UA76680C2 - Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea - Google Patents
Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea Download PDFInfo
- Publication number
- UA76680C2 UA76680C2 UAA200507328A UAA200507328A UA76680C2 UA 76680 C2 UA76680 C2 UA 76680C2 UA A200507328 A UAA200507328 A UA A200507328A UA A200507328 A UAA200507328 A UA A200507328A UA 76680 C2 UA76680 C2 UA 76680C2
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- larvae
- feed
- concentration
- stages
- thousand
- Prior art date
Links
- 241000237502 Ostreidae Species 0.000 title claims abstract description 50
- 235000020636 oyster Nutrition 0.000 title claims abstract description 50
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 14
- 239000013535 sea water Substances 0.000 claims abstract description 24
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims abstract description 23
- QZAYGJVTTNCVMB-UHFFFAOYSA-N serotonin Chemical compound C1=C(O)C=C2C(CCN)=CNC2=C1 QZAYGJVTTNCVMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 22
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 17
- 238000005273 aeration Methods 0.000 claims abstract description 12
- 229940076279 serotonin Drugs 0.000 claims abstract description 11
- 230000003750 conditioning effect Effects 0.000 claims abstract description 10
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 claims abstract description 8
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 claims abstract description 6
- 238000009395 breeding Methods 0.000 claims abstract description 4
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 claims description 10
- 235000013305 food Nutrition 0.000 claims description 9
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 8
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 claims description 7
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 claims description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 5
- 210000003722 extracellular fluid Anatomy 0.000 claims description 4
- 230000007653 larval development Effects 0.000 claims description 3
- 230000008021 deposition Effects 0.000 claims description 2
- 238000003801 milling Methods 0.000 claims description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims 1
- 244000144987 brood Species 0.000 claims 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 26
- 239000000203 mixture Substances 0.000 abstract description 9
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 abstract description 8
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 abstract description 3
- 210000000071 ovigerm Anatomy 0.000 abstract 3
- 241000091752 Chaetoceros calcitrans Species 0.000 abstract 2
- 241001501873 Isochrysis galbana Species 0.000 abstract 2
- 241000548230 Crassostrea angulata Species 0.000 abstract 1
- 241000196321 Tetraselmis Species 0.000 abstract 1
- 230000009027 insemination Effects 0.000 abstract 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 10
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 9
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 8
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 8
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 5
- 241000237852 Mollusca Species 0.000 description 4
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000237536 Mytilus edulis Species 0.000 description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 3
- 235000020638 mussel Nutrition 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- 230000008143 early embryonic development Effects 0.000 description 2
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 2
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 2
- 210000004681 ovum Anatomy 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 230000029058 respiratory gaseous exchange Effects 0.000 description 2
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 1
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 description 1
- 208000007514 Herpes zoster Diseases 0.000 description 1
- 229920002292 Nylon 6 Polymers 0.000 description 1
- 241001246312 Otis Species 0.000 description 1
- 229920005372 Plexiglas® Polymers 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 235000004251 balanced diet Nutrition 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 description 1
- JBKVHLHDHHXQEQ-UHFFFAOYSA-N epsilon-caprolactam Chemical compound O=C1CCCCCN1 JBKVHLHDHHXQEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000009313 farming Methods 0.000 description 1
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 1
- 210000004602 germ cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000002816 gill Anatomy 0.000 description 1
- 210000002149 gonad Anatomy 0.000 description 1
- 244000144980 herd Species 0.000 description 1
- 238000009399 inbreeding Methods 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 1
- 238000009364 mariculture Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 description 1
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 description 1
- 230000005070 ripening Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000010802 sludge Substances 0.000 description 1
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
Abstract
Description
Опис винаходуDescription of the invention
Передбачуваний винахід відноситься до марікультури і призначений для промислового вирощування устриць 2 у Чорному морі в контрольованих умовах.The proposed invention relates to mariculture and is intended for the industrial cultivation of oysters 2 in the Black Sea under controlled conditions.
Гігантська устриця Стаззовігеа дідаз є основним об'єктом культивування в багатьох країнах Європи, Азії,The giant oyster Stazzovigea didaz is the main object of cultivation in many countries of Europe, Asia,
Африки, Америки й Австралії, Цей вид устриць відрізняється високим темпом росту, стійкістю до багатьох хвороб, високими смаковими і лікувально-профілактичними якостями. У 70-і роки 20 століття у Чорному морі запаси чорноморської устриці Овігеа едіїз були майже цілком знищені стулковою хворобою, У цей період була 70 здійснена державна програма інтродукції гігантської устриці Стаззовігеа дідаз з Далекого Сходу. Однак дотепер гігантська устриця не стала промисловим видом і не утворила природних поселень на Чорному морі через неможливість досягнення необхідної чисельності плідників без масового підрощування молоди в розплідниках.Africa, America and Australia. This type of oysters is characterized by a high growth rate, resistance to many diseases, high taste and therapeutic and preventive qualities. In the 70s of the 20th century in the Black Sea, stocks of the Black Sea oyster Ovigea ediis were almost completely destroyed by shingles disease. During this period, a state program for the introduction of the giant oyster Stazzovigea didaz from the Far East was implemented. However, until now the giant oyster has not become an industrial species and has not formed natural settlements on the Black Sea due to the impossibility of achieving the required number of breeders without mass rearing of young in nurseries.
