse mettant en œuvre un nécessaire de détermination microbiologique selon l'une quelconque des revendications de 35 à 48 et générant un algorithme d'interprétation des données permettant l'asservissement dudit procédé de production et/ou désinfection auxdites données générées par le nécessaire de détermination microbiologique. Les avantages de l'invention et les techniques mises en œuvre sont illustrés par les exemples non limitatifs et les figures en annexe.
La figure 1 représente l'évolution du base-call sur les sondes spécifiques d' Escherichia coli et d'Acinetobacter baumanii en fonction du nombre de copies d'ARNr de chacun des partenaires ajoutées avant amplification.
La zone encadrée dans le graphique représente les proportions E. coli/A. baumanii à partir desquelles les cibles E. coli sont interprétables par la puce.
La figure 2 représente l'évolution du base-call sur les sondes spécifiques d'E. coli, S. typhimurium et A. baumanii en fonction des proportions du nombre de copies de transcripts marqués représentant les 3 espèces. Dans les exemples ci-dessous décrits les souches utilisées sont :
Escherichia coli ATCC 11775 Enterococcus faecalis 19433T Salmonella typhimurium API 9810059 Acinetobacter baumanii ATCC 19606
Exemple 1 : Détection et identification d'une seule cellule bactérienne en culture : cas d1 Escherichia coli (gram -) et d' Enterococcus faecalis (gram +)
a) Préparation de la culture
On cultive une souche d'E. coli ou E. faecalis à 37°C dans 2 ml de bouillon Luria Bertani. Lorsque la culture a atteint une densité optique à 620 nanomètres de 0,2, on prélève 1 ml. (108 bactéries/ml). On réalise des dilutions en série, jusqu'à avoir 0,1cellule/μl. b) Extraction et purification des acides nucléiques
1. Lyse des micoorganismes
De la suspension à 0.1 cellules par microlitres, 10μl sont prélevés
(1 cellule). Sur cette suspension, on ajoute 100μl d'un tampon de lyse contenant du Tris 10mM, de l'EDTA 1mM (dilution d'une solution TE100X commercialisée chez SIGMA, réf. T-9285) et du lyzozyme (Sigma, réf. L-6876) dont la concentration est différente selon le Gram de la bactérie : 3 mg/ml pour E. faecalis, 400 μg/ l. pour E. coli. La lyse des bactéries s'effectue en laissant le tube contenant la suspension bactérienne en contact avec le tampon de lyse durant 5 à 10mn à température ambiante.
2. Extraction et purification des acides nucléiques. Cette étape s'effectue en utilisant le kit Rneasy mini kit commercialisé par Qiagen (ref. 74104) selon le protocole recommandé pour l'extraction et la purification des ARN totaux bactériens.
c) RT-PCR Les deux étapes de RT et PCR vont s'effectuer l'un après l'autre, dans un seul tube, en utilisant le kit ACCESS (ref A1250, Promega).
Pour cela, on ajoute à 25μl de la suspension d'ARN total le tampon
5X AMV/Tfl, 1mM de MgSO4, 200μM de dNTPs (deoxyribonucleosides triphosphates), 5U d'AMV RT polymérase, 5U de Tfl polymérase, 5U de RNAsin (Pranega ref. NZIII), 0.5μM des amorces eubactériennes A1.1 et
S9T7 :
5'gaggcagcagtggggaat3'
5'taatacgactcactatagggaggaggattactaccagggtatctaat3' (en gras : promoteur de la polymérase T7), afin d'obtenir 50μl de volume réactionnel final.
