TWI744654B - 用於偵測及預防豬流行性下痢病毒感染的桿狀病毒及組合物 - Google Patents

用於偵測及預防豬流行性下痢病毒感染的桿狀病毒及組合物 Download PDF

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Abstract

本揭露提供一種表現豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或其N蛋白質的桿狀病毒，其係用於偵測及/或預防豬流行性下痢病毒感染。

Description

用於偵測及預防豬流行性下痢病毒感染的桿狀病毒及組合物 相關申請案
本申請案主張於2018年6月25日提申的美國專利臨時申請第62/689,427號案為優先權，其經由引用完整併入本案。
本揭露是關於一種桿狀病毒；特別是表現用於偵測及預防豬隻於豬流行性下痢病毒感染之蛋白質的桿狀病毒。
豬流行性下痢(PED)是一種高度傳染性的豬隻疾病，其特徵在於仔豬的急性水性下痢和嘔吐。PED於20世紀70年代首次在歐洲被發現，隨後成為亞洲和歐洲零星爆發的地方性疾病。自2010年底以來，中國出現了高毒力豬流行性下痢病毒(PEDV)並襲擊了新生仔豬。2013年，包括台灣在內的北美和東亞地區爆發了高毒力的PED，導致養豬業遭受了巨大的經濟損失。
市面上可取得的疫苗是PEDV RNA疫苗，且先前的結果顯示該疫苗僅能使仔豬的死亡率降低3%。第二個策略是使用PEDV的死毒疫苗，而6.6 log10 TCID50/mL效價的低病毒產量明顯限制了疫苗的廣泛應用。領域中為開發可控 制PED流行的疫苗已經付出了很多努力。然而，目前仍無有效的商業化疫苗可用於控制全球的PED。有效、安全且具有成本效益之用於控制PEDV的疫苗仍為領域中所迫切需要。
本揭露的目的之一是提供偵測及預防豬流行性下痢病毒感染的有用工具。有用的工具可以是新的組合物(在一些具體實施例中也可以稱為疫苗)，及/或其特定的活性成分。
本揭露的另一個目的是提供可用於製備上述活性成分的工具。
為了實現上述目的，本揭露提供了一種表現豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質的桿狀病毒。
本揭露亦提供一種醫藥組合物，其包含本揭露之桿狀病毒以及醫藥上可接受的載體。
本揭露另提供一種表現卡匣，包含：一啟動子；第一多核苷酸，其編碼SEQ ID NO：04；以及第二多核苷酸，其編碼豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質。
本揭露又提供一種細胞，其包含本揭露之表現卡匣。
本揭露再提供一種於活體外評估豬流行性下痢病毒感染的方法，其包含：取得一待評估之個體的樣本；使該樣本與本揭露之桿狀病毒或細胞接觸。
第一圖顯示實驗1的表現卡匣的組成及質體pTriEx-S、pTriEx-S1、及pTriEx-N的構建圖。接續在GP64訊號蛋白質和6x His-標籤之後的全長S蛋白質、S1結構域、及N蛋白質基因由TriEx啟動子驅動。pTriEx-S含有最佳化密碼子之全長S基因。pTriEx-S1及pTriEx-N具有與GP64跨膜結構域(TM-B)以及用於膜錨定的GP64細胞質結構域(CTD-B)相接之最佳化密碼子的編碼為S1結構域多核苷酸及N蛋白質基因。該等構建體亦插入由SV40-pag啟動子驅動的mCherry螢光蛋白基因作為報導子。
第二圖顯示實驗1中的西方墨點(Western blotting)分析的結果。在5 M.O.I.感染後的第3天，在經S-Bac、S1-Bac及N-Bac感染的Sf21細胞之細胞裂解物中偵測到豬流行性下痢病毒(PEDV)之全長S蛋白質、S1結構域(第二圖A)、及N蛋白質(第二圖B)。針對由桿狀病毒表現的PEDV S蛋白質、S1結構域、及N蛋白質進行西方墨點分析，並以抗His-標籤抗體偵測。S蛋白質、S1結構域、及N蛋白質分別具有200kDa、100kDa、及70kDa的相對分子量。僅有細胞：未經感染的Sf21細胞；野生型：經野生型AcMNPV感染的Sf21細胞；S-Bac：經S-Bac感染的Sf21細胞；S1-Bac：經S1-Bac感染的Sf21細胞；GAPDH：填入相同體積之對照組細胞蛋白質。
第三圖顯示實驗2中的電子顯微鏡偵測結果。電子顯微照片分別顯示重組S-Bac(a)和S1-Bac(b)表面上的豬流行性下痢病毒(PEDV)全長S蛋白質和S1結構域之膠體金的正訊號。條形代表50nm的比例尺。
