TWI820753B - 使用人類間葉幹細胞以實現細胞性及體液性免疫的方法 - Google Patents

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Abstract

本發明提供藉由投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群治療具有非缺血性擴張型心肌病之受試者的方法。本發明亦提供藉由投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群治療具有老化衰弱症狀之受試者的方法。

Description

使用人類間葉幹細胞以實現細胞性及體液性免疫的方法
本發明係關於投藥治療有效量之分離的同種異體間葉幹細胞群以在患有非缺血性擴張型心肌病的受試者中實現細胞性及體液性免疫的方法。本發明係亦關於投藥治療有效量之分離的同種異體間葉幹細胞群以在患有老化衰弱症狀的受試者中實現細胞性及體液性免疫的方法。
老化衰弱及炎性老化（ inflammaging ）
老化衰弱對個體的整體健康及幸福造成非常令人擔憂的問題，且其特徵為多系統生理失調的症候群。 老化衰弱是一種特徵為虛弱、低身體活動、緩慢動作表現（motor performance）、疲憊、及非自願性體重減輕的老年症候群。 參見Yao, X. et al., Clinics in Geriatric Medicine 27(1)：79-87 (2011)。此外，有許多顯示老化衰弱與炎症之間有直接相關性的研究。參見Hubbard, R.E. et al., Biogerontology 11(5)：635-641 (2010)。
免疫衰老的特徵在於稱為炎性老化的低度、慢性全身性發炎狀態。參見Franceshi, C. et al., Annals of the New York Academy of Sciences 908：244-254 (2000)。在衰老及老化衰弱中發現之此種增強的發炎狀態或慢性炎症導致免疫失調及先天性和後天性免疫的複雜重塑。在免疫衰老中，T細胞及B細胞族群複雜度（repertoire）是偏態的（skewed），導致再次表現CD45ra（TEMRA）之CD8 +T作用記憶型細胞及CD19 +晚期/失能（exhausted）記憶B細胞的增加、及CD8 +初始T細胞和機轉（switched）記憶B細胞（CD27 +）的減少。參見Blomberg, B.B. et al., Immunologic Research 57(1-3)：354-360 (2013)；Colonna-Romano, G. et al., Mechanisms of Ageing and Development 130(10)：681-690 (2009)；及Koch S. et al., Immunity & Ageing： 5:6 (2008)。此T細胞和B細胞族群複雜度的偏移導致不反應或較低效率的免疫狀態。眾所周知與年齡相關之全身性發炎（TNF-α、IL-6、IL-8、INFγ和CRP）的增加導致B細胞功能受損。
因為炎性老化在免疫改變與老年人中常見的若干疾病和病症（諸如老化衰弱）之間提供關聯性，所以炎性老化已受到相當大的關注。諸如細胞因子及急性期蛋白的循環發炎介質係隨著老化的增加而觀察到的低度炎症之標誌。這些前炎性细胞因子（例如TNF-α、IL-6）損害B細胞製造對外因性抗原和疫苗之保護性抗體的能力。此受損的B細胞反應係藉由減少的類型轉換重組（CSR，class switch recombination）加以測量，該類型轉換重組（CSR）係免疫球蛋白將同型自IgM轉換成第二同型（IgG、IgA、或IgE）的能力。免疫球蛋白同型轉換對於正確的免疫反應是至關重要的，因為作用功能在各同型中不同。CSR及體細胞超突變（SHM，somatic hypernutation中的關鍵參與者係酵素：由 Aicda基因編碼的活化誘導胞苷去胺酶（AID，activation-induced cytidine deaminase）。CSR及SHM中之AID的基本功能係在免疫球蛋白的開關和可變區中藉由將胞嘧啶轉變成尿嘧啶而引發DNA斷裂。由 Tcfe2a（E2A）基因編碼的E47係屬於類別I鹼性螺旋環螺旋（bHLH）蛋白質的轉錄因子，亦稱為E蛋白。在不表現E47的情況下，B細胞特異性轉錄因子EBF1（早期B細胞因子）及Pax-5（成對盒蛋白）係不加以表現。E47及Pax-5兩者在B細胞譜系及成熟B細胞功能的早期發育中皆是關鍵轉錄因子。參見Hagman J. et al., Immunity 27(1)：8-10 (2007)；Horcher M. et al., Immunity 14(6)：779-790 (2001)；Riley R.L. et al., Seminars in Immunology 17(5)：330-336 (2005)。Pax-5基因將表現在B細胞分化的所有階段、但不在晚期分化的B細胞中表現之B細胞譜系特異性活化蛋白（BSAP）加以編碼。Pax-5藉由抑制B譜系不當基因及活化B細胞特異性基因而控制B細胞定向（commitment），使得Pax-5成為B細胞的看守者，且係僅在自定向的原始B細胞至成熟的B細胞階段之B淋巴譜系中表現。B細胞特異性轉錄因子Pax-5不僅在早期B細胞發育及B細胞譜系定向中非常重要，且其亦涉入CSR。
在人類中亦已顯示製造之TNF-α的量：（1）取決於系統發炎的量及（2）損害將使用絲裂原或抗原刺激之相同B細胞的能力。參見Frasca, D. et al., Journal of Immunology 188(1)：279-286 (2012)。因此，由於若干原因，患有老化衰弱的受試者之免疫反應因而受損。 非缺血性擴張型心肌病（ NIDCM ）
非缺血性擴張型心肌病（NIDCM）係目前無法治癒的進行性疾病，通常好發於心臟移植。參見Felker, G.M. et al., The New England Journal of Medicine 342：1077-84 (2000)及Kirklin, J.K. et al., J. Heart Lung Transplant. 35：407-412 (2016)。NIDCM係一種以免疫失調為主作為潛在病因的疾病。參見Efthimiadis, I. et al., Hippokratia 15：335-342 (2011)及Meng, X. et al., Nature Reviews Cardiology 13：167-79 (2016)。針對心臟病基於細胞的治療係一種評估中之有前景的新治療策略，而主要挑戰及機會在於發展同種異體的治療。參見Patel, A.N. et al., Lancet 387：2412-21 (2016)；Assmus, B. et al., The New England Journal of Medicine 355：1222-32 (2006)；Hare, J.M. et al., J. Am. Coll. Cardiol. 54：2277-86 (2009)；Heldman, A.W. et al., JAMA 311：62-73 (2014)；Perin, E.C. et al., JAMA 307：1717-26 (2012)；Golpanian, S. et al., Physiol. Rev. 96：1127-68 (2016)；及Hare, J.M. et al., JAMA 308：2369-79 (2012)。 間葉幹細胞
間葉幹細胞係能夠遷移至損傷部位的多潛能性細胞，且亦藉由無法測出地表現主要組織相容性複合體類別II（MHC-II）分子、及以低位準表現MHC-I分子而加以免疫豁免。參見Le Blanc, K. et al., Lancet 371(9624)：1579-1586 (2008)及Klyushnenkova E. et al., J. Biomed. Sci. 12(1)：47-57 (2005)。就此而言，同種異體間葉幹細胞對治療及再生醫學而言有很大的希望，且已一再顯示在用於多種疾病過程的臨床試驗中具有高安全性及療效分佈。參見Hare, J.M. et al., Journal of the American College of Cardiology 54(24)：2277-2286 (2009)；Hare, J.M. et al., Tex. Heart Inst. J. 36(2)：145-147 (2009)；及Lalu, M.M. et al., PloS One 7(10)：e47559 (2012)。其亦已顯示在移植到患者體內後不會發生惡性轉變。參見Togel F. et al., American Journal of Physiology Renal Physiology 289(1)：F31-F42 (2005)。使用間葉幹細胞的治療已顯示改善嚴重的移植物抗宿主疾病、防止缺血性急性腎衰竭、有助於糖尿病中胰島和腎絲球的修復、逆轉猛爆性肝衰竭、使受損的肺組織再生、減弱敗血症、及逆向重建和改善心肌梗塞後的心臟功能。參見Le Blanc K. et al., Lancet 371(9624)：1579-1586 (2008)；Hare, J.M. et al., Journal of the American College of Cardiology 54(24)：2277-2286 (2009)；Togel F. et al., American Journal of Physiology Renal Physiology 289(1)：F31-F42 (2005)；Lee R.H. et al., PNAS 103(46)：17438-17442 (2006)；Parekkadan, B. et al., PloS One 2(9)：e941 (2007)；Ishizawa K. et al., FEBS Letters556(1-3)：249-252 (2004)；Nemeth K. et al., Nature Medicine 15(1)：42-49 (2009)；Iso Y. et al., Biochem. Biophys. Res. Comm. 354(3)：700-706 (2007)；Schuleri K.H. et al., Eur. Hearth J. 30(22)：2722-2732 (2009)；及Heldman A.W. et al., JAMA 311(1)：62-73 (2014)。此外，間葉幹細胞亦係用於組織工程之多細胞類型的潛在來源。參見Gong Z. et al., Methods in Mol. Bio. 698：279-294 (2011)；Price, A.P. et al., Tissue Engineering Part A 16(8)：2581-2591 (2010)；及Togel F. et al., Organogenesis 7(2)：96-100 (2011)。
