UA86355U - Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому - Google Patents

Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому Download PDF

Info

Publication number
UA86355U
UA86355U UAU201308500U UAU201308500U UA86355U UA 86355 U UA86355 U UA 86355U UA U201308500 U UAU201308500 U UA U201308500U UA U201308500 U UAU201308500 U UA U201308500U UA 86355 U UA86355 U UA 86355U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
musm
amplification
gene
neuroblastoma
dna
Prior art date
Application number
UAU201308500U
Other languages
English (en)
Russian (ru)
Inventor
Наталья Николаевна Храновская
Наталья Валерьевна Ионкина
Наталья Николаевна Свергун
Оксана Владимировна Скачкова
Григорий Иванович Климнюк
Сергей Владимирович Павлик
Елена Викторовна Шайда
Original Assignee
Национальный Институт Рака
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Национальный Институт Рака filed Critical Национальный Институт Рака
Priority to UAU201308500U priority Critical patent/UA86355U/uk
Publication of UA86355U publication Critical patent/UA86355U/uk

Links

Abstract

Спосіб визначення ампліфікації гена MYCN у дітей, хворих на нейробластому, включає дослідження методом полімеразно-ланцюгової реакції з використанням специфічних праймерів. Полімеразно-ланцюгову реакцію проводять з використанням специфічних TaqMan-зондів MGB-типу з детекцією результатів в режимі реального часу та при виявлені в пухлинній клітині ампліфікацію гена MYCN більше 10 копій, прогнозують несприятливий перебіг захворювання.

