WO1998006422A1 - Agents de proliferation des cellules souches hematopoietiques - Google Patents

Agents de proliferation des cellules souches hematopoietiques Download PDF

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WO1998006422A1
WO1998006422A1 PCT/JP1997/002818 JP9702818W WO9806422A1 WO 1998006422 A1 WO1998006422 A1 WO 1998006422A1 JP 9702818 W JP9702818 W JP 9702818W WO 9806422 A1 WO9806422 A1 WO 9806422A1
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WO
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hematopoietic stem
csf
igf
scf
stem cells
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PCT/JP1997/002818
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English (en)
French (fr)
Inventor
Yoshimasa Saito
Yoshiko Ueda
Kouichi Tamura
Yoko Takada
Choji Yamada
Tatsuo Yamashita
Masakazu Kobayashi
Original Assignee
Fujisawa Pharmaceutical Co., Ltd.
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Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/22—Hormones
    • A61K38/30—Insulin-like growth factors (Somatomedins), e.g. IGF-1, IGF-2

Definitions

  • the present invention relates to a hematopoietic stem cell proliferating agent and a culture method. More specifically, the present invention relates to a hematopoietic stem cell inoculating agent and a method for expanding the same, which are used alone or in combination with various colony-stimulating factor-inducing factors.
  • erythropoietin EPO
  • G-CSF granulocyte colony stimulating factor
  • SCF stem cell growth factor
  • M-CSF macrophage colony stimulating factor
  • the present inventors have conducted intensive studies and found that hematopoietic stem cells were undifferentiated by using inulin-like growth factor I (IGF-I) in combination with at least one protein selected from SCF, MCSF and G-CSF. The present inventors have found that they can be sufficiently grown as they are, and have completed the present invention. Disclosure of the invention
  • the present invention relates to a hematopoietic stem cell proliferating agent containing IGF-I, a hematopoietic stem cell proliferating agent comprising at least one protein selected from SCF, M-CSF and G-CSF and IGF-I.
  • Hematopoietic stem cell expansion characterized in that hematopoietic stem cells are cultured in a medium containing a proliferating agent and at least one protein selected from SCF, M-CSF and G-CSF and IGF-II. Involved in the method.
  • the present invention provides a method for expanding a mammalian hematopoietic stem cell comprising IGF-1 alone or 1GF-I and at least one protein selected from SCF, M-CSF and G-CSF. It is about.
  • the hematopoietic stem cell proliferating agent or method of the present invention the hematopoietic stem cells can be proliferated in the body or outside the body while being undifferentiated.
  • Treatment prevention of infectious diseases caused by lymphopenia, treatment of bone marrow diseases such as myelodysplasia and myelosuppression, leukemia, treatment of bone marrow diseases such as severe W disorder and bone marrow suppression, and engraftment during bone marrow transplantation It can be used for improving the engraftment rate, treating hypocytosis caused by genetic diseases, culturing hematopoietic stem cells in vitro, and in vitro culturing recombinant stem cells during gene therapy. You.
  • the IGF-I used in the present invention includes a gene produced by gene synthesis technology (for example, IGF-I, see JP-A-61-1396), peptide synthesis, cell culture, and the like. And a portion of the amino acid sequence of IGF-I produced by gene recombination technology, etc. Mutant proteins having the IGF-I activity described above (for example, see the publication of W089 / 05822).
  • the SCF, M-CSF or G-CSF used in the present invention includes proteins derived from human mammals such as humans and pests produced by gene recombination techniques, peptide synthesis methods, cell culture methods, and the like.
  • SCF, M-CSF, or G-CSF produced by gene recombination technology, etc. have a part of the amino acid sequence of SCF, M-CSF or G-CSF substituted, inserted, added, or deleted with amino acid. Mutant proteins having CSF activity are also included.
  • a sugar chain may or may not be present.
  • the hematopoietic stem cell proliferating agent of the present invention uses IGF-1 in combination with SCF, M-CSF or G-CSF, these preparations and the order of administration so long as they are administered so that they coexist in the body.
