TWI825066B - 治療性單株抗體之品質屬性的定量及模型化 - Google Patents
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Abstract
本發明提供在投予具有所欲轉譯後修飾之抗體之後預測所述抗體之活體內血清濃度之方法，以及用於預測個體對所述抗體之轉譯後變異體之曝露的方法。所述方法包含：使用針對所述轉譯後修飾所測定之活體內速率常數來預測具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體的百分比，及用具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體的所述經預測百分比乘以所述抗體之所述活體內濃度，以確定具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體的濃度。
Description
本發明係關於生物醫藥，且係關於治療性抗體之活體內轉譯後修飾的預測及模型化。
治療性單株抗體(mAb)為產生於具有諸多產物變異體之哺乳動物細胞中之異質分子，所述變異體包括由轉譯後修飾(PTM)產生之變異體。經由PTM產生之變異體可出現於整個mAb之生命期中，在生產、純化、儲存及投予後期間。此等變異體或產物相關之修飾亦被稱為產物品質屬性(PQA)。將PQA控制在預界定之接受準則內對生物醫藥工業至關重要，此係因為其確保產品品質始終如一且降低對藥物安全及功效之潛在影響。可通常可靠地監測及控制在藥物生產及儲存期間出現之修飾。然而，由於血流之顯著不同環境對調配物緩衝劑之影響，額外修飾可在藥物投予之後出現。mAb之活體內修飾通常難以監測且通常較少被研究。對活體內PTM變化之評估及預測不僅將有助於對產品風險評估之品質屬性臨界性的理解，且亦將幫助產品設計及研發小組設計具有經增強活體內穩定性之候選mAb藥物。
美國食品藥物管理局對行業之指導建議發起人應評估治療性蛋白質對活體內背景內之修飾的敏感性(參見《行業指導，對治療性蛋白質產物之免疫原性評估》(Guidance for Industry,Immunogenicity Assessment for Therapeutic Protein Products)。2014)。結果，已在動物或人類樣本中研究了諸多PQA之活體內狀態，包含脫醯胺化(Huang等人，《分析化學(Analytical chemistry)》2005；77：1432-9；Ouellette等人，《單抗(mAbs)》2013；5：432-44； Yin等人，《醫藥研究(Pharmaceutical research)》2013；30：167-78；Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0)、氧化(參見例如Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78；Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0)、糖化(參見例如Goetze等人，《糖生物學(Glycobiology)》2012；22：221-34)、糖基化(參見例如Li等人，《單抗》2016：0；Li等人《單抗》2016：0；Goetze等人，《糖生物學》2011；21：949-59；Alessandri等人，《單抗》2012；4：509-20.)、二硫化物(參見例如Li等人，《單抗》2016：0；Liu等人，《生物化學期刊(The Journal of biological chemistry)》2008；283：29266-72)、N端焦麩胺酸鹽(參見例如Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78；Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0；Liu等人，《生物化學期刊》2011；286：11211-7)及C端離胺酸移除(參見例如Li等人，《單抗》2016：0；Cai等人，《生物技術及生物工程(Biotechnology and bioengineering)》2011；108：404-12)。通常使用親和純化以自樣本萃取治療性mAb，以在分析中減少內因性蛋白質背景之干擾(參見例如Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0)。針對動物中之研究，可容易地將抗人類Fc抗體或抗原用作捕捉試劑；針對人類研究，可將抗原或具體識別治療性mAb之唯一互補決定區(CDR)之抗體用作捕捉試劑。在親和純化之後，通常使用液相層析聯合質譜分析(LC-MS/MS)肽定位以定量PTM產物變異體之相對豐度。近來，已將活體內PTM定量與藥物動力學(PK)模型組合以評估PTM產物變異體之形成及消除，且定量地評估個體對單劑量方案中之PQA之曝露(參見例如Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0；Goetze等人，《單抗》2010；2：500-7)以幫助建立產品風險評估之PQA的臨界性。然而，尚未嘗試模擬PTM之活體內進展及個體對PQA之曝露以定量地評估多劑量方案中的PQA之臨界性之模型化。
在一個態樣中，本發明提供一種在單次投予具有所欲轉譯後修飾的抗體之後，預測所述抗體之活體內血清濃度方法，其中所述方法包括(a)使用針對所述轉譯後修飾所測定之活體內速率常數來預測具有所述所 欲轉譯後修飾的所述抗體之百分比；及(b)用具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體的所述預測百分比乘以所述抗體之所述活體內濃度，以確定具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體的濃度。在一些情況下，在計算中採用以下方程式：C PTM (t)=C(t)．P(t)，其中C PTM (t)為具有所欲轉譯後修飾之抗體之血清濃度；C(t)為抗體之血清濃度；且P(t)為所欲轉譯後修飾之百分比。
在一些實施例中，藉由定量所欲轉譯後修飾隨時間變化之百分比且將所欲轉譯後修飾之經定量百分比擬合於方程式
來測定轉譯後修飾之活體內速率常數，其中P PTM (t)為轉譯後修飾隨時間變化之比例；P 0為初始百分比轉譯後修飾；且k PTM 為轉譯後為修飾速率常數。
在一些實施例中，所述方法進一步包括確定個體對具有所欲轉譯後修飾的抗體之曝露。在一些情況下，確定個體對具有所欲轉譯後修飾的抗體之曝露包含確定具有所欲轉譯後修飾的抗體之濃度(C PTM (t))的曲線下面積(AUC)。
在一些實施例中，抗體之血清濃度利用二室藥物動力學模型方程式描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交(hybrid)一階常數時，A及B分別為雜交係數。
在一些實施例中，所述方法進一步包括在多次投予抗體之後，預測具有所欲轉譯後修飾的抗體之活體內血清濃度。在一些情況下，在多次投予抗體之後預測具有所欲轉譯後修飾的抗體之活體內血清濃度包括疊加多個單次投予模型，其中每次投予時之所述抗體的血清濃度利用二室藥物動力學模型方程式單獨描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交一階常數時，A及B分別為雜交係數。
在所述方法之各種實施例中，抗體包含重組治療性單株抗體。在一些情況下，轉譯後修飾包括可影響藥物穩定性、安全性及/或功效之產物品質屬性。
在一些實施例中，所述方法預測性地監測單株抗體之轉譯後修飾概況。
在一些實施例中，所述方法進一步包括創建轉譯後修飾之活 體內進展及個體對產物品質屬性之曝露的預測模型。
在一些實施例中，所述方法進一步包括將在轉譯後修飾變異體之PK濃度與比例之間的相關性模型化。
在一些實施例中，所述方法進一步包括定量地評估及預測個體對單劑量及多劑量方案兩者中之代表性轉譯後修飾之曝露。
在一些實施例中，所述方法進一步包括預測在多劑量方案中觀測到之最大及最小轉譯後修飾含量。
在另一態樣中，本發明提供一種用於在向個體投予後預測所述個體對重組治療性單株抗體之變體之曝露的方法，其中所述方法包含(a)識別引起所述變異體形成之轉譯後修飾(PTM)過程之速率常數；(b)計算所述變體隨時間變化之預測比例；(c)基於所述變異體之所述預測比例計算個體中所述變異體隨時間變化的預測血清濃度；及(d)在投予所述抗體後，基於所述變異體之所述預測血清濃度預測所述個體對所述變異體之曝露。
在所述方法之一些實施例中，經由以下方程式：PPTM(t)=1-(1-P0)．e-k PTM t執行對變異體之隨時間變化之預測比例的計算，其中PPTM(t)為變異體隨時間變化之比例，P0為變異體在投予時之初始含量；kPTM為PTM過程之速率常數，且t為時間。
在所述方法之一些實施例中，經由以下方程式：CPTM(t)=C(t)．PPTM(t)執行對個體中之變異體隨時間變化之預測血清濃度的計算，其中CPTM(t)為變異體之血清濃度，C(t)為抗體之血清濃度，且PPTM(t)為變異體在時間t時之比例
在一些實施例中，所述方法進一步包括向個體投予抗體。
在所述方法之一些實施例中，抗體為mAb。
在一些實施例中，所述方法進一步包括確定個體中之抗體之總活體內濃度。
在另一態樣中，本發明提供一種用於在向個體投予多劑量之所述抗體後預測所述個體對重組治療性單株抗體之變異體的曝露之方法，其中所述方法包含(a)進行直接論述於上之所述方法；(b)基於給藥間隔計算在所述抗體之每一後續劑量之前及之後的所述變異體之預測比例；(c)基於 在每一給藥間隔時之所述變異體之所述預測比例計算個體中的所述變異體之預測血清濃度；及(d)基於所述變異體之所述預測血清濃度預測個體在所述抗體之兩次或更多次劑量的過程內對所述變異體之曝露。