Description

Корисна модель належить до медицини, а саме - онкології, і може бути використана для визначення наявності ампліфікації гена МУСМ в пухлинних клітинах у дітей, хворих на нейробластому.
Нейробластома складає 7-11 95 загальної кількості злоякісних новоутворень у дітей, займаючи четверте місце у структурі онкологічної захворюваності дітей після гострих лейкозів, пухлин центральної нервової системи та злоякісних лімфом. Частота виникнення нейробластом становить 0,85-1,1 на 100 тисяч дітей віком до 15 років. Віковий розподіл неоднорідний, частота виявлення цієї пухлини з віком зменшується. 90 95 хворих - новонароджені та діти віком до 6 років ПІ.
Важливе значення, особливо при використані сучасної протокольної терапії, є виявлення специфічних онкогенів на молекулярно-генетичному рівні з використанням полімеразної ланцюгової реакції (ПЛР) в режимі реального часу. Головна перевага ПЛР - її унікальна чутливість при досить невисокій вартості проведення досліджень. Метод дозволяє встановити несприятливий прогноз перебігу захворювання і точно визначити "групи ризику" хворих, з можливістю забезпечення оптимізації програм терапії вже на перших етапах лікування |21.
Нейробластома із агресивним перебігом характеризуються множинними сегментними абераціями хромосом та ампліфікацією гена МУСМ. Ген МУСМ є центральним стратифікаційним біологічним маркером, розташованим в дистальній частині короткого плеча 2- ої хромосоми (2ра24) та ампліфікується в пухлинних клітинах нейробластоми. Ампліфікація гена
МУСМ зазвичай досягає від 10 до 400 копій гена в пухлинній клітині з відповідним високим рівнем експресії, спостерігається у 25 95 первинних пухлин і корелює з прогресуючою стадією захворювання та резистентністю до лікування і дозволяє стратифікувати хворих дітей на нейробластому за групами ризику ІЗІ.
За прототип вибрано спосіб визначення ампліфікації гена МУСМ у зразках пухлинної тканини у дітей, хворих на нейробластому |Оцапійайме ВНеаїЇ-їйте РОСА ог диїсК зітийапеоив5 деїептіпаїйоп ої Шегару-зігаїйуіпд тапгкетз МУСМ атріїйісайоп, аеїейоп Тр апа 1194 / М. Воєпзспи,
А. Орепиег, М. РізсеНег Геї а!) // Оіадп. Мої. Раїйо!ї.-2005. - Мої. 14, Мо 3. - Р. 177-182, за яким використовують метод кількісної полімеразної ланцюгової реакції з використанням флуоресцентного барвника 5УВАСтееєп. Проведення аналізу включає такі етапи: виділення ДНК
Зо з біологічного матеріалу, ампліфікацію досліджуваної ділянки методом ПЛР з використанням двох пар специфічних праймерів та рлуоресцентного барвника 5УВРСтгееп, детекцію продуктів реакції методом кількісної ПЛР в режимі реального часу.
Позитивним в прототипі є те, що метод молекулярно-генетичного аналізу є досить чутливим та специфічним, і дозволяє виявити ампліфікацію гена у біологічному матеріалі.
Недоліком прототипу є те, що метод є трудомістким процесом та недостатньо чутливим при використанні флуоресцентного барвника 5УВВАСИтееп і допускає виникнення хибно позитивних результатів.
В основу корисної моделі поставлено задачу удосконалити спосіб визначення ампліфікації гена МУСМ у дітей, хворих на нейробластому, методом полімеразної ланцюгової реакції з детекцією результатів в режимі реального часу з використанням специфічних ТадМап-зондів
МавВ-типу та з більш високою специфічністю гібридизації, що дасть можливість стратифікувати хворих за "групами ризику", підвищити точність прогнозування перебігу захворювання з можливістю подальшої оптимізації програм терапії.
Поставлена задача вирішується наступним чином:
Біоптат пухлини поміщали в мікропробірки, які містили 0,3 мл середовища для транспортування виробництва "Атбріоп", США, для стабілізації ДНК. Матеріал призначений для виділення ДНК, зберігався при температурі 2-8 "С протягом 1 доби або довготривало при - 7076.
Парафінізовану тканину звільняли від парафіну методом депарафінізації за допомогою ксилолу, згідно з методичними рекомендаціями (5). Геномну ДНК з пухлинної тканини виділяли методом адсорбції нуклеїнових кислот на "віїйса" мембрані за допомогою колонок "СОІАатрОМА