Відомо спосіб вирощування устриці Сгаззозігеа дідаз |див. Силкин Ю.А. Силкина Е.Н., Давидович Н.А.,The method of growing the oyster Sgazzozigea didaz is known | see Silkin Yu.A. Silkina E.N., Davidovych N.A.,
Давидович О.И., Орленко А.Н. Интродукция устриць! Стаззозігеа дідаз в районе Карадага // Карадаг. История, 72 биология, археология. - Симферополь: "СОНАТ", 2001. - С.273-2801. У червні партію статевозрілих молюсків (213 екз.) переносили в лабораторію. Т.к. більшість чотирирічних особин вже віднерестилась в природних умовах, тоDavidovych O.Y., Orlenko A.N. Introduction of oysters! Stazzozigea didaz in the Karadag district // Karadag. History, 72 biology, archeology. - Simferopol: "SONAT", 2001. - P.273-2801. In June, a batch of sexually mature molluscs (213 specimens) was transferred to the laboratory. Because most four-year-old individuals have already spawned in natural conditions, that is
Їх стимулювали через добу після доставки в акваріальну. Дворічних устриць відсаджували на кондиціонування тривалістю 20 діб, а потім стимулювали нерест. Нерест стимулювали введенням розчину серотоніну концентрації 0,029 в м'яз, або в мантійну порожнину (з одночасним підвищенням температури води до 282 чи без підвищення); або підвищенням температури води; або внесенням у воду розчину суспензії гонад самців.They were stimulated a day after delivery to the aquarium. Two-year-old oysters were placed for conditioning for 20 days, and then spawning was stimulated. Spawning was stimulated by introducing a solution of serotonin with a concentration of 0.029 into the muscle or into the mantle cavity (with or without a simultaneous increase in the water temperature to 282); or by increasing the water temperature; or by adding a solution of a suspension of male gonads to the water.
Після одержання статевих клітин проводили запліднення в 20-літрових акваріумах з оргскла. Для очищення воду з гаметами пропускали через шовкове чи капронове газ-сито з діаметром вічка 9бмкм. Яйцеклітини, що дробляться, переносили в пластиковий лоток об'ємом 100л, а потім на стадії трохофори в пластикові басейни об'ємом 5, 6 і 25м3. Личинок і спат устриць вирощували в басейнах з невеликим протоком води на природному см кормі, без додаткового внесення мікроводоростей. Як субстрат для осадження личинок використовували стулки о мідій. Коли личинки переходили на стадію педівелігеру, колектори виставляли в басейни і протягом тижня відбувалося осідання личинок. Через 4 тижня спат розміром 3,5-5,0мм виставляли в море. Дорощування до товарних розмірів проводили в морі на устричному носії, глибина постановки якого складала 14-20м. оAfter obtaining germ cells, fertilization was carried out in 20-liter Plexiglas aquariums. For purification, water with gametes was passed through a silk or kapron gas sieve with a mesh diameter of 9 µm. Crushing ova were transferred to a plastic tray with a volume of 100 l, and then, at the trochophore stage, to plastic basins with a volume of 5, 6, and 25 m3. Larvae and spawn of oysters were grown in pools with a small flow of water on natural feed, without additional introduction of microalgae. Mussel flaps were used as a substrate for the deposition of larvae. When the larvae transitioned to the pediveliger stage, the collectors were placed in pools and the larvae settled for a week. After 4 weeks, spat with a size of 3.5-5.0 mm was put into the sea. Cultivation to commercial size was carried out in the sea on an oyster carrier, the depth of which was 14-20 m. at
Відомий спосіб має ряд недоліків: - концентрація серотоніну, що застосовувана для стимуляції, є живильним середовищем для мікроорганізмів. (ее)The known method has a number of disadvantages: - the concentration of serotonin used for stimulation is a nutrient medium for microorganisms. (uh)
Тому що від моменту введення розчину до вимету статевих продуктів відбувається 1-4 години, а швидкість со розмноження мікроорганізмів збільшується з підвищенням температури води, то відбувається інтенсивне запліднення мікроорганізмами середовища і яйцеклітин; (Се) - запліднені яйцеклітини не промивають стерильною морською водою, що є причиною низького виживання м личинок на ранніх стадіях розвитку; - введення шприцом розчину серотоніну в м'яз молюсків травмує м'які тканини і приводить до загибелі плідників; - тому що діаметр яйцеклітини складає 50-7Омкм, то при очищенні суспензії запліднених яйцеклітин через « 20 газ-сито з діаметром вічка 9бмкм проходять яйцеклітини з зайвими сперматозоїдами, що приведе до поліспермії з і порушень ембріонального розвитку; с - розвиток запліднених яйцеклітин відбувається у воді, де проводили стимуляцію нересту плідників. Вміст :з» біогенів в такій воді значно перевищує гранічно-припустимі концентрації; - концентрація мікроводоростей у морській воді значно нижча від необхідної для повноцінного харчування личинок і спату устриць. Використування води безпосередньо з моря і без здійснення попереднього очищення -1 що приводить до того, що разом з мікроорганізмами надходять личинки зоо- і меропланктону, що створює харчову конкуренцію личинкам устриць і негативно впливає на їхнє виживання; (е)) - було отримано 20тис. спату молюсків, що