第四圖顯示經S-Bac和S1-Bac免疫之小鼠中，全身性豬流行性下痢病毒S(Spike)蛋白質-專一性IgG濃度的變化。以兩週的間隔收集小鼠血清樣本三次，包括第0天(免疫前)、第14天(免疫後2週)和第28天(加強免疫後2 週)。以基於PEDV S蛋白質的ELISA偵測全身性抗PEDV S蛋白質的IgG濃度。X軸代表接種後天數；而Y軸顯示自ELISA試驗結果所得光學密度(OD)值計算的樣本/正對照組比例(S/P比)。S/P比係定義為樣本和負對照組於OD值之間的差異，比上正向和負對照組於OD值之間的差異之比值。誤差線表示不同時間點中每組的SD值。帶方形圖標的實線和帶圓形圖標的灰線分別代表S-Bac組和S1-Bac組中IgG濃度的上升趨勢。對照組中的IgG濃度以帶有三角形圖標的虛線表示。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。
第五圖顯示在第0天(免疫前)和第28天(加強免疫後2週)的對照組、S-Bac和S1-Bac組中，小鼠全身性抗體的中和效價。分別以帶有方形圖標的實線和帶有圓形圖標的灰線表示經S-Bac和S1-Bac接種之小鼠的中和效價變化。對照組小鼠血液中的中和效價以虛線上的三角形圖標標記。誤差線表示不同時間點中每組的SD值。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。該中和試驗的背景為1：20，偵測背景下的區域用灰色區域顯示。
第六圖顯示免疫S-Bac或S1-Bac後，仔豬的全身性抗豬流行性下痢S(Spike)蛋白質-專一性IgG濃度。在第0天(免疫前)、第14天(免疫後2週)和第28天(加強免疫後2週)。每二週以基於PEDV S蛋白質的ELISA偵測仔豬的全身性IgG濃度一次。數據以樣本/正對照組比值(S/P比)的平均值顯示，其定義為樣本和負對照組於OD值之間的差異，除以正向和負對照組於OD值之間的差異。誤差線表示不同時間點中每組的SD值。帶方形圖標的實線和帶圓形圖標的灰線分別代表S-Bac組和S1-Bac組中IgG濃度的上升趨勢。對照組中的IgG濃度以帶有三角形圖標的虛線表示。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。
第七圖顯示經S-Bac或S1-Bac免疫後，仔豬中的抗豬流行性下痢(PEDV)S(Spike)蛋白質-專一性糞便中IgA濃度。在第0天(免疫前)、第14天(免疫後2週)和第28天(加強免疫後2週)。每二週一次以基於PEDV S蛋白質的ELISA透過豬的直腸拭子評估其黏膜IgA濃度。數據以五頭豬的平均OD值表示。誤差線表示不同時間點中每組的SD值。帶方形圖標的實線和帶圓形圖標的灰線分別代表S-Bac組和S1-Bac組中IgA濃度的上升趨勢。對照組中的IgA濃度以帶有三角形圖標的虛線表示。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。
第八圖顯示在第0天(免疫前)和第28天(加強免疫後2週)，每組中針對豬流行性下痢病毒(PEDV)的中和效價。帶有方形圖標的實線、帶有圓形圖標的灰線和帶有三角形圖標的虛線分別代表S-Bac、S1-Bac和對照組中，豬的抗PEDV中和抗體效價。數值以平均值±SD表示。灰色區域表示中和試驗的背景值。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。
第九圖顯示本揭露研究的實驗中每組仔豬的平均體重。自4週齡起，每隔兩週測量仔豬的體重。X軸為時間軸，其顯示仔豬年齡，接種後天數和攻毒後天數。仔豬在5週齡和7週齡時免疫兩次；在9週齡時以5×105 TCID50 PEDVPT-P6&7攻毒仔豬。Y軸是每組中五隻仔豬的平均體重。誤差線表示不同時間點中每組的SD值。帶有方形圖標的實線和帶有圓形圖標的灰線分別代表S-Bac組和S1-Bac組中豬的平均體重。對照組的豬隻平均體重以帶有三角形圖標的虛線表示。*：與對照組有顯著差異(p<0.05)。
第十圖顯示在高毒力豬流行性下痢病毒(PEDV-PT)刺激後，對照組(a)、S1-Bac組(b)和S-Bac(c)組之臨床評分累計。臨床症狀按以下規則評分：0，糞便正常；1糞便鬆散；2，糞便呈半流體稠度；3，水樣下痢。在免 疫後第28天(攻毒後第0天)，以5×105 TCID50 PEDV-PT-P6&7對每隻仔豬進行口服攻毒。攻毒後總共觀察15天。空白方塊代表得分1(鬆散一致的糞便)；淺灰色方塊代表得分2(半流體糞便)；深灰色方塊代表得分3(水樣下痢)。
