UA7023U - Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella - Google Patents
Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella Download PDFInfo
- Publication number
- UA7023U UA7023U UA20040403267U UA20040403267U UA7023U UA 7023 U UA7023 U UA 7023U UA 20040403267 U UA20040403267 U UA 20040403267U UA 20040403267 U UA20040403267 U UA 20040403267U UA 7023 U UA7023 U UA 7023U
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- serovar
- culture
- pasteurella
- inactivation
- differs
- Prior art date
Links
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims abstract description 34
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 20
- 241000606860 Pasteurella Species 0.000 title claims abstract description 18
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 title claims abstract description 13
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims abstract description 18
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims abstract description 18
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims abstract description 18
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract description 14
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 claims abstract description 14
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 13
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims abstract description 12
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 claims abstract description 6
- 206010034107 Pasteurella infections Diseases 0.000 claims description 15
- 201000005115 pasteurellosis Diseases 0.000 claims description 15
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 10
- 230000000415 inactivating effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims description 3
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims description 2
- 238000012876 topography Methods 0.000 claims 1
- 241000606856 Pasteurella multocida Species 0.000 abstract 1
- 229940051027 pasteurella multocida Drugs 0.000 abstract 1
- 238000004114 suspension culture Methods 0.000 abstract 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 24
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 21
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 16
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 description 9
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 9
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 8
- 238000009631 Broth culture Methods 0.000 description 7
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 7
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 7
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 6
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 6
- 206010035664 Pneumonia Diseases 0.000 description 5
- 244000309466 calf Species 0.000 description 5
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 5
- NOWKCMXCCJGMRR-UHFFFAOYSA-N Aziridine Chemical compound C1CN1 NOWKCMXCCJGMRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 4
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 3
- 101000576973 Homo sapiens Mitochondrial-processing peptidase subunit beta Proteins 0.000 description 3
- 102100025298 Mitochondrial-processing peptidase subunit beta Human genes 0.000 description 3
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 3
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 3
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 2
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 2
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 2
- 238000005056 compaction Methods 0.000 description 2
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 2
- 231100000676 disease causative agent Toxicity 0.000 description 2
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 2
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 2
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 2
- 231100000636 lethal dose Toxicity 0.000 description 2
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 210000002345 respiratory system Anatomy 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 2
- MFYSUUPKMDJYPF-UHFFFAOYSA-N 2-[(4-methyl-2-nitrophenyl)diazenyl]-3-oxo-n-phenylbutanamide Chemical compound C=1C=CC=CC=1NC(=O)C(C(=O)C)N=NC1=CC=C(C)C=C1[N+]([O-])=O MFYSUUPKMDJYPF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 241000723347 Cinnamomum Species 0.000 description 1
- 206010018691 Granuloma Diseases 0.000 description 1
- 208000032969 Hemorrhagic Septicemia Diseases 0.000 description 1
- OAKJQQAXSVQMHS-UHFFFAOYSA-N Hydrazine Chemical compound NN OAKJQQAXSVQMHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000204031 Mycoplasma Species 0.000 description 1
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 1
- 208000014645 Pasteurella hemorrhagic septicemia Diseases 0.000 description 1
- 239000006159 Sabouraud's agar Substances 0.000 description 1
- 208000035472 Zoonoses Diseases 0.000 description 1
- DIZPMCHEQGEION-UHFFFAOYSA-H aluminium sulfate (anhydrous) Chemical compound [Al+3].[Al+3].[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O DIZPMCHEQGEION-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 239000003708 ampul Substances 0.000 description 1
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 description 1
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 1
- OXJUJQDEISSCTB-UHFFFAOYSA-N but-3-en-2-imine Chemical compound CC(=N)C=C OXJUJQDEISSCTB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000017803 cinnamon Nutrition 0.000 description 1
- 239000000084 colloidal system Substances 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 230000032798 delamination Effects 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 239000000539 dimer Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 210000004013 groin Anatomy 0.000 description 1
- 230000002008 hemorrhagic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000086 high toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 1
- 230000000937 inactivator Effects 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000002480 mineral oil Substances 0.000 description 1
- 235000010446 mineral oil Nutrition 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 1
- 235000019271 petrolatum Nutrition 0.000 description 1
- 201000006509 pleuropneumonia Diseases 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000011321 prophylaxis Methods 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 1
- 229940099259 vaseline Drugs 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Опис винаходуDescription of the invention
Корисна модель відноситься до області ветеринарної мікробіології, епізоотології і біотехнології і може 2 бути використана при розробці і виробництві засобів специфічної профілактики факторного (ендогенного) пастерельозу молодняка с.-г. тварин. Пастерельоз (лат. РазіецгеПйовів) - це зоонозна інфекційна хвороба тварин і птахів, а також людини, що характеризується септицемічними явищами і геморагічними запальними процесами слизових оболонок дихальних шляхів і кишечника, пневмонією, плевропневмонією, а також набряками. Інфекційний процес протікає по класичному або факторному типу. В першому випадку інфекційний 70 процес відбувається на потенційних хазяєвах у вигляді геморагічної септицеміїї; у другому - на облігатних хазяєвах по типу факторної хвороби і має вигляд ензоотії інфекційної пневмонії пастерельозної етіології.The useful model relates to the field of veterinary microbiology, epizootology and biotechnology and can be used in the development and production of means of specific prevention of factor (endogenous) pasteurellosis in young animals of rural areas. animals Pasteurellosis (lat. RazietsgePyoviv) is a zoonotic infectious disease of animals and birds, as well as humans, characterized by septicemic phenomena and hemorrhagic inflammatory processes of the mucous membranes of the respiratory tract and intestines, pneumonia, pleuropneumonia, and edema. The infectious process proceeds according to the classic or factor type. In the first case, the infectious 70 process occurs on potential hosts in the form of hemorrhagic septicemia; in the second - on obligate hosts according to the type of factor disease and has the form of enzootic infectious pneumonia of pasteurellosis etiology.