Міпіки" (ОІАСЕМ", США), згідно з рекомендаціями фірми-виробника. Для роботи з ДНК використовували тільки одноразові стерильні пластикові матеріали, з маркуванням "Нпазе-ігее", "Опазе-їтеє". Використаний пластиковий посуд (пробірки, наконечники) знезаражували в спеціальному контейнері, який містить дезінфікуючий 5 95-ний розчин хлораміну або 1Н розчин соляної кислоти.
Отриманий зразок ДНК одразу використовували для постановки полімеразної ланцюгової реакції або зберігали (впродовж 7 днів при 2-8 "С, впродовж 1 року при температурі мінус 20 7 та довготривало при -70 "С).
Перед проведенням реакції ампліфікації концентрацію отриманої ДНК доводили до 10-20 нг/мкл. Вимірювання концентрації ДНК проводили методом спектрофотометрії на спектрофотометрі МапоОгор1000 ("Тнептовсієпійіс", США).
Послідовності праймерів та ТадМап зондів були підібрані нами з використанням програми
Ргітег Ехргез5Ф Боїймаге м3.0 ("АрріїєдВіовувієтв", США) та синтезовані фірмою "АрріїєаВіозувієтв" (США): - прямий праймер В-асіїп - "ТСАСССАСАСТАТаСССАТСТАСОАЗ: - зворотній праймер ВД-асіїп - З СОСОК АССОСТСАТТОССА АТО КУ - флюоресцентний зонд В-асійп -
ОБАМА СС СССАТССАТСОСТОСЮТ -ТАМКА - прямий праймер МУСМ - З ССССТОСОСЕСТОСОСССОС ТЕКУ - зворотній праймер МУСМ - У ССС АС АСВ АСТСАЛЕЮТУ - флюоресцентний зонд МУСМ -
УК СССАСССТСТОСИСТО ТО СТО СОТ. ТАМЕА
Праймери використовували в концентрації ЗО нМ/т!, та зонди в концентрації 20 нМ/т!1. Для проведення реакції ампліфікації готували реакційну суміш: 1 мкл прямий праймер (МУСМ), 1 мкл зворотній праймер (МУСМ), 1 мкл флюоресцентний зонд (МУСМ), 1 мкл прямий праймер (В- асійп), 1 мкл зворотній праймер (В-асійпй), 1 мкл флюоресцентний зонд (В-асійп) 1,5 мкл ПЛР- води, 12,5 мкл ТадМап Опімегзаї РОСА Мавієї Міх ("Арріїєй Вуозузіетв", США). До суміші додавали 5 мкл розчину ДНК.
Ампліфікацію проводили на приладі 7300/7500 Аеаі-Тіте РОСА Бувієтв, "Арріїєа
Віозувзівєтв", (США), використовуючи наступний температурний режим: початок ампліфікації при 9570-5 хв, накопичення ампліфікаційного продукту протягом 50 циклів 94 "0-3 с, 58 70-6 б. і 7270-27 б. та стадія дисоціації (розділення отриманих продуктів за температурою плавлення) 95 70-15 с, 60 "0-30 с, 95 70-15 б.
Після закінчення реакції ампліфікації проводили облік одержаних результатів в режимі реального часу, згідно з рекомендаціями фірми-виробника приладу. Кількість копій гена МУСМ розраховують за формулою: хе 2 сі
Ко) де х - кількість копій гена МУСМ,
Дої-сі (В-асіїп) - сії (МУСМ) (б.
Як негативний контроль використовували ДНК, отриману з тканини головного мозку, а позитивний - ДНК зразків з верифікованою ампліфікацією гена МУСМ.
Відсутність ампліфікації гена МУСМ в пухлинній клітині свідчить про сприятливий перебіг захворювання та дозволяє оптимізувати програму терапії хворого. Виявлення більше 10 копій ампліфікації гена МУСМ в пухлинній клітині свідчить про несприятливий перебіг захворювання та відносить хворих до "групи високого ризику".
Переконливими прикладами ефективності запропонованого способу є представлені результати молекулярно-генетичних досліджень біологічного матеріалу хворих.
Ї Хворий Б. Д. Д. 2007 р. н., (амб. медична карта Мо 113523). Госпіталізований на консультацію в Національний інститут раку з діагнозом нейробластома лівого наднирника, з метастазами в печінку, парааортальні лімфовузли, кістковий мозок. Патогістологічний висновок (ПГ3) Мо 62117 від 02.12.201: нейробластома лівого наднирника, з метастазами печінку парааортальні лімфовузли, кістковий мозок, 4 стадія. В 2011 року було проведено операцію по резекції пухлини.
У хворого отримували біопсійний матеріал пухлини до лікування. Біоптат пухлини поміщали в мікропробірки, які містили 0,3 мл середовища для транспортування виробництва "Атрбіоп", (США), для стабілізації ДНК. Матеріал призначений для виділення ДНК, зберігався при температурі 2-8 "С протягом 1 доби або довготривало при -70 "С.
Парафінізовану тканину звільняли від парафіну методом депарафінізації за допомогою ксилолу, згідно з методичними рекомендаціями. Геномну ДНК з пухлинної тканини виділяли методом адсорбції нуклеїнових кислот на "віїйса" мембрані за допомогою колонок "СОІАатрОМА
Міпіки" (ОІАСЕМ", США), згідно з рекомендаціями фірми-виробника. Для роботи з ДНК використовували тільки одноразові стерильні пластикові матеріали, з маркуванням "Нпазе-ігее", "Опазе-їтеє". Використаний пластиковий посуд (пробірки, наконечники) знезаражували в спеціальному контейнері, який містить дезінфікуючий 5 95-ний розчин хлораміну або 1Н розчин соляної кислоти.
