WO1990004021A1 - PROCEDE DE PRODUCTION DE LIGNINE-PEROXYDASE PAR DES CELLULES NON-PROLIFERANTES DE $i(PHANEROCHAETE CHRYSOSPORIUM) - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to an improved process for the production of ligninolytic enzyme or lignin-peroxidase.
- lignin-peroxidase This enzyme, called “lignin-peroxidase”, has been characterized [M. TIEN and T.K. KIRK PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, (1984) vol. 81, p. 2280-2284] as being a glycoprotein of about 42KDa.
- French patent 2,574,427 claims two new strains of Phanerochaete chrysosporium Burdsall capable of developing, in mediums not limited to nitrogen, a particularly high lignolytic activity, whereas the previously known strains produced the ligninolytic enzyme only in medium nitrogen deficiency culture, the biodegradation process producing this enzyme being, moreover very slow, under these conditions.
- the culture medium capable of promoting the production of lignin-peroxidase contains an assimilable source of nitrogen which may be asparagine, ammonium nitrate or ammonium tartrate; it also contains an assimilable carbon source such as glycose, annose, starch, melibiosis, mannitol, xylose, maltose, adonitol, arabitol, fructose, sorbitol, raffinose, xylitol, D (+) trehalose, glycerol, but preferably this latest ; it also contains a source of assimilable mineral salts such as iron citrate, KH 2 P0 4 , ZnS0, MnSo 4 , CaCl2, CuS0 4 , NaCl,
- French Patent 2,600,077 proposes to significantly increase the yields of lignin-peroxidase production, by cultivating the fungus Phanerochaete chrysosporium on a basic culture medium supplemented with a stimulating agent chosen from unsaturated fatty acids, natural amino acids and their mixtures.
- the preferred unsaturated fatty acids are oleic acid, linoleic acid, palitoleic acid, arachinolic acid, preferably emulsified, and the preferred natural amino acids are serine, threonine, isoleucine, glycine, valine, tyrosine, but more particularly isoleucine, serine, threonine and glycine.
- oleic acid The optimum concentration of oleic acid is approximately 800 mg / liter, and it is approximately 400 mg / liter when it is an emulsified oleic acid; it is around 6.5 mg / liter for isoleucine. It should be remembered that J ⁇ GER et al. (APPLIED AND
- the object of the present invention is to provide a process for the production of lignin peroxidase from Phanerochaete chrysosporium under different controlled temperature conditions during the growth phase of the mycelium and during the phase of production of lignin-peroxidase proper, which makes it possible to favor the production of hemeproteins having maximum lignin-peroxidase activity, to the detriment of the production of biomass.
- the present invention relates to a process for the production of lignin peroxidase from a fungus known under the name of Phanerochaete chrysosporium, in a culture medium containing activators of the enzyme, such as phospholipids and l veratryl alcohol, which process is characterized in that it comprises:
- a second stage of culture of the mycelium formed during the first stage for a period of approximately 3 days (from D3 to D5), in a partially renewed culture medium (advantageously at a rate of approximately 15%), added with veratrylic alcohol, activator and protector of the production of lignin-peroxidase, and whose phospholipid content is reduced to 1/7 - approximately 1/8 of its content in the culture medium of the first stage, which medium culture does not contain emulsified fatty acids;
- a third culture step at the optimum of lignin peroxidase produc ⁇ tion, that is to say after about 5 days, during which all of the culture medium of the second step is replaced by a synthetic culture medium similar to that of the first stage, containing the same proportion of phospholi- pides and veratryl alcohol as the culture medium of the second stage and in which the yeast extract, the nitrogen source and the carbon source - advantageously constituted by glycerol - are reduced to 1/4 of their content in the culture medium of the first stage, these three components constituting in combination a medium for partial regeneration of the biomass;
- a fourth step which consists in continuing the culture with non-proliferating cells for approximately 8 days (from D6 to D13), by completely renewing the culture medium every 24 hours to replace it with a medium containing or extracted from yeast, neither emulsified fatty acids, nor glycerol, but containing the activators and protectors of the production of the enzyme constituted by veratrylic alcohol and phospholi ⁇ pides in the same proportions as the culture media of the second and third stages ;
- the first step of culturing the cel ⁇ Lules takes place at an incubation temperature of 37 ° C envi ⁇ ron, while the following steps are performed at incubation temperatures of 30 * C.
- the first stage of cell culture takes place in a culture medium buffered to pH 6.5, while the following stages are carried out in a culture medium buffered to pH 5.5;
- the source of phospholipids is advantageously constituted by soy azolectin.
- the culture medium of the first step comprises a nitrogen source content of the order of 1.84 g / liter for a carbon source content (glycerol) of the order of 10 g / liter, for a phospholipid content (soy azolectin) of the order of 0.75 g / liter and for an extract content of 1 g / liter yeast.
- the culture medium of the second stage differs from the culture medium of the first stage by its pH (5.5 ), its reduced phospholipid content (of the order of 0.1 g / liter) and its veratrylic alcohol content (of the order of 2.5 mM).
- the culture medium of the third stage differs from the culture medium of the second stage, by its reduced content of glycerol ( 2.5 g / liter approximately), as a nitrogen source (in particular 0.46 g / liter approximately of diammonium tartrate) and in yeast extract (0.25 g / liter).
- the culture medium of the fourth stage differs from the culture medium of the third stage in that it contains neither yeast extract, neither nitrogen source nor carbon source.
- the third and fourth steps are carried out continuously.
- the process according to the present invention allows a considerable increase in productivity lignin-peroxidase and lignin-peroxidase activity compared to all of the methods known to date. Indeed, while a lignin-peroxidase activity of the order of 22.4 nKat is obtained.
- lignin-peroxidase activity can reach 40.6 nKat.
- the FPLC profiles (fast pro- tein Liquid Chromatography) extracellular proteins obtained from cultures incubated at 37 ° C for the first two days and then at 30 ° C, with the changes of culture media according to the present invention show the presence of several heme proteins including nine exhibit lignin-peroxidase activity, with a large peak N * 4.