Pour l'étape de RT, le mélange est mis à incuber 45mn à 48°C, puis 5mn à 94°C. Pour l'étape de PCR on réalise ensuite 35 cycles composés chacun des 3 étapes suivantes : 94°C 1mn, 55°C 1mn, 68°C 1mn. Une extension finale de 7mn à 68°C est ensuite réalisée. d) Vérification de l'amplicfication
On dépose 5μl de produit d'amplification (amplicon) sur un gel d'agarose 1,5% dans de l'EDTA-Tris Borate. Après une migration de 20mn à
200V, on visualise la bande d'amplification par coloration au Bromure d'Ethidium et par illumination aux UV. On montre que l'amplification est positive par la présence d'une bande ayant la taille attendue (450 paires de bases). e) Identification de l'amplicon sur une puce à ADN (Affymetrix,
Santa Clara)
Une biopuce est synthétisée sur un support solide en verre selon le procédé décrit dans le brevet US 5 744 305 (Affymetrix, Fodor et al) en utilisant la stratégie de resequençage décrite dans la demande WO 95/11995 (Affymax,
Chee et al) et selon la méthode décrite par A Troesch et al. dans J. Clin. Microbiol., vol. 37(1), p 49-55, 1999 avec les variantes suivantes : les oligonucleotides synthétisés sur la puce réalisent le resequençage des séquences d'identification. Ce procédé permet de diminuer le nombre total d'oligonucléotides synthétisés et donc présentent un avantage considérable en terme de coût de production et sans compromis sur la qualité de l'identification des différents microorganismes de part le choix de ces séquences d'identification . Les oligonucleotides comportent 20 bases, avec une position d'interrogation en I2eme position par rapport à l'extrémité 3' de la séquence. Pour les espèces E. coli et E faecalis, il y a également des oligonucleotides de 17 bases, avec 2 positions d'interrogations : une en 10 et une en 8eme position. D'autres oligonucleotides ont des longueurs comprises entre 10 et 25 nucleotides. Les positions d'interrogation varient alors en fonction de la longueur de l'oligonucléotide.
L'analyse est effectuée sur le système complet GeneChip® (référence 900228, Affymetrix, Santa Clara, CA) qui comprend le lecteur GeneArray®, le four d'hybridation GeneChip® , la station fluidique GeneChip® et le logicel d'analyse GeneChip®.
1. Transcription et marquage des amplicons.
Grâce à l'amorce antisens S9T7, tous les produits d'amplifications présentent un promoteur pour la RNA polymérase T7. Ces amplicons vont alors servir de matrice à une réaction de transcription au cours de laquelle sera incorporé un ribonucléotide fluorescent.
A partir des 50μl de produit d'amplification positif, un aliquot (entre
2 et 12μl) est prélevé est ajouté à un mélange de transcription contenant les composants du kit Megascript T7 d'Ambion (ref. 1334) et de fluorescein-12-
UTP (Roche, ref. 1427857). Le mélange réactionnel final se fait dans 20μl et la réaction de transcription s'effectue pendant 2 heures à 37°C.
2. Fragmentation des transcripts marqués
Afin d'améliorer les conditions d'hybridation, les transcripts marqués sont clivés en fragments d'environ 20 nucéotides. Pour cela, les 20μl de transcripts marqués sont soumis à l'action de l'imidazole (SIGMA) 30mM et du chlorure de manganèse (Merck) 30mM pendant 30mn à 65°C.
3. Hybridation sur la puce de recherche
A partir des 20μl de transcripts marqués et fragmentés un aliquot de 5μl est prélevé et ajouté à 700μl de tampon d'hybridation dont la composition est de SSPE 6X (Eurobio), DTAB 5mM (Sigma), Triton 0.5% (Merk eurolab). Ce mélange est hybride sur la puce dans les conditions suivantes : 40 mn à 45°C. Après lavage, la puce est scannée, puis l'image d'hybridation obtenue est analysée par le logiciel Genechip© (Affymetrix, Santa Clara) Les spots d'hybridation permettent de reconstituer la séquence de l'amplicon, qui ensuite comparée aux séquences de références de la puce. La séquence (et donc l'espèce qui lui correspond) qui présente le meilleur pourcentage d'homologie (base-call, en %) avec la séquence de l'amplicon est retenue pour l'identification.
4. Interprétation des résultats. Seule une partie de la séquence de 450 bases est analysée. Elle correspond à tout ou partie des sondes d'identification représentées sur la biopuce. Le seuil d'interprétation, c'est à dire niveau d'identification est fixé à au moins 70% de base-call sur la séquence d'identification. En dessous de ce seuil, la cible n'est pas identifiée.