Отриманий зразок ДНК одразу використовували для постановки полімеразної ланцюгової реакції або зберігали (впродовж 7 днів при 2-8 "С, впродовж 1 року при температурі мінус 207 бо та довготривало при -70 "С).
Перед проведенням реакції ампліфікації концентрацію отриманої ДНК доводили до 10-20 нг/мкл. Вимірювання концентрації ДНК проводили методом спектрофотометрії на спектрофотометрі МапоОгор1000 ("Тнептовсієпійіс", США).
Послідовності праймерів та ТадМап зондів були підібрані нами з використанням програми
Ргітег Ехргез5Ф Боїймаге м3.0 ("АрріїєдВіовувієтв", США) та синтезовані фірмою "АрріїєаВіозувієтв" (США): - прямий праймер р-асіп - ГТС АСССАСАСТОТОСССАТСТАСОСАВ - зворотній праймер р-асііп - З САОСОСААССОСТСАТТОССААТОАВ - флуоресцентний зонд р-асійп - -БАМ АТС ССТОССССАТОССАТОСТОСИТ-ТА МВА - прямий праймер МУСМ - З -СССТОСКСТСТОССОССТТУ - зворотній праймер МУСМ - МОНА АСТАСААСТСАТСТТВЕ - флуоресцентний зонд МУСМ -
АОС ССС ОО ССО ГГ ТАМКА
Праймери використовували в концентрації ЗО нНМ/Лп1, та зонди в концентрації 20 нМ/ті!1.
Для проведення реакції ампліфікації готували реакційну суміш: 1 мкл прямий праймер (ММСМ), 1 мкл зворотній праймер (МУСМ), 1 мкл флуоресцентний зонд (МУСМ), 1 мкл прямий праймер (В-асійп), 1 мкл зворотній праймер (р-асіїп), 1 мкл флуоресцентний зонд (В-асійп) 1,5 мкл ПЛР- води, 12,5 мкл ТадМап Опімегзаї РОСА Мавієї Міх ("Арріїєй Вуозузіетв", США). До суміші додавали 5 мкл розчину ДНК.
Ампліфікацію проводили на приладі 7300/7500 Аеаі-Тіте РОСА Бувієтв, "Арріїєа
Віозузієтв", США, використовуючи наступний температурний режим: початок ампліфікації при 9570-5 хв, накопичення ампліфікаційного продукту протягом 50 циклів 94 70-3 с, 58 "0-6 с і 7270-27 б. та стадія дисоціації (розділення отриманих продуктів за температурою плавлення) 95 70-15 с, 60 "0-30 с, 95 706-156
Після закінчення реакції ампліфікації проводили облік одержаних результатів в режимі реального часу, згідно з рекомендаціями фірми-виробника приладу. Кількість копій гена МУСМ розраховують за формулою: х-2га
Ко) де х - кількість копій гена МУСМ,
Дої-сі (В-асіїп) - сі (МУСМ).
Як негативний контроль використовували ДНК, отриману з тканини головного мозку, а позитивний - ДНК зразків з верифікованою ампліфікацією гена МУСМ.
В результаті досліджень у хворого не було виявлено ампліфікацію гена МУСМ методом ПЦР в режимі реального часу, що свідчити про сприятливий перебіг захворювання. Хворому проведено 8 блоків хіміотерапії по протоколу СОЦЕК після операції. Спостерігається повна відповідь у хворого на лікування та 19 місячна ремісія.
Я. Хворий В.А.В. 2006 р. н. (амб. медична картка Мо 900581). Госпіталізований на консультацію в Національний інститут раку з діагнозом нейробластома заочеревинного простору справа. ПГЗ Мо 4/2009 від 12.01.2009 нейробластома заочеревинного простору справа, З стадія.
У хворого отримували біопсійний матеріал пухлини до лікування. Біоптат пухлини поміщали в мікропробірки, які містили 0,3 мл середовища для транспортування виробництва "Атрбіоп", (США), для стабілізації ДНК. Матеріал призначений для виділення ДНК, зберігався при температурі 2-8 "С протягом 1 доби або довготривало при -70 "С.
Парафінізовану тканину звільняли від парафіну методом депарафінізації за допомогою ксилола, згідно з методичними рекомендаціями.
Геномну ДНК з пухлинної тканини виділяли методом адсорбції нуклеїнових кислот на "віїїса" мембрані за допомогою колонок "ОІАатрОМА Міпіки" ("СОІАСЕМ", США), згідно з рекомендацією фірми-виробника. Для роботи з ДНК використовували тільки одноразові стерильні пластикові матеріали, з маркуванням "Нпазе-їтеє", "Опавзе-їеєєе". Використаний пластиковий посуд (пробірки, наконечники) знезаражували в спеціальному контейнері, який містить дезінфікуючий 5 уо-ний розчин хлораміну або 1Н розчин соляної кислоти.
Отриманий зразок ДНК одразу використовували для постановки полімеразної ланцюгової реакції або зберігали (впродовж 7 днів при 2-8 "С, впродовж 1 року при температурі мінус 20 "С та довготривало при -70 "С).