- FIG. 1 represents the flow diagram of the process according to the present invention
- FIG. 2 represents the FPLC profiles of lignin-peroxidase isoenzymes after 5 days of culture, depending on the culture conditions.
- Phanerochaete chrysosporium INA-12 (CNCM N * 1-398).
- INA-12 immobilized on polyurethane foam are treated as follows: 1. 6 ⁇ 10 7 conidiospores are inoculated into a culture medium having the following composition:
- soy azolectin (phospholipids) 0.75 g / 1
- the culture is carried out after insufflation of 100% of O 2 for two minutes, without stirring, in 150 ml Erlenmayer containing 30 ml of the above-mentioned aqueous culture medium, from D0 to D2 at 37 ° C.
- the entire culture medium is withdrawn to be replaced by a culture medium having the following composition: source of nitrogen diammonium tartrate 0.46 g / 1 source of carbon glycerol 2.5 g / 1 yeast extract 0.25 g / 1 soy azolectin 0.1 g / 1 veratrylic alcohol 2.5 mM
- Veratrylic alcohol and soy azolectin present in this medium play the role of inducers and protectors of lignin-peroxidase, as in the culture medium used in step 2. above and glycerol , ammonium tartrate and yeast extract play in combination, the role of biomass regeneration medium.
- the pH of the culture medium is adjusted to pH 5.5 and the incubation temperature is 30 ° C.
- the glycerol, nitrogen source and yeast extract act on biomass production and not production enzyme; this is why they are present in the regeneration medium. However, their concentrations are reduced to 25% of what they are in the culture medium of step 1. above to limit the production of biomass in proportions which are not detrimental to the production of the enzyme. 4.
- FIG. 1 appended constitutes a diagram of the process for the production of lignin-peroxidase by non-proliferating cells of Phanerochaete chrysosporium, in accordance with the present invention.
- FIG. 1 constitutes a diagram of the process for the production of lignin-peroxidase by non-proliferating cells of Phanerochaete chrysosporium, in accordance with the present invention. In this diagram:
- ⁇ v of veratryl alcohol represents the replacement of 100% of the culture medium by a culture medium containing azolectin (0.1 g / 1), veratryl alcohol (2.5 mM) and a medium for partial regeneration of the biomass (glycerol 2.5 g / 1, ammonium tartrate 0.46 g / 1, yeast extract 0.25 g / 1) represents the replacement (every 24 hours) of 100% of the culture medium by a culture medium containing azolectin (0.1 g / 1) and veratrylic alcohol (2.5 mM). 5.
- the cultures obtained are harvested and filtered on a glass fiber filter. The supernatant is dialyzed overnight against distilled water. The extracellular medium is then concentrated to 1/10 of its initial volume by ultrafiltration through an Amicon YM10 membrane.
- the proteins contained in the concentrated fluid are determined by FPLC (fast protein liquid chromatography) chromatography using a LCC 500 chromatograph from conjunctionPHARMACIA equipped with an anion exchange column Mono QHR 515, with a gradient of NaCl in 10 mM sodium cacodyate (pH 5.9).
- FPLC fast protein liquid chromatography
- FIG. 2 The FPLC profiles of the lignin-peroxidase isoenzymes obtained are shown in FIG. 2 appended in which 2A shows the profiles of extracellular proteins of Phanerochaete chryso ⁇ sporium INA-12 in cul ⁇ standard ture conditions without renewal of the culture medium, the incubation temperature being 37 ° C;
- FIG. 2B represents said protein profiles obtained with renewal of the atmosphere (100% oxygen) after two days of culture
- FIG. 2C represents said protein profiles obtained with renewal of the atmosphere in oxygen and change of 15% of the medium with 2.5 mM veratryl alcohol after two days of culture
- FIG. 2D represents said protein profiles obtained with renewal of the atmosphere in oxygen and change of
- FIG. 2E represents said protein profiles obtained with renewal of the atmosphere in oxygen and change of 15 % of the medium with 2.5 M trylique vera ⁇ alcohol and 0.1 g / 1 of azolectin and chan ⁇ gement incubation temperature of 37 ° C to 30 ° C after two days of culture.
- the absorbance at 405 nm is shown in solid lines and the absorbance at 280 nm in broken lines; the inclined line represents the NaCl gradient.
- Example 1 The conditions of Example 1 are reproduced by introducing 100 ml of medium into a 250 ml Erlenmayer; an enzyme production of 46.4 nKat / ml is obtained.
- the microorganism used is the Phanerochaete chrysosporium INA-12 strain (CNCM N * 1-398).
- Phanerochaete chrysosporium INA-12 cells immobilized on polyurethane foam are treated as in step 1 of Example 1.
- the reactor is seeded with 2.10 ⁇ spores / ml. There is direct immobilization in situ in the reactor.
- the medium is continuously supplied with oxygen, introduced into a central chimney where the agitation turbine is also located (200 rpm).
- the 0 2 concentration is regulated at around 60% of the saturation of the medium with air.
- the cells of Phanerochaete chrysosporium immobilized on the polyurethane foam are arranged at the periphery of the bioreactor, around the central chimney.
- Steps 2 to 5 are identical to those of Example 1.
- the enzyme titer obtained reaches 25 nKat / ml.
- the process according to the present invention makes it possible to control the production of lignin-peroxidase and, consequently, the possibility of a production of this enzyme on an industrial scale.
- the invention is in no way limited to those of its modes of implementation, production and application which have just been described more explicitly; on the contrary, it embraces all the variants which may come to the mind of the technician in the matter, without departing from the scope or the scope of the present inven ⁇ tion.
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Abstract
Procédé de production de lignine-péroxydase à partir du champignon Phanerochaete chrysosporium. Ce procédé comprend une première étape de culture dans laquelle des phospholipides et des acides gras émulsifiés sont ajoutés au milieu de culture; une deuxième étape au cours de laquelle de l'alcool vératrylique est ajouté au milieu de culture, le milieu de culture étant partiellement renouvelé pour la deuxième étape de culture et totalement renouvelé pour la réalisation des troisième et quatrième étapes de culture, en faisant varier la teneur des constituants dudit milieu. Application à la production de lignine-péroxydase avec des rendements importants.