складає 0,495 від початкового значення, і це свідчить про дужеBecause it takes 1-4 hours from the moment of the introduction of the solution to the expulsion of sexual products, and the rate of reproduction of microorganisms increases with the increase in water temperature, intensive fertilization of the environment and eggs by microorganisms occurs; (Ce) - fertilized eggs are not washed with sterile seawater, which is the reason for the low survival of m larvae in the early stages of development; - injecting a serotonin solution into the mollusk muscle with a syringe injures the soft tissues and leads to the death of broodstock; - because the diameter of the ovum is 50-7μm, when purifying the suspension of fertilized ovules, ovules with extra spermatozoa pass through a 20" gas sieve with a mesh diameter of 9μm, which will lead to polyspermy and disorders of embryonic development; c - the development of fertilized eggs takes place in the water, where spawning stimulation was carried out. The content of biogens in such water significantly exceeds the limit-permissible concentrations; - the concentration of microalgae in seawater is significantly lower than that required for proper nutrition of oyster larvae and spawn. Using water directly from the sea and without prior purification -1, which leads to the fact that zoo- and meroplankton larvae arrive together with microorganisms, which creates food competition for oyster larvae and negatively affects their survival; (e)) - 20,000 was received. mollusk spath, which is 0.495 of the initial value, and this indicates a very
ФУ низьке виживання; | | що - застосовувані в схемі устричного носія рамки з устрицями перешкоджають лінійному росту молюсків, (ее) 50 їхньому диханню і фільтрації. о В основу винаходу "Спосіб вирощування гігантської устриці Стаззовігеа дідаз у Чорному морі" поставлена задача шляхом розробки оптимальних умов нересту, вирощування личинок | одержання життєздатної молоді в штучних умовах, забезпечити відродження устрицівництва на Чорному морі.FU low survival; | | that - frames with oysters used in the scheme of the oyster carrier prevent the linear growth of molluscs, (ee) 50 their breathing and filtration. o The invention "The method of growing the giant oyster Stazzovigea didaz in the Black Sea" is based on the task of developing optimal conditions for spawning, growing larvae | production of viable youth in artificial conditions, to ensure the revival of oyster farming in the Black Sea.
Поставлена задача реалізується таким чином.The task is implemented as follows.
У Способі вирощування гігантської устриці Стаззовігеа дідаз у Чорному морі, кондиціонування плідниківIn Method of cultivation of the giant oyster Stazzovigea didaz in the Black Sea, conditioning of nurseries
ГФ) здійснюють протягом 24г. шляхом видержування в воді без корму з постійною аерацією. Серотонін, розчинений у з стерильній морській воді, вводять у міжстулкову рідину по Тмл/особину у концентрації 0,00395. Через 15 хвилин після запліднення проводять селекцію яйцеклітин за розмірами. При культивуванні ембріонів підтримують щільність яйцеклітин 5Отис.яйц./л, на ранніх і пізніх стадіях розвитку личинок - відповідно 2Отис.лич./л та бо 1Отис.лич/л, на стадії осідання - до Ітис.лич./л. На всіх стадіях розвитку личинок устриць забезпечують кормом, причому на ранніх стадіях - корм складається з Ізоспгувіз даїапа і Спаейосеговз саЇІсйгапе у концентрації до 1ТООтис. кл./мл при співвідношенні кліток 2:11, на пізніх включають мікроводорості Ізоспгувзів дарапа, СПпаейосегоз саїЇсійгапе, РІиИаеодасійцт (гісогпшіШт, Теїгазеітіз звцесіса у концентрації корму до 20Отис. кл./мл при співвідношенні кліток відповідно 2:1:1:1, а на стадії педівелігеру до складу корму 65 додатково вводять мікроводорость ЗКеІейопета совіайшт (2 частини) при загальній концентраціїGF) are carried out within 24 years. by curing in water without feed with constant aeration. Serotonin, dissolved in sterile seawater, is injected into the interstitial fluid at Tml/individual at a concentration of 0.00395. Fifteen minutes after fertilization, the eggs are sorted by size. When cultivating embryos, the egg density is maintained at 5,000 eggs/l, at the early and late stages of larval development - 2,000 eggs/l and 1,000 eggs/l, respectively, at the settling stage - up to 1,000 eggs/l. At all stages of larval development, oysters are provided with food, and in the early stages, the food consists of Izospguviz daiapa and Spaeyosegovz saYiIsygape in a concentration of up to 1TOOtys. cl./ml at a cell ratio of 2:11, on the latter include microalgae Isospguvziv darapa, SPpaeyosegoz saiYisiygape, RIyIaeodasiyst (hysogpshiSht, Teigazeitiz zvcesis in a feed concentration of up to 20Otis. kl./ml at a cell ratio of 2:1:1:1, respectively, and at the pediveliger stage, the microalga ZKeIeiopeta soviaisht (2 parts) is additionally introduced into the composition of feed 65 at a total concentration
200-25Отис.кл./мл. При кондиціонуванні плідників обмін фільтрованої морської води проводять двічі на добу.200-25 Otis.cl./ml. When conditioning brooders, the exchange of filtered sea water is carried out twice a day.