第十一圖顯示在高毒力豬流行性下痢病毒(PEDV-PT)攻毒後，偵測糞便中病毒排出的情況。探針定量即時RT PCR(Probe-based quantitative real-time RT PCR)的偵測極限為1.8 log10，並以灰色區域顯示。誤差線代表不同時間點中每組的SD值。帶有方形圖標的實線和帶有圓形圖標的灰線分別代表S-Bac組和S1-Bac組中豬的平均糞便病毒排出複製數。對照組中豬的平均糞便病毒排出複製數以帶有三角形圖標的虛線表示。
第十二圖顯示每一組之全身性IgG的平均光學密度(OD)，並以誤差線顯示標準差(SD)。接種後(DPI)第0、14、28天以及以PEDV-PT-P6&7攻毒後(DPC)第14天之仔豬中的全身性PEDV S蛋白質-專一性IgG係透過PEDV專一性之自製ELISA來偵測。圖中箭號標示出PEDV-PT-P6&7攻毒的特定時點(20 DPI或0 DPC)。統計上顯著差異以a、b及c(p<0.05)來標示。DPI：接種後天數；DPC：攻毒後天數。
第十三圖顯示每一組仔豬之糞便IgA的平均光學密度。接種後(DPI)第0、14、28天的黏膜PEDV S蛋白質-專一性IgA係透過PEDV專一性之自製ELISA來偵測。誤差線顯示在每一時間點時，相對於六個組的標準差。統計上顯著差異以a及b(p<0.05)來標示。DPI：接種後天數。
第十四圖顯示基於昆蟲細胞之ELISA的實驗結果。該ELISA是用於偵測仔豬血漿中抗PEDV的專一性抗體。血漿是收集自無特定病原(SPF)仔 豬(C)及受PEDV感染的仔豬(A、B)。數據代表的是受感染及未受感染之動物的實驗結果。長條圖顯示每一組的光學密度。
對於本文和所附申請專利範圍的描述，單數形式「一(a)」和「一個(an)」包括複數指示物，除非上下文另有明確說明。因此，例如，提及「一種蛋白質」包括一種以上的蛋白質，提及「一種化合物」是指一種以上的化合物。「包含(comprise)」、「包含(comprises)」，「包含(comprising)」、「包括(include)」、「包括(includes)」和「包括(including)」的使用是可互換的，並非旨在進行限制。應進一步理解，在各種具體實施例的描述使用術語「包含」的情況下，本領域技術人員將理解，在一些特定情況下，可使用「基本上由......組成」或「由......組成」的語言來替代地描述具體實施例。
在提供數值範圍的情況下，除非上下文另有明確規定，否則應理解為，除了上下文另有明確規定之外，該值的其中每個整數，以及該值的其中每個整數的每個十分之一，介於該範圍之上限與下限之間，以及該陳述範圍內的任何其他陳述值或其中值，包含在本揭露內。這些較小範圍的上限和下限可獨立地包括在較小範圍內，並且亦包括在本揭露內，受到所述範圍內的任何特別排他性限制。在所述範圍包括一或兩個限制的情況下，排除(i)或(ii)之一或二者的範圍，亦包括於本揭露中。例如，「1至50」包括「2至25」、「5至20」、「25至50」、「1至10」等。
本揭露中引用的所有文獻、專利、專利申請案和其他文獻，出於所有目的，經由引用完整併入本文，其內容如同單獨指出每一文獻、專利、專利申請案和其他文獻，出於所有目的，經由引用完整併入本文。
應當理解，前面的一般性描述，包括附圖和以下的詳細描述，都僅是示範性和說明性，而不是對本揭露的限制。
除非另外特別定義，否則本文描述中使用的技術和科學術語將具有本領域中具有通常知識者通常理解的含義。
如本文所用，「預防豬流行性下痢病毒(PEDV)感染」或類似術語是指減少、減輕或消除PEDV的感染程度，及/或由PEDV感染引起的病症、症候群或疾病。本領域中具有通常知識者可容易地理解，在該領域中不可能實現零感染。因此，上述術語無意限制本揭露至實現完全沒有感染的結果。
在本揭露的第一態樣中，係提供一種表現豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質的桿狀病毒。在一較佳具體實施例中，豬流行性下痢病毒S蛋白質包含SEQ ID NO：1。在另一較佳具體實施例中，S蛋白質的S1結構域包含SEQ ID NO：2。在又一較佳具體實施例中，豬流行性下痢病毒N蛋白質包含SEQ ID NO：3。
如本文所用，「包含SEQ ID NO：XX」或類似術語係表示該蛋白質/胜肽(下文中統稱為蛋白質)可包含除所指SEQ ID NO之外的其他胺基酸序列，只要該蛋白質保有本揭露所欲目的之功能即可。例如，本領域中具有通常知識者可將所指SEQ ID NO與一標籤(例如His標籤)建構在一起。該標籤僅用於純化目的，並不會影響該蛋白質於實踐本揭露目的的功能。在另一具體實施例中，該S蛋白質實質上由SEQ ID NO：1組成。在一特定具體實施例中，該S蛋白質 由SEQ ID NO：1組成。在另一具體實施例中，該S蛋白質的S1結構域實質上由SEQ ID NO：2組成。在一特定具體實施例中，該S蛋白質的S1結構域由SEQ ID NO：2組成。在另一具體實施例中，該N蛋白質實質上由SEQ ID NO：3組成。在一特定具體實施例中，該N蛋白質由SEQ ID NO：3組成。