Description
PROCEDE DE PRODUCTION DE LIGNINE-PEROXYDASE PAR DES CELLULES NON-PROLIFERANTES DE PHANEROCHAETE CHRYSOSPORIUM
La présente invention est relative à un pro¬ cédé perfectionné de production d'enzyme ligninolytique ou lignine-péroxydase.
MING TIEN et T. KENT KIRK ont décrit dans SCIENCE, (1983), 221, p.661-663, une enzyme extracellu¬ laire produite par Phanerochaete chrysosporium Burdsall qui est un champignon basidiomycète ; cette enzyme est capable de provoquer en présence de peroxyde d'hydrogène, la dégradation oxydante de différents composés modèles présentant des sous-structures de la lignine, de même que la dégradation de la lignine de sapin ou de bouleau.
Cette enzyme, dénommée "lignine-péroxydase", a été caractérisée [M. TIEN et T.K. KIRK PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, (1984) vol. 81, p. 2280-2284] comme étant une glycoprotéine d'environ 42KDa.
Le brevet Français 2 574 427 revendique deux nouvelles souches de Phanerochaete chrysosporium Burdsall capables de développer, dans des milieux non limités en azote, une activité lignolytique particulièrement élevée, alors que les souches précédemment connues ne produi¬ saient l'enzyme ligninolytique qu'en milieu de culture carence en azote, le processus de biodégradation produi- sant cette enzyme étant, de surcroit très lent, dans ces conditions.
Selon ce brevet, le milieu de culture propre à favoriser la production de lignine-péroxydase contient une source d'azote assimilable qui peut être l'asparagine, le nitrate d'ammonium ou le tartrate d'ammon.ium ; il contient également une source de carbone assimilable telle que glycose, annose, amidon, méli- biose, mannitol, xylose, maltose, adonitol, arabitol, fructose, sorbitol, raffinose, xylitol, D(+)trehalose, glycérol, mais de préférence ce dernier ; il contient en outre une source de sels minéraux assimilables tels que
citrate de fer, KH2P04, ZnS0 , MnSo4, CaCl2, CuS04, NaCl,
FeS04, CθC04, A1K(S04)2/ H3BO3, Na2 o04, MgS04.
Le brevet Français 2 600 077 propose d'augmenter de façon significative les rendements de pro- duction de lignine-peroxydase, en cultivant le champignon Phanerochaete chrysosporium sur un milieu de culture de base supplémenté avec un agent stimulant choisi parmi les acides gras insaturés, les acides aminés naturels et leurs mélanges. Les acides gras insaturés préférés sont l'acide oléique, l'acide linoléique, l'acide pal ito- léique, l'acide arachinolique, de préférence émulsifiés, et les acides aminés naturels préférés sont la serine, la thrêonine, l'isoleucine, la glycine, la valine, la tyro- sine, mais plus particulièrement l'isoleucine, la serine, la thrêonine et la glycine. La concentration optimale d'acide oléique est d'environ 800 mg/litre, et elle est d'environ 400 mg/litre lorsqu'il s'agit d'acide oléique émulsifié ; elle est d'environ 6,5 mg/litre pour l'isoleucine. II faut rappeler que JÂGER et Al. (APPLIED AND
ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Nov. 1985, p.1274-1278) avaient proposé une addition de détergent tel que T EEN 80 ou TWEEN 20 au milieu de culture du champignon, dans les cultures submergées, pour augmenter la production de lignine-peroxydase dans des proportions comparables à celle couramment obtenue en cultures stationnaires.
FAISON & KIRK [APPL. ENVIRON. MICROBIOL. (1985), / P-
299-304] et LEISOLA et Al. [J.BIOTECHNOL. (1985), 3_, p. 97-107] ont rapporté que l'addition d'alcool vératry- lique, qui est un métabolite secondaire de Phanerochaete chrysosporium, augmente la synthèse de la lignine- peroxydase.
Dans un article paru dans ENZ. ICROBIAL TECHNOL. (1987), 9_, p.245-249, ASTHER et Al. ont montré que la production de lignine-peroxydase a été augmentée de façon significative et la durée de fermentation
jusqu'à obtention de l'activité enzymatique maximale, fortement réduite, en présence d'acide oléique exogène émulsifié par du TWEEN 80.
Dans un article plus récent, paru dans APPL. MICROBIOL. BIOTECHNOL. (1988) 27,p.393-398, ASTHER et Al. ont rapporté que la production de lignine-peroxydase par le champignon Phanerochaete chrysosporium, est encore augmentée lorsqu'on ajoute au milieu de culture, de l'huile d'olive supplémentée avec de l'azolectine de soja qui constitue une source de phospholipides.
Dans une Communication faite lors de la Rencontre annuelle de l'ASM qui a eu lieu du 8 au 13 Mai 1988 à Miami, Floride, Etats-Unis, ASTHER et Al. ont rap¬ porté que l'on obtient une production maximale de lignine-peroxydase à partir de cultures de Phanerochaete chrysosporium lorsque la culture est réalisée à deux tem¬ pératures différentes, à savoir à 37*C pendant la phase de croissance du mycélium, pendant les deux premiers jours de l'incubation, puis à 30*C pendant la phase de production de lignine-peroxydase.
LEISOLA et Al. [cf. l'Article cité plus haut paru en 1985 dans J. BIOTECHNOL.] ont identifié quatre hèmes contenant de l'activité lignine-peroxydase, dans du fluide extracellulaire de culture âgées de trois jours de Phanerochaete chrysosporium BKM-F-1767, induites par de l'alcool veratrylique. JÂGER et Al. [APPL. ENVIRON. MICROBIOL. (1985) 50./ p.1274-1278] ont séparé 8 pics pré¬ sentant une absorbance de 409 nm (hèmeprotéines) et ont supposé que des différences relativement mineures entre les profils des protéines reflètent simplement l'âge des cultures.