間葉幹細胞具有免疫調節能力。其控制發炎及淋巴細胞和骨髓衍生免疫細胞之細胞因子的產生而沒有免疫抑制毒性的證據，且係低免疫原性的。參見Bernardo M.E. et al., Cell Stem Cell 13(4)：392-402 (2013)。
間葉幹細胞亦具有不僅分化成中胚層來源細胞且亦分化成內胚層和外胚層來源細胞的能力。參見Le Blanc K. et al., Exp. Hematol. 31(10)：890-896 (2003)。舉例而言，在體外，在氣道生長介質中培養的間葉幹細胞加以分化以表現肺特異性上皮標誌，例如表面活性蛋白C、克拉瑞（Clara）細胞分泌蛋白、及甲狀腺轉錄因子1。參見Jiang Y. et al., Nature 418(6893)：41-49 (2002)及Kotton D.N. et al., Development 128(24)：5181-5188 (2001)。
活體研究已顯示當人類間葉幹細胞移植至羊胎中時，該人類間葉幹細胞經歷位置特異性分化成各種細胞類型，包括肌細胞及心肌細胞。參見Airey J.A. et al., Circulation 109(11)：1401-1407 (2004)。在非免疫抑制的免疫活性宿主中，這些間葉幹細胞在移植後的多個組織中可持續長達13個月。其他使用囓齒動物、狗、山羊、及狒狒的活體研究類似地證明人類間葉幹細胞異種移植不引起受體中淋巴細胞增生或全身性異體抗體產生。參見Klyushnenkova E. et al., J. Biomed. Sci. 12(1)：47-57 (2005)；Aggarwal S. et al., Blood 105(4)：1815-22 (2005)；Augello A. et al., Arthritis and Rheumatism 56(4)：1175-86 (2007)；Bartholomew A. et al., Exp Hematol. 30(1)：42-48. (2002)；Dokic J. et al., European Journal of Immunology 43(7)：1862-72 (2013)；Gerdoni E. et al., Annals of Neurology 61(3)：219-227 (2007)；Lee S.H. et al., Respiratory Research 11：16 (2010)；Urban V.S. et al., Stem Cells 26(1)：244-253 (2008)；Yang H. et al., PloS One 8(7)：e69129 (2013)；Zappia E. et al., Blood 106(5)：1755-1761 (2005)；Bonfield T.L. et al., American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology 299(6)：L760-70 (2010)；Glenn J.D. et al., World Journal of Stem Cells. 6(5)：526-39 (2014)；Guo K. et al., Frontiers in Cell and Developmental Biology 2：8 (2014)；Puissant B. et al., British Journal of Haematology 129(1)：118-129 (2005)；及Sun L. et al., Stem Cells 27(6)：1421-32 (2009)。總體而言，這些同種異體安全性及療效的重複發現鞏固使用間葉幹細胞作為同種移植用於成功組織再生的想法。
然而，儘管作為安全的治療劑，但間葉幹細胞在文獻中係被報導對抗體產生及B細胞的增生及成熟施加抑制效果。參見Uccelli, A. et al., Trends in Immunology 28(5)：219-226 (2007)。間葉幹細胞亦被報導抑制抗原呈現細胞的產生及功能。參見Hoogduijn M.J. et al., Int. Immunopharmacology 10(12)：1496-1500 (2010)。最後，間葉幹細胞係被報導抑制CD4 +和CD8 +T細胞增生。參見Ghannam S. et al., Stem Cell Res. & Ther. 1：2 (2010)。最後，一些臨床前數據顯示：與投藥自體間葉幹細胞相比，投藥同種異體間葉幹細胞有較高的免疫廓清風險。參見例如Huang, X.P. et al., Circulation 122：2419-29 (2010)。
出乎意料地，儘管報導指出間葉幹細胞對免疫系統方面具有抑制效果，但本發明人發現一種治療受試者之非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。本發明人亦發現一種治療受試者之老化脆弱症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。本發明人識別對非缺血性擴張型心肌病及老化脆弱具特異性的幾個生物標誌，包含但不限於失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清中的TNF-α濃度。
本發明的一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目相比，該受試者血清樣本中失能B細胞的數目減少至少25%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中機轉記憶細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目相比，該受試者血清樣本中機轉記憶B細胞的數目增加至少100%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，該受試者血清樣本中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目減少至少30%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目相比，該受試者血清樣本中早期活化T細胞的數目減少至少30%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目相比，該受試者血清樣本中慢性活化T細胞的數目減少至少70%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目相比，該受試者血清樣本中Temra細胞的數目減少至少40%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中的TNF-α濃度相比，該受試者血清樣本中的TNF-α濃度減少至少80%，從而治療該非缺血性擴張型心肌病。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目相比，該受試者血清樣本中失能B細胞的數目減少至少10%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中機轉記憶細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目相比，該受試者血清樣本中機轉記憶B細胞的數目增加至少75%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，該受試者血清樣本中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目減少至少60%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目相比，該受試者血清樣本中早期活化T細胞的數目減少至少30%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目相比，該受試者血清樣本中慢性活化T細胞的數目減少至少75%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目相比，該受試者血清樣本中Temra細胞的數目減少至少20%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中的TNF-α濃度相比，該受試者血清樣本中的TNF-α濃度減少至少50%，從而治療該老化衰弱之症狀。
本發明的另一實施態樣係關於一種治療受試者中老化衰弱之症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群，其中，與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前該受試者血清樣本中之CD4 +：CD8 +T細胞的比率相比，該受試者血清樣本中之CD4 +：CD8 +T細胞的比率增加至少100%，從而治療該老化衰弱之症狀。
在本發明的一實施例中，受試者是人類。在本發明的另一實施例中，受試者係表現炎性老化的人類。
在本發明的一實施例中，間葉幹細胞係源自骨髓的間葉幹細胞。在本發明的一實施例中，間葉幹細胞不表現STRO-1。在本發明的另一實施例中，間葉幹細胞不表現CD45。在本發明的另一實施例中，間葉幹細胞不表現纖維母細胞表面標誌、或不具有纖維母細胞形態。在本發明的另一實施例中，間葉幹細胞係非基因操縱的。
在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以單一劑量投藥。在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以多劑量（例如二或更多劑量）投藥。在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以至少每年投藥一次。
在一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係全身性地投藥。在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係藉由輸注或直接注射投藥。在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係經靜脈內、動脈內、肌內、腹腔內、皮下、皮內、口服、心內膜、或鼻內投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係經靜脈內投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係經肌內投藥。
在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約20×10 6的間葉幹細胞之用量投藥。在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約100×10 6的間葉幹細胞之用量投藥。在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約200×10 6的間葉幹細胞之用量投藥。