Для селекції за розмірами яйцеклітини збирають на млинарське сито з діаметром вічка З2мкм і промивають фільтрованою і стерилізованою морською водою. Ембріональний розвиток проходить у стерилізованій морській воді з дерацією.For size selection, eggs are collected on a milling sieve with a mesh diameter of 32 μm and washed with filtered and sterilized sea water. Embryonic development takes place in sterilized seawater with deration.
Переваги застосовуваної стимуляції нересту полягають в тому, що плідники залишаються живими після стимуляції, відбувається нерест тільки зрілих сперматозоїдів і яйцеклітин, що забезпечує високе виживання личинок. Розчин серотоніну концентрації 0,00395 є оптимальним для стимуляції нересту гігантської устриці, тому що концентрація на порядок нижче не викликає стимуляцію, а на порядок вище - створює живильне середовище 7/0 для мікроорганізмів, що знаходяться в мантійній порожнині устриць. Проведення селекції забезпечує проходження раннього ембріонгенезу без порушень, а також сортування яйцеклітин за розмірами.The advantages of applied spawning stimulation are that spawners remain alive after stimulation, only mature spermatozoa and eggs are spawned, which ensures high survival of larvae. A solution of serotonin with a concentration of 0.00395 is optimal for stimulating the spawning of giant oysters, because a concentration an order of magnitude lower does not cause stimulation, and an order of magnitude higher creates a 7/0 nutrient medium for microorganisms located in the mantle cavity of oysters. Carrying out the selection ensures the passage of early embryogenesis without violations, as well as the sorting of eggs by size.
Багатофакторні експерименти, проведеш авторами, дозволили визначити оптимальні величини щільності посадки, склад корму і концентрації мікроводоростей, що забезпечують високе виживання і темпи росту та впливають на тривалість вирощування.Multifactorial experiments, conducted by the authors, made it possible to determine the optimal values of planting density, composition of feed and concentration of microalgae, which ensure high survival and growth rates and affect the duration of cultivation.
Передбачуваний винахід пояснюється фотографіями. Фіг. 1 - Пластина з харчової пластмаси - субстрат для осідання личинок гігантської устриці. Фіг. 2 - Колектор із пластмасових чашок для осідання личинок гігантської устриці. Фіг. З - садок для підрощування устриць в морі до товарного розміру.The claimed invention is illustrated by photographs. Fig. 1 - A plate made of food grade plastic - a substrate for the settling of giant oyster larvae. Fig. 2 - A collector made of plastic cups for the settling of giant oyster larvae. Fig. C - a nursery for growing oysters in the sea to commercial size.
Спосіб реалізується таким чином.The method is implemented as follows.
Кондиціонування плідників. Дозрівання плідників відбувається в природних умовах у садках на глибині 2-3 го метра при оптимальній щільності посадки. Збалансоване харчування і природний хід температури дають можливість одержати статеві продукти високої якості, що забезпечує високе виживання личинок.Conditioning of brooders. Ripening of fruit trees takes place in natural conditions in gardens at a depth of 2-3 meters with optimal planting density. A balanced diet and a natural course of temperature make it possible to obtain sexual products of high quality, which ensures high survival of larvae.
Маткове стадо складають із плідників різного віку для забезпечення балансу статей, оскільки серед молодших вікових груп переважають самці, а серед старших -самки. Для запобігання інбридингу кількість плідників повинна бути не менш 100 екз. У другій декаді червня, коли температура води на глибині місця сч ов розташування устриць складає 182С, а місяць входить у фазу повнолуння (нерест устриць у природі відбувається під час приливу), плідників переносять у розплідник для кондиціонування. Очищених плідників о розподіляють на сітці, яка розміщена в прямокутній ємкості на висоті 10см від дна. Ємкість попередньо заповнюється фільтрованою морською водою температурою 202. Плідників держать в воді без корму з постійною аерацією. Обмін стерильної води проводять двічі на добу. Протягом цього періоду у плідників о очищується кишечник і зябра, що забезпечує одержання чистих статевих продуктів.The breeding herd consists of breeders of different ages to ensure gender balance, as males predominate among younger age groups, and females predominate among older ones. To prevent inbreeding, the number of breeders should be at least 100 copies. In the second decade of June, when the water temperature at the depth of the place where the oysters are located is 182C, and the moon enters the full moon phase (oysters spawn in nature during high tide), the breeders are transferred to the nursery for conditioning. Cleaned brooders are distributed on a grid, which is placed in a rectangular container at a height of 10 cm from the bottom. The container is pre-filled with filtered seawater at a temperature of 202. Keep spawners in water without feed with constant aeration. Exchange of sterile water is carried out twice a day. During this period, the intestines and gills of breeders are cleaned, which ensures the production of clean sexual products.