  • the administration route is not particularly limited.
  • both or more components may be administered as a mixed preparation, or may be administered as separate preparations, either simultaneously or separately, by the same route or separate routes.
  • the hematopoietic stem cell-proliferating agent of the present invention may comprise IGF-I alone or at least one protein selected from SCF, M-CSF or G-CSF, and a carrier (for example, distilled water for injection). , Physiological saline, glucose injection, etc.), stabilizers (eg, albumin, sodium citrate, arginine, dextran, etc.), pH adjusters (eg, sodium hydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate, etc.) and other additives, usually oral or parenteral, such as injections, infusions, transdermals, transdermals, topical Preparations and suppositories. ⁇ ⁇
  • the preparation may further contain one or more growth factors such as SCF, M-CSF, G-CSF, EPO and IL-3.
  • the dose of the hematopoietic stem cell porting agent may vary depending on the patient's weight, sex, symptoms, etc .; generally, IGF-I force per adult i 1 to 1000 g / kg body weight, preferably 5 Approximately 500 / ig gZkg body weight, and when SCF, M-CSF or G-CSF are used together, SCF, M-CSF or G-CSF is the same amount as IGF-I or , 0.0: 1 to 100 times the amount.
  • the route of administration of the hematopoietic stem cell inoculating agent includes oral or parenteral, for example, intravenous injection, intravenous drip injection, subcutaneous injection, coronary artery injection, transdermal, nasal, rectal administration and the like.
  • IGF-I and SCF, MCSF or G-CSF may be combined in the same preparation, but are administered separately or simultaneously in separate preparations by the same or separate routes . If administered separately, whichever may be administered first.
  • the hematopoietic stem cell proliferating agent of the present invention When used for the improvement of cytopenia by chemotherapeutic agents such as radiotherapy or anticancer agents, the hematopoietic stem cell proliferating agent of the present invention may be used alone, or may be further used as EPO or MPO.
  • EPO chemotherapeutic agents
  • MPO MPO
  • CSF, SCF, IL_3 and G Can be used at the same time as CSF.
  • GM-CSF or the like may be used simultaneously for the prevention of infections caused by low lymphocytes.
  • bone marrow diseases such as myelodysplasia and myelosuppression
  • treatment of bone marrow diseases such as leukemia, severe disability, and bone suppression
  • improvement of engraftment engraftment rate during bone marrow transplantation and transmission diseases
  • an appropriate growth factor such as EPO, G-CSF or GM-CSF may be used in combination, if necessary.
  • growth factors can be used in combination for culturing and culturing hematopoietic stem cells in vitro, and in vitro culturing of modified stem cells during gene therapy. Cultivation of bone marrow cells in vitro is basically performed in accordance with the Neonatal Chemistry Laboratory Course 18 Cell Culture Technology (edited by The Biochemical Society of Japan, published by Tokyo Chemical Dojin, 1989). 1
  • insulin transferrin, 2-methylcaptoethanol, ethanolamine, selenite and HEPES, etc.
  • at least one protein selected from SCF (1 to 1000 / ig gm), M—CSF (1 to 1000 ⁇ g / m 1) and G—CSF (1 to 1000 / g / m 1) and I GF-I (1 to 100 ⁇ g Zm 1) can be added and cultured using a CO 2 incubator. Best mode for implementing
  • Example 1 Obtaining hematopoietic stem cells
  • Bone marrow cells were collected from the femurs of male C57BL mice (10 mice) using ⁇ - ⁇ medium (5 ml, Nikken Biomedical Research Institute). The suspension was centrifuged (1,200 rpm, 10 minutes), the supernatant was removed by suction, and the cells were suspended in ⁇ -EM medium (5 ml) containing 10% FCS. This procedure yielded approximately 3 ⁇ 10 7 bone marrow cells per mouse.
  • Hematopoietic stem cells were transferred to a 96-well U-bottom microtiter plate (Nunc, Denmark) so that 50 cells / ⁇ % FCS-a-MEM ( ⁇ 1) Z well were formed.