Збудником захворювання є нерухома дрібна овальна грамнегативна бактерія 0,25-0,5мкм шириною і 0,5-2мкм довжиною. Пастерели, які викликають захворювання в різних видів тварин, не відрізняються по своїм культурально-морфологічним і ферментативним властивостям, але патогенність їх найбільш висока для того 12 виду тварин, від якого вони виділені. Джерело збудника інфекції - хворі і перехворілі тварини. Зараження відбувається найчастіше через дихальні шляхи. У нашій країні факторний (ендогенний) пастерельоз молодняка сільськогосподарських тварин у вигляді ензоотій інфекційної пневмонії до теперішнього часу широко розповсюджений і наносить сільському господарству значний збиток. Важливе місце серед мір боротьби з пастерельозом займає вакцинопрофілактика. Відомий спосіб виготовлення сорбованої протипастерельозної вакцини, який включає суспензійне вирощування виробничих штамів пастерел, осадження отриманої культури 1096 розчином алюмінієвих квасців та інактивацію 0,16-0,18956 формаліном протягом 6 діб. (А.С.СССР Мо94044, кл. ЗОНб, 17.02.51The causative agent of the disease is a stationary small oval gram-negative bacterium 0.25-0.5 µm wide and 0.5-2 µm long. Pasteurella, which cause diseases in different species of animals, do not differ in their cultural, morphological and enzymatic properties, but their pathogenicity is highest for the 12 species of animals from which they are isolated. The source of the causative agent of infection is sick and diseased animals. Infection occurs most often through the respiratory tract. In our country, factorial (endogenous) pasteurellosis of young farm animals in the form of enzootic infectious pneumonia is widespread and causes considerable damage to agriculture. Vaccine prophylaxis occupies an important place among the measures to combat pasteurellosis. There is a known method of producing a sorbed anti-pasteurellosis vaccine, which includes suspension cultivation of production strains of Pasteurella, precipitation of the obtained culture with a solution of aluminum alum 1096 and inactivation with 0.16-0.18956 formalin for 6 days. (AS USSR Mo94044, cl. ZONb, 17.02.51
Недоліком вакцини, отриманої даним способом, є нетривалість імунітету у вакцинованих сільськогосподарських тварин.The disadvantage of the vaccine obtained by this method is the short-term immunity of vaccinated farm animals.
Відомий спосіб інактивації вірусів при виробництві вакцин проти вірусних захворювань в якому в використовують в якості інактиванта етиленімін (А.С. СРСР Мо1594771 АбЄ1КЗ39/12, 12М7/04, 07.07.93).A known method of inactivating viruses in the production of vaccines against viral diseases in which ethyleneimine is used as an inactivator (AS USSR Mo1594771 AbЭ1КЗ39/12, 12М7/04, 07.07.93).
Недолік використання етиленіміна полягає в його високій токсчності, а також недоліком є те, що концентрації етиленіміну, використовувані для інактивації вірусів не придатні для інактивації пастерел.The disadvantage of using ethyleneimine is its high toxicity, and also the disadvantage is that the concentrations of ethyleneimine used for inactivating viruses are not suitable for inactivating Pasteurella.