論述於上文或本文中之方法之各種實施例中，轉譯後修飾包括脫醯胺化、氧化、糖化、二硫化物形成、N-端焦麩胺酸鹽形成、C-端離胺酸移除及高甘露糖糖基化中之一種或多種。
在一些實施例中，所述方法進一步包括向個體投予抗體。
在所述方法之一些實施例中，抗體為mAb。
在一些實施例中，所述方法進一步包括確定個體中之抗體之總活體內濃度。
在上文或本文中論述之各種態樣或實施例中之任一者可經合併於替代具體實例中，其各者涵蓋於本發明之範疇內。
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圖1顯示藉由親和純化之MAB1蛋白質之回收的軌跡組。MAB1之親和純化之回收率>99.5%，同時在流過物中偵測到<0.5%總MAB1。對百分比回收率之計算描述於實例1之材料及方法部分中。以作為內部標準化控制之已知量之高分子量標準物(顯示為「上部標記物」)執行每一樣本。計算每一樣本中之MAB1峰面積與上部標記物峰面積之比率以糾正批次變化性。
圖2A及2B為例示性肽識別之MS/MS光譜(圖2A)及肽峰整合及PTM定量之例示性經萃取離子層析圖(圖2B)。(圖2A)例示性Met經氧化肽之MS/MS光譜，DTLMISR(SEQ ID NO：1)(上圖)及例示性野生型肽之MS/MS光譜，DTLMISR(SEQ ID NO：1)(下圖)。(圖2B)Met經氧化肽之經提取離子層析，DTLMISR(SEQ ID NO：1)(上圖)及野生型肽，DTLMISR(SEQ ID NO：1)(下圖)。
圖3A及圖3B為顯示來自單劑量PK研究(圖3A)及多劑量PK研究(圖3B)之MAB1之Fc區中的三個Asn位點中之每一者處之脫醯胺化的相對豐度之圖表。(圖3A)在單劑量研究中，在三個Asn位點中之每一 者處之脫醯胺化的相對豐度隨時間以遵循以下一級動力方程式之不同速率增加：
。使用非線性回歸，Asn位點1、2及3處之活體內脫醯胺化速率常數分別經測定為0.003523%(第1天)、0.5394%(第1天)及0.1546%(第1天)。(圖B)在多劑量研究中，三個Asn位點中之每一者處之脫醯胺化的相對豐度隨時間在每一給藥間隔期間遵循一級動力方程式而增加，但由於新投予之未經修飾MAB1之稀釋而在每一後續劑量後急劇降低，展現出向上趨向之鋸齒圖案。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖4A和4B為顯示來自單劑量PK研究(圖4A)及多劑量PK研究(圖4B)之MAB1 Fc區中之三個Asn位點中的每一者處之氧化之相對豐度的圖表。(圖4A)在單劑量研究中，Met氧化之相對豐度略微波動，但在所有三個位點處幾乎保持不變。(圖4B)在多劑量研究中，Met位點1處之氧化之相對豐度略在每一給藥間隔期間微地降低且在每一劑量之後略微增加。Met位點2及3處之氧化之相對豐度保持穩定。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖5A和圖5B為顯示來自單劑量PK研究(圖5A)及多劑量PK研究(圖5B)之N端焦麩胺酸鹽之相對豐度的曲線。(圖5A)在單劑量研究中，N端焦麩胺酸鹽之相對豐度隨時間增加。(圖5B)在多劑量研究中，N端焦麩胺酸鹽之相對豐度在每一給藥間隔期間增加，但由於新投予之未經修飾MAB1之稀釋而在每一後續劑量的MAB1後急劇降低，展現出向上趨向之鋸齒圖案。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖6A及6B為顯示來自單劑量PK研究(圖6A)及多劑量PK研究(圖6B)之具有重鏈C端離胺酸之MAB1的相對豐度之圖表。在單劑量及多劑量研究兩者中，C端離胺酸在每一劑量後於一天內快速移除。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖7A及圖7B為顯示來自單劑量PK研究(圖7A)及多劑量PK研究(圖7B)之甘露糖5糖型之相對豐度的曲線。(圖7A)在單劑量研究中，甘露糖5之相對豐度在6週內自0.5%降低至不可偵測。(圖7B)在多劑量研究中，甘露糖5之相對豐度在每一給藥間隔期間降低，但因為新投予之具有較高含量之甘露糖5的MAB1而在每一後續新劑量時急劇增加，展 現處向下趨向之鋸齒圖案。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖8A為顯示來自單劑量PK研究之個體對總MAB1之曝露的圖表。利用二室藥物動力學模型方程式描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt 之MAB1血清濃度-時間曲線(黑線)與ELISA量測的MAB1血清濃度(黑點)擬合。由C(t)之AUC表示之個體在56天過程內對總MAB1的曝露經測定為4302.0微克/毫升．天。
圖8B為顯示來自單劑量研究之個體對具有PQA之MAB1的曝露之圖表。具有脫醯胺化之MAB1之血清濃度-時間曲線經描述為C PQA (t)=C(t)．P PQA (t)。之AUC C PQA (t)曲線對應於個體對具有PQA之MAB1的曝露。個體在56天內對具有Asn位點2處之脫醯胺化之MAB1的曝露經測定為426.7微克/毫升．天(實線)。個體在56天內對具有Asn位點3處之脫醯胺化之MAB1的曝露經測定為152.5微克/毫升．天(虛線)。個體在56天內對具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1的曝露經測定為191.5微克/毫升．天(點線)。
圖9A為顯示對來自多劑量PK研究之總MAB1及具有Asn位點2或Asn位點3處之脫醯胺化的MAB1之血清濃度模型預測及之實驗量測結果待圖表。總MAB1及具有Asn位點2或Asn位點3處之脫醯胺化之MAB1的經預測劑量前及劑量後血清濃度與實驗量測結果充分一致。總MAB1及具有Asn位點2或3處之脫醯胺化之MAB1的劑量前及劑量後濃度在延長給藥期後接近穩態含量。
圖9B為顯示對Asn位點2或Asn位點3處之脫醯胺化之相對豐度的模型預測及實驗量測結果之圖表。經預測含量與實驗值充分一致。Asn位點2或Asn位點3處之脫醯胺化之劑量前及劑量後相對豐度在延長給藥期後接近穩態含量。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖10A為顯示對來自多劑量PK研究之具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1的血清濃度之模型預測及實驗量測結果之圖表。具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1之經預測劑量前及劑量後血清濃度與實驗量測結果充分一致。具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1之劑量前及劑量後濃度在延長給藥期後接近穩態含量。
圖10B為顯示對N端焦麩胺酸鹽之相對豐度之模型預測及 實驗量測結果的圖表。經預測含量與實驗值充分一致。N端焦麩胺酸鹽之劑量前及劑量後相對豐度在延長給藥期後接近穩態含量。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖11A及11B為顯示對單劑量研究(圖11A)及多劑量研究(圖11B)中之個體對假設CDR脫醯胺化之曝露的模型化之圖表，所述假設CDR脫醯胺化之活體內脫醯胺化速率為2.5%/日且初始脫醯胺化含量為0%、10%及20%。(圖11A)單劑量研究中之個體在56天內對具有0%、10%及20%初始脫醯胺化之假設CDR脫醯胺變異體曝露的分別為1385微克/毫升．天、1653微克/毫升．天及1921微克/毫升．天，所述研究分別由32.5%、38.8%及45.1%個體對總mAb之曝露組成。(圖11B)多劑量研究中之個體在5個劑量(56天)內對具有0%、10%及20%初始脫醯胺化之假設CDR脫醯胺變體的曝露分別為1086微克/毫升．天、1478微克/毫升．天及1871微克/毫升．天，所述研究分別由21.7%、29.5%及37.3%個體對總mAb之曝露組成。每一給藥時間由箭頭「↑」指示。
圖12為可用於實施本發明之態樣之電腦系統道方塊圖。
圖13為可實施本發明之態樣之分散式計算環境的圖示。
在描述本發明方法之前，應理解，本發明不限於所描述之特定方法及實驗條件，因為此類方法及條件可變化。亦應瞭解，本文中所用之術語僅出於描述特定實施例之目的而並不意欲為限制性的，此係由於本發明之範疇將僅由所附申請專利範圍限制。
除非另外規定，否則本文中所用之所有技術及科學術語具有與本發明所屬領域之一般熟習此項技術者通常所理解相同的含義。雖然可在本發明之實踐或測試中使用類似或等效於本文所述之方法及材料的任何方法及材料，但現在描述較佳的方法及材料。本說明書中提及之所有專利、申請案、非專利公開案均以全文引用之方式併入本文中。
本文中所使用之縮寫
Asn：天冬醯胺
AUC：曲線下面積
CDR：互補決定區
CV：變化係數
EIC：經提取離子層析
ELISA：酶聯結免疫吸附分析法
FDA：美國食品藥物管理局
HC：重鏈
IgG：免疫球蛋白G
LC：輕鏈
mAb：單株抗體
MAB1：實例1中所用之治療性人類單株抗體
Met：甲硫胺酸
PK：藥物動力學
PQA：產物品質屬性
PTM：轉譯後修飾
RP-LC-MS/MS：反相液相層析聯合質譜分析
定義