La présente invention s'est donné pour but de pourvoir à un procédé de production de lignine-peroxydase à partir de Phanerochaete chrysosporium dans des condi- tions de température contrôlées différentes pendant la phase de croissance du mycélium et pendant la phase de
production de lignine-peroxydase proprement dite, qui permettent de privilégier la production des hèmeprotéines présentant l'activité lignine-peroxydase maximale, au détriment de la production de biomasse. La présente invention a pour objet un procédé de production de lignine-peroxydase à partir d'un champi¬ gnon connu sous le nom de Phanerochaete chrysosporium, dans un milieu de culture contenant des activateurs de l'enzyme, tels que des phospholipides et de l'alcool veratrylique, lequel procédé est caractérisé en ce qu'il comprend :
- une première étape de culture de cellules de Phanero¬ chaete chrysosporium pendant une période d'incubation de 2 jours environ, dans un milieu de culture synthétique comprenant des sels de potassium, de calcium et de magné¬ sium, des oligo-éléments (fer, zinc, manganèse, cuivre) , une source d'azote appropriée, une source de carbone avantageusement constituée par du glycérol, de l'extrait de levure, une source de phospholipides, une source d'acide gras émulsifiés ;
- une deuxième étape de culture du mycélium formé au cours de la première étape, pendant une période de 3 jours environ (du J3 au J5) , dans un milieu de culture en partie renouvelé (avantageusement à raison de 15% envi- ron) , additionné d'alcool veratrylique, activateur et protecteur de la production de la lignine-peroxydase, et dont la teneur en phospholipides est réduite au l/7ème - l/8ème environ de sa teneur dans le milieu de culture de la première étape, lequel milieu de culture ne contient pas d'acides gras émulsifiés ;
- une troisième étape de culture, à l'optimum de produc¬ tion de la lignine-peroxydase, c'est-à-dire au bout de 5 jours environ, au cours de laquelle la totalité du milieu de culture de la deuxième étape est remplacée par un milieu de culture synthétique analogue à celui de la pre¬ mière étape, contenant la même proportion de phospholi-
pides et d'alcool veratrylique que le milieu de culture de la deuxième étape et dans lequel l'extrait de levure, la source d'azote et la source de carbone - avantageuse¬ ment constituée par du glycérol - sont réduits au 1/4 de leur teneur dans le milieu de culture de la première étape, ces trois composants constituant en combinaison un milieu de régénération partielle de la biomasse ;
- une quatrième étape qui consiste à poursuivre la cul¬ ture avec des cellules non proliférantes pendant 8 jours environ (de J6 à J13) , en renouvelant totalement le milieu de culture toutes les 24 heures pour le remplacer par un milieu ne contenant ni extrait de levure, ni acides gras émulsifiés, ni glycérol, mais contenant les activateurs et protecteurs de la production de l'enzyme constitués par l'alcool veratrylique et les phospholi¬ pides dans les mêmes proportions que les milieux de cul¬ ture des deuxième et troisième étapes ;
- une cinquième étape de séparation de l'enzyme produite et éventuellement de purification de celle-ci. Selon un mode de mise en oeuvre avantageux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, la première étape de culture des cel¬ lules a lieu à une température d'incubation de 37*C envi¬ ron, alors que les étapes suivantes sont réalisées à des températures d'incubation de 30*C environ.
Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta¬ geux du procédé conforme à la présente invention, la pre¬ mière étape de culture des cellules a lieu dans un milieu de culture tamponné à pH 6,5, alors que les étapes sui- vantes sont réalisées dans un milieu de culture tamponné à pH 5,5;
Selon encore un autre mode de mise en oeuvre avantageux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, la source de phospholi- pides est avantageusement constituée par de l'azolectine de soja.
Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta¬ geux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, le milieu de culture de la première étape comprend une teneur en source d'azote de l'ordre de 1,84 g/litre pour une teneur en source de carbone (glycérol) de l'ordre de 10 g/litre, pour une teneur en phospholipides (azolectine de soja) de l'ordre de 0,75 g/litre et pour une teneur en extrait de levure de 1 g/litre. Selon encore un autre mode de mise en oeuvre avantageux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, le milieu de culture de la deuxième étape diffère du milieu de culture de la pre¬ mière étape par son pH (5,5), sa teneur réduite en phospholipides (de l'ordre de 0,1 g/litre) et sa teneur en alcool veratrylique (de l'ordre de 2,5 mM) .
Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta¬ geux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, le milieu de culture de la troisième étape diffère du milieu de culture de la deuxième étape, par sa teneur réduite en glycérol (2,5 g/litre environ), en source d'azote (notamment 0,46 g/litre environ de tartrate de diammonium) et en extrait de levure (0,25 g/litre) . Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta¬ geux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à la présente invention, le milieu de culture de la quatrième étape diffère du milieu de culture de la troisième étape en ce qu'il ne contient ni extrait de levure, ni source d'azote, ni source de carbone.
Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta¬ geux du procédé de production de lignine-peroxydase conforme à l'invention, les troisième et quatrième étapes sont réalisées en continu. Le procédé conforme à la présente invention permet une augmentation considérable de la productivité
en lignine-peroxydase et de l'activité lignine-peroxydase par rapport à l'ensemble des procédés connus à ce jour. En effet, alors que l'on obtient une activité lignine- peroxydase de l'ordre de 22,4 nKat. ml-1 dans le cas où un milieu de culture de Phanerochaete chrysosporium est supplémenté en acide oléique émulsifié avec du Tween 80 à une concentration de 0,04 % (poids/volume) et alors que l'activité lignine-peroxydase est de l'ordre de 33,3 nKat. ml- lorsque le milieu de culture est supplé- mente avec de l'azolectine comme source de phospholipides et de l'huile d'olive comme source de lipides, l'activité lignine-peroxydase peut atteindre 40,6 nKat. ml"*1* lorsque l'on met en oeuvre le procédé conforme à la présente invention, dans lequel des milieux de culture supplémen- tés successivement en phospholipides et acides gras émul¬ sifiés, puis en alcool veratrylique et phospholipides, sont utilisés à des températures d'incubation diffé¬ rentes, de 37*C pour le premier et de 30*C pour le second. En outre, alors que la productivité en lignine- peroxydase est de l'ordre de 40,6 nKat. ml--*- . jour"1 lorsqu'on met en oeuvre le procédé conforme à l'invention, elle est aussi faible que 4,5 nKat. ml"1 . jour-1 lorsque le milieu de culture contient de l'acide oléique émulsifié avec du Tween 80, elle est de 8,3 nKat. ml-1. j-1 lorsque le milieu de culture contient de l'azolectine et de l'huile d'olive et elle est de 1,6 nKat. ml-1 .jour-1 lorsque le milieu de cul¬ ture contient de l'alcool veratrylique ImM, avec une tem- _ pérature d'incubation de 39*C comme décrit dans l'Art antérieur cité.