Стимуляція нересту й одержання статевих продуктів. Нерест устриць починається на другий день. Першими со починають нереститися самці; їх переносять в ємкість окрему від самок. При необхідності термінового Ге) одержання статевих продуктів, чи при неможливості одержання першим способом (коли, наприклад, місяць знаходиться в інших фазах), застосовують стимуляцію нересту плідників. Розчинений у фільтрованій морській і-йStimulation of spawning and production of sexual products. Spawning of oysters begins on the second day. Males are the first to start spawning; they are transferred to a container separate from the females. If there is an urgent need to obtain sexual products, or if it is impossible to obtain them in the first way (when, for example, the moon is in other phases), stimulation of spawning of broodstock is used. Dissolved in filtered sea salt
Воді серотонін (С44Нл9М50».Н»азЗО)), у концентрації 0,00395, вводять за допомогою шприца в міжстулкову рідину /-|ч« по Тмл/особийу. Тканини устриці-плідника при цьому не травмуються.Water serotonin (C44Nl9M50».N»azZO)), at a concentration of 0.00395, is injected with the help of a syringe into the interstitial fluid /-|h« at Tml/individual. At the same time, the tissues of the oyster-breeder are not injured.
Проведення запліднення Через 15 хвилин після запліднення яйцеклітини збирають на мірошницьке сито з діаметром вічка З32мкм і промивають фільтрованою морською водою, що пройшла стерилізацію. Подальший « ембріональний розвиток проходить у стерильній морській воді з аерацією при щільності 5Отис.яйц./л.Fertilization 15 minutes after fertilization, the eggs are collected on a flour sieve with a mesh diameter of 32 μm and washed with filtered, sterilized seawater. Further embryonic development takes place in sterile seawater with aeration at a density of 5,000 eggs/l.
Вирощування личинок гігантської устриці Температура води протягом періоду вирощування підтримують на - с рівні 21-242С, що відповідає температурі, при якій відбувається розмноження і розвиток личинок у природних и умовах. Оптимальною для росту личинок на стадії велигера є щільність посадки до 2Отис.лич./л. Корм є» складається із Ізоспгузів даїрапа | Спаеіосеговз саісйгапз у концентрації до 1ООтис.кл./мл при співвідношенні кліток 2:1.Cultivation of giant oyster larvae The water temperature during the cultivation period is maintained at the level of 21-242C, which corresponds to the temperature at which reproduction and development of larvae occurs in natural conditions. Optimum for the growth of larvae at the veliger stage is a planting density of up to 2 Otys.individuals/l. The feed is" consists of Isospguze dairapa | Spaeiosegovz saisygapz in a concentration of up to 100,000 cells/ml with a cell ratio of 2:1.
На пізніх стадіях розвитку оптимальною є щільність посадки до 1Отис.лич./л, концентрація корму - до - і 200Отис.кл./мл і склад мікроводоростей Ізоспгузіз даІрапа, Спаейосегоз саїЇсійгапе, РПаеодасійшт (гісотииШт, бу Теїгазеї!тів зцесіса у співвідношенні кліток 2:1:1:1. На стадії педівелігеру до складу корму вводять ще одну мікроводорость - ЗКеіеюпета совіают (2 частини). (22) Вирощування личинок проводять у циліндричних ємкостях із пластику, об'ємом 100л при постійній аерації і со 50 щоденній подачі корму. У перший тиждень куль" тивування личинок, заміну води роблять щодня, у наступні тижні - Через дві доби. (42) Осідання личинок. Для осідання устриць використовують колектори - пластини або чашки з харчової пластмаси (Фіг. 1, 2). Перед осіданням субстрати витримують у морі протягом 4 тижні, потім проводять очищення і дезінфекцію. Через 2 тижні після осідання, спат розміром 2-3мм виставляють у море для дорощування.At the later stages of development, the optimal density of planting is up to 1,000 individuals/l, the concentration of feed - up to - and 200,000 cells/ml and the composition of microalgae Isospguzis daIrapa, Spaeyosegoz saiYisiygape, RPaeodasiisht (hisotiiSht, bu Teigazei!tiv zcesis in the ratio of cages 2 :1:1:1. At the pediveliger stage, one more microalgae is introduced into the feed composition - ZKeiyupeta soviayut (2 parts). (22) Larvae are reared in cylindrical containers made of plastic, with a volume of 100 liters with constant aeration and daily feed supply of 50 . In the first week of larval cultivation, the water is changed daily, in the following weeks - After two days. (42) Sedimentation of larvae. Collectors are used for sedimentation of oysters - plates or cups made of food plastic (Fig. 1, 2). Before sedimentation the substrates are kept in the sea for 4 weeks, then they are cleaned and disinfected. 2 weeks after settling, the spat with a size of 2-3 mm is exposed to the sea for further growth.
Застосовуваний тип субстрату дозволяє розділяти спат без утрат, незалежно від щільності осідання. о Темп росту спату, прикріпленого до пластин, у 1,6 рази вище, ніж на раковинах мідій.The type of substrate used allows for separation of spat without losses, regardless of the settling density. o The growth rate of spathe attached to plates is 1.6 times higher than on mussel shells.