Résultats
L'ARN extrait d'une seule cellule bactérienne (E. coli ou E. faecalis) donne lieu à un produit d'amplification, puis à une identification correcte sur la biopuce.
Exemple 2 : Discrimination de mélanges de 2 espèces bactériennes différentes.
Dans cet exemple, la RT-PCR eubactérienne a été appliquées à des cibles synthétiques. C'est à dire que ces cibles proviennent de l'amplification, puis de la transcription de l'ADN ribosomal 16S dans son entier. Ces cibles sont appelées transcripts in-vitro. Dans cet exemple, la cible est un mélange de transcripts in-vitro représentant les espèces Escherichia coli et Acinetobacter baumanii. Quand on ajoute la cible au tube de RT-PCR, on ne résonne plus en terme de nombre de bactéries, mais de nombre de copies de transcripts in-vitro, puis en nombre d'équivalents-bactéries, en partant du postulat suivant : 1 bactérie correspond à 104 copies d'ARN ribosomal 16S.
Pour cela, les transcripts ont été dosés à 1011 copies / μl. Pour
Acinetobacter baumanii, la dilution 108copies/μl est préparée. Pour Escherichia coli, les dilutions 103/μl, 104/μl, 105/μl et 106/μl sont préparées. Le conditions du mélange réactionnel pour la RT-PCR sont identiques à celles décrites dans l'exemple 1 , paragraphe c), sauf que le volume de cible n'est plus 25μl d'une suspension d'ARN total, mais 2μl d'un mélange constitué de 1 μl de chaque dilution de transcript représentant chaque espèce dans les proportions suivantes :
Figure imgf000041_0001
L'unique amplicon obtenu est ensuite traité selon l'étape e) de l'exemple 1.
10 Résultats
La figure 1 montre qu'en ramenant le nombre de copies d'ARNr 16S à un nombre de bactéries, il est donc possible de détecter, par utilisation de la puce à ADN, l'équivalent de 1 E. coli en présence de 104 A baumanii, soit une proportion de 0.01%.
15
Exemple 3 : Discrimination d'un mélange de 3 espèces bactériennes différentes
Des transcripts marqués de 3 espèces bactériennes {Escherichia
20 coli, Salmonella thyphimurium, Acinetobacter baumanii)soni obtenus selon le protocole e) à f.1. Ils sont ensuite purifiés à l'aide du kit Rneasy mini kit (Qiagen, ref. 74104) selon le protocole adapté à la purification de transcripts in vitro. Les transcripts marqués sont dosés (lecture à 260nm sur un spectrophotomètre) de manière à connaître le nombre de cibles (ou copies)
25 introduites dans le mélange d'hybridation. Le nombre total de copies dans un mélange d'hybridation est fixé à 1013 copies.
Les transcripts correspondant aux espèces E. coli et S. thyphimurium sont en même nombre de copies. Ces transcripts ont été rajoutés par rapports aux transcripts d'A. baumanii de la façon suivante :
30
Figure imgf000041_0002
Figure imgf000042_0001
Résultats
La figure 2 montre que la détection d'E. coli se fait à des proportions plus faibles (1 %) que celle de S. thyphimurium (10%). Ce résultat montre qu'il est possible de détecter sur la puce 3 espèces bactériennes différentes.
Exemple 4 : détection simultanée d'Escherichia coli, Staphylococcus aureus et Salmonella enteritidis
10 a) Préparation des suspensions bactériennes
Souches testées : Escherichia coli ATCC 11775T
15 Staphylococcus aureus ATCC 12600T Salmonella enteritidis ATCC 13076
Les souches sont cultivées dans un bouillon Trypcase Soja à 37°C. Lorsque la culture atteint une densité optique de 0.2-0.3 (108 bactéries/ml), on
20 réalise des dilutions en cascade de 1/10eme, jusqu'à atteindre 100 bactérie/ml.
b) Mélange des bactéries
On mélange les 3 espèces bactériennes en utilisant les suspensions produites dans la partie a), de manière à avoir : 100 Escherichia
25 coli, 100 Staphylococcus aureus et 100 Salmonella enteritidis.
c) Obtention des ARN totaux
1. Lyse des microorganismes
Le volume final sera de 100μl. On rajoute 1 μl de tampon TE100X
30 (Sigma refT-9285), du lysozyme à 100mg/ml (Sigma, Ref. L-6876) pour avoir une concentration finale de 10mg/ml. On complète ou non avec de l'eau (Sigma, ref. W-4502) pour avoir 100μl. On incube 30 mi+n à 25°C.