特別值得注意的是，在一具體實施例中，該桿狀病毒表現該S蛋白質的S1結構域，其中該S1結構域係獨立於該S蛋白質的其他部分存在。亦即，S1結構域不以其在自然界中的狀態存在。在其自然界中的狀態中，S1結構域是S蛋白質的一部分且不會分離出來，因為它不是完整的蛋白質。
在一較佳具體實施例中，桿狀病毒進一步表現外套膜醣蛋白；其中該外套膜醣蛋白包含SEQ ID NO：4。不受理論束縛，本揭露發現在某些情況中，具有該外套膜醣蛋白有利於本揭露的桿狀病毒誘導保護性免疫反應。在一較佳具體實施例中，該外套膜醣蛋白是包含GP64跨膜結構域(TM-B)和GP64細胞質結構域(CTD-B)的GP64訊號胜肽。
在一特定具體實施例中，該S蛋白質和該外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：5的融合蛋白質。在另一特定具體實施例中，該S1結構域和該外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：6的融合蛋白質。在又一特定具體實施例中，該N蛋白質和該外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：7的融合蛋白質。如本文所用，「融合蛋白質」意指，舉例來說，編碼該外套膜醣蛋白的多核苷酸與編碼該S1結構域的多核苷酸，經由或未經由一橋聯物(linkage)而可操作地連接在一起，使得該二多核苷酸共同編碼成一蛋白質，其包含一包含該外套膜醣蛋白的部分(moiety)和一包含該S1結構域的部分。
如本文所用，「可操作地連接」是指二或更多個多核苷酸，以能夠使其密碼子被正確轉錄和轉譯的方式相互連接。舉例而言，待轉譯成胺基酸的密碼子由三個鹼基構成。因此，待連接的兩個多核苷酸之間的橋聯物必須具有三個或三的倍數個鹼基；否則，後面的多核苷酸的密碼子可能會轉換成不同的密碼子，並編碼成錯誤的胺基酸。
本揭露的第二態樣提供一種醫藥組合物，其包含本揭露的桿狀病毒和醫藥上可接受的載體。任選地，該醫藥組合物可進一步包含佐劑。
如本文所用，「醫藥上可接受的」成分(例如載體)是指該化合物或組合物適於投予個體，以實現本文所述的治療，而不會對疾病嚴重程度和治療的必要性產生過度有害的副作用。「載體」是指不會對生物體造成顯著刺激，並且不會消除指定化合物的生物活性和特徵的物質。本揭露中使用的載體包括但不限於生理上相容的緩衝劑、賦形劑、穩定劑、防腐劑、溶劑、分散介質、包衣、抗細菌劑和抗真菌劑、等張劑和吸收延遲劑，以及類似物。
如本文所用，「佐劑」具有與藥物/疫苗領域中眾所周知的相同含義。例如，該佐劑用於改善所述活性成分的免疫原性效果，及/或穩定所述活性成分。本揭露中使用的佐劑包括但不限於熱不穩定腸毒素B次單位(LTB)、霍亂毒素B(CTB)、趨化因子(C-C模體)配體25、趨化因子(C-C模體)配體27、趨化因子(C-C模體)配體28、完全弗氏佐劑(complete Freund’s adjuvant)、不完全弗氏佐劑、氧化鋁凝膠、界面活性劑、陰離子聚合物、胜肽、油性乳化物，或其組合。
在另一具體實施例中，該醫藥組合物可以片劑、膠囊、粉末、懸浮液或溶液形式配製。在一特定具體實施例中，該醫藥組合物可以口服、非經胃 腸、藉由吸入噴霧、局部、直腸、鼻腔、經口腔、陰道或經由植入型藥盒投藥。本文所用的術語「非經腸胃」包括皮下、皮內、靜脈內、肌肉內、關節內、動脈內、滑膜內、胸骨內、鞘內、病灶內和顱內注射或輸注技術。
本揭露的第三態樣提供一種表現卡匣載體，其包含：一啟動子(promoter)；第一多核苷酸，其編碼SEQ ID NO：4；以及第二多核苷酸，其編碼豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或其N蛋白質。
在一具體實施例中，該第二多核苷酸編碼SEQ ID NO：1。可行地，該第二多核苷酸編碼SEQ ID NO：2。可行地，該第二多核苷酸編碼SEQ ID NO：3。實務上來說，該第一多核苷酸及該該第二多核苷酸可編碼一融合蛋白質，該融合蛋白質可為SEQ ID NO：5、SEQ ID NO：6、或SEQ ID NO：7。