在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係自人類供體獲得，且其中在對受試者投藥分離的同種異體間葉幹細胞群之前，不採用人類供體對受試者的MHC匹配步驟。
本發明的另一實施態樣係關於一種評估受試者之細胞性及體液性免疫狀態的方法，包含： (1)  自受試者獲得血清樣本，該受試者係基於該受試者先前需治療非缺血性擴張型心肌病且該受試者已投藥初始劑量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群之判定的評估加以選擇； (2)  藉由將自該受試者獲得的該血清樣本導入測定儀器而執行用以偵測非缺血性擴張型心肌病之標誌的一或更多測定，該標誌係選自失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、及血清TNF-α的群組，該測定儀器（i）使該血清樣本與對於所測定之生物標誌之偵測特異性接合的一或更多抗體接觸，及（ii）針對個別抗體產生指示所測定之各生物標誌之接合的一或更多測定結果，以提供一或更多測定結果； (3)  使由該測定儀器產生的測定結果與該受試者的免疫狀態相關聯，其中，該相關聯步驟包含基於該測定結果對該受試者確定免疫狀態之一或更多未來變化的可能性；及 (4)  基於該受試者被分配之個體的預定亞群而治療該受試者，其中，該治療包含投藥一或更多額外劑量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。
本發明的另一實施態樣係關於一種評估受試者之細胞性及體液性免疫狀態的方法，包含： (1)  自受試者獲得血清樣本，該受試者係基於該受試者先前需治療老化衰弱之症狀且該受試者已投藥初始劑量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群之判定的評估加以選擇； (2)  藉由將自該受試者獲得的該血清樣本導入測定儀器而執行用於偵測老化衰弱之標誌的一或更多測定，該標誌係選自失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清TNF-α的群組，該測定儀器（i）使該血清樣本與對於所測定之生物標誌之偵測特異性接合的一或更多抗體接觸，及（ii）針對個別抗體產生指示所測定之各生物標誌之接合的一或更多測定結果，以提供一或更多測定結果； (3)  使由該測定儀器產生的測定結果與該受試者的免疫狀態相關聯，其中，該相關聯步驟包含基於該測定結果對該受試者確定免疫狀態之一或更多未來變化的可能性；及 (4)  基於該受試者被分配之個體的預定亞群而治療該受試者，其中，該治療包含投藥一或更多額外劑量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。
在本發明的一實施例中，免疫狀態中之一或更多未來變化包含下列其中一或更多者：失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）之數目的增加、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）之數目的減少、表現細胞內TNF-α的B細胞之數目的增加、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）之數目的增加、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）之數目的增加、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）之數目的增加、CD4 +：CD8 +T細胞比率降低、及血清TNF-α增加。
本發明的另一實施態樣係關於一種體外判定治療受試者中非缺血性擴張型心肌病之療效的方法，包含：在對該受試者投藥分離的同種異體人類間葉幹細胞群之前及之後，判定自該受試者獲得之選自由失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、及血清中TNF-α濃度所組成之群組之一或更多生物標誌的位準；及將在分離的人類間葉幹細胞群投藥之前及之後獲得之在血清中之該一或更多生物標誌的位準加以比較，其中，治療係有效的，若： (1)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目相比，該失能B細胞的數目減少至少25%， (2)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目相比，該機轉記憶B細胞的數目增加至少100%， (3)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，該表現細胞內TNF-α之B細胞的數目減少至少30%， (4)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目相比，該早期活化T細胞的數目減少至少30%， (5)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目相比，該慢性活化T細胞的數目減少至少70%， (6)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目相比，該Temra細胞的數目減少至少40%，及/或 (7)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之該受試者血清樣本中的TNF-α濃度相比，該受試者血清樣本中的TNF-α濃度降低至少80%。
本發明的另一實施態樣係關於一種體外判定治療受試者中老化衰弱症狀之療效的方法，包含：在對該受試者投藥分離的同種異體人類間葉幹細胞群之前及之後，判定自該受試者獲得之選自由失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清中TNF-α濃度所組成之群組之一或更多生物標誌的位準；及將在分離的人類間葉幹細胞群投藥之前及之後獲得之在血清中之該一或更多生物標誌的位準加以比較，其中，治療係有效的，若： (1)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目相比，該失能B細胞的數目減少至少10%， (2)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目相比，該機轉記憶B細胞的數目增加至少75%， (3)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，該表現細胞內TNF-α之B細胞的數目減少至少60%， (4)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目相比，該早期活化T細胞的數目減少至少30%， (5)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目相比，該慢性活化T細胞的數目減少至少75%， (6)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目相比，該Temra細胞的數目減少至少20%， (7)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之該受試者血清樣本中的TNF-α濃度相比，該受試者血清樣本中的TNF-α濃度降低至少50%，及/或 (8)  與該分離的同種異體人類間葉幹細胞群投藥之前之該受試者血清樣本中的CD4 +：CD8 +T細胞比率，該受試者血清樣本中的CD4 +：CD8 +T細胞比率增加至少100%。
本發明的另一實施態樣係關於為了判定針對非缺血性擴張型心肌病的治療是否有效，於體外使用失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、及血清中的TNF-α濃度。
本發明的另一實施態樣係關於為了判定針對老化衰弱的治療是否有效，於體外使用失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清中的TNF-α濃度。
在某些實施例中，本發明係針對治療受試者之非缺血性擴張型心肌病的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。該等示例顯示活體投藥分離的同種異體人類間葉幹細胞群導致受試者中機轉記憶B細胞的百分比增加及失能B細胞的減少。該等示例亦顯示分離的同種異體人類間葉幹細胞的活體投藥導致受試者中CD4 +：CD8 +T細胞比率的改善。此外，如該等示例所示，表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、及血清中的TNF-α濃度在已接受輸注同種異體人類間葉幹細胞的受試者中係加以降低。從這些意想不到的結果，本發明人確定分離之同種異體人類間葉幹細胞有利地改變通常在慢性發炎中升高的幾種免疫標誌。免疫活性的恢復在較高共病傳染病風險的受試者中具有臨床相關性。
在其他實施例中，本發明係針對治療受試者之老化衰弱症狀的方法，包含對其中有需要的受試者投藥治療有效量之分離的同種異體人類間葉幹細胞群。該等示例顯示活體投藥分離的同種異體人類間葉幹細胞群導致受試者中機轉記憶B細胞的百分比增加及失能B細胞的減少。該等示例亦顯示分離的同種異體人類間葉幹細胞的活體投藥導致受試者中CD4 +：CD8 +T細胞比率的改善。此外，如該等示例所示，表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、及血清中的TNF-α濃度在已接受輸注同種異體人類間葉幹細胞的受試者中係加以降低。從這些意想不到的結果，本發明人判定分離之同種異體人類間葉幹細胞係有效減少一種普遍在老化衰弱中的特徵--炎性老化。 定義
實施例可在不呈現理論層面的情況下實施。此外，理解層面係在理解實施例不受任何所呈現之理論限制的情況下提出。
除非另外定義，否則本文使用的所有術語（包含技術及科學術語）與在此技術領域中具有通常技術者一般所理解具有相同的含義。應進一步理解諸如常用字典中定義的那些術語應被解釋為具有與其在相關領域背景中之含義一致的含義，且不被解釋為理想化或過度形式化的意義，除非本文明確如此定義。
本文使用的術語僅用於描述特定實施例的目的，且係非意圖為限制性的。如本文所使用，除非上下文另外清楚地指出，否則單數形式「一」及「該」意圖亦包含複數形式。此外，就實施方式章節及/或發明申請專利範圍中使用的術語「包含」、「具有」或其變形程度而言，此等術語係意圖以類似於術語「包含」的方式為包容性的。
除非本文另外指出，否則本文數值範圍的記載僅意圖作為分別意指落入該範圍內之各單獨數值的速記方法，且各單獨數值係被包含在說明書中，彷彿其係單獨記載於此。除非另外聲明，否則本文提供的任何及所有示例或示例性語言（例如「諸如」）的使用僅意圖較佳地闡明本發明，且不對本發明的範圍造成限制。說明書中的任何語言皆不應被理解為將任何未要求保護的要件指示為實施本發明所必需的。