  • IGF-I mechanacenoremin, gene recombination, Fujisawa Yakuhin
  • SCF protein phosphatidylcholine
  • IGF-I mechanacenoremin, gene recombination, Fujisawa Yakuhin
  • SCF protein phosphatidylcholine
  • IGF-I should not be used in combination with SCF or M-CSF. This increases the acid phosphatase activity in the cytoplasm of the bone marrow cells fractionated in Example 2. It is known that cytosolic acid phosphatase activity corresponds to an increase in cell number. Therefore, it is clear that IGF-I shows a hematopoietic stem cell proliferation effect when used in combination with SCF or M-CSF. It is well known in the literature that SCF and M-CSF alone do not show hematopoietic stem cell proliferation effects [Okada, S. et a J. (1992) Blood 80, 3044-3050]. confirmed. Project 5 FACS
  • Example 5 Each of the cells obtained in Example 5 was transferred to a 96-well plate by ACDU, and a group of about 50 ml was prepared.
  • IGF-I has the effect of proliferating one hematopoietic stem cell in combination with SCF or M-CSF.
  • the cultured cells were fixed on slides with acetone (203 ⁇ 4 :). Non-specific binding was suppressed with 1% BSA monophosphate buffer and treated with the antibodies shown in Table 4.
  • biotinylated anti-CD3 ⁇ (clone 500 ⁇ 2) T cells
  • Biotinylated anti-CDllbOtec-1) Monocyte Z macrophage Biotinylated anti-myelocytic differentiation antigen (Grl) Granulocyte
  • 50 hematopoietic stem cells were transferred to a 96-well U-bottom microtiter plate (Nunc, Denmark) so as to form 50 Zl 0% FCS-a-MEM (100/1) per well.
  • Human I GF-I (Mechacermin, Genetically modified, Fujisawa Pharmaceutical) (100 ng / m 1), Human G—CSF (Regulatory recombination, R & D system) (5, 50 500 mg / 1) + IGF-I (100 ⁇ g / m 1) was added, and the mixture was placed in a 37 t CO 2 incubator.
  • IGF-I was used in combination with G-CSF to increase the cytosolic phosphatase activity of the bone marrow cells fractionated in Example 2.
  • I have. It is known that the intracellular acid phosphatase activity has a positive correlation with the cell number. Therefore, it is clear that 1GF-I shows a hematopoietic stem cell-proliferating effect when used in combination with G-CSF. G—CSF alone, with no effect.
  • Hematopoietic stem cells were transferred to a 96-well U-bottom microtiter plate (Nunc, Denmark) to make 50 cells of 10% FCS-Hi-MEM (100 ⁇ l).
  • IGF-I has an effect of significantly promoting the SCF hematopoietic stem cell proliferation effect. Therefore, it is clear that it is useful for the maintenance and expansion of hematopoietic stem cells.
  • a vial containing 5 ml of an aqueous solution in which various components in Table 7 are dissolved is freeze-dried to obtain a hematopoietic stem cell / abrasive.
  • the use of the hematopoietic cell proliferating agent or the proliferating method of the present invention is very useful because hematopoietic stem cells can be proliferated in a body or outside a body without differentiation.