在一較佳具體實施例中，「多核苷酸編碼」係指所指多核苷酸可透過轉錄和轉譯被轉換成多肽或蛋白質、轉錄和轉譯可在活體外或活體內進行。當轉錄和轉譯在活體內進行時(例如在特定生物體的細胞中)，人們應該意識到該生物體的密碼子使用偏好。
在一較佳實施態樣中，該表現卡匣包含：SEQ ID NO：11；該第一多核苷酸，其編碼SEQ ID NO：4；以及該第二多核苷酸，其編碼為豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質。較佳地，該表現卡匣可被建構至一表現載體。在一特定實施態樣中，該表現載體係以具有TriEx啟動子和6x His標籤的pTriEx-3質體(Novagen,Merck Biosciences,Darmstadt,Germany)為基礎而構建。可行地，其他啟動子或其他標籤亦可使用。在一實施態樣中，該啟動子可於昆蟲細胞或哺乳類細胞中操作。本文中所述「可於...操作(operable)」係指該操作子可為所指生物體辨識及使用以啟動轉錄及轉譯。
本揭露的第四態樣提供一種包含本揭露表現卡匣的細胞。可行地，該細胞可為昆蟲細胞，包括但不限於Sf21細胞、Sf9細胞、Hi5細胞、或BmN細胞。
本揭露的第五態樣提供一種於活體外評估豬流行性下痢病毒感染的方法，其包含：取得一待評估之個體的樣本；以及使該樣本與本揭露之桿狀病毒或細胞接觸。
在一較佳實施態樣中，該樣本為血漿。術語「接觸」可透過使該樣本與該桿狀病毒或該細胞的懸浮液/溶液混合來達成。在一可行實施態樣中，該桿狀病毒或該細胞係經塗覆於一表面上，然後將該樣本置於該表面以達成該「接觸」步驟。
在一較佳實施態樣中，該方法在該接觸步驟之後進一步包含一步驟，其中該步驟是偵測該樣本與該桿狀病毒或該細胞的的交互作用。術語「交互作用」可被解釋為，例如，該樣本與該桿狀病毒或該細胞之間的結合(binding)。在一具體實施態樣中，該方法可透過ELISA分析來實現，而該偵測可透過分光光度計來達成。
範例
在以下代表性範例中，說明了本揭露的各種特徵和具體實施例，所述代表性實例旨在說明而非限制。本領域技術人員將容易理解，具體範例僅用於說明本揭露，其在隨後的申請專利範圍中更全面地描述。應用中描述的每個具體實施例和特徵應該被理解為可與包含在其中的每個具體實施例互換和組合。
材料與方法
1.1 病毒與細胞株
如前所述(Chang,Y.C.等人，Viruses 2017,9,(5))，使用高毒力PEDV Pintung 52第5代(PEDV-PT-P5)(GenBank登錄號KY929405)病毒原液於Vero細胞(美國典型培養物保藏中心(ATCC)No.CRL-1586)中製備PEDV-PT第6代(PEDV-PT-P6)和PEDV-PT第7代(PEDV-PT-P7)。藉由混合1：1比例的PEDV-PT-P6和PEDV-PT-P7上清液，製備PEDV-PT-P6和7的病毒攻毒原液。藉由在Vero細胞上進行10倍連續稀釋接種，測定PEDV-PT-P6和7病毒原液的效價為105 TCID50/mL。
1.2 質體建構
針對昆蟲細胞所需，對來自台灣G2b PEDV-PT病毒株的S基因(Genbank登錄號KP276252)及N基因(Genbank登錄號AEZ68021.1)之核苷酸序列進行密碼子最佳化，並由ProTech(ProTech，LA，USA)合成。將PEDV全長S基因、轉譯為S1結構域的片段、和N基因選殖到pTriEx-3質體(Novagen,Merck Biosciences,Darmstadt,Germany)中，分別得到pTriEx-S、pTriEx-S1和pTriEx-N(參見第一圖)。pTriEx-3質體含有p10、CMV和T7三連啟動子，便於在昆蟲、哺乳動物和細菌細胞中表現。全長S蛋白質、S1結構域、及N蛋白質序列分別於質體pTriEx-S、pTriEx-S1及pTriEx-N中，由具有6xHis-標籤的TriEx啟動子驅動(第一圖)。mCherry基因由二元sv40-pag啟動子驅動，用於在Sf21和哺乳動物細胞中發出報導子螢光。根據In-Fusion® HD選殖套組(Clontech Laboratories Inc,CA,USA)的說明書構建質體。
1.3 重組桿狀病毒之製備
以Cellfectin(Life Technologies，CA，USA)將質體pTriEx-S、pTriEx-S1及pTriEx-N與FlashBACTM(Mirus,WI,USA)DNA共轉染到Sf21細胞 中，以進一步產生重組桿狀病毒S-Bac、S1-Bac及N-Bac。透過mCherry基因產物和6xHis標籤的表現追踪適當的病毒感染狀況和蛋白質表現情形。選擇具有高效價的S-Bac、S1-Bac及N-Bac病毒株，用於隨後的重組桿狀病毒製造。