如本文所使用之術語「抗體」意欲係指由藉由二硫鍵互連之四個多肽鏈、兩個重(H)鏈及兩個輕(L)鏈(亦即，「完整抗體分子」)以及其多聚體(例如IgM)或其抗原結合片段構成的免疫球蛋白分子。各重鏈係由重鏈可變區(「HCVR」或「VH」)及重鏈恆定區(由域CH1、CH2及CH3構成)構成。在各種實施例中，重鏈可為IgG同型。在一些情況下，重鏈係選自IgG1、IgG2、IgG3或IgG4。在一些實施例中，重鏈具有同型IgG1或IgG4，視情況包含同型IgG1/IgG2或IgG4/IgG2之嵌合鉸鏈區。各輕鏈係由輕鏈可變區(「LCVR」或「VL」及輕鏈恆定區(CL)構成。VH及VL區可進一步細分為被稱為互補決定區(CDR)之高變區，穿插有被稱為構架區(FR)之較保守區。各VH及VL係由自胺基末端至羧基末端按以下順序排列之三個CDR及四個FR構成：FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3、FR4。術語「抗體」包括對任何同型或子類別之經糖基化及未經糖基化免疫 球蛋白兩者。術語「抗體」包括藉由重組手段製備、表達、創造或分離之抗體分子，諸如自經轉染宿主細胞分離以表達所述抗體中抗體。針對抗體結構之綜述，參見Lefranc等人，《免疫球蛋白之IMGT唯一編號及T細胞受體可變結構域及Ig超家族V狀結構域(IMGT unique numbering for immunoglobulin and T cell receptor variable domains and Ig superfamily V-like domains)》，27(1)Dev.Comp.Immunol.55-77(2003)；及M.Potter，《免疫球蛋白多樣性之結構相關性(Structural correlates of immunoglobulin diversity)》，2(1)Surv.Immunol.Res.27-42(1983)。
術語抗體亦涵蓋「雙特異性抗體」，所述雙特異性抗體包含可結合至多於一個不同抗原決定基之雜四聚體免疫球蛋白。一半包含單個重鏈及單個輕鏈及六個CDR之雙特異性抗體結合至一個抗原或抗原決定基，另一半抗體結合至不同抗原或抗原決定基。在一些情況下，雖然雙特異性抗體可結合至同一抗原，但在不同抗原決定基或不重疊之抗原決定基處。在一些情況下，雙特異性抗體之兩半皆具有相同輕鏈，同時保持雙重特異性。雙特異性抗體一般描述於美國專利申請公開案第2010/0331527號(2010年12月30日)中。
如本文所用，術語抗體之「抗原結合部分」(或「抗體片段」)係指保留特異性結合至抗原之能力之抗體的一個或多個片段。涵蓋於術語抗體之「抗原結合部分」內之結合片段的實例包括(i)Fab片段，由VL、VH、CL及CH1結構域組成之單價片段；(ii)F(ab')2片段，包括藉由鉸鏈區處之二硫橋鍵聯結之兩個Fab片段的二價片段；(iii)由VH及CH1結構域組成之Fd片段；(iv)由抗體單臂之VL及VH結構域組成之Fv片段；(v)由VH結構域組成之dAb片段(Ward等人(1989)《自然(Nature)》241：544-546)；(vi)分離CDR及(vii)由Fv片段、VL及VH之兩個結構域組成之scFv，所述兩個結構域藉由合成鏈路接合以形成其中VL及VH區成對以形成單價分子之單蛋白質鏈。諸如雙功能抗體之單鏈抗體之其他形式亦涵蓋在術語「抗體」下(參見例如Holliger等人(1993)90《美國科學院院報(PNAS)》U.S.A.6444-6448；及Poljak等人(1994)2《結構(Structure)》1121-1123)。
此外，可使用此項技術中通常已知之標準重組DNA技術來 獲得抗體及其抗原結合片段(參見Sambrook等人，1989)。
「Fc融合蛋白質」包含不共同存在於自然中之兩種或多於兩種蛋白質之部分或全部，所述蛋白質之一者為免疫球蛋白分子之Fc部分。包括稠合至抗體衍生之多肽(包含Fc結構域)之各種部分的某些異源多肽之融合蛋白之製備已例如由Ashkenazi等人，(1991)88 Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.10535；Byrn等人，(1990)344《自然(Nature)》677；及Hollenbaugh等人，(1992)「免疫球蛋白融合蛋白質之構造(Construction of Immunoglobulin Fusion Proteins)」，《免疫學中之現行協定(Current Protocols in Immunology)》，增刊4，第10.19.1-10.19.11頁描述。「受體Fc融合蛋白質」包括偶合至Fc部分之受體之一個或多個細胞外結構域，其在一些實施例中包括鉸鏈區，繼之為免疫球蛋白之CH2及CH3結構域。在一些實施例中，Fc融合蛋白質含有結合至一個或多個配位體之兩種或多於兩種相異受體鏈。舉例而言，Fc融合蛋白質為陷阱，諸如(例如)IL-1陷阱(例如，利納西普，其含有稠合至IL-1R1胞外區之IL-1RAcP配位體結合區，所述IL-1R1胞外區稠合至hIgG1之Fc；參見美國專利案第6,927,004號)，或VEGF陷阱(例如，阿柏西普，其含有稠合至VEGF受體Flk1之Ig功能域3之VEGF受體Flt1的Ig功能域2，所述VEGF受體Flk1之Ig功能域3稠合至hIgG1之Fc；參見美國專利案第7,087,411號(2006年8月8日發佈)及美國專利案第No.7,279,159號(2007年10月9日發佈))。
術語「人類抗體」意欲包含具有衍生自人類生殖系免疫球蛋白序列之可變區及恆定區之抗體。本發明之人類mAb可包含未人類生殖系免疫球蛋白序列由編碼之胺基酸殘基(例如，由活體外無規或定點突變誘發或由活體內體細胞突變引入之突變)，例如在CDR且特定言之CDR3中。然而，如本文所使用之術語「人類抗體」不意欲包含其中已將衍生自另一哺乳動物種類(例如，小鼠)之生殖系的CDR次序移植至人類FR次序上之mAb。所述術語包含在非人類哺乳動物中或在非人類哺乳動物之細胞中以重組方式產生的抗體。所述術語不意欲包含分離自或產生於人類個體之抗體。
如本文所使用，術語「個體」係指例如需要疾病或病症之改 善、預防及/或治療之動物、較佳哺乳動物、更佳人類。
如本文所使用，術語「治療(treat/treating或treatment)」係指由向需要其之個體投予諸如本發明之抗體的治療劑所致之至少一種症狀或適應症之嚴重程度的減輕或改善。所述術語包含對疾病進展之抑制。可以治療劑量向個體投予治療劑。
「轉譯後修飾」(PTM)係指在蛋白質生物合成後之蛋白質之共價修飾。轉譯後修飾可出現在胺基酸側鏈上或在蛋白質之C端或N端處。抗體之例示性轉譯後修飾包含脫醯胺化、氧化、糖化、二硫化物形成、N端焦麩胺酸鹽形成、C端離胺酸移除及糖基化。
一般描述
哺乳動物細胞中產生之治療性單株抗體(mAb)由於轉譯後修飾(PTM)而為異質的。治療性單株抗體(mAb)之PTM為可潛在地影響藥物穩定性、安全性及功效之重要產物品質屬性(PQA)(Xu等人，《應用生物分析期刊(Journal of Applied Bioanalysis)》2017；3：21-5)。PTM可在mAb生產、純化、儲存及投予後期間出現(Kozlowski等人，《高級遞藥綜述高(Advanced drug delivery reviews)》2006；58：707-22；Liu等人，《醫藥科學期刊(Journal of pharmaceutical sciences)》2008；97：2426-47；Goetze等人，《mAb(mAbs)》2010；2：500-7；Wang等人，《醫藥科學期刊》2007；96：1-26)。可可靠地監測及控制在藥物生產及儲存期間出現之修飾。然而，由於mAb在活體內與活體外遭遇之不同環境，額外修飾可在藥物投予之後出現。與活體外條件相比，mAb之PTM在在投予至血流中之後變化顯著。因此，監測mAb之活體內PTM變化有助於評估PQA在產物風險評估期間之臨界性。此外，對個體對PTM變異體之曝露之定量評估有助於評估PTM的安全性影響及治療性mAb之功效。對活體內可出現之PTM之評估及預測不將有助於對產物風險評估的品質屬性臨界性的理解，且亦幫助產物研發小組設計具有經增強活體內穩定性之候選mAb藥物。
如本文所揭示，本發明者已對存在於治療性單株抗體中之產物品質屬性(PQA)進行了詳細分析及測定。使用治療性單株抗體MAB1作為模型，本發明者已評估數個轉譯後修飾，包含例如脫醯胺化、氧化、N 端焦麩胺酸鹽形成及C端離胺酸移除。如本文所揭示，本發明者在單劑量及多劑量猴藥物動力學(PK)研究中測定治療性mAb(MAB1)之PTM(例如，脫醯胺化、氧化、N端焦麩胺酸鹽形成、C端離胺酸移除及高甘露糖糖基化)。使用所得資料，本發明者使用三種常見PTM作為實例來建構模型化方程式以計算單劑量及多劑量方案中之PQA之活體內血清濃度、個體對PQA之曝露及PQA之相對豐度。模型預測表明與實驗結果展現一致性。使用假設PTM闡明模型之例示性應用。所述模型為生物分析化學家提供經簡化模型化工具以之在高級PK模型不可用時定量地評估PQA之臨界性。如以下示例所詳述，用親和純化隨後LC-MS/MS分析來自單劑量及多劑量PK研究之猴血清樣本，以確定MAB1之數個轉譯後屬性。使用自此分析獲得之資料，本發明者能夠建構抗體轉譯後修飾之活體內進展之數學模型及/或模擬，以預測個體對治療性抗體之產物品質屬性之曝露。所述模擬提供評估PQA之臨界性之定量方法。
基於MAB1之PQA之單劑量PK研究，本發明者能夠模型化PTM變異體之PK濃度及比例，且能夠定量地評估及預測單劑量及多劑量方案兩者中之個體對代表性PTM屬性(例如，天冬醯胺脫醯胺化)的曝露。所述模型亦預測在多劑量方案中觀測到之最大及最小PTM含量。此模型化方法為生物分析化學家提供新型工具，以定量地評估治療性mAb中之PQA之臨界性。可藉由調節初始PQA含量而將該等模型(P 0)用於評估由過程變化或不同批次之變化性引起之PQA的影響。若所述模型化表明PQA進展或個體對PQA之曝露對PQA之初始含量不敏感，則可拓寬PQA之可接受範圍以採納過程變化。