Les profils de chromatographie FPLC (fast pro- tein liquid chromâtography) de protéines extracellulaires obtenues à partir de cultures incubées à 37*C pendant les deux premiers jours, puis à 30*C, avec les changements de milieux de culture conformes à la présente invention mon¬ trent la présence de plusieurs hèmeprotéines dont neuf
présentent une activité lignine-peroxydase, avec un grand pic N*4.
Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre.
L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère aux dessins annexés dans lesquels : la figure 1 représente le schéma de déroule- ment du procédé conforme à la présente invention et la figure 2 représente les profils FPLC des isoenzymes de la lignine-peroxydase au bout de 5 jours de culture, en fonction des conditions de culture.
Il doit être bien entendu, toutefois, que ces dessins et les parties descriptives correspondantes, sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation.
EXEMPLE 1 DE PRODUCTION DE LIGNINE-PEROXYDASE Le microorganisme mis en oeuvre est la souche
Phanerochaete chrysosporium INA-12 (CNCM N*1-398) .
Des cellules de Phanerochaete chrysosporium
INA-12 immobilisées sur de la mousse de polyuréthane sont traitées comme suit : 1. On inocule 6 x 107 conidiospores dans un milieu de culture présentant la composition suivante :
Solution de sels
. Potassium dihydrogénophosphate KH2P0 2 g/1
. chlorure de calcium CaCl2, 2H20 0,14 g/1 . Sulfate de magnésium Mg S04, 7H20 0,7 g/1
Solution d'oligoéléments
. Sulfate de fer (ferreux) FeS04, 7H20 0,07 g/1
. Sulfate de zinc ZnS04, 7H20 0,0462 g/1
. Sulfate de manganèse MnS04, H20 0,035 g/1 . Sulfate de cuivre CuS04, 5H20 0,007 g/1
Solution de Vitamine
. chlorydrate de Thiamine (vitamine B-^) 0,0025 g/1 Source d'azote
. Tartrate d'ammonium 1,84 g/1 Source de carbone
. glycérol 10 g/1
. extrait de levure 1 g/1
. azolectine de soja (phospholipides) 0,75 g/1
. acide oléique émulsifié avec du Tween 80 0,4 g/1 PH de la culture : pH : 6,5 (le tampon utilisé est l'acide 2,2-diméthyl-succinique) Température d'incubation : 37*C
La culture est réalisée après insufflation de 100% d'02 pendant deux minutes, sans agitation, dans des Erlenmayer de 150 ml contenant 30 ml du milieu de culture aqueux susdit, de J0 à J2 à 37'C.
2. On soutire 15% du milieu total susdit, qu'on remplace par un milieu de culture tel que décrit en 1. ci-dessus sauf en ce qui concerne l'extrait de levure, l'azolectine de soja et l'acide oléique émulsifié dont le premier et le troisième sont supprimés, de même que le glycérol, le tartrate de diammonium, les sels, les oligoéléments et les vitamines, tandis que la teneur en azolectine de soja du milieu est diminuée de 7,5 fois (0,1 g/litre) et que ledit milieu est additionné d'alcool veratrylique (2,5 mM) , l'alcool veratrylique et l'azolectine de soja jouant le rôle d'inducteurs de production de la lignine- peroxydase. _ La culture est poursuivie de J3 à J5 inclus à une température d'incubation de 30*C, qui est la température optimale de production de lignine-peroxydase.
3. à J5, la totalité du milieu de culture est soutirée pour être remplacée par un milieu de culture présentant
la composition suivante : source d'azote tartrate de diammonium 0,46 g/1 source de carbone glycérol 2,5 g/1 extrait de levure 0,25 g/1 azolectine de soja 0,1 g/1 alcool veratrylique 2,5 mM
L'alcool veratrylique et l'azolectine de soja présents dans ce milieu jouent le rôle d'inducteurs et de protec¬ teurs de la lignine-peroxydase, comme dans le milieu de culture utilisé dans l'étape 2. ci-dessus et le glycérol, le tartrate d'ammonium et l'extrait de levure jouent en combinaison, le rôle de milieu de régénération de la bio- masse. Le pH du milieu de culture est ajusté à pH 5,5 et la température d'incubation est de 30*C. Le glycérol, la source d'azote et l'extrait de levure agissent sur la production de biomasse et non sur la production de l'enzyme ; c'est pourquoi ils sont présents dans le milieu de régénération. Toutefois leurs concentrations sont réduites à 25% de ce qu'elles sont dans le milieu de culture de l'étape 1. ci-dessus pour limiter la produc¬ tion de biomasse dans des proportions non préjudiciables à la production de l'enzyme. 4. A partir de J6 la totalité du milieu de culture est soutirée toutes les 24 heures pour être remplacée par un milieu de culture de même composition que celui utilisé dans l'étape 2. ci-dessus, et la culture est poursuivie jusqu'à J13, à 30*C à pH 5,5. La figure 1 annexée constitue un schéma du procédé de production de la lignine-peroxydase par des cellules non-proliférantes de Phanerochaete chrysosporium, conforme à la présente invention.