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Description

明細書
造血幹細胞増殖剤 技術分野
本発明は、 造血幹細胞の増殖剤および增殖方法に関する。 詳細には、 インシ ュリン成長因子 I単独もしくは各種のコロニー刺激因子ゃ增殖因子と組み合わせ てなる造血幹細胞の增殖剤および増殖方法に関する。 背景技術
血液系に関する増殖因子は種々検討されており、 赤血球の増殖剤としてエリス ロポイエチン （EPO) 、 白血球の増殖剤として頼粒球コロニー刺激因子 （G— CS F) 等が実用化されている。 造血幹細胞の増殖方法については、 幹細胞增殖 因子 （SCF) 、 マクロファージコロニー刺激因子 （M— CS F) 等の様々なサ ィ トカインについて種々検討されてきたが、 造血幹細胞を未分化なまま十分に增 殖させることはできなかった。
本発明者等は鋭意研究の結果、 インシユリン様成長因子 I ( I G F— I ) を SCF, M-C S F及び G— CS Fから選択された少なくとも 1種類の蛋白質と 併用することにより、 造血幹細胞を未分化なまま十分に増殖させることができる ことを見いだし、 本発明を完成した。 発明の開示
本発明は、 I GF— Iを含有する造血幹細胞の増殖剤、 SCF、 M— CS F及 び G— CS Fから選択された少なくとも 1種類の蛋白質と I GF— I とを含む造 血幹細胞の増殖剤、 及び、 SCF、 M— CSF及び G— CS Fから選択された少 なくとも】種類の蛋白質と I GF—〖を含む培地で、 造血幹細胞を培養すること を特徴とする造血幹細胞の増殖方法に係わる。 さらに、 本発明は、 I GF— 1単 独もしくは 1 GF— Iを SCF、 M— CS F及び G— CS Fから選択された少な くとも 1つの蛋白質組み合わせてなる哺乳動物の造血幹細胞の増殖方法に関する ものである。 本発明の造血幹細胞の増殖剤または増殖方法を用いることにより、 造 ώι幹細胞 を未分化なまま、 体內または体外で増殖させることができるので、 放射線治療や 制ガン剤等の化学療法剤による血球減少症の改善、 リンパ球減少に起因する感染 症の予防、骨髄形成不全症や骨髄抑制等の骨髄疾患の治療、白血病.高度 W障害 · 骨髄抑制等の骨髄疾患の治療、 骨髄移植時におけるエングラフメント生着率の改 善、 遣伝的疾患に由来する低血球症の治療、 in vitro における造血幹細胞の培 養 ·增菔、 遣伝子治療時における組換え幹細胞の体外培養等に用いることができ る。
本発明で使用される I G F— I としては、 遣伝子組换ぇ技術 （例えば I G F 一 Iは特開昭 61-1396号公報参照） 、 ペプチド合成法、 細胞培養法等により製造 されたヒ ト、 ゥシ等の哺乳動物由来の蛋白質が含まれ、 さらに遣伝子組み換え技 術などにより製造された I G F— Iのァミノ酸配列の 1部がァミノ酸の匱换、 挿 入、 付加、 欠失した I G F— I活性を有する変異蛋白質 （例えば W089/05822 公 報参照） も含まれる。
本発明で使用される S C F、 M—C S Fまたは G— C S Fとしては、 遺伝子 組換え技術、 ペプチド合成法、 細胞培養法等により製造されたヒ ト、 ゥシ等の喃 乳動物由来の蛋白質が含まれ、 さらに遗伝子組み換え技術などにより製造された S C F、 M - C S Fまたは G— C S Fのァミノ酸配列の一部がァミノ酸の置換、 挿入、 付加、 欠失した S C F、 M— C S Fまたは G— C S Fの活性を有する変異 蛋白質も含まれる。 また、 糖鎖が存在していてもいなくても良い。
本発明の造血幹細胞增殖剤は I G F— 1と S C F、 M— C S Fまたは G— C S Fとを併用する場合、 それらが体内に同時に存在する状態になる様、 投与され る限り、 これらの製剤、 投与順序、 投与経路は特に制限はない。 例えば、 両者ま たはそれ以上の成分が混合された製剤として投与してもよいし、 別々の製剤とし て同時にまたは別々に、 同一経路または別個の経路で投与してもよい。