亦可使用該等模型以藉由延伸給藥期(t)或改變給藥間隔(τ)來模擬個體之曝露，從而提供對臨床前及臨床研究中之個體對PQA之曝露的定量評估。對個體對PQA之曝露之定量評估可幫助評估與PQA相關的風險。已在PK研究期間測定具有高曝露水準之具有已知不利免疫反應之PQA將具有高潛在風險。在此類情況下，可實施某些策略(例如蛋白質再設計以增強活體內穩定性)以消除或減少PQA之含量。
預測對抗體產物品質屬性之曝露之方法
本文揭示一種在向個體投予具有所欲轉譯後修飾的抗體(諸如治療性單株抗體)之後預測所述抗體之活體內血清濃度的方法。所揭示之方法包含使用針對所欲轉譯後修飾所測定之活體內速率常數來預測具有所欲轉譯後修飾的抗體之百分比。可將具有轉譯後修飾之抗體之百分比乘以在任何時間點時的抗體之總活體內濃度，以判定具有所欲轉譯後修飾的抗體在彼時間點時之濃度。舉例而言，使用方程式C PTM (t)=C(t)．P(t)其中C(t)為抗體之血清濃度；且P(t)為所欲轉譯後修飾之百分比。可測定具有所欲轉譯後修飾之抗體之血清濃度(C PTM (t))。換言之，具有所欲轉譯後修飾之抗體的血清濃度為具有彼轉譯後修飾之總抗體的百分比。如本文所揭示，抗體之血清濃度可利用二室藥物動力學模型方程式描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交一階常數時，A及B分別為雜交係數。
在實施例中，藉由定量所欲轉譯後修飾在單劑量之後隨時間變化之百分比及將所欲轉譯後修飾的經定量百分比方程式
擬合來測定所欲轉譯後修飾之活體內速率常數，其中P PTM (t)為所欲轉譯後修飾隨時間變化之比例；P 0為初始百分比所欲轉譯後修飾；且k PTM 為所欲轉譯後修飾之轉譯後修飾速率常數。藉由將曲線擬合至所欲轉譯後修飾之經量測百分比，可測定速率常數k PTM ，例如使用非線性回歸或其他數學擬合算法。
在實施例中，所述方法亦可包含確定個體對具有所欲轉譯後修飾之抗體之量的曝露。舉例而言，使用濃度之曲線下面積(AUC)分析(C PTM (t))在所關注時段(例如數日、數週或甚至數月)內使用具有所欲轉譯後修飾之抗體之濃度的曲線下面積(AUC)分析產生個體對具有所欲轉譯後修飾之抗體之量的總曝露值。
在多個位點處同時觀察亦為可能的。舉例而言，具有轉譯後修飾之抗體在特定位點處之比例可利用一階動力學描述為
，其中P PTM_位點_i (t)為轉譯後修飾在位點i處隨時間變化之比例；P 0為初始轉譯後修飾彼位點i；k PTM_位點_i 為在位點i處之轉譯後修飾速率常數。因此，可將在轉譯後經修飾抗體內具有特定位點i之抗體之PK濃度描述為C PTM_位點_i (t)=C(t)．P PTM_位點_i (t)。 C PTM_位點_i (t)曲線圖之曲線下面積(AUC)呈現個體對品質屬性之曝露。吾人可進一步計算每一種類之抗體變異體(例如具有1、2、3或甚至更多個相異轉譯後修飾)之近似濃度。
如以下關於脫醯胺化之實例中所論述，藉由將模型擴展至多次投予，可將本文所揭示之方法用於預測在多次投予具體所欲轉譯後修飾之抗體之後的所述抗體之活體內血清濃度。舉例而言，預測在多次投予具有所欲轉譯後修飾之抗體之後的所述抗體之活體內血清濃度可包含疊加多個單次投予模型，其中每次投予時之所述抗體的血清濃度利用二室藥物動力學模型方程式單獨描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交一階常數時，A及B分別為雜交係數。
可如下描述緊接m th劑量之前的具有所欲轉譯後修飾之抗體之血清濃度：C PTM,m，劑量前 (m．τ)=P PTM [(m-1)．τ]C[(m-1)．τ]+…+P PTM (1．τ)C(1．τ)。
可如下描述緊接m th之後的具有所欲轉譯後修飾之抗體之血清濃度C PTM,m，劑量後 (m．τ)=P PTM [(m-1)．τ]C[(m-1)．τ]+…+P PTM (1．τ)C(1．τ)+P PTM (0)C(0)
其中P PTM (t)為如針對單次投予所描述之一階反應方程式。
因此，可如下描述緊接m th 劑量之前的具有所欲轉譯後修飾之抗體之比例：
可如下描述緊接m th 劑量之後的具有所欲轉譯後修飾之抗體之比例：
當m接近無窮大時，P 脫醯胺化，m，劑量前 及P PTM,m，劑量後 達至平台，其可如下描述：
因此：
可藉由將方程式擬合至在第一次給藥間隔中獲得之實驗結果來解出A、B、α、β及k。
在各種實施例中，轉譯後修飾包括可潛在地影響藥物穩定性、安全性及/或功效之產物品質屬性。在某些實施例中，使用所述方法被以監測單株抗體(諸如重組治療性單株抗體)之活體內轉譯後修飾概況。在一些情況下，所述方法進一步包含創建轉譯後修飾之活體內進展及個體對產物品質屬性之曝露的預測模型。在一些實施例中，轉譯後修飾包括脫醯胺化、氧化、糖化、二硫化物形成、N端焦麩胺酸鹽形成、C端離胺酸移除及/或高甘露糖糖基化中之一種或多種。在一些實施例中，所述方法進一步包含模型化在轉譯後修飾變異體之PK濃度與比例之間的相關性。在一些實施例中，所述方法進一步包含定量地評估及預測個體對單劑量及多劑量方案兩者中之代表性轉譯後修飾之曝露。在一些實施例中，所述方法進一步包含預測在多劑量方案中觀測到之最大及最小轉譯後修飾含量。
例示性電腦系統
參考圖12，用於實施所揭示之方法之例示性電腦系統包含電腦120(諸如個人電腦、膝上型電腦、掌上型電腦、機上型電腦、伺服器、大型電腦、手持裝置及其他各種各樣的電腦)，所述電腦120包含處理單元121、系統記憶體122及將包含所述系統記憶體之各種系統組件耦接至所述處理單元121之系統匯流排123。處理單元可為各種市售處理器中之任一者，所述市售處理器包含來自INTEL®及其他(包含Cyrix、AMD及Nexgen)之INTEL®、x86、PENTIUM®及相容微處理器；來自Digital之Alpha；來自MIPS Technology、NEC、IDT®、西門子(Siemens)及其他之MIPS；及來自IBM®及摩托羅拉(Motorola)之PowerPC。亦可將雙重微處理器及其他多處理器架構用作處理單元121。
系統匯流排可為包含記憶體匯流排或記憶體控制器、周邊裝 置匯流排及使用多種習知匯流排架構(諸如PCI、VESA、AGP、MicroChannel、ISA及EISA，僅舉幾例)中之任一者的本機匯流排的若干類型之匯流排結構中之任一者。含有諸如在啟動期間在電腦120內之元件之間傳送資訊之基本例程的基本輸入/輸出系統(BIOS)存儲於ROM 124中。記憶體包含唯讀記憶體(ROM)124及隨機存取記憶體(RAM)。電腦120可進一步包含硬碟機127、軟碟機128例如以讀取自或寫入至抽取式磁碟129及光碟機130例如以讀取CD-ROM磁碟131或讀取自或寫入至其他光學媒體。硬碟機127、軟碟機128及光碟機130分別藉由硬碟機介面132、軟碟機介面133及光碟機介面134連接至系統匯流排123。驅動機及其相關電腦可讀媒體為電腦120提供資料、資料結構(資料庫)、電腦可執行說明等之非揮發性儲存器。儘管以上電腦可讀媒體之描述係指硬碟、抽取式磁碟及CD，熟習此項技術者應瞭解亦可在例示性操作環境中使用可藉由電腦讀取之其他類型之媒體，諸如匣式磁帶、快閃記憶體卡、數位視訊磁碟、Bernoulli盒式磁帶及其類似媒體。
資料可儲存於驅動機及RAM 125中，所述RAM 125包含操作系統135、一個或多個應用程式136、其他程式模組137及程式資料138。使用者可將指令及資訊輸入至使用各種輸入裝置(諸如鍵盤140及指標裝置(諸如鼠標142))之電腦120中。其他輸入裝置(未圖示)可包含麥克風、圓盤式衛星電視天線、掃描儀或其類似裝置。此等及其他輸入裝置通常經由經耦接至系統匯流排之串聯埠介面146連接至處理單元121，但可藉由其他介面(諸如平行埠、遊戲埠或通用串列匯流排(USB))連結。監視器147或其他類型之顯示裝置亦經由介面(諸如視訊配接器148)連接至系統匯流排123。除了監視器以外，電腦通常亦包含其他周邊裝置輸出裝置(未圖示)，諸如印表機。替代地，顯示器媒體為印出或其他有形媒體。輸出資訊亦可保留於用於儲存及/或後續使用或顯示之電腦可讀媒體。
電腦120可在使用邏輯連接至一個或多個其他電腦系統(諸如電腦102)之網路連結環境中操作。其他電腦系統可為伺服器、路由器、對等裝置或其他常見網路節點，且通常包含關於電腦120所描述之元件中之多數或全部，不過僅記憶體儲存裝置149在圖12中示出。圖12中所描繪 之邏輯連接包含區域網路(LAN)151及廣域網路(WAN)152。此類網路連接環境在辦公室、企業範圍之電腦網路、企業內部網路及網際網路中為常見的。
當用於LAN網路連接環境中時，電腦120經由網路介面或配接器153連接至區域網路151。當用於WAN網路連接環境中時，電腦120通常包含數據機154或用於在廣域網路152(諸如網際網路)內建立通信(例如經由LAN 151及閘道器或代理伺服器155)之其他構件。數據機154可為內部或外部的，其經由串聯埠介面146連接至系統匯流排123。在網路連接環境中，關於電腦120所描繪之程式模組或其部分可儲存於遠程記憶體存儲裝置中。應瞭解，所示網路連接為例示性的且可使用在電腦系統之間建立通信連結之其他構件(包含乙太網卡、ISDN終端配接器、ADSL數據機、lOBaseT配接器、100BaseT配接器、ATM配接器或其類似構件)。
上文所述之包含其包括之行為及操作的方法可藉由電腦120或藉由儀器或特別經編程或專用於進行所揭示之方法之其他裝置進行。因此，可在特定機械上進行所述方法，諸如除通用電腦以外之裝置。此類行為及操作有時被稱作電腦執行。應瞭解，行為及象徵性表示之操作包含表示資料位元之電信號處理單元121的操縱，所述操縱引起電信號表示之轉換或減少，及資料位元在記憶體系統(包含系統記憶體122、硬盤驅動器127、軟碟機129及CD-ROM 131)中之記憶體位置處之維護以藉此重新組態或者更改電腦系統之操作，以及信號之其他處理。維護資料位元之記憶體位置為具有與資料位元對應之特定電、磁或光學特性的物理位置。