術語「約」或「大約」意指在由此技術領域中具有通常技術者判定之特定數值的可接受誤差範圍內，其將部分取決於該數值係如何加以測量或判定，即測量系統的限制。舉例而言，根據在此技術領域的實踐，「約」可表示在1或多於1標準差內。或者，「約」可表示參考值的±10%的範圍。 劑量、持續時間、及受試者
「治療有效量」意指刺激B細胞或T細胞相依性免疫反應的量。此種反應的特徵在於引起顯著IgG位準及調理素活性的能力。對受試者投藥之劑量及用量數（例如單劑量或多劑量）將根據諸多因素而變化，包含投藥途徑、患者狀況和特徵（性別、年齡、體重、健康、體型）、症狀程度、並行治療、治療頻率及期望效果等。
在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係投藥作為單一劑量。在另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以多劑量投藥，例如二或更多劑量。在其他實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係至少每年投藥一次。
在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群之投藥係加以重複，諸如在該分離的同種異體間葉幹細胞群之第一次投藥之後的至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、或18個月加以重複，或在該分離的同種異體間葉幹細胞群之第一次投藥之後的2~4、2~6、2~8、2~10、3~4、3~6、3~8、3~10、4~6、4~8、4~10、6~8、6~10、6~12、或12~18個月之間加以重複。
在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約1×10 6、2×10 6、5×10 6、10×10 6、20×10 6、30×10 6、40×10 6、50×10 6、60×10 6、70×10 6、80×10 6、90×10 6、100×10 6、110×10 6、120×10 6、130×10 6、140×10 6、150×10 6、160×10 6、170×10 6、180×10 6、190×10 6、200×10 6、300×10 6、400×10 6、500×10 6、或10×10 7的間葉幹細胞之用量加以投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約20×10 6的間葉幹細胞之用量加以投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約100x10 6的間葉幹細胞之用量加以投藥。在又進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約200×10 6的間葉幹細胞之用量加以投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係以約1~400×10 6、10~400×10 6、100~400×10 6、20~200×10 6、20~400×10 6、0.1~5×10 6、0.1~10×10 6、0.1~100×10 6、1~50×10 6、1~100×10 6、0.01~10×10 6、或0.01~100×10 6的間葉幹細胞之用量加以投藥。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以增加受試者中CD4 +：CD8 +T細胞的比率，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之CD4 +：CD8 +T細胞的比率相比，使該比率增加為至少二、三、四、五、或六倍，即，增加CD4 +：CD8 +T細胞的比率至少100%、200%、300%、400%、或500%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以增加受試者中機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞的數目相比，使該數目增加為至少二、三、四、或五倍，即，增加機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目至少100%、200%、300%、或400%。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞的數目相比，此B細胞的數目增加至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、或95%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以減少受試者中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之此B細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一、三分之一、四分之一、五分之一、或六分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，此B細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、50%、或60%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以減少受試者中失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目，諸如：與投藥分離的同種異體間葉幹細胞群之前之失能B細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之失能B細胞的數目相比，此B細胞的數目減少至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、或50%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以減少受試者中早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞的數目相比，此T細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、或50%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以減少受試者中慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞的數目相比，此T細胞的數目減少至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、或95%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以減少受試者中Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞的數目相比，此Temra細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、或50%。
在一些實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群的治療有效量係足以降低受試者血清樣本中的TNF-α濃度，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前的TNF-α濃度相比，使該TNF-α濃度降低為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前的TNF-α濃度相比，該TNF-α濃度降低至少10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、或90%。
本發明的其他實施態樣包含評估受試者之細胞性及體液性免疫狀態以判定受試者是否將受益於分離的同種異體間葉幹細胞群之投藥、及基於生物標誌數據治療受試者的預定亞群之方法。舉例而言，可進行一或更多測定以偵測選自失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、及血清TNF-α的群組之非缺血性擴張型心肌病的標誌。類似地，可進行一或更多測定以偵測選自失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）、表現細胞內TNF-α的B細胞、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清TNF-α的群組之老化衰弱的標誌。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以增加受試者中CD4 +：CD8 +T細胞的比率時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之CD4 +：CD8 +T細胞的比率相比，使該比率增加為至少二、三、四、五、或六倍，即，增加CD4 +：CD8 +T細胞的比率至少100%、200%、300%、400%、或500%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以增加受試者中機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞的數目相比，使該數目增加為至少二、三、四、或五倍，即，增加機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的數目至少100%、200%、300%、或400%。