Dans ce schéma :
— représente le profil de température
. représente le remplacement de 15% du | milieu de culture par un milieu de culture contenant 0,1 g/1 d'azolectine et 2,5 mM
^v d'alcool veratrylique représente le remplacement de 100% du mi¬ lieu de culture par un milieu de culture contenant de l'azolectine (0,1 g/1), de l'alcool veratrylique (2,5 mM) et un
milieu de régénération partielle de la biomasse (glycérol 2,5 g/1, tartrate d'ammonium 0,46 g/1 , extrait de levure 0,25 g/1) représente le remplacement (toutes les 24 heures) de 100% du milieu de culture par
un milieu de culture contenant de l'azolectine (0,1 g/1) et de l'alcool veratrylique (2,5 mM) . 5. Les cultures obtenues sont récoltées et filtrées sur un filtre en fibres de verre. Le surnageant est dialyse pendant une nuit contre de l'eau distillée. Le milieu extracellulaire est alors concentré au l/10ème de son volume initial par ultrafiltration à travers une membrane Amicon YM10.
Les protéines contenues dans le fluide concentré sont dé¬ terminées par chromâtographie FPLC (fast protein liquid chromâtography) à l'aide d'un chromâtographe LCC 500 de „ PHARMACIA équipé d'une colonne échangeuse d'anions Mono QHR 515, avec un gradient de NaCl dans 10 mM de cacody- late de sodium (pH 5,9) .
Les profils FPLC des isoenzymes de la lignine-peroxydase obtenus sont représentés à la figure 2 annexée dans la¬ quelle
la figure 2A représente les profils de protéines extracellulaires de Phanerochaete chryso¬ sporium INA-12 dans les conditions de cul¬ ture standard sans renouvellement du milieu de culture, la température d'incubation étant de 37*C ; la figure 2B représente lesdits profils de protéines obtenus avec renouvellement de l'atmosphère (100% d'oxygène) après deux jours de culture la figure 2C représente lesdits profils de protéines obtenus avec renouvellement de l'atmosphère en oxygène et changement de 15% du milieu avec 2,5mM d'alcool vératry- lique après deux jours de culture la figure 2D représente lesdits profils de protéines obtenus avec renouvellement de l'atmosphère en oxygène et changement de
15% du milieu avec 2,5mM d'alcool véra- trylique et 0,1 g/1 d'azolectine après deux jours de culture la figure 2E représente lesdits profils de protéines obtenus avec renouvellement de l'atmosphère en oxygène et changement de 15% du milieu avec 2,5 M d'alcool vera¬ trylique et 0,1 g/1 d'azolectine et chan¬ gement de température d'incubation de 37*C à 30*C après deux jours de culture. L'absorbance à 405 nm est représentée en traits pleins et l'absorbance à 280 nm en traits discontinus ; la droite inclinée représente le gradient de NaCl. Ces profils montrent que le fluide extracellu¬ laire contient plusieurs hèmeprotéines dont six présen- tent une activité lignine-peroxydase ; ce sont les pics 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8 et 9. 80% de l'activité lignine-
peroxydase sont associés aux pics 7, 8 et 9. Les cultures dont les températures d'incubation ont été successivement de 37'C, puis de 30*C, et celles dont la température d'incubation a été uniquement de 30*C présentent une aug- mentation de la proportion du pic 4.
EXEMPLE 2 DE PRODUCTION DE LIGNINE-PEROXYDASE
On reproduit les conditions de l'exemple 1 en introduisant dans un Erlenmayer de 250 ml, 100 ml de milieu ; on obtient une production d'enzyme de 46,4 nKat/ml.
EXEMPLE 3 DE PRODUCTION DE LIGNINE-PEROXYDASE
Le microorganisme mis en oeuvre est la souche Phanerochaete chrysosporium INA-12 (CNCM N*1-398) .
Des cellules de Phanerochaete chrysosporium INA-12 immobilisées sur de la mousse de polyuréthane sont traitées comme dans l'étape 1 de l'exemple 1.
Le réacteur est ensemencé avec 2.10^ spores/ml. Il y a une immobilisation directe in situ dans le réacteur. Le milieu est alimenté en continu en oxygène, introduit dans une cheminée centrale où est également située la turbine d'agitation (200 t/mn) . La concentra¬ tion en 02 est régulée aux environs .de 60 % de la saturation du milieu par l'air. Les cellules de Phanerochaete chrysosporium immobilisées sur la mousse de polyuréthane sont disposées à la périphérie du bioréacteur, autour de la cheminée centrale.
Les étapes 2 à 5 sont identiques à celles de l'exemple 1. Le titre en enzyme obtenue atteint 25 nKat/ml.
Le procédé conforme à la présente invention permet de contrôler la production de lignine-peroxydase et, par voie de conséquence, la possibilité d'une produc¬ tion de cette enzyme à l'échelle industrielle. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de
mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui vien¬ nent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en em¬ brasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée de la présente inven¬ tion.