Найбільш близьким до пропонованої корисної моделі, що до сукупності істотних ознак, є спосіб виготовлення Ше емульсійної протипастерельозної вакцини, що включає одержання суспензії збудника, його інактивацію 0,5-490 Ге розчином ацетилетиленіміна і наступне з'єднання інактивованого антигену з масляним ад'ювантом (патент РФThe closest to the proposed useful model, in terms of the set of essential features, is the method of manufacturing She emulsion anti-pasteurellosis vaccine, which includes obtaining a suspension of the pathogen, its inactivation with a 0.5-490 He solution of acetylethyleneimine and the subsequent connection of the inactivated antigen with an oil adjuvant ( patent of the Russian Federation
М2162339, кл. Аб61К39/102, А6Є11І 2/16, С12М1/00, 17.04.2000р.|. Недоліком способу є те, що отриманий препарат о володіє порівняно невисокою імуногенною активністю при використанні його в Україні. Це обумовлено ча невідповідністю антигенних детермінант виробничих штамів Російського походження, епізоотичним варіантам, 3о що циркулюють в Україні, що й приводить до зниження їх антигенної і імуногенної активності. Це рішення може бути прототипом.M2162339, cl. Ab61K39/102, A6E11I 2/16, C12M1/00, 04/17/2000|. The disadvantage of the method is that the obtained drug has relatively low immunogenic activity when used in Ukraine. This is due to the inconsistency of antigenic determinants of production strains of Russian origin, epizootic variants circulating in Ukraine, which leads to a decrease in their antigenic and immunogenic activity. This solution can be a prototype.
В основу корисної моделі поставлено задачу розробити процес виготовлення емульсійної « протипастерельозної вакцини, що включає одержання суспензії культури пастерел, інактивацію отриманої 8 культури та з'єднання бактерійного антигену з масляним ад'ювантом шляхом використання як імуногенів штамів 50 пастерел: Равзіецгейа тийосіда МоЗ серовар Д, Мо12 серовар А, Мо31 серовар В, які інактивують димером с етиленіміном (ДЕЇ), який вносять у суспензію культури до концентрації в межах 4-595 з корегованим рН 7,2-7,6,The basis of a useful model is the task of developing a process for the production of an emulsion "anti-pasteurella vaccine, which includes obtaining a suspension of a pasteurella culture, inactivating the obtained 8 culture and combining a bacterial antigen with an oil adjuvant by using as immunogens the strains of 50 pasteurellas: Ravzietsgeia tiyosida MoZ serovar D, Mo12 serovar A, Mo31 serovar B, which are inactivated by a dimer with ethyleneimine (DEI), which is added to the culture suspension to a concentration in the range of 4-595 with a corrected pH of 7.2-7.6,
Із» а по закінченні інактивації, отриманий антиген вносять у стабілізуюче середовище і з'єднують з масляним ад'ювантом, щоб забезпечити процес виготовлення емульсійної протипастерельозної вакцини. Технічний результат від використання коричної моделі полягає в підвищенні імуногенної активності і специфічності препарату шляхом підбору вітчизняних (регіональних) штамів і збереження вихідних властивостей білкових і антигенів пастерел при інактивації. ав | Зазначений технічний результат досягається створенням корисної моделі, охарактеризованої наступною сукупністю ознак: о 1) процес виготовлення емульсійної вакцини проти факторного (ендогенного) пастерельозу молодняка с.-г. се» 20 тварин; 2) одержання суспензії культури пастерел, що найменше, одного серовару із вітчизняних штамів;After inactivation, the obtained antigen is introduced into a stabilizing medium and combined with an oil adjuvant to ensure the process of manufacturing an emulsion anti-pasteurellosis vaccine. The technical result of using the cinnamon model is to increase the immunogenic activity and specificity of the drug by selecting domestic (regional) strains and preserving the original properties of pasteurized proteins and antigens during inactivation. av | The specified technical result is achieved by creating a useful model, characterized by the following set of features: o 1) the process of manufacturing an emulsion vaccine against factor (endogenous) pasteurellosis of the young of rural areas. se" 20 animals; 2) obtaining a culture suspension of pasteurella, at least one serovar from domestic strains;
З) інактивація отриманої культури; 4) як інактивант використовують димеретиленіміна (ДЕ); 5) ДЕЇ вносять у бактерійну суспензію в ефективній кількості;C) inactivation of the obtained culture; 4) dimerethyleneimine (DE) is used as an inactivant; 5) DEI are introduced into the bacterial suspension in an effective amount;
СС о5 6) ДЕ! вносять у бактерійну суспензію до концентрації 4-595 з корегованим соляною кислотою до рН 7,2-7,6; 7) інактивацію ведуть протягом 12-16 годин при 37-389С; 8) осадження бактерійного антигену центрифугуванням; 9) розведення бактерійного антигену стабілізуючим середовищем; 10) як стабілізуюче середовище використовують сахарозо-желатинове середовище; 60 11) з'єднання бактерійного антигену з масляним ад'ювантом; 12) бактерійний антиген і масляний ад'ювант з'єднують у співвідношенні 3:7-1:1.SS o5 6) WHERE! added to the bacterial suspension to a concentration of 4-595 with adjusted hydrochloric acid to a pH of 7.2-7.6; 7) inactivation is carried out for 12-16 hours at 37-389C; 8) deposition of bacterial antigen by centrifugation; 9) dilution of the bacterial antigen with a stabilizing medium; 10) sucrose-gelatin medium is used as a stabilizing medium; 60 11) combination of bacterial antigen with oil adjuvant; 12) bacterial antigen and oil adjuvant are combined in a ratio of 3:7-1:1.