1.4 西方墨點法(Western blotting)
將受感染的細胞的裂解物置於十二烷基硫酸鈉-聚丙烯醯胺梯度電泳(SDS-PAGE)凝膠(HR梯度凝膠溶液，TOOLS，台灣)中進行電泳。電泳後，將蛋白質轉移到PVDF膜上。使用小鼠抗6xHis-標籤單株抗體(1：5000稀釋，EnoGene，NY，USA)偵測蛋白質訊號。然後，使用HRP共價的山羊抗小鼠IgG(1：5000稀釋，Invitrogen，CA，USA)作為訊號偵測用的第二抗體。使用Classic Blue Autoradiography film BX(Life Science,MO,USA)透過ClarityTM Western ECL Blotting Substrates(Bio-Rad)偵測蛋白質條帶。
1.5以電子顯微鏡(EM)鑑定S-Bac和S1-Bac
從經接種S-Bac和接種S1-Bac的Sf21細胞培養中收集上清液。以10,000rpm離心30分鐘粗略地除去細胞碎片，然後收集上清液並將其置於SW28管(Beckman，CA，USA)中的25%(w/w)蔗糖層上，再於4℃下，以24,000rpm離心80分鐘，從而得到病毒顆粒。丟棄上清液後，以1mL PBS重新懸浮病毒沉澱物，然後在28000rpm下進行25-60%(w/w)蔗糖梯度離心3小時。收集病毒顆粒，並以PBS洗滌之以除去蔗糖。然後將純化所得病毒顆粒固定，再以抗-His免疫金顆粒標記，並如先前研究中所述，以陰性染色電子顯微鏡(EM)觀察。簡而言之，將等份的10μL病毒顆粒製劑載入至經碳塗覆的網格上，靜置5分鐘。然後以2%的磷鎢酸(PTA)染色網格1分鐘，然後去除過量的PTA並使網格完全乾燥，接著在EM下直接檢視網格。就免疫金顆粒標記而言，將病毒顆粒載入到經 膠體顆粒塗覆的EM網格上5分鐘。從網格邊緣以濾紙輕輕吸乾除去過量的病毒顆粒後，將抗-His標籤抗體(Invitrogen)加到網格上，並在室溫下靜置1小時。然後在室溫下以PBS洗滌該網格10秒，共洗滌6次，接著再將網格與6nm金-共軛的抗-小鼠IgG一起靜置1小時。然後，在PBS中洗滌六次後，將網格以2%PTA染色1分鐘，然後去除過量的PTA並使網格乾燥，之後在EM下檢視。
1.6 小鼠免疫流程
將12隻Balb/c小鼠隨機分成3組：對照組、S-Bac組和S1-Bac組。經由大腿上肌肉內注射S-Bac或S1-Bac以免疫小鼠，每次注射劑量為200μL之109 TCID50/mL。對照組小鼠注射200μL之Sf21細胞培養液。每一小鼠共經注射兩次，間隔2週。在第0天(免疫前)、第14天(免疫後2週)和第28天(加強免疫後2週)收集血液，用於評估PEDV-專一性IgG的變化。
1.7 仔豬免疫流程
選用15隻5週齡、Large Whitex Duroc、雜交、PEDV-血清陰性和糞便PEDV排出陰性的豬隻以供此實驗使用。所有仔豬均用耳標標記，隨機分為三組，包括對照組、S1-Bac IM注射組和S-Bac IM注射組，並養於三個獨立的房間。每組豬隻以2週的間隔於大腿兩側肌肉內注射分別2mL對照組培養液、2mL之109 TCID50/mL S1-Bac或2mL之109 TCID50/mL S-Bac兩次。在第28天，以5mL之105 TCID50/mL PEDV-PT-P6&7對所有豬隻進行口服攻毒。在攻毒之後，對臨床病徵進行評分，且每天收集直腸拭子，以監測病毒排出和黏膜IgA。每兩週收集血液，以評估PEDV S蛋白質-專一性血漿IgG。對動物進行的所有動物實驗程序均經國立台灣大學機構動物護理和使用委員會(台灣台北，NTU106EL-00054)審查批准。
1.8 臨床評分
每天觀察並記錄每隻豬的臨床體徵。與PEDV相關的下痢症狀分為四個等級：0，糞便正常；1，糞便呈鬆散狀；2，糞便呈半流體稠度；3，水樣下痢。另外，每組豬隻每兩週秤重一次。
1.9 偵測全身性IgG之ELISA