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之機轉記憶B細胞的數目相比，此B細胞的數目增加至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、或95%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以減少受試者中表現細胞內TNF-α之B細胞的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之此種B細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一、三分之一、四分之一、五分之一、或六分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之表現細胞內TNF-α之B細胞的數目相比，此B細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、50%、或60%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以減少受試者中失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之失能B細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之失能B細胞的數目相比，此B細胞的數目減少至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、或50%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以減少受試者中早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與藥分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之早期活化T細胞的數目相比，此T細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、或50%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以減少受試者中慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之慢性活化T細胞的數目相比，此T細胞的數目減少至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、或95%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以減少受試者中Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的數目時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞的數目相比，使該數目減少為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前之Temra細胞的數目相比，此Temra細胞的數目減少至少10%、20%、30%、40%、或50%。
在一些實施例中，當分離的同種異體間葉幹細胞群係足以降低受試者血清樣本中的TNF-α濃度時，證明治療係有效的，諸如：與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前的TNF-α濃度相比，使該TNF-α濃度降低為至少二分之一或三分之一。在其他實施例中，與分離的同種異體間葉幹細胞群投藥之前的TNF-α濃度相比，該TNF-α濃度降低至少10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、或90%。
「投藥」組成物可藉由口服投藥、注射、輸注、非腸道、靜脈內、黏膜、舌下、肌內、皮內、鼻內、腹腔內、動脈內、皮下吸收、或藉由與其他已知技術結合的任何方法實現。在本發明的一個實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係全身性地投藥。在本發明的另一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係藉由輸注或直接注射投藥。在本發明的一實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係經肌內、靜脈內、動脈內、腹腔內、皮下、皮內、口服、心內膜、或鼻內投藥。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係肌肉注射。在進一步的實施例中，分離的同種異體間葉幹細胞群係靜脈注射。
如本文使用的術語「受試者」包含但不限於人類和非人類脊椎動物，諸如野生、家養、及農場動物。在一些實施例中，該術語意指人類，諸如≥65歲的年長者、或60～95歲的年長者。在一些實施例中，人類受試者表現老化衰弱的症狀。在一些實施例中，人類受試者表現炎性老化。
術語「同種異體」意指與成為「受體宿主」的動物係相同動物物種但在一或更多基因座上基因不同的細胞。此通常應用於從一動物移植至相同物種之另一非完全相同之動物的細胞。
如本文所使用，術語「其中有需要者」表示受試者已被確認需要特定的方法或治療。在一些實施例中，可藉由任何診斷手段加以確認。在本文描述之方法及治療的任一者中，受試者可為對其有需要者。在一些實施例中，受試者係在流行特定疾病、病症的環境中或將前往流行特定疾病、病症的環境。
細胞在本文係稱為對於某些標誌係陽性的或陰性的。舉例而言，細胞對於CD45可為陰性的，其亦可被稱為CD45 -。上標符號「-」意指對於與該上標關聯之該標誌為陰性的細胞。相反地，具有「+」的標誌意指對於該標誌為陽性的細胞。舉例而言，被稱為「CD8 +」的細胞對於CD8是陽性的。「+」亦可用以意指標誌係陽性的。「-」亦可用以意指標誌係陰性的。
如本文所使用，術語「幹細胞」意指在某些條件下具有長時間自我繁殖能力、或在成人幹細胞的情況下在整個有機體的生命期間具有自我繁殖能力之來自胚胎、胎兒、或成人的細胞。其亦可產生組成人體組織及器官的特化細胞。
間葉幹細胞係在尤其是骨髓、血液、真皮、及骨膜中發現之能夠取決於來自諸如細胞因子的生物活性因子之諸多影響而分化成間葉或結締組織（即，支撐特定構成部分之身體的組織；特別是脂肪、骨、軟骨、彈性、及纖維結締組織）之任何特定類型種類的成形性多功能芽細胞。
分離及/或純化間葉幹細胞的某些方法已在本文描述且在此技術領域係已知的。在一些實施例中，間葉幹細胞係分離自成年人的骨髓。在一些實施例中，細胞通過密度梯度以消除不期望的細胞類型。細胞可在適當的介質中平盤接種（plate）及培養。在一些實施例中，將細胞培養至少一天或約三至約七天，並移除非貼壁細胞。貼壁細胞可接著平盤接種及擴張。
用於分離及培養幹細胞的其他方法亦為已知的。胎盤係間葉幹細胞之極佳可輕易獲得的來源。此外，間葉幹細胞可為源自脂肪組織，且骨髓間質細胞係推測存在於其他組織中。雖然在可成人幹細胞可自其獲得的器官中有顯著的定性及定量差異，但細胞間的初始差異可相對淺顯的且藉由其表現之相似的可塑性範圍而加以平衡。
均質的人類間葉幹細胞組成物係提供作為所有間葉細胞譜系的先驅。間葉幹細胞係藉由使用獨特單株抗體識別的特定細胞表面標誌加以識別。均質間葉幹細胞組成物係藉由沒有與造血或分化間葉細胞相關標記之貼壁骨髓或骨膜細胞的陽性選擇而獲得。這些分離的間葉細胞群顯示僅與間葉幹細胞相關的表位（epitopic）特徵，具有在不分化的情況下在培養物中再生的能力，且在體外誘導或活體置放於發炎部位時具有分化為特定間葉譜系的能力。
為了獲得用於本文所揭示之組成物、方法、及套組的人類間葉幹細胞，將多功能性間葉幹細胞與骨髓或其他間葉幹細胞來源中的其他細胞分離。骨髓細胞可自髂嵴、股骨、脛骨、脊柱、肋骨、或其他髓質腔獲得。人類間葉幹細胞的其他空間包含胚胎卵黃囊、胎盤、臍帶、胎兒和青少年皮膚、及血液。
在一些實施例中，人類間葉幹細胞係藉由不存在標誌而識別。舉例而言，用於本發明的人類間葉幹細胞包含對STRO-1呈陰性及/或對CD45呈陰性的人類間葉幹細胞。類似地，用於本發明的人類間葉幹細胞包含不表現纖維母細胞表面標誌、或不具有纖維母細胞形態的人類間葉幹細胞。 增強免疫反應的方法
如上所述，本發明係針對增強受試者之細胞性或體液性免疫反應的方法，包含對受試者投藥治療有效量之分離的人類間葉幹細胞群。在本發明的一些實施例中，間葉幹細胞係非基因操縱的。在本發明的一些實施例中，間葉幹細胞係自人類供體獲得，且其中在分離的人類間葉幹細胞群投藥之前，不採用人類供體對受試者的MHC匹配步驟。
用於本發明的組成物可使用任何合適的方法配製。使用標準藥學上可接受之載體及/或賦形劑之細胞的配製可使用製藥領域的常規方法執行。製劑的確切性質將取決於幾個因素，包含待投藥的細胞及期望的投藥途徑。製劑的合適類型係在Remington's Pharmaceutical Sciences, 19 thEdition, Mack Publishing Company, Eastern Pennsylvania, USA中充分地描述。
組成物可與生理上可接受的載體或稀釋劑一起製備。通常，這樣的組成物係製備成細胞的液體懸浮液。該等細胞可與藥學上可接受且與活性成分相容的賦形劑混合。合適的賦形劑係例如水、鹽水、葡萄糖、甘油等及其組合。
此外，若需要，本發明的藥物組成物可含有少量輔助物質，諸如增加效果的濕潤或乳化劑、pH緩衝劑、及/或佐劑。在本發明的一實施例中，佐劑包含人血清白蛋白（HSA）。
一種合適的載體或稀釋劑係PlasmaLyte A™。其係用於靜脈投藥的無菌、非致熱性等張溶液。每100 mL含有526 mg氯化鈉USP（NaCl）、502 mg葡萄糖酸鈉（C 6H 11NaO 7）、368 mg三水醋酸鈉USP（C 2H 3NaO 2·3H 2O）、37 mg氯化鉀USP（KCl）、及30 mg氯化鎂USP（MgCl 2·6H 2O）。其不含抗菌劑。pH係使用氫氧化鈉調整。 pH係7.4（6.5至8.0）。
在本發明的一實施例中，間葉幹細胞係非基因操縱的。在本發明的另一實施例中，間葉幹細胞係凍存的（cryopreserved）。舉例而言，間葉幹細胞可懸浮在由添加2%HSA和5%DMSO的Hespan®（在0.9%氯化鈉中的6%羥乙基澱粉）所組成的超冷保護劑（cryopreservation）中，且接著等分放入凍存容器中以放進汽相氮冷凍機中。在另一實施例中，間葉幹細胞可以添加1%HSA的PlasmaLyte A™加以提供。 示例 示例 1 慢性非缺血性擴張型心肌病的治療
簡言之，將37名患者隨機分組，以1：1的比率接受同種異體或自體人類間葉幹細胞。患者係於2011年12月及2015年7月之間在邁阿密大學醫院招募。患者（年齡：55.8±11.2；32%為女性）藉由NOGA導管在十個左心室部位經由心內膜幹細胞注射（TESI，transendocardial stem cell injection）而接受人類間葉幹細胞（1億個）。受治療的患者在基線、30天、3、6、及12個月針對免疫生物標誌加以評估。 患者群
患者資格係在具有EF小於40%且左心室舒張末期直徑男性受試者大於5.9 cm及女性受試者大於5.6 cm或左心室舒張末期體積指數＞125 mL/m 2之NIDCM的診斷確診之後確定。37名患者係以1：1的比率隨機分配自體人類間葉幹細胞（hMSC）或同種異體hMSC。34名患者接受研究注射；16及18名患者分別接受自體hMSC及同種異體hMSC。三名患者未接受研究注射。一位患者在治療前撤回同意。另一名患者被招募，但由於自動植入式心臟整流去顫器置放而未接受治療（n=1），而1名患者在治療前死亡（n=1）。注射受試者的平均年齡為55.8±11.2歲，29%為女性，且35%為西班牙裔。TESI前之NIDCM診斷的平均年數對於接受同種異體的患者為6.1±6.2年，而對於接受自體的患者為6.9±7.3年（組間的p=0.5）。50%的患者有NYHA II級症狀，平均基線整體EF為26.5±9.64%，平均6MWT為422±86.8 M，且中位基線MLHFQ分數為36（IQR 18.0、64.0）。 研究程序及時間表