Проведення осідання. Педівелігерів розмірами 325мкм переносять у ємкість з підготовленими колекторами. їмо) Щільність личинок складає Іітис. лич./л; концентрація корму - 200-25Отис. кл./мл. Склад мікроводоростей аналогічний попередньому. Інтенсивність аерації води знижена. Повну заміну води проводять Через дві доби. бо Осідання закінчується через З доби. Колектори з осілим спатом переносять у ємність для підрощування.Carrying out sedimentation. Pediveligers with dimensions of 325 μm are transferred to a container with prepared collectors. we eat) The density of larvae is Iitis. persons/l; feed concentration - 200-25% kl./ml. The composition of microalgae is similar to the previous one. The intensity of water aeration is reduced. A complete water change is carried out after two days. because the subsidence ends after 3 days. Collectors with settled sludge are transferred to a container for growing.
Підрощування спату устриць в морі до товарного розміру. Наприкінці жовтня - початку листопада, при досягненні розмірів 35-40мм, спат гігантської устриці знімають із субстрату, розділяють і переносять на дорощування в садки. Для садків використовують обшиті деллю пластмасові ящики з отворами. Розміри садків - 37 х28х10см (І тип) і 47х28х11см (ІІ тип). Садки промиваються морською водою з усіх боків, а устриці вільно б5 відкривають стулки для дихання і фільтрування; вільне розташування устриць не заважає їхньому росту.Growing oyster spat in the sea to marketable size. At the end of October - beginning of November, when the size of the giant oyster reaches 35-40 mm, the spawn of the giant oyster is removed from the substrate, divided and transferred to grow in gardens. Plastic boxes with holes are used for nurseries. The dimensions of the cages are 37 x 28 x 10 cm (type I) and 47 x 28 x 11 cm (type II). The cages are washed with sea water from all sides, and the oysters freely open their flaps for breathing and filtering; the free location of oysters does not interfere with their growth.
При оптимальних умовах вирощування устриці досягають товарного розміру 85-120мм за 1,5-2 року.Under optimal growing conditions, oysters reach a commercial size of 85-120 mm in 1.5-2 years.
Приклад реалізації способу.An example of the implementation of the method.
У квітні 2003 року з усієї вибірки устриць Сгаззозігеа дідаз, вирощуваних на мідійно-устричній фермі в бухті Карантинна, проводили добір плідників різного віку (1-3 року) в кількості 140 екз. Устриць розподіляли по садкам (по 35-40 екз.) і розташували в морі на глибині 2-Зм. У червні, при підвищенні температури води до 182С, половину плідників перенесли в лабораторію, провели механічне очищення раковин від обростання і помістили в ємкість об'ємом 250л. Устриць витримували без корму протягом 24 годин у стерильній морській воді з аерацією при температурі 20,42. За цей час двічі проводили зміну морської води.In April 2003, from the entire sample of Sgazzozigea didaz oysters grown at the mussel-oyster farm in Karantinna Bay, 140 specimens of various ages (1-3 years) were selected. Oysters were distributed in cages (35-40 each) and placed in the sea at a depth of 2-Zm. In June, when the water temperature rose to 182C, half of the spawners were transferred to the laboratory, the shells were mechanically cleaned of fouling and placed in a 250-liter tank. Oysters were kept without food for 24 hours in sterile seawater with aeration at a temperature of 20.42. During this time, the sea water was changed twice.
Стимуляція нересту. Одночасно застосували температурну і хімічну стимуляцію нересту (тому що місяць 70 знаходився у фазі росту). Температуру води підвищили до 232С. Десятьом устрицям у міжстулкову рідину був введений розчин серотоніну концентрації 0,00395 у кількості Тмл/особину. Через 1,5 години першими почали нереститися стимульовані серотоніном самці, потім інші устриці. Самок і самців розсаджували по окремим ємкостям. Через годину після початку нересту яйцеклітини зібрали на газ-сито з розміром вічка З2мкм і перенесли в Ол єкність зі стерильною морською водою з аерацією. Туди додали суспензію сперматозоїдів 75 (200мл) молочного кольору. Через 15хв. запліднені яйцеклітини знову зібрали на газ-сито, промили стерильною морською водою і перенесли в іншу ємкість. Ранній ембріональний розвиток устриць проходив при щільності посадки БОтис.ембріонів/л в об'ємі 20 літрів при температурі 2220. Оцінювали зрілість яйцеклітин, а також процес запліднення і раннього ембріонального розвитку за допомогою мікроскопа МБИ-6.Stimulation of spawning. At the same time, temperature and chemical stimulation of spawning was applied (because month 70 was in the growth phase). The water temperature was raised to 232C. A solution of serotonin with a concentration of 0.00395 in the amount of Tml/individual was injected into the interstitial fluid of ten oysters. After 1.5 hours, the serotonin-stimulated males started spawning first, followed by other oysters. Females and males were planted in separate containers. An hour after the start of spawning, the eggs were collected on a gas sieve with a mesh size of 32 μm and transferred to a container with sterile seawater with aeration. A suspension of spermatozoa 75 (200 ml) of milky color was added there. After 15 minutes fertilized eggs were again collected on a gas sieve, washed with sterile sea water and transferred to another container. The early embryonic development of oysters took place at a planting density of BOtys.embryos/l in a volume of 20 liters at a temperature of 2220. The maturity of the eggs, as well as the process of fertilization and early embryonic development, were assessed using an MBY-6 microscope.