Claims
REVENDICATIONS
1*) Procédé de production de lignine-peroxy¬ dase à partir d'un champignon connu sous le nom de Phane¬ rochaete chrysosporium, dans un milieu de culture conte- nant des activateurs et protecteurs de l'enzyme, tels que des phospholipides et de l'alcool veratrylique, lequel procédé est caractérisé en ce qu'il comprend :
- une première étape de culture de cellules de Phanero¬ chaete chrysosporium pendant une période d'incubation de 2 jours environ, dans un milieu de culture synthétique comprenant des sels de potassium, de calcium et de magné¬ sium, des oligo-éléments (fer, zinc, manganèse, cuivre) , une source d'azote appropriée, une source de carbone avantageusement constituée par du glycérol, de l'extrait de levure, une source de phospholipides, une source d'acides gras émulsifiés ;
- une deuxième étape de culture du mycélium formé au cours de la première étape, pendant une période de 3 jours environ (du J3 au J5) dans un milieu de culture en partie renouvelé (avantageusement à raison de 15% envi¬ ron), additionné d'alcool veratrylique, activateur et protecteur de la production de la lignine-peroxydase, et dont la teneur en phospholipides est réduite au l/7ème - l/8ème environ de sa teneur dans le milieu de culture de la première étape, lequel milieu de culture ne contient pas d'acides gras émulsifiés ;
- une troisième étape de culture, à l'optimum de produc¬ tion de la lignine-peroxydase, c'est-à-dire au bout de 5 jours environ, au cours de laquelle la totalité du milieu de culture de la deuxième étape est remplacée par un milieu de culture synthétique analogue à celui de la pre¬ mière étape contenant la même proportion de phospholi¬ pides et d'alcool veratrylique que le milieu de culture de la deuxième étape et dans lequel l'extrait de levure, la source d'azote et la source de carbone - avantageuse¬ ment constituée par du glycérol - sont réduits au 1/4 de
leur teneur dans le milieu de culture de la première étape, ces trois composants constituant en combinaison un milieu de régénération partielle de la biomasse ;
- une quatrième étape qui consiste à poursuivre la cul- ture avec des cellules non proliférantes pendant 8 jours environ (de J6 à J13) , en renouvelant totalement le milieu de culture toutes les 24 heures pour le remplacer par un milieu ne contenant ni extrait de levure, ni acides gras émulsifiés, ni glycérol, mais contenant des activateurs de production et de protection de l'enzyme constitués par l'alcool veratrylique et les phospholi¬ pides dans les mêmes proportions que les milieux de cul¬ ture des deuxième et troisième étapes ;
- une cinquième étape de séparation de l'enzyme produite et éventuellement de purification de celle-ci.
2*) Procédé selon la revendication 1, caracté¬ risé en ce que la première étape de culture des cellules a lieu à une température d'incubation de 37*C environ, alors que les étapes suivantes sont réalisées à des tem- pératures d'incubation de 30*C environ.
3") Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que la première étape de culture des cellules a lieu dans un milieu de culture tamponné à pH 6,5, alors que les étapes suivantes sont réalisées dans un milieu de culture tamponné à pH 5,5;
4*) Procédé selon la revendication 1, caracté¬ risé en ce que la source de phospholipides est _ avantageusement constituée par de l'azolectine de soja. 5*) Procédé selon la revendication 1, caracté¬ risé en ce que le milieu de culture de la première étape comprend une teneur en source d'azote de l'ordre de 1,84 g/litre pour une teneur en source de carbone (glycé¬ rol) de l'ordre de 10 g/litre, pour une teneur en phospholipides (azolectine de soja) de l'ordre de
0,75 g/litre et pour une teneur en extrait de levure de
1 g/litre.
6") Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le milieu de culture de la deuxième étape diffère du milieu de culture de la première étape par son pH (5,5), sa teneur réduite en phospholipides (de l'ordre de 0,1 g/litre) et sa teneur en alcool veratrylique (de l'ordre de 2,5 mM) .
7*) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le milieu de culture de la troisième étape diffère du milieu de cul¬ ture de la deuxième étape, par sa teneur réduite en gly¬ cérol (2,5 g/litre environ), en source d'azote (notamment 0,46 g/litre environ de tartrate de diammonium) et en extrait de levure (0,25 g/litre) .
8*) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le milieu de culture de la quatrième étape diffère du milieu de cul¬ ture de la troisième étape en ce qu'il ne contient ni extrait de levure, ni source d'azote, ni source de car¬ bone.
9*) Procédé selon l'une quelconque des reven¬ dications 1 à 8, caractérisé en ce que les troisième et quatrième étapes sont réalisées en continu. 10*) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que les cultures obtenues sont récoltées et sont séparées par filtration, puis le milieu extracellulaire obtenu est concentré pour recueillir la lignine-peroxydase recherchée. 11*) Lignine-peroxydase caractérisée en ce qu'elle est obtenue en mettant en oeuvre le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 10.
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Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1993008272A1 (fr) * | 1991-10-21 | 1993-04-29 | Lignozym Gesellschaft Zur Herstellung Und Zum Vertrieb Von Enzymen Mbh | Procede de fabrication d'enzymes lignolytiques au moyen de champignons de pourriture blanche |
| FR2728911A1 (fr) * | 1995-01-02 | 1996-07-05 | Agronomique Inst Nat Rech | Procede de production de lignine-peroxydase et de manganese-peroxydase a partir d'une culture de phanerochaete chrysosporium |
Families Citing this family (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4012743C1 (fr) * | 1990-04-21 | 1992-01-09 | Hans-Peter Dr. 5132 Uebach-Palenberg De Call | |
| WO1992017550A1 (fr) * | 1991-03-27 | 1992-10-15 | Idaho Research Foundation, Inc. | Colorants azoiques biodegradables |
| US5342765A (en) * | 1991-08-01 | 1994-08-30 | Occidental Chemical Corporation | Method of producing extracellular products from aerobic microorganisms |
| ITMI20001867A1 (it) * | 2000-08-10 | 2002-02-10 | Bioren S R L | Metodo di trattamento di reflui. |
| DE10043944B4 (de) * | 2000-09-01 | 2006-03-23 | Friedrich-Schiller-Universität Jena | Verfahren zur Herstellung lignilolytischer Enzyme mittels holzbewohnender Pilze aus der Ordnung Agaricales |