Завдяки використанню пропонованого процесу отримана вакцина проти факторного (ендогенного) пастерельозу молодняка с.-г. тварин емульсійна інактивована, що володіє в порівнянні з прототипом, більш високою імуногенною активністю і специфічною безпекою. бо Досягнення технічного результату від використання пропонованого процесу зумовлюється тим, що використані високоїмуногенні епізоотичні штами вітчизняного походження: Равігеигейа тиосіда Мо3 серовар Д,Thanks to the use of the proposed process, a vaccine was obtained against factor (endogenous) pasteurellosis of the young of the rural area. animal emulsion inactivated, which has, in comparison with the prototype, higher immunogenic activity and specific safety. because the achievement of the technical result from the use of the proposed process is due to the fact that highly immunogenic epizootic strains of domestic origin were used: Ravigeigeia thiosida Mo3 serovar D,
Мо12 серовар А, Мо31 серовар В.Mo12 serovar A, Mo31 serovar B.
Крім того, вакцина призначена для профілактики ензоотії інфекційної пневмонії телят і поросят пастерельозної етіології (факторна інфекція).In addition, the vaccine is intended for the prevention of enzootic infectious pneumonia of calves and piglets of pasteurellosis etiology (factorial infection).
Отже, пропонований процес відповідає умовам патентоспроможності та критерію "новизна".Therefore, the proposed process meets the conditions of patentability and the "novelty" criterion.
Процес виготовлення емульсійної вакцини виконується таким чином.The process of making an emulsion vaccine is carried out as follows.
Приклад 1Example 1
Для готування серії вакцини використовували З ампули із сухою культурою виробничих штамів Разіецшгеїйа 70 тийосіда сероварів А, О і В. У кожну ампулу вносили 2-3см? живильного середовища. Як живильне середовище використовували бульйон Хоттінгера з рН 7,2-7,6 і показником амінного азоту 200-250мг9о. Отриманою рівномірною суспензією пастерел кожного серовару в обсязі 0,3-0,5см З засівали по 2-3 флакона ємністю 100см3, утримуючих по 40-50см? живильного середовища.For the preparation of a series of vaccines, Z ampoules with a dry culture of the production strains of Raziecshgeiia 70 tiyosides of serovars A, O and B were used. In each ampoule, 2-3 cm? nutrient medium. Hottinger's broth with a pH of 7.2-7.6 and an amino nitrogen index of 200-250mg9o was used as a nutrient medium. 2-3 vials with a capacity of 100 cm3, containing 40-50 cm? nutrient medium.
Одночасно робили контрольні висіви кожної культури в пробірки з МПА, МПБ, МППБ під вазеліновою олією. 15 Посіви культивували протягом 12-16 годин при 37-389С. У результаті одержали культуру першої генерації пастерел кожного серовару. Культури першої генерації досліджували мікроскопічне. Для одержання культури другої генерації чисту культуру першої генерації кожного серовару засівали по 5-15см3 кожного серовару на живильному середовищі в трьох-, п'яти- або десятилитрові бутилі зі змістом середовища 1/2 об'єму сулії з одночасним проведенням контрольного висіву в пробірки з МПА, МПБ, МППБ під вазеліновою олією й у 20 бактеріологічні чашки з МПА. Матриксну культуру другої генерації у кількості, необхідному для засіву в реактор вирощували у термостаті протягом 6-8 годин при 37-389С с 2-3 перемішуваннями культури протягом 1-2 хвилин. З вирощеної культури робили посіви в пробірки з живильними середовищами, чашки Петрі з МПА, проводили мікроскопію і визначали концентрацію мікробних клітин, які повинні бути не менш, ніж 109КУО/см. Для одержання бактеріальної маси матриксну культуру пастерел кожного серовару вносили в окремий реактор з 25 живильним середовищем. Матриксну культуру вносили в об'ємі 5-1095 від робочого об'єму реактора. /Щ-At the same time, control sowings of each culture were made in test tubes with MPA, MPB, MPPB under petroleum jelly. 15 Crops were cultivated for 12-16 hours at 37-389С. As a result, the culture of the first generation of pasteurella of each serovar was obtained. Cultures of the first generation were studied microscopically. To obtain a culture of the second generation, a pure culture of the first generation of each serovar was sown in 5-15 cm3 of each serovar on a nutrient medium in three-, five-, or ten-liter bottles with a medium content of 1/2 the volume of the cell with simultaneous control sowing in test tubes with MPA, MPB, MPPB under vaseline oil and in 20 bacteriological cups with MPA. The matrix culture of the second generation in the amount required for seeding in the reactor was grown in a thermostat for 6-8 hours at 37-389C with 2-3 stirrings of the culture for 1-2 minutes. From the grown culture, inoculations were made in test tubes with nutrient media, Petri dishes with MPA, microscopy was performed and the concentration of microbial cells was determined, which should be at least 109 CFU/cm. To obtain the bacterial mass, the pasteurized matrix culture of each serovar was introduced into a separate reactor with 25 nutrient medium. The matrix culture was introduced in a volume of 5-1095 of the working volume of the reactor. /Ш-