Вирощування личинок. Через добу за допомогою газ-сита (5бмкм) велігерів перенесли в стерильну морську воду з аерацією. Щільність посадки личинок склала 1Отис.лич./л; годували золотавою мисроводоростю Ізоспгузів дарапа концентрації - БОтис.кл./мл протягом З доби, потім поступово збільшували концентрацію до 10Отис.кл./мл, додаючи одну частину Спаейосегоз саЇсігапз. Протягом першого тижня обмін води проводили щодня за допомогою газ-сита (84-140мкм в залежності від розмірів личинок), потім через день. Стадія велігера продовжувалася 8-10 діб; приріст склав до 1Омкм/добу при виживанні личинок 82595. На стадії веліконхі личинок се вирощували при щільності посадки бтис.лич./л і температурі води до 242С. До складу корму поступово вводили о інші види мікроводоростей (РНаеодасіййт (гісоти(Шт, Тейгазе!тів вмусіса) концентрації від 150 до 20Отис. кл./мол. Тривалість цієї стадії - 14-17 діб. Середньодобовий приріст личинок склав 15-19мкм/добу, при виживанні 60,295. Стадія педівелігера продовжувалася 3-5 доби. До складу корму була введена ще одна мікроводорость ЗсеІе(опета совіашт (2 частини), а концентрація корму збільшена до 250тис.кл./мл. Виживання о педівелігерів до 25965. соCultivation of larvae. After a day, the veligers were transferred to sterile seawater with aeration using a gas sieve (5 μm). The density of planting larvae was 1 Otys.individuals/l; were fed with golden mysroalgae Isospguz at a concentration of 100 cells/ml for 3 days, then the concentration was gradually increased to 100 cells/ml by adding one part of Spaeyosegoz saYsigapz. During the first week, water exchange was carried out daily using a gas sieve (84-140 μm depending on the size of the larvae), then every other day. The veliger stage lasted 8-10 days; the increase was up to 1µm/day with the survival of larvae 82595. At the velikonchi stage, larvae were grown at a planting density of btys.individuals/l and a water temperature of up to 242C. Other types of microalgae were gradually introduced into the composition of the feed (RNaeodasiiyt (hysotes (Sht, Teigaze!tiv vmusisa)) concentrations from 150 to 2000 cells/mol. The duration of this stage is 14-17 days. The average daily growth of the larvae was 15-19μm/day , with a survival rate of 60,295. The pediveliger stage lasted 3-5 days. One more microalgae ZseIe (opeta soviasht (2 parts) was introduced into the feed, and the concentration of the feed was increased to 250 thousand cells/ml. Survival of pediveligers up to 25,965.
Осідання личинок. Педівелігерів збирали на газ-сито з розміром вічка 210мкм і перенесли в підготовлену ємкість із субстратами для осідання (стулки раковин мідії і чашки з харчової пластмаси). Щільність посадки ре) педівелігерів - Ттис./л; склад і концентрація корму аналогічні попередньому. Осідання продовжувалося З доби. «соSedimentation of larvae. Pediveligers were collected on a gas sieve with a mesh size of 210 μm and transferred to a prepared container with substrates for settling (mussel shells and cups made of food grade plastic). Planting density of re) pediveligers - Tths./l; the composition and concentration of the feed are similar to the previous one. Sedimentation continued for days. "co
При повній заміні води на другу добу було виявлено, що осідання закінчується.When the water was completely replaced on the second day, it was found that sedimentation ends.
Зо Підрощування спата. Спат підрощували протягом 2 тижні. Подачу корму здійснювали два рази в на добу, в. сумарна концентрація збільшена в два рази. Склад мікроводоростей аналогічний попередньому. Зміну води проводили щодня. Температура води - до 2529. Середньодобовий приріст спату склав 110-190мкм. При розмірах спату 2-5мм, колектори були виставлені в море на дорощування. Щоб зберегти спат від опадання і « виїдання рибами, на колектори вдягали рукава, пошиті з діли (розмір вічка см).From Growth of spath. Spat was grown for 2 weeks. Feeding of fodder was carried out twice a day, in the total concentration is increased by two times. The composition of microalgae is similar to the previous one. Water was changed daily. The water temperature is up to 2529. The average daily spat growth was 110-190 microns. With spat sizes of 2-5 mm, the collectors were placed in the sea for regrowth. In order to save the spat from falling and being eaten by fish, sleeves sewn from the material were worn on the collectors (the size of the mesh is cm).