如前所述地，在4℃下將HEK 293細胞表現的經純化的重組S蛋白質塗覆於96孔、Nunc maxi-soap盤(ThermoFisher Scientific,Massachusetts,USA)，並保持16小時；該重組S蛋白質係於稀釋緩衝液(KPL,SeraCare,MA,USA)中稀釋為2μg/μL的濃度。接著先以200μL洗滌緩衝液(KPL，SeraCare)洗滌經S蛋白質塗覆的培養盤6次，並在室溫(RT)下以阻斷緩衝液(KPL，SeraCare)進行阻斷1小時。以3000rpm離心30分鐘並除去血液細胞後，將小鼠和豬的血液樣本以阻斷緩衝液(KPL，SeraCare)稀釋40倍，然後放入經S蛋白質塗覆的培養盤中，並在室溫下靜置1小時。靜置後，以200μL洗滌緩衝液(KPL，SeraCare)洗滌該培養盤六次後，加入1000倍稀釋於阻斷緩衝液(KPL，SeraCare)中的辣根過氧化物酶(HRP)共軛之山羊抗小鼠IgG(KPL，SeraCare)或HRP共價的山羊抗豬IgG(KPL，SeraCare)偵測抗體。靜置1小時後，以200μL洗滌緩衝液(KPL，SeraCare)洗滌該培養盤六次。在室溫下加入50μL之ABTS®過氧化酶受質系統(KPL，SeraCare)至每孔中反應10分鐘。透過加入50μL終止溶液(KPL，SeraCare)終止反應，並經由EMax Plus微盤讀取儀(MolecularDevices，Crawley，UK)，在405nm波長下讀取光學密度值(OD)。以樣本對陽性反應比(S/P比)顯示實驗結果。
1.10 偵測黏液IgA之ELISA
將每個直腸拭子重新懸浮於1mL PBS中，並在阻斷緩衝液(KPL，SeraCare)中稀釋2倍。ELISA方法如上所述，並修改為將懸浮上清液在4℃下靜置16-18小時，然後與山羊抗-豬IgA二級抗體(KPL，SeraCare)靜置1小時，以檢測糞便IgA，染色時間為20分鐘。
1.11 RNA萃取、cDNA合成與探針定量即時PCR
將每個直腸拭子重新懸浮於1mL PBS中，取200μL的每一上清液用於RNA萃取。根據製造商的說明，使用QIAamp cador Pathogen迷你套組(Qiagen)，經由QIAcube HT(Qiagen,Chatsworth,CA,USA)進行RNA萃取的程序。使用QuantiNova探針PCR套組(Qiagen)，經由逆轉錄進行互補DNA(cDNA)的合成。即時PCR根據先前建立的方法修改，使用專一性探針(3’-FAM-TGYYACCAYYACCACGACTCCTGC-BHQ1-5’；SEQ ID NO：12)、PEDV-N正向引子(3’-CGCAAAGACTGAACCCACTAAC-5’；SEQ IDNO：13)，以及PEDV-N逆向引子(3’-TTGCCTCTGTTGTTACTTGGAGAT-5’；SEQ ID NO：14)。即時PCR條件為95℃2分鐘，以及45個循環的95℃15秒及55℃15秒。
1.12 中和試驗
將每隻豬的血漿樣本靜置於56℃30分鐘，以使補體去活化。中和試驗程序如先前公佈的進行一些修改。簡而言之，在Dulbecco改良式Eagle培養液(DMEM)(Gibco，Gaithersburg，USA)中，將血漿樣本稀釋10倍至320倍。將50微升經稀釋的血漿樣本與等體積的200 TCID50/mL的PEDV-PT-P6&7混合。在37℃靜置1小時後，將混合物加到在長於96孔盤的Vero細胞上，該細胞達90%覆蓋度。將細胞在37℃下培養1小時，以DMEM洗滌兩次，並替換為100μL新鮮的接種後(PI)培養液。該培養液含有補充有磷酸胰蛋白腖培養基(0.3%)(Sigma, Missouri,USA)、酵母萃取物(0.02%)(Acumedia,CA,USA)和10μg/mL胰蛋白酶(Gibco,Gaithersburg,USA)的DMEM(Gibco,Gaithersburg,USA)。在第24小時觀察細胞病變效應(CPE)。每一血漿的中和效價係以無CPE的最高稀釋倍數的倒數計算。
1.13 統計分析
IgG濃度、IgA濃度、體重、抗體效價和病毒排出的結果，係以SAS 9.4(統計分析系統，SAS Institute Inc.,Cary,NC,USA)彙編。每組間的差異係經由單因子變異數分析(ANOVA)比較。顯著性係以p值<0.05(p<0.05)決定。
1.14 基於經S-Bac、S1-Bac、及N-Bac感染之細胞的ELISA
將經S-Bac、S1-Bac、及N-Bac感染之Sf21細胞以4x104個細胞的量於26℃分別塗覆於96孔之Nunc maxi-soap盤(Thermo Fisher Scientific,Massachusetts,USA)1個小時。先以4%多聚甲醛固定該經受重組桿狀病毒感染之Sf21細胞塗覆之培養盤15分鐘，再以200μL PBST清洗之3次，並以阻斷緩衝液於室溫下阻斷之1個小時。以3000rpm離心30分鐘並除去血液細胞後，將豬的血液樣本以阻斷緩衝液稀釋100倍，然後放入經受重組桿狀病毒感染之Sf21細胞塗覆的培養盤中，並在室溫下靜置1小時。靜置後，以200μL PBST洗滌該培養盤3次後，加入1000倍稀釋於阻斷緩衝液(KPL，SeraCare)中的HRP共軛的山羊抗豬IgG(KPL，SeraCare)偵測抗體。靜置1小時後，以200μL PBST洗滌該培養盤六次。在室溫下加入50μL之1-Step Ultra TMB-ELISA試劑至每孔中反應20分鐘。透過加入50μL終止溶液終止反應，並經由EnSpire Series Multilabel微盤讀取儀在450nm波長下讀取光學密度值(OD)。