Культивування вели при 37-3892С и рН 7,4-7,7 протягом 12 годин до одержання суспензії з концентрацією мікробних клітин 2-4х109КУО/см3. Для регулювання рН використовували розчини МаоНРО, і МанороО»у. Вирощені культури пастерел кожного серовару за допомогою забуференного фізіологічного розчину приводили до єдиної со зо найменшої концентрації, змішували у рівних пропорціях, перекачуючи в стерильний реактор. Отриману бактеріальну суміш піддавали інактивації, ДЕЇ. Для цього в бактеріальну суміш вносили ДЕ! до концентрації с 4-595, і інактивували до 12 годин в умовах перемішування при 50-80об/хв і температурі 37-382С. По закінченні о інактивації антиген залишали при кімнатній температурі в стаціонарних умовах на 18-24 години. Контроль повноти інактивації здійснювали шляхом висіву вмісту реактора на бульйон і агар Хоттінгера і інкубування -Cultivation was carried out at 37-3892C and pH 7.4-7.7 for 12 hours until a suspension with a concentration of microbial cells of 2-4x109 CFU/cm3 was obtained. To adjust the pH, solutions of MaoHRO and ManoroO»u were used. Grown Pasteurella cultures of each serovar were brought to a single dose of the lowest concentration with the help of a buffered physiological solution, mixed in equal proportions, and pumped into a sterile reactor. The resulting bacterial mixture was subjected to inactivation, DEI. For this, DE was added to the bacterial mixture! to a concentration of 4-595, and inactivated for up to 12 hours under stirring conditions at 50-80 rpm and a temperature of 37-382C. At the end of the inactivation, the antigen was left at room temperature in stationary conditions for 18-24 hours. Control of the completeness of inactivation was carried out by sowing the contents of the reactor on broth and Hottinger agar and incubation -
Зз5 ПОосівів при 37-382С протягом 18-24 годин.Зз5 were seeded at 37-382С for 18-24 hours.
Росту бактеріальної мікрофлори на живильних середовищах не повинно було бути. Отриманий антиген очищали від баластових білків і ДЕЇ, а також концентрували осадженням на проточній центрифузі. Концентрат « антигену ресуспендували у сахарозо-желатиновому середовищу до концентрації 10-12КУО/см? по 18 з з оптичному стандартові ДІСК ім.Тарасовича. Після цього антиген з'єднували з масляним ад'ювантом. При цьому 40 кількість водної фази, що містить антиген, складала в обсязі 3095, а масляного ад'юванта 7095. Для виготовлення с емульсійної вакцини використовували колоїдні млини. а Отримана вакцина являє собою емульсію білого кольору з жовтуватим відтінком, злегка грузлої консистенції, "» рН 7,2-7,6. При тривалому збереженні можливо незначне відшарування мінерального масла над не розшарованою однорідною емульсією. При ретельному струшуванні вакцина здобуває вид гомогенної маси. 45 Приклад 2 -і Бактеріологічний контроль стерильності отриманої вакцини здійснювали наступним шляхом. Проби вакцини о висівали на сироватковий бульйон і агар, рідке і щільне середовище Сабуро, МЛА, МПБ - по З пробірки, наBacterial microflora should not grow on nutrient media. The obtained antigen was purified from ballast proteins and DEI, and also concentrated by sedimentation in a flow centrifuge. The antigen concentrate was resuspended in a sucrose-gelatin medium to a concentration of 10-12 CFU/cm? on 18 of the optical standard DISK named after Tarasovich. After that, the antigen was combined with an oil adjuvant. At the same time, the amount of the aqueous phase containing the antigen was 3095, and the oil adjuvant was 7095. Colloid mills were used for the production of the emulsion vaccine. a The resulting vaccine is a white emulsion with a yellowish tinge, with a slightly viscous consistency, "» pH 7.2-7.6. With long-term storage, a slight delamination of mineral oil is possible over a non-layered homogeneous emulsion. With thorough shaking, the vaccine acquires the appearance of a homogeneous mass. 45 Example 2 Bacteriological control of the sterility of the received vaccine was carried out as follows. Samples of the vaccine were sown on serum broth and agar, liquid and dense medium Sabouraud, MLA, MPB - from the tube, on
МППБ - по 2 пробірки і 2 флакони, середовище Ендо - по З чашки. Для виявлення аеробів висівали по 0,5см З іме) вакцини в одну пробірку і 2см3 в один флакон, а для виявлення анаеробів - відповідно по 1 і 5см З. Пробірки, З «со 50 бактеріологічні чашки, флакони з посівами на всіх середовищах, крім Сабуро, витримували у термостаті при (37,0--0,5)2С, на середовищі Сабуро при (21,04-0,5)иС протягом 7 діб. Після закінчення зазначеного терміну робили пересівання, за винятком посівів на МПА, середовище Ендо, агар Сабуро і сироватковий агар.MPPB - 2 test tubes and 2 vials each, Endo medium - 3 cups each. For the detection of aerobes, 0.5 cm of the vaccine was sown in one test tube and 2 cm3 in one vial, and for the detection of anaerobes, 1 and 5 cm of the vaccine were sown, respectively. Sabouro, kept in a thermostat at (37.0--0.5)2С, on Sabouro medium at (21.04-0.5)С for 7 days. After the end of the specified period, reseeding was done, with the exception of sowing on MPA, Endo's medium, Sabouraud's agar, and serum agar.