Поділ спату. Наприкінці жовтня - початку листопада спат знімали із субстрату, розділяли по одному З с екземплярі і розподіляли по садкам. Деякі умови вирощування і лінійно-вагові характеристики представлені в "» Таблиці. Сумарна кількість спата склало близько б5тис. чи 6,590 від початкової кількості яйцеклітин. " Переваги пропонованого Способу вирощування гігантської устриці Стгаззозігеа дідаз у Чорному морі полягають у тому, що розроблені оптимальні умови для одержання личинок і вирощування гігантської устриці в розпліднику. При вирощуванні проводиться селекція, як плідників, так і личинок і контролюється весь цикл - культивування. Завдяки оптимізації всіх етапів культивування гігантської устриці С. дідаз з'являєтьсяSpatial division. At the end of October - the beginning of November, the spath was removed from the substrate, separated into one Z c specimen and distributed among the gardens. Some growing conditions and linear-weight characteristics are presented in "» Table. The total amount of spawn was about b5 thousand or 6,590 of the initial number of eggs." larvae and growing a giant oyster in a nursery. During cultivation, selection of both broodstock and larvae is carried out, and the entire cycle - cultivation - is controlled. Thanks to the optimization of all stages of cultivation of the giant oyster S. didaz appears
Ге» можливість створення повноциклічного устричного господарства для виробництва товарної устриці в Чорному морі. о р со 20 с 80001904 пеня вливIt is possible to create a full-cycle oyster farm for the production of marketable oysters in the Black Sea. o r so 20 s 80001904 penalty inflow
ПЛЕН ПИТИ ПОН НЯ ПОН А НО хо СНИ ЕЕ 5 19000008 вив вен о 21 вю00011711111541100001 ов вот іме) боPLAN DRINK PON NYA PON A NO ho SNY EE 5 19000008 vyv ven o 21 vyu00011711111541100001 ov vot ime) bo
Claims (4)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAA200507328A UA76680C2 (en) | 2005-07-22 | 2005-07-22 | Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAA200507328A UA76680C2 (en) | 2005-07-22 | 2005-07-22 | Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| UA76680C2 true UA76680C2 (en) | 2006-08-15 |
Family
ID=37504045
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| UAA200507328A UA76680C2 (en) | 2005-07-22 | 2005-07-22 | Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| UA (1) | UA76680C2 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103004648A (en) * | 2011-09-22 | 2013-04-03 | 汕头大学 | Breeding method for improving DHA (Docosahexaenioc Acid) content in oyster body |
| CN103283654A (en) * | 2013-06-03 | 2013-09-11 | 山东省海洋水产研究所 | Method for increasing settlement and metamorphosis rate in Apostichopus japonicus larvae |
-
2005
- 2005-07-22 UA UAA200507328A patent/UA76680C2/en unknown
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103004648A (en) * | 2011-09-22 | 2013-04-03 | 汕头大学 | Breeding method for improving DHA (Docosahexaenioc Acid) content in oyster body |
| CN103004648B (en) * | 2011-09-22 | 2014-09-17 | 汕头大学 | Breeding method for improving DHA (Docosahexaenioc Acid) content in oyster body |
| CN103283654A (en) * | 2013-06-03 | 2013-09-11 | 山东省海洋水产研究所 | Method for increasing settlement and metamorphosis rate in Apostichopus japonicus larvae |
| CN103283654B (en) * | 2013-06-03 | 2014-09-03 | 山东省海洋资源与环境研究院 | Method for increasing settlement and metamorphosis rate in Apostichopus japonicus larvae |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN100372510C (en) | Artificial culture of shrimp parents | |
| CN109122443B (en) | Australia freshwater lobster circulating water egg hatching system and seedling raising method | |
| Arimoro | Culture of the freshwater rotifer, Brachionus calyciflorus, and its application in fish larviculture technology | |
| KR20180047631A (en) | Controlling method of the time of sea cucumber artificial seed production through management of parents sea cucumbers in land farm | |
| Pitt | Review of sandfish breeding and rearing methods | |
| CN113711953B (en) | Propagation and seedling raising method for hippocampus blossoming | |
| James | Culture of sea-cucumber | |
| KR20080020810A (en) | Spawning induction by maturation management of gizzard shad, konosirus punctatus, and hatchery technique | |
| CN100355337C (en) | Artificial hybridization and breeding method for male Paralichthys dentatus and female summer flounder | |
| CN104255623A (en) | Artificial breeding method for cheilinus undulatus | |
| KR100953994B1 (en) | Method of producing tegillarca granosa seedling | |
| CN102308769B (en) | Exopalaemon modestus fry culturing method through combining net cage with aquarium | |
| Aydın et al. | Turbot and flounder aquaculture | |
| CN1480032A (en) | Techique for breeding aquation yound fish of 'Songjiang' weever | |
| CN115735819A (en) | Hybrid seed production method of crassostrea gigas and crassostrea vitifolia | |
| Sorgeloos et al. | Production and use of Artemia in aquaculture | |
| UA76680C2 (en) | Method of growing the giant oyster grassostrea gigas in the black sea | |
| CN115349466A (en) | Large-scale production method of micropterus salmoides fry | |
| RU2548116C1 (en) | Production of mytillus galloprovincialis mussel spat for growing in black sea | |
| Anil et al. | Larval rearing of seahorse Hippocampus kuda under laboratory conditions | |
| Nayar et al. | Larval rearing and production of spat of the oyster Crassostrea madrasensis (Preston) in an experimental hatchery | |
| RU2541459C1 (en) | Method for growing giant oyster crassostrea gigas in black sea | |
| KR100588419B1 (en) | Development of includuced spawning and seeding production techniques for the filefish | |
| CN102210272A (en) | Estuarine gulf sea cucumber pond culture method | |
| UA65842A (en) | Metod of commercial growing rosenberg's giant freshwater shrimp (macrobrachium rozenbergii) |