基線評估包含化學和血液學實驗室、心臟超音波圖、及胸部、腹部、和骨盆電腦斷層造影掃描。 用於細胞治療的人類間葉幹細胞（ hMSC ）
所有同種異體及自體人類間葉幹細胞係皆在邁阿密大學ISCI製造。參見例如Golpanian, S. et al., Physiol. Rev. 96：1127-68 (2016)及Mushtaq, M. et al., J. Cardio. Trans. Res. 7：769-80 (2014)。同種異體人類間葉幹細胞係源自平均年齡為25.4±3.3歲的高加索男性供體，且在TESI時存活率為80至90%。自體hMSC係來自平均年齡為58.0±9.9歲的11名男性、及平均年齡55.0±12.4歲的6名女性。 心內膜幹細胞注射
注射部位係加以選擇以優先考慮TESI程序的安全性及在整個可達心肌區域分佈部位。部位選擇的考慮包含避免心室尖端、及在針延伸之前導管穩定性的最佳化。 免疫監控
計算之群體反應性抗體（cPRA，calculated panel reactive antibodies）係在基線及在六個月時使用Luminex 200測量。血清TNF-α係使用人類TNF-α ELISA高靈敏度套組（eBiosciences）測量。淋巴細胞係針對T細胞活化標誌、晚期/失能T細胞、B細胞子集（機轉記憶及晚期/失能B細胞）、及藉由B細胞的TNF-α加以染色。所有樣本係使用LSR-Fortessa-HTS分析儀（BD Pharmigen）獲得及使用FlowJo V10軟體分析，即，所有淋巴細胞群係藉由流動式細胞測量術評估且表示為受門控者中之百分比（在CD19 +上受門控的B細胞參數及在CD3 +上受門控的T細胞參數）。
cPRA結果顯示67%的同種異體接受者及92%的自體接受者對低cPRA（0-20% cPRA）沒有反應。27%的同種異體接受者及8%的自體接受者具有中等程度的cPRA（21-79% cPRA），且接受同種異體MSC的一受試者（7%）具有高cPRA反應（+80% cPRA）。
在兩組中，升高的TNF-α基線位準從基線至6個月降低（同種異體：-10.6±1.6 pg/ml，p ＜0.0001；自體：-6.8±1.4 pg/ml，p＜0.0001，表1；組間的p=0.05）。在兩組中，Temra T細胞（失能T細胞表型）均減少，其中在同種異體中有較大的下降（同種異體：-15.9±5.4%，p＜0.0001；自體：-9.3±3.3%，p＜0.0001，表1；組間的p= 0.0111；表1）。在基線之機轉記憶B細胞抑制%（針對抗體反應的預測性生物標誌）在兩組中在6個月時均顯著增加，其中在同種異體中有更大的改善（同種異體：+10.2±4.9%，p＜0.0001相對於自體：+4.3 ±3.9%，p=0.0014，組間的p＜0.0001；表1）。最後，B23細胞中的細胞內TNF-α表現在兩組中在6個月時相對於基線係亦減少（同種異體：-11.2±3.3%，p＜0.0001；自體：-8.5±3.0%，p＜0.0001；組間的p= 0.174；表1）。相比之下，晚期/失能B細胞在兩組中顯著降低（同種異體：-5.4±1.03%，p＜0.0001；自體：-5.9±2.5%，p=0.003；組間差異，p=0.57；表1）。早期T細胞活化（同種異體：-5.57±1.03%，p＜0.0001；自體：-2.92±1.5%，p= 0.02；組間的p=0.08；表1）在兩組中皆降至類似的程度。但在任一組中，晚期/慢性T細胞活化沒有顯著降低（同種異體：-2.3±1.3%，p=0.4，及自動：-3.4±2.7%，p=0.7）。 [ 表 1] 人類間葉幹細胞對細胞性及體液性免疫在 6 個月時的效果
免疫生物標誌 同種異體 自體
基線 6 個月 基線 6 個月
血清 TNF-α (pg/ml) 13.5 ± 1.5 2.3 ± 0.2 **,ϯ 11.8 ± 0.9 4.8 ± 0.8 **
% 早期 T 細胞活化 (CD3 +, CD69 +) 13.4 ± 4.4 7.9 ± 3.3 ** 13.3 ± 4.8 10.6 ± 5.4 *
% 晚期 / 慢性 T 細胞活化 (CD3 +, CD25 +) 8.9, IQR (5.9, 10.4) 3.4, IQR (3.0, 5.0)* 8.1, IQR (5.2, 14.1) 4.4, IQR (3.6, 11.1)
% Temra (CD3 +, CD45RA +, CCR7 -) 33.7 ± 7.6 17.9 ± 5.2 **,ϯ 30.1 ± 10.8 21.3 ± 7.5 **
% 晚期 / 失能 B 細胞 (CD19 +, CD27 -, IgD -) 19.3, IQR (17.9, 28.6) 14.7, IQR (14.2, 17.3) **, ϯ 20.0, IQR (17.7, 32.0) 15.5, IQR (14.0, 19.0) *
% 機轉記憶 B 細胞 (CD19 +, CD27 高 , IgD -) 10.0 ± 3.6 20.2 ± 3.1 **, ϯϯ 9.6 ± 3.1 14.1 ± 4.5 *  
% 表現細胞內 TNF- α 的 B 細胞 32.1 ± 7.3 20.4 ± 6.3 ** 28.2 ± 6.8 19.7 ± 4.8 **
*表示組內的p≤ 0.05； **表示組內的p≤ 0.001； ϯ表示組間的p≤0.5； ϯϯ表示組間的p≤0.001。 示例 2 老化衰弱之症狀的治療 - 研究 1
隨機分配達到加拿大健康與老化研究（CSHA）針對衰弱之研究納入/排除標準的30名60歲或以上的受試者。10位受試者接受1億個MSC，10位受試者接受2億個MSC，及10位受試者接受安慰劑。受試者係針對安全性及療效追蹤一年。評估至少包含以下者：炎性生物標誌研究及免疫效應審查。圖1係報導試驗統一標準圖。圖2提供基線患者特徵。圖3～7說明同種異體人類MSC對免疫生物標誌的影響。
圖3顯示接受人類MSC投藥的受試者中降低TNF-α。早期及晚期/慢性T細胞活化兩者在同種異體MSC處理之後降低。圖4顯示接受人類投藥MSC的受試者中表現CD69的早期活化T細胞減少。圖5顯示接受人類MSC投藥的受試者中表現CD25之慢性/晚期活化T細胞之數目的減少。圖7顯示接受人類MSC投藥的受試者中CD4 +/CD8 +T細胞比率的增加。 示例 3 老化衰弱之症狀的治療 - 研究 2
十五名老年受試者包含在開放式研究中，且在兩次分開的輸注中投藥人類間葉幹細胞。受試者係針對諸多免疫生物標誌的變化加以評估，以判定對注射人類間葉幹細胞的反應。這些免疫生物標誌包含失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清中的TNF-α濃度。受試者在第一次注射之後的6個月、及在第二次注射之後的1、3、和6個月加以評估。表2～9中提供針對上述討論之免疫生物標誌各者的測量值。表2～9中亦提供分配給在不同時間點在每位患者中所評估之免疫生物標誌各者的分數，其指示在所測量的免疫生物標誌中是否觀察到增加或減少。最後，表10中係包含不同時間點之各患者的總分數及患者間的平均值。如在表10的最後一行及圖8中可觀察的那樣，免疫衰老分數在老化衰弱的受試者中在第一次注射人類間葉幹細胞之後改善，且在第二次注射人類間葉幹細胞之後繼續維持在改善狀態。 [ 表 2] 人類間葉幹細胞對機轉記憶 B 細胞的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 6.61 21.2 14.2 16.5 22.8 21.3 1 2 2 2 2 2
2 21.3 41 24.9 24 25.4 30.8 2 4 3 3 3 3
3 5.34 9.31 7.14 16.6 7.58 9.81 1 1 1 2 1 1
4 10.5 17 30.1 36.6 18.7 40.3 1 2 3 4 2 2
5 10.7 24 25. 33.3 28.8 31.5 1 3 3 3 3 3
6 7.51 14.6 1.7 14.7 19.7 19.8 1 2 2 2 2 2
7 7.32 20.7 12.3 13.7 21.2 27.1 1 2 2 2 2 2
8 7.69 9.89 8.31 11.7 26.4 21.5 1 1 1 2 2 2
9 10.1 17.8 15.8 15.3 25.8 35.9 1 2 2 2 3 2
10 21.7 35.3 23.1 23.6 23.8 25.7 2 4 2 3 3 3
15 9.25 13.5 22.3 28.1 28.1 29.7 1 2 2 3 3 3
改善量表：沒有改變=0；改善＞0≤1，倍數=1；改善＞1≤2，倍數=2；改善＞2≤3，倍數=3；改善＞3，倍數=4；惡化＞0≤1，倍數=-1；惡化＞1≤2，倍數=-2；惡化＞2≤3，倍數=-3；及惡化＞3，倍數=-4。 [ 表 3] 人類間葉幹細胞對表現細胞內 TNF- α之 B 細胞 % 的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 23.4 9.65 15.6 9.59 5.35 8.21 1 3 2 2 4 3
2 34.8 9.33 10 9.83 6.88 6.71 1 3 2 3 3 3
3 14.3 7.62 40.4 21.2 15.7 8.02 2 3 1 2 3 3
4 14.3 7.63 13.7 12 5.25 3.63 2 2 2 2 4 4
5 19.5 10.9 9.52 8.89 8.33 7.59 2 2 2 3 3 3
6 37.7 1.22 5.57 4 4.04 4.33 1 4 4 4 4 4
7 13.2 2.71 4.1 3.67 4.42 2.52 2 4 4 4 4 4
8 30.8 4.66 6.82 7.01 7.05 7.42 1 4 3 3 3 3
9 11.1 6.94 11.2 5.76 7.79 5.1 2 3 2 4 3 4
10 13.5 4.2 3.55 3.87 3.72 3.42 2 4 4 4 4 4
15 7.05 4.75 5.75 3.84 6.46 2.04 3 4 4 4 4 4
[ 表 4] 人類間葉幹細胞對失能 B 細胞的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 23.2 40.4 15.7 9.88 10.7 15.6 1 1 2 3 3 2
2 26.8 27.6 6.59 3.33 6.67 7.51 1 1 4 4 4 4
3 7.63 18.2 15.7 15.7 9.01 14.2 4 2 2 2 3 2
4 29.1 14.8 11.9 7.12 9.86 10.1 1 2 3 4 3 3
5 53.3 15.2 19.2 8.39 13.6 12.9 1 2 2 4 2 3
6 34.6 14.1 9.47 9.09 8.01 5.26 1 2 3 3 4 4
7 44.1 51.9 66.5 57.2 43.1 40.3 1 1 1 1 1 1
8 9.23 7.1 12.6 11.6 8.05 12 3 4 3 3 4 3