Пересівали проби на ті ж живильні середовища в тих же обсягах, що і при посіві. Вторинні посіви витримували 7 діб. Одночасно проводили контроль стерильності живильних середовищ. Результати первинного і повторногоSamples were transplanted to the same nutrient media in the same volumes as during sowing. Secondary crops were kept for 7 days. At the same time, control of the sterility of the nutrient media was carried out. The results of the primary and secondary
С 55 посівів оцінювали шляхом мікроскопічного дослідження посівів. Ріст мікроорганізмів на живильних середовищах був відсутній.55 crops were evaluated by microscopic examination of the crops. There was no growth of microorganisms on nutrient media.
Приклад ЗExample C
Контроль нешкідливості і реактогенності отриманої вакцини здійснювали наступним шляхом. Нешкідливість вакцин була перевірена на 6 морських свинках і 12 білих мишах. Препарат вводили підшкірне морським свинкам 60 в області паху 1 і 2см, білим мишам в області спини в обсязі 0,5см3. Спостереження за тваринами вели протягом діб. Усі тварини залишилися живими. Для перевірки реактогенності препарат вводили внутрішньом'язево двом телятам і двом поросятам по 10см З. Через 14 днів після введення вакцини, у тварин на місці ін'єкції препарату збереглися місцеві зміни у вигляді ущільнення тканин, величиною від 1 до Зсм З. Ущільнення однорідні, без розм'якшення, безболісні. При розтині телят і поросят у товщі м'язевого шару виявлені б5 ясно-жовтого кольору гранульоми щільної консистенції.Control of harmlessness and reactogenicity of the received vaccine was carried out in the following way. The harmlessness of the vaccines was tested on 6 guinea pigs and 12 white mice. The drug was administered subcutaneously to 60 guinea pigs in the groin area of 1 and 2 cm, to white mice in the back area in a volume of 0.5 cm3. Animals were observed for days. All animals remained alive. To check the reactogenicity, the drug was administered intramuscularly to two calves and two piglets by 10 cm Z. 14 days after the injection of the vaccine, local changes in the form of tissue compaction, ranging from 1 to 3 cm Z, remained in the animals at the injection site. The compactions are uniform, without softening, painless. At the autopsy of calves and piglets in the thickness of the muscle layer, b5 light-yellow granulomas of a dense consistency were found.
Приклад 4Example 4
Для іспиту імуногенної активності стриманої вакцини на білих мишах використовували по 10 тварин на кожен серовар. Вакцину вводили 30 білим мишам підшкірне в області спини в обсязі О,їсм З (1,5млрд.м.к.) одноразово. Через 21 добу після імунізації по 10 вакцинованих і по 5 інтактних білих мишей заражали підшкірно попередньо відтитрованою смертельною дозою пастерел відповідного серовару. Серовар В вводили в дозі 3-Бж.м.к. на білу мишу (0,5см3 20-годинної бульйонної культури в розведенні 109 з накопиченням Тмлрд.ж.м.к. у 1см3 живильного середовища. Контрольні миші загинули протягом 24 годин. Вакциновані залишилися живими протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. Серовар А вводили в дозі 10-20ж.м.к. на білу мишу 70. (0,2см3 20-годинній бульйонною культурою в розведенні 107 з накопиченням тмлрд.ж.м.к. у см живильного середовища. Контрольні миші загинули протягом 24-36 годин. Вакциновані залишилися живими протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. Серовар ОО вводили в дозі З0Ож.м.к. на білу мишу (0,Зсм 20-годинній бульйонної культури в розведенні 109 з нагромадженням Імлрд.ж.м.к. у см З живильного) середовища.To test the immunogenic activity of the restrained vaccine on white mice, 10 animals for each serovar were used. The vaccine was administered to 30 white mice subcutaneously in the back region in the amount of 0.000 ml (1.5 billion micrograms) once. 21 days after immunization, 10 vaccinated and 5 intact white mice were infected subcutaneously with a previously titrated lethal dose of Pasteurella of the corresponding serovar. Serovar B was administered at a dose of 3-Bzh.m.k. per white mouse (0.5 cm3 of a 20-hour broth culture in a dilution of 109 with the accumulation of Tmlrd.j.m.c. in 1 cm3 of nutrient medium. Control mice died within 24 hours. The vaccinated remained alive during 10 days of observation after the death of the control. Serovar A was administered at a dose of 10-20 mcg per white mouse 70. (0.2 cm3 of a 20-hour broth culture in a dilution of 107 with the accumulation of tmnrd. mcg per cm of nutrient medium. Control mice died within 24-36 hours. The vaccinated remained alive during 10 days of observation after the death of the control. Serovar OO was administered at a dose of 300 mg.m.c. to a white mouse (0.3 cm in a 20-hour broth culture in a dilution of 109 with the accumulation of Imlrd.j.m.c. in cm From nutrient) medium.