本発明の造血幹細胞增殖剤は、 I G F— Iは単独で、 または S C F， M - C S Fまたは G— C S Fから選択された少なくとも 1種類以上の蛋白質を含み、 さ らに担体 （例えば、 注射用蒸留水、 生理食塩水、 ブドウ糖注射液など） 、 安定化 剤 （例えば、 アルブミン、 クェン酸ナトリウム、アルギニン、デキストランなど） 、 pH調整剤 （例えば、 リン酸水素ナトリウム、 リン酸二水素ナトリウムなど） 、 その他の添加剤とともに、 通常、 経口剤あるいは非経口剤、 例えば注射剤、 点滴 剤、 経皮剤、 経獒剤、 外用剤、 坐剤などとして調製される。 ¾該製剤には、 さら に SCF、 M— CSF、 G— CSF、 E P Oおよび I L— 3等の増殖因子を一種 または 2種以上配合させてもよい。
当該造血幹細胞增舷剤の投与量は、 患者の体重、 性別、 症状などより異なる 力；、 一般に成人 1回当たり I GF— I力 i 1 〜1000 g/kg体重程度で、 好まし くは 5〜500/i gZk g体重程度であり、 また、 SCF、 M— CS Fまたは G— CS Fを併用する場合は S CF、 M— CS Fまたは G— CS Fは I GF— I と同 量もしくは、 0. 0 :1〜 100倍の量で配合しうる。
当該造血幹細胞增殖剤の投与経路としては、 経口あるいは非経口、 例えば静 注、 点滴静注、 皮下注、 冠動脈內投与、 経皮、 経鼻、 直腸内投与などが挙げられ る。
I GF— I と SCF、 M-C S Fまたは G— C S Fは、 同一の製剤中に酉 Ϊ1合 しても良いが、 別の製剤の形で別々または同時に、 同一経路または別個の経路に より投与される。 別々に投与する場合、 どちらを先に投与してもよレ、。
本発明の造血幹細胞増殖剤を放射線治療や制ガン剤等の化学療法剤による血 球減少症の改善に用いるときは、 本発明の造血幹細胞増殖剤を単独で用いてもよ いし、 さらに E POや M— C S F、 SCF、 I L _ 3及び G— C S F等と同時に 用いても良い。 リンパ球减少に起因する感染症の予防に用いるには、 GM— CS F等を同時に用いても良い。 さらに、 骨髄形成不全症や骨髄抑制等の骨髄疾患の 治療、 白血病 ·髙度臂障害 ·骨雠抑制等の骨髄疾患の治療、 骨髓移植時における エングラフメント生着率の改善、 遗伝的疾患に由来する低血球症の治療において は、 必要により EPO、 G— CS Fや GM— CS F等の適当な増殖因子を組み合 わせて用いても良い,，
また、 in vitro における造血幹細胞の培赛 ·增殖、 遣伝子治療時における糾 換え幹細胞の体外培養等にぉレ、ても他の適当な増殖因子を組み合わせて用いるこ とができる。 in vitro における骨髄細胞の培赛は基本的に新生化学実験講座 1 8 細胞培養技術 （日本生化学会編、 東京化学同人発行、 1989) に'準じて行うこ 1
とがで +-> きる。 例えば RD培地 （RPMI1640:D EM=1:1(V/V)混合培地） 等を用い、 ィ ンスリン、 トランスフェリン、 2—メ Λ ^カプトエタノ一 、 エタノールァミン、 亜セレン酸および HEPE S等とともに、 さらに SCF (1〜1000/i gZm I )、 M— C S F (1 〜1000μ g/m 1 ) 及び G— C S F (1〜1000 / g/m 1 ) から 遴択された少なくとも 1種類の蛋白質と I GF— I (1〜100ϋμ gZm 1 ) を添 加し、 CO 2インキュベータ—を用いて培赛することができる。 明を実施するための最良の形態
本発明をより詳細に説明するために、 以下の実施例に従ってこれを説明する。 実施例 1 造血幹細胞の取得