Перед проведенням реакції ампліфікації концентрацію отриманої ДНК доводили до 10-20 нг/мкл. Вимірювання концентрації ДНК проводили методом спектрофотометрії на спектрофотометрі МапоОгор1000 ("Тнептовсієпійіс", США).
Послідовності праймерів та ТадМап зондів були підібрані нами з використанням програми
Ргітег Ехргез5Ф Боїймаге м3.0 ("АрріїєдВіовувієтв", США) та синтезовані фірмою "АрріїєаВіозувієтв" (США): - прямий праймер Р-асіп - З ТСАСССАСАСЄТО ОСОСАТСТАСВАХУ - зворотній праймер Р-асіїп - З САССОЗАЛОСОСТСАТТОССААТОА Є - флуоресцентний зонд Р-асіїйп - еКАМ АНТ КАТ САС ТА МКА - прямий праймер МУСМ -
КОТ ОО СОС
- зворотній праймер МУСМ -
ГО ААСТАСААСТСАТСТТК
- флуоресцентний зонд МУСМ - ув АС АССЦСТСТОСОО ОСТ СО ОТГ А ТАМ
Праймери використовували в концентрації ЗО нМ/т!, та зонди в концентрації 20 нМ/т!1. Для проведення реакції ампліфікації готували реакційну суміш: 1 мкл прямий праймер (МУСМ), 1 мкл зворотній праймер (МУСМ), 1 мкл флуоресцентний зонд (МУСМ), 1 мкл прямий праймер (ВД- асінп), 1 мкл зворотній праймер (р-асііп), 1 мкл флуоресцентний зонд (В-асіїп) 1,5 мкл ПЛР-води, 12,5 мкл ТадМап Опімегза! РОСА Мавієг Міх ("Арріїеєд Вуозузієтв", США). До суміші додавали 5 мкл розчину ДНК.
Ампліфікацію проводили на приладі 7300/7500 Аеаі-Тіте РОСА Бувієтв, "Арріїєа
Віозузієтв", США, використовуючи наступний температурний режим: початок ампліфікації при 9570-5 хв, накопичення ампліфікаційного продукту протягом 50 циклів 94 "0-3 с, 58 70-6 б. і 7270-27 б. та стадія дисоціації (розділення отриманих продуктів за температурою плавлення) 95 70-15 с, 60 "0-30 с, 95 "С-15 с.
Після закінчення реакції ампліфікації проводили облік одержаних результатів в режимі реального часу, згідно з рекомендаціями фірми-виробника приладу. Кількість копій гена МУСМ розраховують за формулою: хе 2 сі де х - кількість копій гену МУСМ,
Зо Деї-сі (В-асіїп) - сі (МУСМ).
Як негативний контроль використовували ДНК отриману з тканини головного мозку, а позитивного - ДНК зразків з верифікованою ампліфікацією гена МУСМ.
В результаті досліджень методом ПЦР в режимі реального часу, у хворого було виявлено 512 копій гена МУСМ, що свідчить про належність хворого до "групи високого ризику" та передбачає поганий прогноз. Після повторного проведення досліджень методом ПЦР в режимі реального часу з використанням парафінізованого операційного матеріалу було виявлено 512 копій гена МУСМ. Хворий належить до "групи високого ризику" Йому проведено 8 блоків хіміотерапії за протоколом НА-МВІ-1/ЕБІОР. Спостерігалась неповна відповідь на лікування.
Через 1 рік у хворого розвився рецидив. Враховуючи належність хворого до "групи високого ризику" та ускладнень під час проведення хіміотерапії, прогноз захворювання несприятливий.
Таким чином, визначення наявності ампліфікації гена МУСМ в пухлинній тканині за допомогою молекулярно-генетичних методів, а саме полімеразно-ланцюгової реакції в режимі реального, дозволяє передбачити ризик виникнення несприятливого прогнозу перебігу захворювання, своєчасно визначити "групи ризику" хворих та забезпечити можливість оптимізації програм терапії вже на перших етапах лікування.
Джерела інформації: 1. Ткгадегб. Мешигобіазюта: іпсідепсе, Біоіосду апа оцісоте / С. Тгадег. - «осКНоїЇт: КагоїїпеоКа
Іпзійшес, 2009. - 56 р. 2. ВеаїЇ-їте диапійайме РОСА ог Ше теєавзигетепі ої МУСМ аптрійїісайоп іп питап пешигоріазіота м/йй Ше ТадМап аеїесійоп зузієт / С. Вадді, М. Вадпопі, сх. Топіпі Геї а // Сііп.
Спнет. - 1999. - Мої. 45, Мо 11. - Р. 1918-1924.
З. Сіїпіса! відпі'тісапсе ої МУСМ атрійісайоп апа ріоіду іп Тамогаріє-5їаде пепгобіазюта: а героп їот Ше Спіідгеп'є ОпсоЇоду Стоир / ). Зсппеіденптап, МУ. І опдоп, С. Вгодеитг Геї а!) // 9. Сіїп.
Опсо). - 2008. - Мої. 26, Ме 6. - Р. 913-918. 4. СОцапійайме Неа!-іте РСВ ог диіскК вітийапеоив дегептіпаїйоп ої Іегару-в5ігайуїпу таке
МУСМ атріїйісайоп, адеїейоп Тр апа 114 / М. Воепзсі, А. Обепиег, М. РізеНег Геї а. // Оіадп. Мої.
Раїної. - 2005. - Мої. 14, Мо 3. - Р. 177-182 (прототип). 5. Виділення нуклеїнових кислот з клінічного матеріалу: методичні рекомендацій / Н.Г.
Горовенко, 3.1. Россоха, С.В. Подольська |га ін.|. - К., 2010. - 39 с.
6. біпда! А. Титог таКегз іп реаіайіс зоїїд їштогз / А. Зіпдаї, 5. Адагмаїа // 9. Іпаіап. Авзвос
Реадіаїг. Зигу. - 2005. - Мої. 10, Мо 3. - Р. 183-190.