例示性分散式計算環境
圖13說明用於實施本發明之方法之軟體及/或資料庫元件可常駐的分散式計算環境。儘管分散式計算環境200包含藉由連接媒體206連接之兩個電腦系統202、204，但所揭示之方法同樣適用於藉由連接媒體206連結之任意較大數目之電腦系統。電腦系統202、204可為若干類型之電腦系統組態中之任一者，包含個人電腦、多處理器系統、手持型裝置及其類似裝置。就與其他電腦系統之邏輯關係而言，電腦系統可為用戶端、伺服器、路由器、對等裝置或其他常見網絡節點。額外電腦系統202或204 可藉由任意數目個連接媒體206連接。連接媒體206可包括任何區域網路(LAN)、廣域網路(WAN)或其他電腦網路，包括但不限於以太網、企業範圍之電腦網路、企業內部網路及網際網路。
部分用於存儲資料之軟體及資料庫可實施於單電腦系統202或204中，其中應用程式稍後經散佈至分散式計算環境200中之其他電腦系統202、204。部分軟體亦可實踐於藉由充當遠程處理裝置之單電腦系統202或204執行任務之分散式計算環境200中，所述遠程處理裝置經由通信網路訪問，其中經散佈應用程式稍後散佈至分散式計算環境200中之其他電腦系統。在網路連接環境中，用於存儲資料之程式模組及資料庫可定位於多於一個電腦系統202或204上。在分散式計算網路中之電腦系統之間的通信可有利地包含經通信資料之加密。
實例
提出以下實例以便為一般熟習此項技術者提供如何製得及使用本發明之方法及組合物之完整揭示內容及描述，且不意欲限制本發明人視作其發明之範疇。已儘力確保關於所用數字(例如量、溫度等)之準確度。但應考慮一些實驗誤差及偏差。除非另外指明，否則份數為重量份，分子量為平均分子量，溫度以攝氏度計，室溫為約25℃，且壓力為在大氣壓下或接近大氣壓。
實例1
單劑量及多劑量猴藥物動力學研究中之治療性單株抗體之產物品質屬性的定量及模型化
此實例描述對治療性單株抗體(MAB1)之PQA之數目的研究，使用來自單劑量及多劑量PK研究之猴血清樣本。利用親和純化隨後LC-MS/MS評估MAB1之數個PTM屬性，包含脫醯胺化、氧化、N端焦麩胺酸鹽、C端離胺酸移除及高甘露糖糖基化。此外，建構模型以模擬PTM之活體內進展及個體對PQA之曝露，從而提供評估PQA之臨界性之定量方法。將天冬醯胺脫醯胺化用作代表性PTM屬性以評估該等模型。藉由所揭示之模型模擬之個體對去醯胺MAB1的曝露與單劑量及多劑量研究兩者之實驗結果充分一致。
材料及方法
材料
用於此研究中之人類IgG4單株抗體(MAB1)及抗人類抗體生產於Regeneron Pharmaceuticals,Inc.(Tarrytown,NY)。MAB之平均半衰期為約11.5天。除非另外指示，否則所有試劑均獲自Sigma-Aldrich(St.Louis，MO)或Thermo Fisher Scientific(Waltham，MA)。
臨床前樣本資訊
臨床前血清樣本獲自單劑量抑或多劑量食蟹獼猴PK研究。經靜脈內(IV)向個體投予MAB1。針對單劑量研究，以10mg/kg向動物給藥，且在8週(56天)過程內之指定時間點(劑量前、5分鐘、4小時、12小時、1天、3天、7天、14天、18天、30天、42天及56天)收集血清樣本。針對多劑量研究，以每2週(14天)3mg/kg向動物給藥，且在8週過程(56天)內之第一次給藥間隔內以及在每一新劑量之前及之後(14天、28天、42天、56天)的指定時間點(劑量前、小時、4小時、1天、3天、7天)收集血清樣本。將血清樣本儲存於-80℃下直至分析。使用酶聯結免疫吸附分析法(ELISA)來量測每一所收集之時間點之MAB1血清濃度。簡言之，在塗佈有藥物目標之微量滴定盤上捕獲MAB1。使用經生物素標記之小鼠抗人類IgG4單株抗體，隨後與辣根過氧化酶(NeutraAvidin-HRP)共軛之中性鏈親和素來偵測捕獲於板上的MAB1。接著添加對過氧化酶具有特異性之魯米諾基基板以達成與MAB1之濃度成比例的信號強度。
來自血清樣本之MAB1之親和純化
藉由親和純化自所收集之猴血清樣本純化MAB1。簡言之，將經生物素標記之抗人類抗體與Dynabeads MyOne Streptavidin T1磁性珠粒(Invitrogen，Carlsbad，CA)在室溫下共軛10分鐘。將共軛珠粒與血清樣本在室溫下一起培育30分鐘。將珠粒用HBS-EP緩衝液(GE Healthcare，Pittsburgh，PA)洗滌，且接著用0.1%甲酸及50%乙腈溶離。使用生物分析儀(Agilent Technologies，Santa Clara，CA)以評估在親和純化期間之MAB1之回收率。以作為內部標準化控制之來自Agilent之已知量的230kDa高分子量標準物(顯示為「上部標記物」)執行每一樣本。計算每一樣本中之MAB1 峰面積與上部標記物峰面積之比率以糾正批次變化性。使用以下方程式計算在親和純化期間之MAB1之回收率：
胰蛋白酶分解
使用真空濃縮器(LABCONCO，Kansas City，MO)來將經純化MAB1樣本乾燥。將經乾燥樣本再懸浮於8M脲及10mM TCEP中，且在37℃下培育。將經減少半胱胺酸殘基與10mM之碘乙醯胺在室溫下於暗處烷基化30分鐘。在烷基化之後，將脲濃度在分解之前稀釋至1.25M。將胰蛋白酶(Promega，Sunnyvale，CA)以1：10之酶：基板比率添加添加至樣本中且在37℃下培育4小時。藉由20%甲酸(FA；Thermo Scientific，San Jose，CA)之添加而將分解終止。將經分解樣本儲存於-80℃下直至分析。
LC-MS/MS及資料分析
使用偶接至Q Exactive加質譜儀(Thermo Fisher Scientific，San Jose，CA)之Acquity I-Class UPLC系統(Waters,Milford,MA)上之Acquity UPLC CSH C18 1.7μm，2.1mm×150mm柱(Waters，Milford，MA)來分離由胰蛋白酶消化產生的肽。移動相A為0.1%之於水中的FA且移動相B為0.1%於乙腈中之FA。將以0.25mL/min之流動速率持續56min之自2%移動相B至移動相B的梯度用於肽分離。MS獲取由全質量掃描，隨後每一全掃描之前5個最高強度離子之聯合質量(MS/MS)掃描組成。藉由Byonic(2.16.11版，Protein Metrics Inc.，San Carlos，CA)測定肽及PTM識別且人工地驗證。為了定量PTM之相對豐度，生成基於經修飾肽及原生肽兩者之第一同位素峰的m/z之經提取離子層析圖，且使用Skyline-daily(4.1.1.18151版)使用5ppm之質量窗來將經提取峰面積整合。使用相對於經修飾肽及原生肽之峰面積總和之經修飾肽的經提取離子層析圖(EIC)峰面積來計算每一PTM變異體之百分比。
單劑量PK研究中個體之品質屬性之曝露的計算
單劑量PK研究中個體之品質屬性之曝露的定量評估此前藉由Flynn等人(Goetze等人，《單抗》2010；2：500-7)描述。可由二室模型 (Rowland及Tozer Wolters Kluwer Health/Lippincott William & Wilkins，2011)描述MAB1濃度-時間方程式：
，其中C(t)為MAB1之血清濃度；C 1 、C 2 、λ 1 及λ 1 為混合常數。
為了簡化可讀性，採用以下格式：方程式3： C(t)=Ae -αt +Be -βt
，其中A及B為零時間截距(係數)；α及β分別為混合一級常數。將方程式擬合至在所收集之時間點之ELISA量測的MAB1血清濃度以尋找最佳擬合參數。擬合限制為：C(0)必須高於第一次劑量後ELISA量測之MAB1血清濃度；C(無窮大)常數等於0；A及B必須大於0。使用R平方以定量擬合優度且R平方大於0.95被視為良好擬合。
可由以下一級動力方程式描述特異性位點Asn處之具有脫醯胺化之MAB1相對豐度：
，其中P 脫醯胺化 (t)為脫醯胺化之百分比；P 0為在第0天之初始脫醯胺含量；k 脫醯胺化 為脫醯胺化速率常數。
可將特定Asn位點處之具有脫醯胺化之MAB1的血清濃度描述為：方程式5： C 脫醯胺化 (t)=C(t)．P 脫醯胺化 (t)，其中C 脫醯胺化 (t)為特定Asn位點處之具有脫醯胺化之MAB1的血清濃度。C 脫醯胺化 (t)之曲線下面積(AUC)表示個體對品質屬性之曝露(亦即，特定Asn位點處之具有脫醯胺化之MAB1)。藉由使用JMP(13.2.1版，SAS，Cary，NC)之非線性回歸解出描述C(t)及P 脫醯胺化 (t)之方程式。使用Excel(Microsoft，Redmond，WA)計算C 脫醯胺化 (t)且使用JMP繪圖。使用JMP計算由C 脫醯胺化 (t)之AUC表示之個體的曝露。
多劑量PK研究中個體之品質屬性之曝露的計算
使用疊加原理作為多個單劑量之線性積聚來以數學方式簡化模型化多劑量PK研究中之個體對品質屬性的曝露。藉由論述於以上單劑量PK研究中之二室模型描述每一劑量後之MAB1的血清濃度。可如下描述緊接m th劑量之前之MAB1的血清濃度：方程式6： C m，劑量前 (m．τ)=C[(m-1)．τ]+…+C(1．τ)，其中m為劑量之數目且τ為劑量之間的時間間隔。
可如下描述緊接m th劑量之後之MAB1的血清濃度：方程式7： C m，劑量後 (m．τ)=C[(m-1)．τ]+…+C(1．τ)+C(0)。
當m接近無窮大時，C m，劑量前 及C m，劑量後 接近如下描述之穩態濃度：