| WO2006114787A2 (fr) * | 2005-04-26 | 2006-11-02 | Mycoenzyme Ltd. | Basidiomycetes faisant pourrir le bois utiles pour produire des enzymes ligninolytiques |
| KR100866999B1 (ko) | 2007-08-07 | 2008-11-10 | 이기동 | 리그닌 분해효소의 제조방법 |
| US8686123B2 (en) | 2010-11-15 | 2014-04-01 | Edeniq, Inc. | Use of manganese peroxidase for enzymatic hydrolysis of lignocellulosic material |
| US8753844B2 (en) | 2011-05-06 | 2014-06-17 | The Regents Of The University Of California | Overproduction of ligninolytic enzymes |
| EP2677030A1 (fr) | 2012-06-21 | 2013-12-25 | Latvijas Valsts Koksnes kimijas instituts | Mousses rigides et flexibles de polyurethane comme composite obtenues a partir de matieres premieres de bois et a utiliser comme support pour immobiliser des micro-organismes produisant des enzymes lignolytiques |
| CN115043676B (zh) * | 2022-07-01 | 2023-07-07 | 东北农业大学 | 一种生物模拟类芬顿反应高效降解木质纤维素的方法 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0188931A1 (fr) * | 1984-12-12 | 1986-07-30 | INSTITUT NATIONAL DE LA RECHERCHE AGRONOMIQUE, Etablissement public dit: | Microorganismes de souche Phanerochaete chrysosporium et leur utilisation |
| FR2600077A1 (fr) * | 1986-06-13 | 1987-12-18 | Agronomique Inst Nat Rech | Procede de production de l'enzyme ligninolytique par culture du champignon phanerochaete chrysosporium |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2613241B2 (ja) * | 1987-03-09 | 1997-05-21 | 王子製紙株式会社 | リグニンパーオキシダーゼｍｆ−１およびその製造方法 |
| DE3881774T2 (de) * | 1987-06-30 | 1993-11-18 | Elf Aquitaine | Verfahren zur chemischen Modifizierung von Protiden und so modifizierte Produkte. |
| US4882274A (en) * | 1987-07-06 | 1989-11-21 | Electric Power Research Institute, Inc. | Method for solubilization of low-rank coal using a cell-free enzymatic system |
| US4960699A (en) * | 1988-05-09 | 1990-10-02 | Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. | Enzymatic depolymerization of coal |
-
1988
- 1988-10-03 FR FR8812887A patent/FR2637292B1/fr not_active Expired - Lifetime
-
1989
- 1989-10-02 WO PCT/FR1989/000506 patent/WO1990004021A1/fr active IP Right Grant
- 1989-10-02 DE DE89911570T patent/DE68907608T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1989-10-02 EP EP89911570A patent/EP0437500B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1989-10-02 US US07/671,705 patent/US5153121A/en not_active Expired - Fee Related
-
1991
- 1991-03-15 FI FI911277A patent/FI911277A0/fi not_active Application Discontinuation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0188931A1 (fr) * | 1984-12-12 | 1986-07-30 | INSTITUT NATIONAL DE LA RECHERCHE AGRONOMIQUE, Etablissement public dit: | Microorganismes de souche Phanerochaete chrysosporium et leur utilisation |
| FR2600077A1 (fr) * | 1986-06-13 | 1987-12-18 | Agronomique Inst Nat Rech | Procede de production de l'enzyme ligninolytique par culture du champignon phanerochaete chrysosporium |
Non-Patent Citations (7)
| Title |
|---|
| Biological Abstracts, Annual Meeting of the American Society for Microbiology, Florida, 8-13 Mai 1988 M. ASTHER et al.: "Improvement by Temprature-Shifting of Ligninase Production by Phanerochaete-chrysosporium INA-12", *voir Resume BR35:48606 & Abstr. Annu. Meet. Am. Soc. Microbiol. 88 (O). 1988. 264* * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, Vol. 106, 1987, (Columbus, Ohio, US) M. ASTHER et al.: "Effect of Tween 80 and Oleic Acid on Ligninase Production by Phanerochaete Chrysosporium INA-12", voir page 600* Resume 194719s & Enzyme Microb. Technol. 1987, 9(4), 245-9* * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, Vol. 108, 1988, (Columbus, Ohio, US) M. ASTHER et al.: "Phospholipid and Fatty Acid Enrichment of Phanerochaete Chrysosporium INA-12 in Relation to Ligninase Production", voir page 541* Resume 73699t & Appl. Mircobiol. Biotechnol. 1988, 27(4), 393-8* * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, Vol. 109, 1988, (Columbus, Ohio, US) F. TONON et al.: "Influence of Medium Additives for the Production of Active Ligninase by Phanerchaete Chrysosporium", voir page 484* Resume 108857t & Colloq. Inra, 1987, 40 (Lignin Enzymic Microb. Degrad) 165-170* * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, Vol. 109, 1988, (Columbus, Ohio, US) M. ASTHER et al.: "Strategies to Enhanced Ligninase Production by Phanerochaete Chrysosporium", vour page 484* Resume 108861q & Fems Symp. 1988, 43(Biochem. Genet. Cellul. Degrad), 333-47* * |
| Fems Microbiology Letters, Vol. 35, 1986, Elsevier S.D. HAEMMERLI et al.: "Polymerisation of Lignis by Ligninases from Phanerochaete Chrysosporium", pages 33-36 * |
| Journal of Biotechnology, Vol. 8, No. 2, Juin 1988, Elsevier Science Publishers B.V. (Amsterdam, NL) S. LINKO: "Continuous Production of Lignin Peroxidase by Immobilized Phanerchaete Chrysosporium in a Pilot Scale Bioreactor", pages 163-170 * |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1993008272A1 (fr) * | 1991-10-21 | 1993-04-29 | Lignozym Gesellschaft Zur Herstellung Und Zum Vertrieb Von Enzymen Mbh | Procede de fabrication d'enzymes lignolytiques au moyen de champignons de pourriture blanche |
| US5403723A (en) * | 1991-10-21 | 1995-04-04 | Call; Hans-Peter | Process for the production of lignolytic enzymes by means of white rot fungi |
| FR2728911A1 (fr) * | 1995-01-02 | 1996-07-05 | Agronomique Inst Nat Rech | Procede de production de lignine-peroxydase et de manganese-peroxydase a partir d'une culture de phanerochaete chrysosporium |
| WO1996021008A1 (fr) * | 1995-01-02 | 1996-07-11 | Institut National De La Recherche Agronomique - I.N.R.A. | Procede de production de lignine-peroxydase et de manganese-peroxydase a partir d'une culture de phanerochaete chrysosporium |
| US5972672A (en) * | 1995-01-02 | 1999-10-26 | Institut National De La Recherche Agronomique | Phanerochaete chrysospoirium strains CNCM I-1511, I-1512 and I-1513 for producing lignin peroxidase and manganese peroxidase |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
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| Levering et al. | Arthrobacter P 1, a fast growing versatile methylotroph with amine oxidase as a key enzyme in the metabolism of methylated amines | |
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