Claims (1)

  1. ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ
    Спосіб визначення ампліфікації гена МУСМ у дітей, хворих на нейробластому, що включає дослідження методом полімеразно-ланцюгової реакції з використанням специфічних праймерів, який відрізняється тим, що полімеразно-ланцюгову реакцію проводять з використанням специфічних ТадМап-зондів МОЕВ-типу з детекцією результатів в режимі реального часу та при виявлені в пухлинній клітині ампліфікацію гена МУСМ більше 10 копій, прогнозують несприятливий перебіг захворювання.
UAU201308500U 2013-07-08 2013-07-08 Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому UA86355U (uk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201308500U UA86355U (uk) 2013-07-08 2013-07-08 Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201308500U UA86355U (uk) 2013-07-08 2013-07-08 Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA86355U true UA86355U (uk) 2013-12-25

Family

ID=52286027

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU201308500U UA86355U (uk) 2013-07-08 2013-07-08 Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA86355U (uk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20220325350A1 (en) Methods, compositions, and devices for rapid analysis of biological markers
US20230348971A1 (en) Transposition into native chromatin for personal epigenomics
US20230181173A1 (en) Methods, compositions, kits and devices for rapid analysis of biological markers
JP2019201658A (ja) 非干渉性、ノイズキャンセル性のポリヌクレオチド識別タグを用いたマルチプレックスパイロシーケンシング
Kanduri et al. Distinct transcriptional control in major immunogenetic subsets of chronic lymphocytic leukemia exhibiting subset-biased global DNA methylation profiles
ES2767853T3 (es) Detección de la restricción de cadena ligera de inmunoglobulina por hibridación in situ de ARN
Afrin et al. Targeted next-generation sequencing for detecting MLL gene fusions in leukemia
Wang et al. Nanolock–nanopore facilitated digital diagnostics of cancer driver mutation in tumor tissue
JP4317854B2 (ja) 微量胃癌細胞の検出法
JP2018504123A5 (uk)
US20240084389A1 (en) Use of simultaneous marker detection for assessing difuse glioma and responsiveness to treatment
UA86355U (uk) Спосіб визначення ампліфікації гена mycn у дітей, хворих на нейробластому
CN103866024A (zh) 基于焦磷酸测序的检测结核分枝杆菌已胺丁醇耐药性的方法
US20220056539A1 (en) Molecular pathogenesis of microcarcinoma of the thyroid
JP6551656B2 (ja) 卵巣癌に関する情報の取得方法、ならびに卵巣癌に関する情報を取得するためのマーカーおよび卵巣癌検出用キット
WO2022226237A1 (en) Methods to analyze host-microbiome interactions at single-cell and associated gene signatures in cancer
Beaver et al. Circulating cell-free DNA for molecular diagnostics and therapeutic monitoring
EP2818865A1 (en) Method for the identification of effective drugs