可如下描述緊接m th劑量之前之特定Asn位點處的具有脫醯胺化之MAB1之血清濃度：方程式10： C 脫醯胺化m，劑量前 (m．τ)=P 脫醯胺化 [(m-1)．τ]C[(m-1)．τ]+…+P 脫醯胺化 (1．τ)C(1．τ)。
可如下描述緊隨m th劑量測定之特定Asn位點處之具有脫醯胺化的MAB1之血清濃度：方程式11： C 脫醯胺化，m，劑量後 (m．τ)=P 脫醯胺化 [(m-1)．τ]C[(m-1)．τ]+…+P 脫醯胺化 (1．τ)C(1．τ)+P 脫醯胺化 (0)C(0)，其中P 脫醯胺化 (t)為論述於以上單劑量PK研究中之一級反應方程式。
因此，可如下描述緊接m th 劑量之前之特定Asn位點處的具有脫醯胺化之MAB之相對豐度：
可如下描述緊隨m th 劑量之特定Asn位點處之具有脫醯胺化的MAB1之相對豐度：
當m接近無窮大時，P 脫醯胺化，m，劑量前 及P 脫醯胺化，m，劑量後 接近如下描述之穩態含量：
由於對求和項之計算收斂，可如下簡化穩定狀態下之脫醯胺化之劑量前含量：
因此，可簡化穩定狀態下之脫醯胺化之劑量後含量：
藉由將方程式擬合至第一次給藥間隔內之實驗結果來解出A、B、α、β及k。使用Excel計算經模擬及經預測值且接著使用JMP繪圖。使用JMP計算個體之曝露(亦即，AUC)。
結果
活體內MAB1之轉譯後修飾之定量
在單劑量及多劑量猴PK研究兩者中評估具有各種PTM的MAB1變異體之活體內動力學。
接合於抗生蛋白鏈菌素磁性珠粒上之經生物素標記之抗人類Fc抗體被用於自猴血清樣本萃取MAB1。MAB1之親和純化回收率為>99.5%(圖1)，其表明親和純化方法可完全萃取原生MAB1及其PTM變異體兩者，從而確保每一PTM之相對PTM豐度之準確定量。
圖2A顯示對野生型Fc胰蛋白酶肽「DTLMISR」(SEQ ID NO：1)(下圖)及對應甲硫胺酸(Met)經氧化肽(上圖)之識別之例示性聯合MS光譜。圖2B顯示野生型肽(下圖)及對應Met經氧化肽(上圖)之經提取離子層析峰面積。
天冬醯胺(Asn)之脫醯胺化為mAb之高度保存片段可結晶(Fc)區中的常見PTM(Chelius等人，《分析化學》2005；77：6004-11；Sinha等人，《蛋白質科學：蛋白質協會之出版物(Protein Science：a publication of the Protein Society)》2009；18：1573-84)。在此研究中監測三個常見脫醯胺化位點：CH2功能域中之「NG」(Asn位點1)、CH3結構域之PENNY肽中之「NG」(Asn位點2)及「NN」(Asn位點3)。在此作品中，監測三個Asn之脫醯胺化位點：CH2功能域中之「NG」(Asn位點1)、CH3結構域中之「NG」(Asn2)及「NN」(Asn位點3)。在單劑量PK研究中，Asn位點1處之脫醯胺化之相對豐度在56天內幾乎以~0.2%之低含量保持不變(圖3A)。Asn位點2及Asn位點3處之脫醯胺化之相對豐度在56天內分別自~1%增加至25.5%及9.1%(圖3A)。脫醯胺化速率視初始胺基酸序列、蛋白質結構、pH、溫度及緩衝液組合物而定(Chelius等人，《分析化學》2005；77：6004-11；Sinha等人，《蛋白質科學：蛋白質協會之出版物(Protein Science：a publication of the Protein Society)》2009；18：1573-84；Kossiakoff，《科學(Science)》1988；240：191-4；Athmer等人，《生物化學期刊》2002；277：30502-7；Xie等人，《醫藥科學期刊》1999；88：8-13；Wearne等人，《蛋白質(Proteins)》1989；5：8-12；Capasso等人，《肽調研期刊：美國肽協會官方期刊(The Journal of Peptide Research：official journal of the American Peptide Society)》1999；54：377-82；Song Y等人，《科學期刊(Journal of Pharmaceutical Sciences)》 2001；90：141-56；Wakankar等人，《醫藥科學期刊》2006；95：2321-36；Zheng等人，《醫藥學國際期刊(International Journal of Pharmaceutics)》2006；308：46-51；Pace等人，《醫藥科學期刊》2013；102：1712-23)。Asn殘基，隨後初始胺基酸序列內之甘胺酸(Gly)或絲胺酸(Ser)特別易受脫醯胺化影響(Patel等人，《醫藥調研(Pharmaceutical Research)》1990；7：787-93；Stephenson等人，《生物化學期刊》1989；264：6164-70；等人，《美國美國國家科學院學報(Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America)》2001；98：944-9；Robinson等人，《肽研究期刊：美國肽協會官方期刊(The Journal of Peptide Research：official journal of the American Peptide Society)》2004；63：426-36)。「NG」及「NN」位點完全曝露於溶劑，且因此比CH2功能域中之「NG」位點(DeLano等人，《科學(Science 2000)》；287：1279-83)更易受脫醯胺化影響(DeLano等人，《科學(Science 2000)》2000；287：1279-83)。
可使用如先前建立之一級速率方程式來描述脫醯胺化速率(Geiger等人，《生物化學期刊》1987；262：785-94)。速率方程式可表示為：
，其中如材料及方法中所描述，P 脫醯胺化 (t)為脫醯胺化隨時間變化之比例；P 0為初始脫醯胺含量；k 脫醯胺化 為脫醯胺化速率常數。將方程式以非線性方式擬合至單劑量研究中之LC-MS量測之脫醯胺化含量以確定最佳擬合參數(圖3A及表1)。以非線性方式將Asn位點1、2及3之活體內脫醯胺化速率常數分別擬合為0.003278%第1天、0.5384%第1天及0.1566%第1天，同時R2分別為0.9946、0.9866及0.8941(表1)。
其中P 0為在第0天之初始脫醯胺含量；k 脫醯胺化 為脫醯胺化速率常數。
在多劑量PK研究中，Asn位點1處之脫醯胺化之脫醯胺化 在56天內之5個兩週一次劑量後幾乎以~0.5%之低含量保持不變(圖3B)。Asn位點2及3上之脫醯胺化之相對豐度在每一給藥間隔內積聚，但因為新投予之非脫醯胺化之MAB1的稀釋而在每一新劑量之後急劇下降(圖3B)。由於脫醯胺化之MAB1之積聚，脫醯胺化之劑量前及劑量後含量在每一劑量後逐漸增加。在第56天之第5次劑量之前的Asn位點2處之脫醯胺化之劑量前含量增加至14.2%，同時劑量後含量達至7.9%(圖3B)。在第56天之第5次劑量之前的Asn位點3處之脫醯胺化之劑量前含量增加至6.2%，同時劑量後含量達至3.6%(圖3B)。結果，Asn位點2及3處之脫醯胺化的相對豐度展現具有隨時間之增加趨勢的鋸齒圖案(圖3B)。圖3B亦表明，脫醯胺化之劑量前及劑量後含量兩者皆將在有限數目個劑量之後接近於穩態。為了預測脫胺作用之穩態含量，建構用於MAB1濃度之二室模型，且將論述於以下部分中。Met氧化為mAb中之另一常見PTM(Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78；Li等人，《mAb(mAbs)》2016：0；Li等人，《mAb(mAbs)》2016：0；Liu等人，《生物化學期刊》2011；286：11211-718)。已顯示Fc區中之Met氧化影響Fc受體結合(Pan等人，《蛋白質科學：蛋白質協會之出版物(Protein Science：a publication of the Protein Society)》2009；18：424-33)。在此作品中，評估Fc區之中三個常見Met氧化位點：CH2功能域中之Met位點1以及CH3結構域中之Met位點2及3。在研究中，Met位點1、2及3處之氧化之相對豐度在56天內分別以~8.0%、~2.0%及~5.0%的含量相對不變(圖4A)。在多劑量研究中，Met位點1處之氧化之含量在每一給藥間隔期間略微降低且在劑量之後略微，從而展現在~7.0%與~9.0%之間波動之鋸齒圖案。在多劑量研究中，Met位點2及3處之氧化之含量分別以~1.0%及4.0%的含量保持穩定(圖4B)。
在mAb之N端處之N端麩醯胺酸及麩胺酸傾向於經由化學或酶環化形成焦麩胺酸鹽。麩醯胺酸之轉化之麩胺酸之轉化發生得快得多(Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78；Li等人《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》mAbs 2016：0；Liu等人，《生物化學期刊(The Journal of biological chemistry)》2011；286：11211-718)。N端環化蛋白質對胺基肽酶之分解具有抗性，從而防止降解。儘管在人類血液中發現麩醯胺醯基環化酶(催化此轉 化之酶)(Schilling等人，《生物化學(Biological Chemistry)》2008；389：983-91)，但自活體內mAb之麩胺酸之焦麩胺酸鹽的形成主要為pH依賴性非酶反應，此係由於其在活體外PBS中具有相同速率常數(Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78；Liu等人，《生物化學期刊》2011；286：11211-7)。在單劑量研究中，N端焦麩胺酸鹽在56天內自0.7%增加至11.7%(圖5A)。使用非線性擬合至LC-MS量測之N端焦麩胺酸鹽含量，活體內N端焦麩胺酸鹽速率經測定為0.2201%第1天，同時R2為0.9970。在多劑量研究中，N端焦麩胺酸鹽形成類似於與Asn脫醯胺化相似之鋸齒圖案(圖5B)。焦麩胺酸鹽之含量在給藥間隔期間增加，但由於新投予之未經修飾MAB1之稀釋而在每一新劑量之後急劇地降低。在第56天之第5次劑量之前，焦麩胺酸鹽之含量升高至7.6%且接著在第5次劑量後下降至4.2%(圖5B)。