Контрольні миші пали протягом доби. Вакциновані залишилися живими протягом 10 діб, спостереження після 72 загибелі останньої контрольної білої миші. У висновку проведено оцінку вакцини кількісним методом.Control mice fell during the day. The vaccinated remained alive for 10 days, observation after 72 death of the last control white mouse. In the conclusion, the vaccine was assessed using a quantitative method.
Приклад 5Example 5
Для іспиту імуногенної активності отриманої вакцини на кроликах використовували по 4 тварини на кожен серовар. Вакцину вводили 12 кроликам внутрішньом'язево в стегно в обсязі О,5см З (7,Бмлрд.ж.м.к.) одноразово. Через 21 день після імунізації по 4 вакцинованих і 2 інтактних кролика заражали внутрішньом'язево в стегно попередньо відтитрованою смертельною дозою пастерел відповідного серовару. Серовар В вводили в дозі БОж.м.к. на одного кролика (0,5см 20-годинна бульйонна культура в розведенні 103 з накопиченням 1Тмлрд.ж.м.к. у їсм? живильного середовища). Контрольні тварини загинули протягом 24 годин. Вакциновані залишилися живими протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. Серовар А вводили в дозі 50ж.м.к. ов на одного кролика (0,5см? 20-годинної бульйонної культури в розведенні 103 з накопиченням тмлрд.ж.м.к. у 1см3 живильного середовища). Контрольні тварини загинули протягом 24-36 годин. Вакциновані залишалися не живі протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. Серовар Ю вводили в дозі 500ж.м.к. на одного кролика (0,5см? 20-годинної бульйонної культури в розведенні 10 з накопиченням імлрд.ж.м.к. у см З живильного середовища). Контрольні тварини загинули протягом 6-7 діб. Вакциновані залишилися живими со протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. счFour animals for each serovar were used to test the immunogenic activity of the received vaccine on rabbits. The vaccine was administered to 12 rabbits intramuscularly in the thigh in a volume of 0.5 cm Z (7.Bmlrd.j.m.c.) once. 21 days after immunization, 4 vaccinated and 2 intact rabbits were infected intramuscularly in the thigh with a previously titrated lethal dose of Pasteurella of the corresponding serovar. Serovar B was administered at a dose of BOzh.m.k. per rabbit (0.5 cm of a 20-hour broth culture in dilution 103 with accumulation of 1 Tmlrn.j.m.k. in the nutrient medium). Control animals died within 24 hours. The vaccinated remained alive for 10 days of observation after the death of the control. Serovar A was administered at a dose of 50 g.m.c. ov per one rabbit (0.5 cm? of a 20-hour broth culture in a dilution of 103 with the accumulation of tmlrd.j.m.k. in 1 cm3 of nutrient medium). Control animals died within 24-36 hours. The vaccinated remained dead for 10 days of observation after the death of the control. Serovar Y was administered at a dose of 500 mg. per rabbit (0.5 cm? of a 20-hour broth culture in a dilution of 10 with the accumulation of imlrd.j.m.c. in cm From the nutrient medium). Control animals died within 6-7 days. The vaccinated remained alive during 10 days of observation after the death of the control. high school
Приклад 6Example 6
Імуногенну активність вакцини на телятах і поросятах визначали шляхом прямого зараження вакцинованих (ав) тварин (доза щеплення 2см З, внутрішньом'язово). Через 21 добу після вакцинації тварини заражені М 24-годинними бульйонними культурами пастерел: серовар В - 0,Зсму; серовар А - 0,5см?; серовар О - 10сму.The immunogenic activity of the vaccine on calves and piglets was determined by direct infection of vaccinated (av) animals (inoculation dose 2 cm 3, intramuscularly). 21 days after vaccination, the animals are infected with M 24-hour broth cultures of Pasteurella: serovar B - 0,Zsmu; serovar A - 0.5 cm?; serovar O - 10 cm.