雄性 C57BLマウス （10匹） の大腿骨から α-ΜΕΜ培地 （5 ml, 日研生物医学研 究所） を用いて骨髄細胞を採取した。 浮遊液を遠心 （1,200 rpm, 10 分） して上 淸を吸引除去し， 細胞を 10 % FCSを含む α- EM培地（5 ml)に浮遊させた。 この 操作で， マウス一匹あたり約 3X 107個の骨髄細胞が得られた。
実施例 2 FACS
得られた骨髄細胞から Fac-Scanフ口一サイ トメ一ター（Becton - Dickinson) に より， Sea - 1+, Lin" c-kit+細胞を集めた。 用いた標識抗体を表 1に示す。 この 様に分画した細胞群がマウスの造血幹細胞を含むことはで文献的に公知である [Okada, S. et el. (1992) Blood 80, 3044 - 3050]。
表 1 FACSに用 1/、た標識抗体
マ一力一 標識抗体 特異性
し in ピオチン化抗 CD3 ί (クローン 500Α2) T細胞
ビォチン化抗 CD45R (Β220) B細胞
ビォチン化抗マゥス赤血球（TER119) 赤血球
ピオチン化抗 CDllb(Mac-l) 単球/マクロファージ ピオチン化抗骨髄球分化抗原 (Grl) 顆粒球
Sc& - 1 PE搮識抗マゥス SCA-1 (E13-161.7) 幹細胞
PITC標識抗マウス CD117(3CI) SCF受容体 実施例 3 I G F- Iの作用
造血幹細胞を 50個/ Ο % FCS- a- MEM (ΙΟΟμ 1)Zゥエルになるように 96ゥェ ル U底マイクロタイタープレート （ヌンク， デンマーク） に移した。
各ゥエルに I G F— I (メカセノレミン， 遗伝子組換え， 藤沢薬品） （lOOng/ml), S C F (遣伝子組换え， Genzyme) (1.5, 3.0, 6.0, 12.5, 25ng/ml) + I G F— I (100 ng/ml), M-C S F (遣伝子組換え， R&Dシステム） （0.1, 0.3, 1.0, 3.0, 10, 30, 100 ng/ml) + I G F— I (100 ng/ml)を加え， 37 の C02インキ ュべ—ターにて， 10日間培養した。
培養 6日後に， 各ゥヱルの細胞数をカウン卜した。
培恭 10 日後に， 各ゥヱルから培養液をァスピレーシヨンにて除き， 細胞質内 のァシッドフォスファタ一ゼを文献記載の方法で定量した [Ueda et al. (1994) Neurosci. Lett. , 165, 203 207]。
実施例 4 結果
得られた結果を表 2にまとめた。
表 2 IGF— Iと SCFまたは M - CSFとの併用による効果
Figure imgf000007_0001
ND:検出限界以下 表 2から明らかなように， I G F— Iは S CFまたは M— CS Fと併用するこ とにより実施例 2で分画した骨髄細胞の細胞質内ァシッドフォスファターゼ活性 を増加させている。 細胞質内ァシッ ドフォスファターゼ活性は細胞数の増加に対 応していることが知られている。 従って， I G F— Iは S C Fまたは M—C S F と併用することにより造血幹細胞増殖作用を示していることは明らかである。 S C F及び M— C S Fは各々単独では， 造血幹細胞の增殖作用を示さないことは文 献的に公知であり [Okada, S. et a J. ( 1992) Blood 80， 3044-3050] , 発明者も 確認した。 突施例 5 FACS
実施例 2と同様の操作にて， LirT, Sea - 1 +, c-kit+. CD34—細胞を集めた。 CD34一 の細胞を選別するために新たにビォチン化抗マウス CD34 (RAM34) (ファーミジ ェン， San Diego, CA) を用いた。 得られた細胞全骨髄細胞の約 0. 04 %であった。 この細胞群が， 造血幹細胞であることは文献的に公知である （大沢. 屮内 1995 年 日本分子生化学会 S4B-3；大沢ら 1995年 血液幹細胞シンポジウム 講演要 旨集） 。 実施例 6 I G F - 1の効果