2. Purification des acides nucléiques On utilise ensuite le RNeasy Mini Kit (Qiagen, ref 74104) en appliquant le protocole préconisé par Qiagen pour les bactéries.
d) RT-PCR On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref.
A1250) selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie c).
e) Vérification de l'amplification
Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie d).
f) Analyse sur une biopuce
1. Transcription et marquage des amplicons Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-1.
2. Fragmentation des transcripts marqués Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-2.
3. Hybridation sur la puce Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-3
4. Interprétation des résultats
Le base-call sur la séquence d'identification correspondant à chacun des taxons doit être supérieur à 90%. En dessous la cible n'est pas identifiée.
Résultats
Figure imgf000043_0001
Conclusion Il y a eu détection -simultanée des 3 espèces bactériennes par hybridation sur les séquences d'identification correspondantes
Exemple 5 : détection simultanée d'Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella enteritidis et Pseudomonas aeruginosa
a) Préparation des suspensions bactériennes
Souches testées :
Escherichia coli ATCC 11775T
Staphylococcus aureus ATCC 12600T
Salmonella enteritidis ATCC 13076
Pseudomonas aeruginosa ATCC 10145T
Les suspensions bactériennes sont préparées selon le protocole indiqué Exemple 4, partie a)
b) Mélange des bactéries On mélange les 4 espèces bactériennes en utilisant les suspensions produites dans la partie a), de manière à avoir : 100 Escherichia coli, 100 Staphylococcus aureus, 100 Salmonella enteritidis et 100 Pseudomonas aeruginosa.
c) Obtention des ARN totaux
Selon les protocoles indiqué Exemple 4, partie c)
d) RT-PCR
On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref. A1250) selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie c).
e) Vérification de l'amplification
Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie d).
f) Analyse sur une biopuce
1. Transcription et marquage des amplicons Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-1.
2. Fragmentation des transcripts marqués Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-2.
3. Hybridation sur la puce Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-3
4. Interprétation des résultats
Le base-call sur la séquence d'identification de chacun des taxons doit être supérieur à 90%. En dessous la cible n'est pas identifiée.
Résultat
Figure imgf000045_0001
Conclusion
II y a eu détection simultanée des 4 espèces bactériennes par hybridation sur les séquences d'identification correspondantes
Exemple 6 : Détection simultanée d'Escherichia coli, Cryptosporidium parvum et du Poliovirus Sabin 3.
a) Préparation des suspensions.
Pour Escherichia coli, les dilutions sont effectuées comme indiqué Ex 4 , a). Pour Cryptosporidium parvum, des dilutions en cascades sont effectuées à partir d'une suspension d'oocystes titrée à 107/ml, commercialisée par Waterborne Inc. (St Louis, USA).
Pour le Poliovirus Sabin 3 on utilise une suspension titrée à 109 PFU/ml
b) Mélange des microorganismes. On mélange 3000 E. coli, 3000 C. parvum et 3000 cfu du Poliovirus de manière à obtenir 300 μl de volume final.
c) Préparation des acides nucléiques Les 300μl sont séparés en 3X100 μl, car l'extraction et la purification des ARN subissent 3 processus séparés. 1. Escherichia coli Préparation des ARN totaux selon le protocole indiqué EX 4, partie c) 2. Cryptosporidium parvum
On utilise le kit RNeasy Mini Kit (Qiagen, ref. 74104) selon un protocole modifié. Pour cela, on ajoute aux 100μl 350 μl de tampon de lyse RLT du kit RNeasy, et 25 μl de Protéinase K à 19 mg/ml (Roche, ref. 1964372) ce qui ramène à 1 mg/ml. On laisse agir 30 mn à 65°C. On continue ensuite selon le protocole RNeasy Mini Kit "for bacteria".