9 15.4 17.8 15.6 7.85 9.51 17.8 2 2 2 4 3 2
10 12.5 24.6 7.17 11.9 13.4 7.42 2 2 4 3 2 4
15 32.4 26.6 24.4 16.2 11.7 12.4 1 1 2 2 3 3
[ 表 5] 人類間葉幹細胞對 Temra 細胞的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 30.1 42.6 14.6 17.4 19.4 15.4 1 1 2 2 1 2
2 25.6 27.8 25.2 27 26.4 37.1 1 1 1 1 1 1
3 7.55 2.85 14.4 13.3 10.1 11.8 3 4 2 2 2 2
4 15.7 3.06 15 12.7 9.5 12.5 2 4 2 2 3 2
5 10 2.85 9.86 8.43 11 10.4 2 4 2 3 2 2
6 39.5 18.2 21.6 16.4 20 18.1 1 2 1 2 1 2
7 13.3 14.2 11.4 10.3 15 17.7 2 2 2 2 2 2
8 31.5 12.2 11.8 7.09 11.6 33.3 1 2 2 3 2 1
9 16.1 11.1 24 25.1 34.3 38.8 2 2 1 1 1 1
10 7.15 4.89 12.2 19 9.52 13.2 3 4 2 2 3 2
15 15.2 13.3 30.2 40.6 46.1 34.9 2 2 1 1 1 1
[ 表 6] 人類間葉幹細胞對 T 細胞（ CD69 ）之早期活化的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 16 16.6 12.98 8.03 8.74 6.07 2 2 2 3 3 4
2 5.8 7.5 10.31 13.82 10.77 12.21 4 4 3 2 3 2
3 29 13 14.76 3.36 4.83 9.14 1 2 2 4 4 3
4 65 30 7.87 5 4.33 17.07 1 1 3 4 4 2
5 4.4 11.7 13.15 3.42 20.88 6.75 4 2 2 4 2 4
6 42 22.4 13.23 13.56 8.6 13.29 1 2 2 2 3 2
7 25.8 22.1 13.73 10.26 10.87 37.35 1 2 2 3 3 1
8 28.3 17.1 4.22 5.1 4.93 12.32 1 2 4 4 4 2
9 4.4 6.2 20.12 7.63 12.06 11.9 4 4 2 3 2 2
10 19.4 17.9 14.18 13.53 6.22 13.85 2 2 2 2 4 2
15 10.9 6.18 14.18 12.79 14.2 13.1 3 4 2 2 2 2
[ 表 7] 人類間葉幹細胞對 T 細胞（ CD25 ）之晚期 / 慢性活化的影響
患者 # BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月 2 nd 注射 3 個月 2 nd 注射 6 個月 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 1.7 2.9 5.74 8.32 10.98 7.63 4 4 3 2 2 2
2 2.2 3 4.25 4.69 3.84 4.7 4 4 3 3 4 3
3 20 5 10.83 4.93 14.32 5.87 1 3 2 3 1 3
4 53 3.2 4.54 5.88 7.44 6.97 1 4 3 3 2 2
5 10 1.9 5.69 7.9 7.91 8.9 2 4 3 2 2 2
6 16 1.4 5.69 6.95 6.69 2.53 1 4 3 2 2 4
7 0.9 2.3 7.35 8.38 6.77 8.19 4 4 2 2 2 2
8 20.5 3.7 6.81 9.41 10.74 4.26 1 4 2 2 2 3
9 2.1 1.3 3 4.47 3.88 3.82 4 4 4 3 4 4
10 6.6 2.9 11.61 5.29 3.88 5.08 2 4 2 3 4 3
15 1.4 1.11 11.61 2.21 3.14 2.11 4 4 2 4 4 4
[ 表 8] 人類間葉幹細胞對 CD4 + ： CD8 +T 細胞之比率的影響
患者 # BL 比率 6 個月比率 2 nd 注射 BL 比率 2 nd 注射 1 個月比率 2 nd 注射 3 個月比率 2 nd 注射 6 個月比率 BL 分數 6 個月分數 2 nd 注射 BL 分數 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 0.77 0.69 0.48 1.03 0.68 0.66 1 1 1 1 1 1
2 2.17 2.48 0.98 1.16 1.48 0.96 2 2 1 1 2 1
3 1.66 1.94 2.24 1.95 2.98 2.32 2 2 2 2 3 2
4 0.96 3.43 6.49 2.18 3.67 4.59 1 3 4 2 3 4
5 2.34 5.32 5.05 4.27 4.45 3.79 2 4 4 4 4 3
6 0.94 3.47 4.38 3.54 3.50 4.42 1 3 4 2 3 4
7 0.51 1.60 0.95 0.92 0.92 0.97 1 2 1 1 1 1
8 0.83 2.26 2.49 2.49 2.58 0.21 1 2 2 2 2 1
9 1.57 2.68 1.56 2.48 1.25 0.67 2 2 2 2 1 1
10 3.02 4.76 3.97 3.26 4.66 2.65 3 4 3 3 4 2
15 0.68 1.94 0.84 0.62 0.47 1.10 1 2 1 1 1 1
[ 表 9] 人類間葉幹細胞對血清 TNF-α 濃度的影響
患者 # BL 6 個月 6 個月分數
1 3.5 2.4 2
2 3.6 2.2 2
3 2.8 2.3 2
4 2.8 0.9 2
5 8 6.8 0
6 3.2 1.1 2
7 3.5 0.14 2
8 7.3 0 2
9 6.8 4.1 2
10 5.7 2.8 2
11 6.3 2.7 2
12 4.1 2.2 2
13 3.5 0.6 2
14 9.2 3.8 2
15 6.3 1.2 2
[ 表 10] 患者之總免疫衰老分數
患者# BL 6 個月 2 nd 注射 BL 2 nd 注射 1 個月分數 2 nd 注射 3 個月分數 2 nd 注射 6 個月分數
1 11 14 14 15 16 16
2 15 19 17 17 20 17
3 14 17 12 17 17 16
4 9 18 20 21 21 21
5 14 21 18 23 18 20
6 7 19 19 17 19 22
7 12 17 14 15 15 14
8 9 19 17 19 19 16
9 17 19 15 19 17 18
10 16 24 19 20 24 20
15 15 19 14 17 18 18
平均 12.64 18.73 16.27 18.18 18.55 18
圖1係針對隨機、雙盲、安慰劑對照之研究的報導試驗統一標準圖，該研究調查針對治療具有衰弱症狀之年長個體之同種異體間葉幹細胞的使用。
圖2提供在該隨機、雙盲、安慰劑對照之研究中所招收之受試者的基線患者特徵，該研究調查針對治療具有衰弱症狀之年長個體之同種異體間葉幹細胞的使用。
圖3顯示在投藥同種異體人類間葉幹細胞的老年受試者中TNF-α的減少。
圖4顯示在投藥同種異體人類間葉幹細胞的老年受試者中表現CD69的早期活化T細胞上的減少。
圖5顯示在投藥同種異體人類間葉幹細胞的老年受試者中表現CD25之慢性/晚期活化T細胞的數目上之減少。
圖6顯示在投藥同種異體人類間葉幹細胞的老年受試者中CD8 +T細胞的測量值。
圖7顯示在投藥同種異體人類間葉幹細胞的老年受試者中CD4 +/CD8 +T細胞的比率上之增加。
圖8顯示在接受兩次人類間葉幹細胞輸注之老化衰弱的受試者中增加的免疫衰老分數。
圖9顯示基線血清TNF-α與表現IC TNF-α的基線B細胞之間的相關性。
圖10提供在年輕對照組BL、低TNF：IC TNF BL、及高TNF：IC TNF BL中之表現IC TNF-α之B細胞的%。
圖11提供在年輕對照組BL、低TNF：機轉記憶B細胞BL、及高TNF：機轉記憶B細胞BL中之機轉記憶B細胞的%。
圖12提供在年輕對照組BL、低TNF：失能B細胞BL、及高TNF：失能B細胞BL中之失能B細胞的%。
圖13提供在年輕對照組BL、低TNF：Temra細胞BL、及高TNF：Temra細胞BL中之Temra細胞的%。
圖14提供在年輕對照組BL、低TNF：CD4：CD8 BL、及高TNF：CD4：CD8 BL中之CD4 +/CD8 +T細胞比率。
圖15提供在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之血清TNF-α的絕對變化（pg/ml）。
圖16顯示基線血清TNF-α與血清TNF-α中的變化之間的相關性。
圖17顯示在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之表現IC TNF-α之B細胞的絕對變化。
圖18顯示血清TNF-α與表現IC TNF-α之B細胞的變化之間的相關性。
圖19顯示在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之機轉記憶B細胞之%的絕對變化。
圖20顯示在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之失能B細胞之%的絕對變化。
圖21顯示在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之Temra T細胞之%的絕對變化。
圖22顯示血清TNF-α中的變化與Temra T細胞中的變化之間的相關性。
圖23顯示在安慰劑對照組、低TNF-α、及高TNF-α中之CD4 +/CD8 +T細胞比率的絕對變化。
圖24顯示CD4 +/CD8 +T細胞比率的變化與Temra T細胞中的變化之間的相關性。

Claims (6)

  1. 一種體外判定針對非缺血性擴張型心肌病之療效的方法，包含：於體外使用失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、及血清中的TNF-α濃度，來判定針對非缺血性擴張型心肌病的治療是否有效。