mAb重鏈之C端離胺酸殘基易受蛋白質表達期間之鹼性羧肽酶的移除(Dick等人，《生物技術及生物工程》2008；100：1132-43)。C端離胺酸之部分移除導致電荷不均勻性。投予之前之含有C端離胺酸的MAB1藥品之百分比為~2.0%。在單劑量及多劑量研究兩者中，C端離胺酸在每一劑量後於一天內被快速移除(圖6)。此等觀測結果與此前報告之研究一致。
Fc區處之N-連接糖基化為mAb之通常經監測PQA。表現mAb之中國倉鼠卵巢(CHO)上之N-連接糖型的主要結構通常由核雙觸角五碳醣結構與附著之一個或多個額外單糖構成。除了複雜雙觸角寡醣結構以外，亦可在表現CHO之抗體上觀測到高甘露糖糖型(例如，甘露糖5)。在單劑量研究中，主要糖型(岩藻糖基化複雜雙觸角)之相對豐度在56天內不變。然而，甘露糖5糖型之相對豐度在6週內自0.5%降低至不可偵測(圖6A)。此發現與高甘露糖糖型之較快血清清除率一致，此係由於高甘露糖受體介導之清除路徑(Goetze等人，《糖生物學》2011；21：949-59；Alessandri等人，《單抗》2012；4：509-20)。在多劑量研究中，甘露糖5之含量在每一給藥間隔期間降低，但因為摻混有新投予之具有較高含量之甘露糖5的MAB1而緊隨每一新劑量評估，展現處向下趨向之鋸齒圖案(圖6B)。在第5次劑量投予之前，甘露糖5之含量降低至0.1%。在第5次劑量投予之後， 甘露糖5之含量增加至0.4%。
模型化單劑量研究中之個體對MAB1 PQA之曝露
對個體對mAb品質屬性之曝露之定量評估有助於評估品質屬性對藥物安全性及功效之影響。如材料及方法部分中所述，可將具有特定PTM之mAb之活體內血清濃度描述為C PTM (t)=C(t)．P(t)。之曲線下面積(AUC)C PTM (t)對應於個體對具有PTM之mAb之曝露(Goetze等人，《單抗》2010；2：500-7)。在此作品中，將Asn位點2及3處之脫醯胺化以及N端焦麩胺酸鹽形成用作實例以表明單劑量研究中之個體對PQA的曝露之模型化。不對此論文中所論述之其他PTM中進行模型化，此係因為Met氧化不在活體內改變(圖4)；C端離胺酸在投予之後內數小時被快速移除(圖6)；Asn位點1處之甘露糖5及脫醯胺化之含量極低(小於0.5%，圖3及圖7)，使得此等PTM之模型化可能不具有實際意義。
MAB1血清濃度-時間變量曲線為方程式係利用二室藥物動力學模型方程式描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交一階常數時，A及B為雜交係數。使用ELISA檢定來確定來自單劑量PK研究之實驗MAB1血清濃度。藉由擬合至R2為0.9916之ELISA量測之MAB1血清濃度的非線性解出模型化方程式(圖8A)。模型化方程式中之參數之最佳擬合值顯示於表2中。由露C(t)之AUC表示之個體在56天內對總MAB1的曝為4302.0微克/毫升．天(圖8A)。
Asn位點2處之脫醯胺化之速率方程式在以上先前部分中經確定為P 脫醯胺化-Asn2(t)=1-(1-0.01143)．e -0.005394t 。具有Asn位點2處之脫醯胺化之MAB1的血清濃度-時間方程式C 脫醯胺化-Asn2(t)=C(t)．P 脫醯胺化-Asn2(t),C(t)及P 脫醯胺化-Asn2(t)可因此藉由之相乘來解出。C 脫醯胺化-Asn2(t)之曲線繪製於圖8B中。由C 脫醯胺化 (t)之AUC表示之由9.9%之個體在56天內總MAB1之曝露對組成的個體在56天內對具有Asn位點2的脫醯胺化之MAB1之曝露經計算為426.7微克/毫升．天(圖8B)。
類似地，Asn位點3處之脫醯胺化之速率方程式在以上先前部分中經確定為P 脫醯胺化-Asn3(t)=1-(1-0.008848)．e -0.001546t 。具有Asn位點3處之脫醯胺化之MAB1的血清濃度-時間方程式 C 脫醯胺化-Asn3(t)=C(t)．P 脫醯胺化-Asn3(t)，可因此藉由C(t)及P 脫醯胺化-Asn3(t)之相乘來解出。C 脫醯胺化-Asn3(t)之曲線繪製於圖8B中。由C 脫醯胺化-Asn3(t)之AUC表示之由3.5%之個體在56天內總MAB1之曝露對組成的個體在56天內對具有Asn位點3的脫醯胺化之MAB1之曝露經計算為152.5微克/毫升．天(圖8B)。
N端焦麩胺酸鹽形成之速率方程式在以上先前部分中經確定為P 焦麩胺酸鹽 (t)=1-(1-0.006868)．e -0.002201t 。具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1之血清濃度-時間方程式C 焦麩胺酸鹽 (t)=C(t)．P 焦麩胺酸鹽 (t)可因此藉由C(t)及P 焦麩胺酸鹽 (t)之相乘來解出。C 焦麩胺酸鹽 (t)之曲線繪製於圖8B中。由C 焦麩胺酸鹽 (t)之AUC表示之由4.5%之個體在56天內對總MAB1之曝露組成的個體在56天內對具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1的曝露為191.5微克/毫升．天(圖8B)。
模型化多劑量研究中之個體對MAB1 PQA之曝露
使用濃度-時間曲線下面積，可針對任何給定時間間隔計算個體對具有特定屬性(例如Asn脫醯胺化)之總MAB1及MAB1兩者之曝露。經預測及實驗總MAB1血清濃度-時間曲線之AUC表示個體在限定時間間隔內對總MAB1的曝露。基於經預測及實驗MAB1血清濃度-時間曲線(圖9A)，經預測及以實驗方式確定之個體在5次劑量(56天)過程內對總MAB1之曝露分別為5013微克/毫升．天及4789微克/毫升．天。經預測值與實驗值之間的差值為4.7%。類似地具有Asn位點2處之脫醯胺化之MAB1的經預測及以實驗方式確定之濃度-時間曲線之AUC表示個體在限定時間間隔內對具有Asn位點2處的脫醯胺化之MAB1之曝露。經預測及以實驗方式確定之個體在5次劑量(56天)過程內對Asn位點2-脫醯胺化之MAB1 的曝露分別為381.5微克/毫升．天及352.6微克/毫升．天(圖9A)。作為個體在56天內對總MAB1之曝露之分數的經預測及以實驗方式確定之個體對Asn位點2-脫醯胺化之MAB1的曝露分別為7.0%及7.9%，從而證實該等模型可精確預測實驗結果。
經預測及以實驗方式確定之個體在5次劑量(天)過程內對Asn位點3-脫醯胺化之MAB1之曝露分別為172.8微克/毫升．天及158.8微克/毫升．天(圖9A)。作為個體在56天跨度內對總MAB1之曝露之分數的經預測及以實驗方式確定之個體對Asn位點3-脫醯胺化之MAB1之曝露分別為3.4%及3.3%。
經預測及以實驗方式確定之個體在5次劑量(56天)過程內對具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1的曝露分別為218.5微克/毫升．天及231.8微克/毫升．天(圖10A)。作為個體在56天內對總MAB1之曝露之分數的經預測及以實驗方式確定之個體對具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1的曝露分別為4.3%及4.8%。
模型化多劑量研究中之MAB1 PQA之活體內相對豐度
亦可將該等模型用於在多劑量研究期間預測任何給定劑量之mAb之PQA的劑量前及劑量後含量，分別使用方程式12及方程式13。舉例而言，Asn位點2處之脫醯胺化之經預測劑量前及劑量後含量在第56天分別為14.2%及7.9%。經預測值與在第56天之劑量前及劑量後確定之LC/MS一致，所述值分別為15.0%及7.9%。脫醯胺化之所有其他經預測含量(圖9B，空心圓)均與實驗量測結果(圖9B，實心點)充分一致。多劑量研究中之劑量前及劑量後PTM含量將達至穩定狀態，此係由於劑量前及劑量後mAb血清濃度達至穩態濃度(圖9B)。PQA之經預測劑量前及劑量後穩態含量(亦即，平台含量)對應於多劑量研究中之此PQA在活體內的最大及最小含量。使用方程式16及方程式17，具有Asn位點2處之脫醯胺化之MAB1的劑量前及劑量後穩態含量分別經確定為17.9%及9.7%。
類似地，Asn位點3處之脫醯胺化之經預測劑量前及劑量後含量(圖9B，空心三角形)與實驗量測結果(圖9B，實心三角形)充分一致。具有Asn位點3處之脫醯胺化之MAB1的劑量前及劑量後穩態含量分別經 確定為8.4%及4.6%。
N端焦麩胺酸鹽之經預測劑量前及劑量後含量(圖10B，空心圓)與實驗量測結果(圖10B，實心點)充分一致。具有N端焦麩胺酸鹽之MAB1之劑量前及劑量後含量穩態分別經確定為8.1%及4.5%。
模型之實例應用