3. Pour Poliovirus Sabin 3
On rajoute 40μl d'eau (Sigma, ref. W-4502) aux 100μl, et on utilise le Qiamp Viral RNA Mini Kit (Qiagen, ref. 52906), selon les instructions du fournisseur.
d) Amplification par RT-PCR
1. Escherichia coli On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref.
A1250) selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie c).
2. Cryptosporidium parvum
On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref. A1250). Pour cela, on ajoute aux 25μl d'ARN total obtenu à l'étape b) 2,
25μl de mélange reactionnel de manière à avoir, dans les 50μl final : le tampon AMV/Tfl 1X, le MgSO4 2,5 mM, les dNTP 200 μM, 5U de Tfl, 5U d'AMV, 5U de RNAsin (Promega ref. N2111), et les primers XIA2F et XIA2R 200pM.
XIA2F 5' GGAAGGGTTGTATTATTAGATAAAG 3' XIA2R-T7 5' taatacgactcactatagggaggaggattaAAGGAGTAAGGAACAACCTCCA 3'
Tirés de la publi de Xiao et al. dans Applied and Environmental Microbiology, 1999 (en gras : promoteur T7 de la polymérase T7, qui sera utilisé lors de la transcription)
Pour l'étape de RT, le mélange est mis à incuber 45 mn à 48°C. Pour l'étape PCR on incube 5 mn à 94°C, puis on réalise 30 cycles composés chacun des 3 étapes suivantes : 94°C 45 sec, 55°C 45 sec, 68°C 1 mn. Une extension finale de 7 mn à 68°C est ensuite réalisée. 3. Poliovirus Sabin 3
On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref. A1250). Pour cela, on ajoute aux 25μl d'ARN total obtenu à l'étape b) 2,
25μl de mélange reactionnel de manière à avoir, dans les 50μl final : le tampon AMV Tfl 1X, le MgSO4 2 mM, les dNTP 300 μM, 5U de Tfl, 5U d'AMV, 5U de RNAsin (Promega ref. N2111), et les primers spécifiques 200pM.
Pour l'étape de RT, le mélange est mis à incuber 45 mn à 48°C.
Pour l'étape PCR on incube 2 mn à 94°C, puis on réalise 40 cycles composés chacun des 3 étapes suivantes : 94°C 15 sec, 55°C 30 sec, 68°C 1 mn. Une extension finale de 7 mn à 68°C est ensuite réalisée.
e) Vérification de l'amplification
Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie d).
f) Analyse sur une biopuce
1. Transcription et marquage des amplicons
Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-1.
2. Purification des transcripts marqués.
Les 3 tubes contenant les 20μl de transcription sont rassemblés la purification se fait en utilisant le RNeasy Mini Kit (Qiagen ref. 74104), protocole pour la purification de transcripts in-vitro. On obtient 20μl de transcript
3. Fragmentation des transcripts marqués et purifiés. Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-2.
3. Hybridation sur la puce
Selon le protocole indiqué Exemple 1 , partie e)-3
4. Interprétation des résultats
Le base-call sur la séquence signature d'E. coli et C. parvum doit être supérieur à 90%. Pour le Poliovirus 3, en raison d'un polymorphisme de séquence le seuil de détection se situe au dessus de 85%
Résultat
Figure imgf000048_0001
Conclusion
II y a eu détection simultanée des 3 paramètres par hybridation sur les séquences d'identification correspondantes
Exemple 7 : détection simultanée d'un Enterovirus (Coxsacki virus A9) et du virus de l'Hépatite A.