ACDUにより実施例 5で得た細胞を各 1個づっ 96ゥエルのプレー卜に移し， 約 50ゥヱルづっを一群とした。
各ゥエルに S C F (25ng/ml) + I G F - I (100 ng/ml) , M— C S F ( 100 ng/ml) + I G F - I (100 ng/ml) , S C F (25ng/ml) + 11,-3 (10 ng/ml )を加 え， 37\の C02インキュベータ一にて， 10日問培養した。
培養 6日後に， 各ゥエルの細胞数をカウントした。
培養 10 日後に， 各ゥ-ルから培養液をァスピレーシヨンにて除き， 細胞質内 のアシッドフォスファターゼを定量した。 実施例 7 結果
得られた結果を表 3にまとめた。 表 3 単一細胞に対する IGF-Iと SCFまたは M - CSFとの併用効果
Figure imgf000009_0001
NT:カウン卜せず 表 3から明らかなように， I GF— Iは S CFまたは M— CS Fとの併 /Πによ り 1個の造血幹細胞を増殖させる作用を有している。 実施例 8 免疫染色
実施例 2と同様にして、 Sea- 1+， Lin" c-kit+細胞を集めた。 得られた細 胞を 1 00個 Zウエルチヤンバースライ ド （Lab- Tek、 ヌンク社） にまいた。 增 殖因子 [ I G F— I (lOOng/ml) , SCF (25ng/ml) を含む 1 0 % F C S— α -MEM (Ιθθμ l) とともに 3 71の C Ο 2インキュベーターにて、 8日間培赛 した。
培養した細胞をアセ トン （一 20¾：) でスライ ド上に固定した。 1 %B S A 一リン酸緩衝液で非特異的な結合を抑え、 表 4に示す抗体で処理した。
いずれの抗体によっても染色されず、 特定の細胞種に分化する傾向のないこ とがわかった。 I GF— 1と SCFの併用による増殖効果は幹細胞の分化による 增殖ではなく、 未分化のままで増殖である。
表 4 FACSに用いた標識抗体
マ一力一 標識抗体 特異性
し in ビォチン化抗 CD3 ί (クローン 500Λ2) T細胞
ビォチン化抗 CD 5R(B220〉 B細胞
ビォチン化抗マウス赤血球（TER119) 赤血球
ビォチン化抗 CDllbOtec - 1) 単球 Zマクロファージ ピオチン化抗骨髄球分化抗原 (Grl) 頼粒球
Sca-1 PE標識抗マゥス SCA- 1 (E13-161.7) 幹細胞 実施例 9 ヒ 卜G— CSFとヒ ト I GF— Iの作用
造血幹細胞を 50個 Zl 0%FCS— a— MEM (l00/ 1 ) ゥヱルになる ように 96ゥエル U底マイクロタイタ一プレート （ヌンク、 デンマーク） に移し た。
各ウエノレにヒ ト I GF— I (メカセルミン、 遺伝子組み換え、 藤沢薬品工業） ( 100 n g/m 1 ) 、 ヒ ト G— C S F (遣伝子組み換え、 R&D s y s t e m) ( 5 , 50 500m g / 1 ) + I G F - I (100η g /m 1 ) を加え、 37t の CO 2インキュベータ一にて、 赛した。
培養 7日後に、 各ゥエルから培溶液をァスビレ一シヨンにて除き、 細胞質内 のァシッドフォスファタ一ゼを文献記載の方法 （Ueda et al. (1994) Neurosci. Lett.. 165, 203-207) で定量した。 実施例 10 結果
得られた結果を表 5にまとめた。 表 5
Figure imgf000010_0001
表 5から明らかなように、 I GF— Iは G— CS Fと併用する事により実施 例 2で分画した骨髄細胞の細胞質內ァシッドフォスファタ一ゼ活性を増加させて いる。 細胞質内ァシッドフォスファタ一ゼ活性は細胞数と正の相関性があること が知られている。 従って、 1 G F— Iは G— C S Fと併用することにより造血幹 細胞增殖作用を示していることは明らかである。 G— C S Fは単独で、 効果は見 られな力つた。 実施例 1 1 ヒ ト S CFとヒ ト I G F— Iの作用