對活體內治療蛋白之PQA之定量評估係重要的，此係因為其有助於識別不另外在活體外識別之潛在具決定性品質屬性(CQA)，籍此影響產物風險評估及控制策略。可將論文中所描述之模型用於定量地評估諸多應用中之PQA。首先，可使用此等模型計算單劑量及多劑量方案中之PQA之及個體對PQA的曝露。在模型預測與實驗量測結果之間的充分一致已表明於以上部分中(圖8、9及10)。第二，亦可將該等模型用於藉由延伸給藥期(t)來預測個體之曝露且判定PQA之劑量前及劑量後穩態濃度/含量(圖9及10)，從而為臨床前及臨床研究提供見解。第三，可藉由調節模型化方程式中之(P 0)之初始含量而將用於該等模型評估由過程變化或批次變化性產生的PQA之初始含量之變化的影響若PQA為CDR修飾，則此具有特別意義。由於此作品中使用之MAB1不具有適用於此模型化應用之CDR修飾，因此將活體內脫醯胺化速率為2.5%每日之假設CDR脫醯胺化用作使用該等模型之實例，以評估CDR脫醯胺化之初始含量對個體對PQA之曝露的影響。若存在分別具有0%、10%及20%之假設CDR脫醯胺化之初始含量的三批次藥品，則可將此等批次在活體內隨時間之假設CDR脫醯胺化分別描述為P 脫醯胺化 (t)=1-(1-0)．e -0.025t ,P 脫醯胺化 (t)=1-(1-0.1)．e -0.025t 及P 脫醯胺化 (t)=1-(1-0.2)．e -0.025t 。使用上文所述之模型，分別由32.5%、38.8%及45.1%個體對總mAb之曝露組成之單劑量研究中的個體在56天內對具有0%、10%及20%初始脫醯胺化之假設CDR脫醯胺變體之曝露分別為1385微克/毫升．天、1653微克/毫升．天及1921微克/毫升．天(圖11A)。針對多劑量研究，分別由21.7%、29.5%及37.3%個體對總mAb之曝露組成之個體在5次劑量(56天)內對具有0%、10%及20%初始脫醯胺化的假設CDR脫醯胺變體之曝露分別為1086微克/毫升．天、1478微克/毫升．天及1871微克/毫升．天(圖11B)。因此，若過程控制產生±10%之此假設CDR脫醯胺化之初始含 量，則單劑量或多劑量研究中之個體在56天內對此CDR脫醯胺化之mAb的曝露變化約6-8%。由於模型化表明個體對此假設CDR脫醯胺化之曝露對PQA之初始含量不敏感，因此可拓寬PQA之可接受範圍以允許過程風險評估之調整。與CDR修飾對藉由效能檢定量測之效能作用組合，可在由過程控制或批次變化產生之初始CDR修飾變化時將模型化結果用於估計個體對有效藥物之曝露，從而提供產物風險評估之決定性資訊。
討論
與PBS或活體外血清中之mAb之靜態培育相比，導致mAb清除、消除及降解之循環血流之動態活體內環境對評估病患的PQA變化更為相關(Yin等人，《醫藥研究》2013；30：167-78)。因此，活體內PQA定量及模型化提供無法自活體外研究獲得之評估PQA之臨界性的決定性資訊。舉例而言，舉例而言，本文中呈現之此等結果(圖6)及先前研究(Li等人，《單抗》2016：0；Cai等人，《生物技術及生物工程》2011；108：404-12)已顯示活體內C端離胺酸在一天內被快速移除。類似地，已顯示三硫鍵在活體內快速轉換成二硫鍵(Li等人，mAb《單抗》2016：0)。本文中呈現之結果(圖4)及先前研究(Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0)表明甲硫胺酸氧化之含量通常在活體內投予後不受影響。因此，C端離胺酸移除、三硫鍵及甲硫胺酸氧化不大可能被視為CQA。相比而言，在單給藥方案及多給藥方案(圖3)及先前研究(Li等人，《單抗》2016：0；Li等人，《單抗》2016：0)中顯示脫醯胺化在活體內積聚。在CDR區發生且積聚之脫醯胺化可潛在地影響藥物功效(Yan等人，《醫藥科學期刊》2009；98：3509-21；Haberger等人，《單抗》2014；6：327-39)或引起脫靶結合。因此，如以上所證實，使用此論文中所描述之方程式之模型化活體內CDR脫醯胺化可定量地評估CDR脫醯胺化對個體的曝露之影響(圖11)。
在此工作中，將天冬醯胺脫醯胺化N端焦麩胺酸鹽形成用作代表性PTM以證實我們的模型之有效性。我們的模型亦可經應用於展現增加或降低趨勢之其他PTM。舉例而言，因為甘露糖5之酶基清除，因此藉由採用三階動力而將模型應用於評估甘露糖5清除。儘管甘露糖5之相對豐度隨時間降低至低於1.0%，但經預測值與實驗資料充分相符(資料未示 出)。可將我們的模型用於計算其他參數以評估多劑量研究中之給定屬性或PTM。此等參數包含積聚速率至穩定狀態、穩定狀態下之平均含量及穩定狀態下之PTM的變化程度。
概言之，發明人表徵治療性mAb(MAB1)之活體內PTM變化之常見物，且模型化單劑量及多劑量研究方案兩者之PTM之活體內行為以評估活體內PTM的影響。定位於MAB1之Fc區中之三個天冬醯胺殘基展現不同脫醯胺化速率。在MAB1之Fc區中之三個甲硫胺酸殘基處之氧化含量未隨時間在活體內顯示變化。N端焦麩胺酸鹽快速在活體內形成。C端離胺酸在一天內被完全移除。具有高甘露糖糖基化之MAB1揭露加速清除。我們使用兩個Asn脫醯胺化及N端焦麩胺酸鹽形成作為代表性PQA且建構計算PQA之血清濃度、個體對PQA之曝露及PQA單劑量及多劑量方案兩者之活體內相對豐度的模型化方程式。藉由量測結果驗證模型預測。因此，可將模型用於模擬單劑量及多劑量方案兩者中之活體內PQA進展、個體對PQA之曝露，從而提供用於治療性mAb中之臨界性評估PQA之定量方法。
本發明之範疇不受本文所述之特定實施例限制。實際上，根據前文描述及附圖，除本文所述之修改之外，本發明之各種修改對熟習此項技術者而言將變得顯而易見。此類修改意欲落入所附申請專利範圍之範疇內。
【序列表】
本申請案以引用方式併入序列表，所述序列表以在2018年12月18日創建且含有496個位元組之10421WO01-Sequence.txt以電腦可讀形式提交。
<110> 美商再生元製藥公司(Regeneron Pharmaceuticals,Inc.) XU,Xiaobin
<120> 治療性單株抗體之品質屬性的定量及模型化
<130> 10421WO01
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<151> 2018-02-01
<160> 1
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 7
<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> Met氧化肽
<400> 1 
Claims (14)
- 一種在向個體多次投予抗體之後測定抗體之產物品質屬性(PQA)之臨界性之方法，其包括：(a)在單次投予所述抗體之後預測具有PQA之所述抗體的活體內血清濃度，其係藉由：(i)使用針對所述PQA所測定之活體內速率常數來預測具有所述PQA之所述抗體的百分比；及(ii)用具有所述PQA之所述抗體之所述經預測百分比乘以所述抗體的總活體內濃度，從而確定具有所述PQA之所述抗體的濃度且藉此產生單次投予模型；(b)重覆步驟(a)至少一次且藉此產生一或多個額外單次投予模型；(c)疊加步驟(a)及(b)之單次投予模型且藉此產生多次投予模型；及(d)使用多次投予模型以測定所述PQA之臨界性，其中所述PQA包括所欲的轉譯後修飾。
- 如申請專利範圍第1項所述的方法，其中所述轉譯後修飾之所述活體內速率常數藉由以下方式測定：定量所述所欲轉譯後修飾隨時間變化之百分比，且將所述所欲轉譯後修飾之所述經定量百分比擬合於方程式，其中P PTM (t)為所述轉譯後修飾隨時間變化之比例；P 0為初始百分比轉譯後修飾；且k PTM 為所述轉譯後修飾速率常數。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括測定所述個體對具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體之曝露，其中確定所述個體對具有所述所欲轉譯後修飾之所述抗體之所述曝露包括測定具有所述所欲轉譯後修飾的所述抗體之濃度的曲線下面積(AUC)。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其中所述抗體之所述血清濃度利用二室藥物動力學模型方程式描述為C(t)=Ae -αt +Be -βt ，其中當α及β為雜交(hybrid)一階常數時，A及B分別為雜交係數。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其中所述抗體包括重組治療性單株抗體。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其中所述PQA可影響藥物穩定性、安全性及/或功效。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其中所述方法係用於預測或監測抗體之轉譯後修飾概況。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其中所述轉譯後修飾包括脫醯胺化、氧化、糖化、二硫化物形成、N端焦麩胺酸鹽形成、C端離胺酸移除及高甘露糖糖基化中之一種或多種。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括將轉譯後修飾變異體之藥物動力學濃度與比例之間的相關性模型化。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括定量地評估及預測所述個體對單劑量方案或多劑量方案中之代表性轉譯後修飾之曝露。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括預測在多劑量方案中觀測到之最大及最小轉譯後修飾含量。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括向所述個體投予所述抗體。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括預測具有所述所欲轉譯後修飾之抗體的劑量前活體內濃度。
- 如申請專利範圍第1項或第2項所述的方法，其進一步包括預測具有所述所欲轉譯後修飾之抗體的劑量後活體內濃度。
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