1- Cibles considérées : Souche de Coxsackievirus A9 à 7 TCID5o/μL (extraction des acides nucléiques par utilisation du kit Qiamp Viral RNA de Qiagen -ref. 52904 -selon les indications du fournisseur)
Souche vaccinale du virus de l'Hépatite A à 17.5 DICC50/μL (extraction des acides nucléiques par utilisation du kit Qiamp Viral RNA de Qiagen -ref 52904- selon les indications du fournisseur) 2- RT-PCR multiplex
On effectue une RT-PCR en utilisant le kit ACCESS (Promega, ref
A1250)
Pour cela, on ajoute 1 μL de chaque souche virale et 48μL de milieu reactionnel de façon de la manière suivante :
Concentration finale/tube
RNasine 2.5 U
Tampon 5X 1X dNTP 0.3mM
Primers H1 +H2(a) 0.5μM
Primers Enterovirus10' 0.3μM
MgS04 2 mM
T4 gène 32 protein 2.5μg
AMV 5U
Tfl 5U
(a) : : publication Robertson et al., Virus Research, 1989, 13, 207
212
(b) : désignés dans la région i 5'NCR
Pour l'étape de rétro-transcription, le mélange est incubé 45 minutes à 48°C. Après une étapes de dénaturation de 2 minutes à 94°C, les
ADN complémentaires obtenus sont amplifiés selon les modalités suivantes : 45 cycles de [15 secondes à 94°C, 30 secondes à 55°C, 45 secondes à 68°C] avec une étape d'élongation de 7 minutes.
3- Vérification de l'amplification On dépose 8μL de produits de RT-PCR sur un gel de 1.5% d'agarose dans de l'EDTA-Tris-Borate. Après une migration de 30 minutes sous 100 V, on visualise des produits d'amplification par coloration du gel par du Bromure d'Ethidium et par illumination UN.. La visualisation d'une bande vers 500bp (enterovirus) et d'une autre à 249bp (HAV) montrent que l'amplification est effective. Analyse sur une biopuce
Le marquage des produits d'amplification s'effectue selon le brevet WO99/65926.
Interprétation des résultats & conclusions
Le base-call sur la séquence correspondante à chaque virus doit être supérieur à 95%. En dessous de ce seuil, la cible n'est pas identifiée.
On obtient les résultats suivants :
% Base-Call
Coxsackievirus A9 96.7
HAV 96.9
Conclusion
Il y a eu détection simultanée des 2 souches virale par hybridation sur les séquences d'identification correspondantes.

Claims

REVENDICATIONS
1/ Procédé de contrôle de la qualité microbiologique d'un milieu aqueux environnemental, susceptible de comporter différents micro- organismes, caractérisé en ce que :
- on choisit un ensemble de référence, constitué d'au moins trois microorganismes, représentatifs, ensemble ou séparément, d'un niveau de qualité microbiologique,
- on dispose d'un nécessaire de détermination microbiologique, constitué d'au moins trois sondes d'identification respectivement spécifiques desdits trois microorganismes,
- après traitement du milieu à analyser, on met lesdits microorganismes, ou toute fraction obtenue à partir de ces derniers, en contact avec ledit nécessaire de détermination, moyennant quoi on multi-détermine lesdits microorganismes, cette détermination étant représentative du niveau de qualité microbiologique du milieu.
2/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins une sonde d'identification spécifique à une bactérie, au moins une sonde d'identification spécifique à un parasite et au moins une sonde d'identification spécifique à un virus.
3/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins quatre sondes d'identification spécifiques à au moins quatre bactéries différentes.
4/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins cinq sondes d'identification spécifiques à au moins cinq virus différents.
5/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins deux sondes d'identification spécifiques à au moins deux parasites.
6/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que le nécessaire de détermination microbiologique comprend au moins une sonde d'identification spécifique à une bactérie et au moins une sonde d'identification spécifique à au moins un parasite. 7/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 , 2, 3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes :
Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus. 8/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2,3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes :
Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens. 9/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2,3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157.H7, Helicobacter pylori, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Staphylococcus epidermitis, Staphylococcus aureus, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Acinetobacter baumanii, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, le genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, le genre Legionella, Legionella pneumophila, le genre Salmonella.
10/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1, 2, 3, 5 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Genre
Cryptosporidium.
11/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1, 2, 3, 5 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Gardia lamblia,
Cryptosporidium parvum.
12/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1, 2, 3, 5 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype- 01-57 :H7; Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia.
13/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants : Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus.