Зо Контрольні тварини загинули, а вакциновані залишилися живими протягом 10 діб спостереження після загибелі контролю. «Z Control animals died, and vaccinated animals remained alive during 10 days of observation after the death of the control. "
Приклад 7Example 7
Зроблено дослідження з порівняльного вивчення ефективності інактивованих протипастерельозних вакцин, - отриманих на підставі вітчизняних виробничих штамів пастерел, на телятах і поросятах в умовах КСП "Україна" і "Росія" Іванівського району Херсонської області та учгосп "Комунар" і КСП "Пригородній" України. Досвід с проведений на 1-3-місячних тваринах, термін спотереження - 6 місяців. Дослідження підтвердили високу з» імуногенність протипастерельозної вакцини з вітчизняних штамів.A study was conducted on the comparative study of the effectiveness of inactivated anti-pasteurellosis vaccines, obtained on the basis of domestic production strains of pasteurella, on calves and piglets in the conditions of the "Ukraine" and "Russia" KSPs of the Ivanivka District of the Kherson Region and the Komunar State Farm and the "Pryhorodniy" KSP of Ukraine. The experience was conducted on 1-3-month-old animals, the observation period was 6 months. Studies have confirmed the high immunogenicity of the anti-pasteurellosis vaccine from domestic strains.
Таким чином, завдяки використанню пропонованого способу отримана вакцина проти факторного (ендогенного) пастерельозу молодняка с.-г. тварин емульсійна інактивована і володіє більш високою - 45 імуногенною активністю та специфічною безпекою. оThus, thanks to the use of the proposed method, a vaccine was obtained against factor (endogenous) pasteurellosis of the young of rural areas. animal emulsion is inactivated and has higher - 45 immunogenic activity and specific safety. at
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
UA20040403267U UA7023U (en) | 2004-04-29 | 2004-04-29 | Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
UA20040403267U UA7023U (en) | 2004-04-29 | 2004-04-29 | Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
UA7023U true UA7023U (en) | 2005-06-15 |
Family
ID=34882638
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
UA20040403267U UA7023U (en) | 2004-04-29 | 2004-04-29 | Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
UA (1) | UA7023U (en) |
-
2004
- 2004-04-29 UA UA20040403267U patent/UA7023U/en unknown
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2403063C1 (en) | Inactivated combined vaccine against viral diarrhea, rota-, corona-virus diseases and escherichiosis of cattle | |
RU2308288C1 (en) | Polyvalent vaccine against pseudomonasis in farm animals | |
CN106267176B (en) | Infectious coryza vaccine composition, preparation method and application thereof | |
US4229434A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
UA7023U (en) | Method for preparing emulsion vaccine against pasteurella | |
SU997599A3 (en) | Process for preparing heterovaccine for treating trichomonas syndrome | |
Rimler et al. | A growth medium for the production of a bacterin for immunization against infectious coryza | |
Carter | Studies On Pneumnia Of Cattle. I. Experimental Infection Of Calves With Pasteurella Haemolytica | |
JP2776982B2 (en) | Pasteurella haemolytica type A-1 bacterin-toxoid vaccine | |
RU2162340C1 (en) | Method of preparing vaccine against salmonellosis in pigs | |
RU2162339C1 (en) | Method of emulsion antipasteurellosis vaccine preparing | |
US4002736A (en) | Porcine bacterin | |
RU2763991C1 (en) | Vaccine against infectious atrophic rhinitis and pasterellosis in pigs inactivated, method for its preparation | |
RU2813752C1 (en) | Method of producing aluminum hydroxide oil vaccine against escherichiosis in calves and piglets | |
RU2173560C1 (en) | Method of preparing vaccine preparation against infectious diseases of bacterial etiology in animals and birds | |
RU2806810C1 (en) | Hydroxide aluminum oil vaccine against escherichiosis in calves and piglets | |
RU2764600C1 (en) | Vaccine against escherichiosis of calves and piglets | |
RU2049815C1 (en) | Strain of bacterium leptospira interrogans designed for leptospirosis vaccine preparing | |
RU2268933C1 (en) | STRAIN Haemophilus parasuis SK-1 AS PATHOGEN OF SWINE HEMOPHILEOUS POLYSEROSITIS FOR PREPARING DIAGNOSTIC AND VACCINE PREPARATIONS | |
RU2269570C2 (en) | Haemophilus parasuis strain as porcine haemophylic polyserositis agent for production of diagnostic and vaccine preparations | |
RU2813771C1 (en) | Method of preventing escherichiosis in calves | |
RU1066074C (en) | Pseudomonose vaccine for fur-bearing animals, mainly, minks and method of producing the same and method of its prophylaxis | |
RU2753410C2 (en) | Method for obtaining toxoid vaccine against escherichiosis of animals | |
RU2553631C1 (en) | STRAIN OF BACTERIA Pseudomonas aeruginosa № 9 FOR PRODUCTION OF VACCINE AGAINST PSEUDOMONOSIS OF PIGS | |
RU2270857C2 (en) | Medium for culturing escherichia coli and method for preparing coli-bacteriosis anatoxin |