  2. 一種體外判定針對老化衰弱之療效的方法，包含：於體外使用失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準、機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準、表現細胞內TNF-α之B細胞的位準、早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準、慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準、Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準、CD4 +：CD8 +T細胞比率、及血清中的TNF-α濃度，來判定針對老化衰弱的治療是否有效。
  3. 如請求項1的方法，其中 (A)  與治療之前血清中之該失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準相比，治療之後血清中之該失能B細胞的位準減少至少25%； (B)   與治療之前血清中之該機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準相比，治療之後血清中之該機轉記憶B細胞的位準增加至少100%； (C)   與治療之前血清中之該表現細胞內TNF-α之B細胞的位準相比，治療之後血清中之該表現細胞內TNF-α之B細胞的位準減少至少30%； (D)  與治療之前血清中之該早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準相比，治療之後血清中之該早期活化T細胞的位準減少至少30%； (E)   與治療之前血清中之該慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準相比，治療之後血清中之該慢性活化T細胞的位準減少至少70%； (F)    與治療之前血清中之該Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準相比，治療之後血清中之該Temra細胞的位準減少至少40%；及/或 (G)  與治療之前血清中之該TNF-α濃度相比，治療之後血清中之該TNF-α濃度降低至少80%。
  4. 如請求項2的方法，其中 (A)  與治療之前血清中之該失能B細胞（CD19 +、CD27 -、IgD -）的位準相比，治療之後血清中之該失能B細胞的位準減少至少10%； (B)   與治療之前血清中之該機轉記憶B細胞（CD19 +、CD27 高、IgD -）的位準相比，治療之後血清中之該機轉記憶B細胞的位準減少至少75%； (C)   與治療之前血清中之該表現細胞內TNF-α之B細胞的位準相比，治療之後血清中之該表現細胞內TNF-α之B細胞的位準減少至少60%； (D)  與治療之前血清中之該早期活化T細胞（CD3 +、CD69 +）的位準相比，治療之後血清中之該早期活化T細胞的位準減少至少30%； (E)   與治療之前血清中之該慢性活化T細胞（CD3 +、CD25 +）的位準相比，治療之後血清中之該慢性活化T細胞的位準減少至少75%； (F)    與治療之前血清中之該Temra細胞（CD45RA +、CCR7 -）的位準相比，治療之後血清中之該Temra細胞的位準減少至少20%； (G)  與治療之前血清中之該CD4 +：CD8 +T細胞比率相比，治療之後血清中之該CD4 +：CD8 +T細胞比率增加至少100%；及/或 (H)  與治療之前血清中之該TNF-α濃度相比，治療之後血清中之該TNF-α濃度降低至少50%。
  5. 如請求項1～4中任一項的方法，其中該血清來自一人類受試者。
  6. 如請求項2或4的方法，其中該血清來自表現炎性老化的一人類受試者。
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Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA3043594A1 (en) 2016-11-11 2018-05-17 Longeveron Llc Methods of using human mesenchymal stem cells to effect cellular and humoral immunity
JP2022512999A (ja) * 2018-11-08 2022-02-07 ユニヴァーシティー オブ マイアミ 拡張型心筋症の細胞療法に対する応答性を判定する方法
CN111568927A (zh) * 2020-05-23 2020-08-25 湖南源品细胞生物科技有限公司 一种msc用于调节记忆b细胞数量的应用
KR20230066407A (ko) 2020-09-08 2023-05-15 롱에버론 인코포레이티드 동종이계 중간엽 줄기 세포를 이용한 알츠하이머병 치료
CA3227475A1 (en) 2021-07-26 2023-02-02 Longeveron Inc. Use of mesenchymal stem cells in treatment of juvenile hypoplastic left heart syndrome
AU2022343620A1 (en) 2021-09-10 2024-01-18 Longeveron Inc. Treatment of aging frailty comprising administering bone marrow derived mesenchymal stem cells

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20120268785A1 (en) * 2011-04-22 2012-10-25 Konica Minolta Business Technologies, Inc. Image processing system, job execution method, and non-transitory computer-readable recording medium encoded with job execution program
US20160067285A1 (en) * 2013-03-15 2016-03-10 Tigenix, S.A.U Lymphocyte biomarkers for determining the clinical response to cell therapy

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AUPP977899A0 (en) * 1999-04-15 1999-05-13 Monash University Improvement of t cell mediated immunity
WO2006124827A2 (en) * 2005-05-13 2006-11-23 University Of Miami Molecular dissection of cellular responses to alloantigen or autoantigen in graft rejection and autoimmune disease
EP1937309A4 (en) * 2005-09-14 2010-01-20 Univ Columbia CD8 + T LYMPHOCYTES REGULATORS INDUCED BY ANTI-CD3 ANTIBODIES
US8501704B2 (en) * 2005-11-08 2013-08-06 Sarepta Therapeutics, Inc. Immunosuppression compound and treatment method
WO2008036374A2 (en) * 2006-09-21 2008-03-27 Medistem Laboratories, Inc. Allogeneic stem cell transplants in non-conditioned recipients
US20110110900A1 (en) * 2008-06-13 2011-05-12 Philip Stephens Novel adult progenitor cell
CN101690731B (zh) * 2009-09-09 2013-07-10 中国人民解放军海军总医院 脐带华通胶源间充质干细胞在制备心力衰竭细胞移植材料中的应用
CN103180435A (zh) 2010-08-31 2013-06-26 库克通用生物技术有限责任公司 用于治疗动物疾病的全身的同种异体干细胞疗法
CN102908364A (zh) * 2012-11-14 2013-02-06 青岛奥克生物开发有限公司 一种间充质干细胞注射液及其制备方法和在制备治疗儿童扩张型心肌病药物中的应用
MX2015008754A (es) * 2013-01-04 2016-04-11 Teva Pharma Caracterizacion de un medicamento relacionado con acetato de glatiramer.
WO2014203267A2 (en) * 2013-06-17 2014-12-24 Kasiak Research Pvt. Ltd. Method for isolation, purification and industrial scale expansion of human adipose tissue derived mesenchymal stem cells
US20190224240A1 (en) * 2016-01-11 2019-07-25 Cardiocell, Llc Cell therapy for the treatment of non-ischemic heart failure
CA3043594A1 (en) 2016-11-11 2018-05-17 Longeveron Llc Methods of using human mesenchymal stem cells to effect cellular and humoral immunity

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20120268785A1 (en) * 2011-04-22 2012-10-25 Konica Minolta Business Technologies, Inc. Image processing system, job execution method, and non-transitory computer-readable recording medium encoded with job execution program
US20160067285A1 (en) * 2013-03-15 2016-03-10 Tigenix, S.A.U Lymphocyte biomarkers for determining the clinical response to cell therapy

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