14/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Escherichia coli sérotype 0157 :H7, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Enterococcus hirae, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Clostridium perfringens, Genre Salmonella, Staphylococcus aureus, Enterovirus: virus de la poliomyélite, virus coxsackie A et B, Echovirus, Genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia, Genre Legionella, Legionella pneumophila, Aeromonas hydrophila, Aeromonas caviae, Aeromonas sobria, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Virus de l'hépatite A, Calicivirus : Norwalk et Sapporo Virus, Adenovirus, Rotavirus, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Genre Mycobacteries, Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium simiae, Mycobacterium kansasii, Mycobacterium xenopi, Mycobacterium marinum, Mycobacterium gordonae, Acinetobacter baumanii, Staphylococcus epidermidis, Burkholderia gladioli, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia, Astrovirus. 15/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les microorganismes suivants :
Escherichia coli, Enterovirus, Genre Cryptosporidium, 16/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 , 2 et 4, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants : les Adenovirus, Adeno 40, Adeno 41 bis ; les Astrovirus, HAstV-1-2 ; les Enterovirus, Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus, les Rotavirus, les Calicivirus : Virus de Norwalk, Virus de Sapporo et
Virus de l'Hépatite A.
17/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1, 2 et 5, 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les parasites suivants :
Le genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia lamblia et les Microsporidies.
18/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2,3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les bactéries suivantes :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus. 19/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2 et 4, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants :
Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi les Calicivirus et les Rotavirus. 20/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2 et 4, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les virus suivants :
Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi le vrius de Norwalk et les Rotavirus. 21/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2 et 5, 6 caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi les parasites suivants : genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia.
22/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2,3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus, Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi les Calicivirus et les Rotavirus, genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia. 23/ Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ,2,3 et 6, caractérisé en ce que lesdits microorganismes du nécessaire de détermination microbiologique sont choisis parmi :
Escherichia coli, Escherichia coli SEROTYPE 0157 :H7, genre Salmonella, Pseudomonas aeruginosa, genre Mycobacterium, genre Legionella, Legionella pneumophila, Staphylococcus aureus, Virus de l'hépatite A, Enterovirus, et au moins un virus choisi parmi le vrius de Norwalk et les Rotavirus, genre Cryptosporidium, Cryptosporidium parvum, genre Giardia, Giardia Lamblia.
24/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que les sondes d'identification ont une séquence choisie parmi l'une quelconque des séquences SEQ ID Nos : 1-104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 25/ Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO :1 à SEQ ID NO :39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID N0:62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49 , SEQ ID NO :63 à SEQ ID NO .65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; et au moins une séquence choisie parmi entre SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO 70 SEQ ID NO 104 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 26/ Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins quatre sondes d'identification choisies parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
27/ Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins cinq sondes d'identification choisies parmi SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO 70 SEQ ID NO 104 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
28/ Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins deux sondes d'identification choisies parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49 et SEQ ID NO:63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
29/ Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence, et au moins une séquence comprise SEQ ID NO:40 à
SEQ ID NO:49, SEQ ID NO:63 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
30/ Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO 66, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
31/ Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:28, SEQ ID NO:29, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 32/ Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
33/ Procédé selon la revendication 11 , caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:46 à SEQ ID NO: 49, SEQ ID NO:63, SEQ ID NO:64 et SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles- ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
34/ Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:70-à SEQ ID NO:75, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 35/ Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:14, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:61 à SEQ ID NO:75, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
36/ Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:11 , SEQ ID NO:14 à SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:51, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO: 104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
37/ Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisies parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:6, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:55 à SEQ ID NO: 104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
38/ Procédé selon la revendication 18, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisies parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23.
39/ Procédé selon la revendication 19, caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisies parmi SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 75. 40/ Procédé selon la revendication 20, caractérisé en- ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisies parmi SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO 76 à SEQ ID NO 96. 41/ Procédé selon la revendication 21 , caractérisé en ce que le nécessaire d'identification comprend au moins une sonde d'identification choisies parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65
42/ Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que, préalablement à la mise en contact avec le nécessaire de détermination, on effectue au moins une étape de lyse.