造血幹細胞を 5 0個ノ 1 0%FC S—ひ一 MEM (100 μ 1 ) Ζゥエルになる ように 9 6ゥエル U底マイクロタイタープレート （ヌンク、 デンマーク） に移し た。
各ゥエルにヒ ト S CF (遣伝子組み換え、 R&D s y s t e m) ( 5、 50、 500m g/m 1 ) + I GF— I (100η g/m 1 ) を加え、 3 7。Cの C02インキ ュべ—ターにて、 培凝した。
培養 7日後に、 各ゥュルの血球数をカウントした。 実施例 1 2 結果
得られた結果を表 6にまとめた。 表 6
S C F (ng/ml) 平均士 SE 平均土 SE
(1GF-I lOOng/ml) (IGF-I Ong/ml)
800 200 ±0.0 75.7 ±26.4
400 175±21.5 36.0±14.3
200 58.0±16.7 14.8±8.2
100 31.5±6.2 9.8±1.6
50 16.0±5.5 6.5±5.0
25 6.3±2.9 3.5 ±0.5
12.5 3.8±1.5 2.0±0.7
6.25 3.3±0.8 3.0±3.7
3.0 3.5±1.1 2.3±1.1
0 2.8±2.2 1.0±1.0 表 6から明らかなように、 I G F— Iは S C F造血幹細胞増殖作用を顕著に 促進する作用を有している。 従って、 造血幹細胞の維持 ·増殖に有用であること がわかる„ 実施例 1 3 製剤例
表 7の各種成分を溶解した水溶液 5 m 1を入れたバイャルを凍結乾燥し造血幹 細胞增砥剤を得る。
表 7 造血幹細胞增垴剤の製剤例
Figure imgf000012_0001
産業上の利用可能性
以上の搽に、 本発明の造血钤細胞増殖剤または増殖方法を用いることにより、 造血幹細胞を未分化なまま、 体内または体外で増殖させることができるので非常 に有用である。

Claims

請求の範囲
1. I GF- Iを含有する造血幹細胞増殖剤。
2. M_CSF、 SCF及び G— CS Fから選択された少なくとも 1種類の蛋白 質と I G F— Iを含有する請求の範囲第 1項記載の造血幹細胞増殖剤。
3. M— CSFと I GF— Iを含有する請求の範囲第 2項の造血幹細胞増殖剤。
4. SCFと I GF— Iを含有する請求の範囲第 2項の造血幹細胞増殖剤。
5. G— CSFと IGF— Iを含有する請求の範囲第 2項の造血幹細胞増殖剤。
6. M_CSF、 SCF及び G— CSFから選択された少なくとも 1種類の蛋白 質と I GF— Iを含む培地で、 造血幹細胞を培養することを特徴とする造血幹細 胞の増殖方法。
7. I GF- Iを哺乳動物に投与することからなる造血幹細胞の増殖方法„
8. M— CSF、 SCF及び G— CS Fから選択された少なくとも 1種類の蛋白 質と I GF— Iを投与することからなる請求の範囲第 7項記載の造血幹細胞の増 殖方法。
9. M— CS Fと I GF— Iを投与することからなる請求の範囲第 8項記載の造 血幹細胞の増殖方法。
10. SCFと I GF— Iを投与することからなる請求の範囲第 8項記載の造血 幹細胞の増殖方法。
1 1. G— CS Fと I GF— Iを投与することからなる請求の範囲第 8¾記載の 造血幹細胞の增殖方法。
12. 哺乳動物の造血幹細胞を増殖させるための、 I GF— 1の使用。
13. 哺乳動物の造血幹細胞を増殖させるための、 M— CS F、 SCF及び G— CS Fから選択された少なくとも 1種類の蛋白質と I GF— Iの使用。
1 4· 哺乳動物の造血幹細胞を増殖させるための、 M— CS Fと I GF— Iの使 用。
1 5. 哺乳動物の造血幹細胞を増殖させるための、 S C Fと I G F— Iの使用。
16. 哺乳動物の造血幹細胞を増铳させるための、 G— CS Fと I GF— 1の使
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