43/ Procédé selon la revendication 42, caractérisé en ce que, postérieurement à l'étape de lyse, on effectue une étape d'amplification.
44/ Procédé de contrôle selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par la mise en avant traitement du milieu à analyser, d'une étape d'enrichissement en microorganismes du dit échantillon.
45/ Procédé de contrôle selon la revendication 44, caractérisé en ce que l'étape d'enrichissement est effectuée par filtration.
46/ Procédé de contrôle d'un échantillon liquide selon la revendication 45 , caractérisé en ce que la filtration est conduite en utilisant un moyen de filtration à fibres creuses, utilisé en mode frontal.
47/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49 , SEQ ID NO :63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence ; et au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 104 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
. 48/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins quatre sondes d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO:61 , SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
49/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins cinq sondes d'identification choisies parmi SEQ ID NO:50 à SEQ ID NO:60, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 104 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 50/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO :63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
51/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 1 à SEQ ID NO:39, SEQ ID NO :61 , SEQ ID NO :62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69 et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence, et au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO :63 à SEQ ID NO :65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
52/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66, SEQ ID NO 68, SEQ ID NO 69, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO:23, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 54/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66.SEQ ID 68, NO SEQ ID 69, NO SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:28, SEQ ID NO:29, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
55/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66, SEQ ID 68, NO SEQ ID 69, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
56/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:62, SEQ ID NO 66,SEQ ID 68, NO SEQ ID 69, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55, SEQ ID NO 70 à SEQ ID 75, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:44, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
57/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO:15, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO:49, SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:55 SEQ ID NO:61 à SEQ ID NO:75, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 58/ Nécessaire de détermination microbiologique -d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:11 , SEQ ID NO:14 à SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:25 à SEQ ID NO:29, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO: 51 , SEQ ID NO:53 à SEQ ID NO:56, SEQ ID NO:57 à SEQ ID NO:65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 59/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:1 à SEQ ID NO:6, SEQ ID NO:9 à SEQ ID NO:55 à SEQ ID NO: 104, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
60/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11, SEQ ID 23, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 61/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO 59, SEQ ID NO :60, SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO :98, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
62/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO :60, SEQ ID NO :97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 96, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence. 63/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
64/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO :60 SEQ ID NO 97, SEQ ID NO 70 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO :98 à SEQ ID NO :104, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
65/ Nécessaire de détermination microbiologique d'un microorganisme présent dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification choisie parmi SEQ ID NO: 14 , SEQ ID NO 62, SEQ ID NO 66 à SEQ ID NO 69, SEQ ID NO 15, SEQ ID NO 5, SEQ ID NO 6, SEQ ID NO 30, SEQ ID NO 9 à SEQ ID NO 11 , SEQ ID 23, SEQ ID NO 98 à 104, SEQ ID NO 59, SEQ ID NO 56 à SEQ ID NO 58, SEQ ID NO :60, SEQID NO :97, SEQ ID NO :70 à SEQ ID NO :75, SEQ ID NO 76 à SEQ ID NO 96, SEQ ID NO:40 à SEQ ID NO 45, SEQ ID NO 65, et tous fragments de celles-ci comprenant au moins 5 monomères contigus inclus dans l'une quelconque desdites séquences et dont la séquence présente au moins 70% d'identité avec ladite quelconque séquence.
66/ Nécessaire de détermination microbiologique selon l'une quelconque des revendications 47 à 64, caractérisé en ce que les sondes d'identifications ou leurs fragments sont fixés sur un support solide. 67/ Nécessaire de détermination -microbiologique selon l'une quelconque des revendications 47 à 65, caractérisé en ce que les sondes d'identification ou leurs fragments sont fixés sur un support solide et constituent une biopuce. 68/ Procédé de production et/ou désinfection d'un liquide, caractérisé en ce qu'il comprend une étape d'analyse mettant en œuvre un nécessaire de détermination microbiologique selon l'une quelconque des revendications de 47 à 67 et générant un algorithme d'interprétation des données permettant l'asservissement dudit procédé de production et/ou désinfection auxdites données générées par le nécessaire de détermination microbiologique.
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