實驗 1 ：以重組桿狀病毒 S-Bac 與 S1-Bac 表現 PEDV 全長 S 蛋白質與 S1 結構域。
將S1-Bac、S-Bac及N-Bac在Sf21細胞中增殖後，將Sf21細胞裂解，並經由西方墨點分析評估S蛋白質、S1結構域及N蛋白質的表現，其中該S-Bac、S1-Bac及N-Bac係衍生自以 AcMNPV桿狀病毒基因組共轉染的pTriEx-S、pTriEx-S1及pTriEx-N。觀察到S蛋白質、S1結構域及N蛋白質的正訊號分別位於200 kDa、100 kDa和70 kDa（第二圖 ）。作為陰性對照組之以野生型AcMNPV病毒感染的Sf21細胞的裂解物中未觀察到可偵測的訊號。
實驗 2 ：透過電子顯微鏡（ EM ）觀察在 S-Bac 和 S1-Bac 表面上的 S 蛋白質和 S1 結構域。
為了研究S蛋白質或S1結構域是否表現於重組桿狀病毒的表面上，以膠體金標記的抗體辨識從培養物上清液中收集及純化所得S-Bac和S1-Bac病毒顆粒，並透過EM觀察。如第三圖所示，EM圖像顯示規則的長桿狀病毒體，其大小約為200 nm，在S-Bac（第三 a 圖 ）和S1-Bac（第三 b 圖 ）病毒顆粒的頂點具有清晰的膠體金顆粒。此說明全長S蛋白質和S1結構域可適當地錨定在桿狀病毒的外套膜上。
實驗 3: 小鼠中的全身性 PEDV S- 專一性 IgG 。
為了評估S1-Bac和S-Bac的免疫原性，在第0天（免疫前）、第14天（免疫後2週）和第28天（加強免疫後2週）測定小鼠中PEDV S專一性血液IgG濃度，使用基於PEDV S的間接ELISA測定。分析平均樣本比陽性對照組比例（S/P比），如第四圖 所示。在第14天（免疫後2週），S-Bac和S1-Bac組的小鼠全身IgG濃度之平均S/P比分別為0.15 ± 0.04 和0.1 ± 0.03，與對照組無顯著差異。在第28天（加強免疫後2週），在S-Bac和S1-Bac組中，PEDV S專一性IgG濃度的平均S/P比分別升高至0.53 ± 0.16和0.42 ± 0.08，顯著高於對照組之0.18 ± 0.04。在本研究中，並未觀察到S1-Bac和S-Bac組之間於全身性PEDV專一性IgG濃度的統計學差異。
實驗 4: 小鼠血液中的中和抗體效價。
分析小鼠血清中的抗PEDV-PT的中和抗體。如第五圖 所示，在第0天所有組別皆無可偵測的中和抗體（免疫前）。在加強免疫後2週，S-Bac組中的平均中和抗體效價升高並達到1: 30 ± 14。
實驗 5 ：豬的全身性 PEDV S- 專一性 IgG 和糞便 PEDV S- 專一性 IgA 。
為了估計對PEDV的全身免疫反應，在第0天（免疫前）、第14天（免疫後2週）和第28天（加強免疫後2週）評估血漿IgG。分析平均S/P比例並顯示在第六圖 中。在第14天（免疫後2週），S-Bac和S1-Bac組中，豬的全身性IgG濃度之平均S/P比分別升至0.62 ± 0.25和0.58 ± 0.08。在第28天（加強免疫後2週），S-Bac和S1-Bac組的豬IgG濃度的平均S/P比分別顯著升高至0.63 ± 0.09和0.77 ± 0.16，與對照組相較具差異顯著性（p >0.05）。就PEDV-S專一性黏膜IgA濃度而言（第七圖 ），在第14天（免疫後2週），S1-Bac組中的IgA濃度略微升高。
實驗 6: 豬血液中的中和抗體效價。
第八圖 顯示在不同組中，針對PEDV-PT株的中和抗體之平均效價。本研究偵測到經S1-Bac和S-Bac免疫的組別具有不同濃度之對PEDV-PT株的中和抗體。在對照組中未偵測到對PEDV-PT株的中和抗體。在第28天（加強免疫後2週），S1-Bac和S-Bac組的中和效價分別為1:16 ± 12和1:24 ± 8，高於對照組之1:6 ± 4.9。
實驗 7: 豬隻的體重。
引入動物設施後，於研究期間每兩週監測一次每隻仔豬的體重（第九圖 ）。儘管與S1-Bac和S-Bac組相較，對照組中的豬在接種期間的體重增加略少，但在研究期間所有組中未觀察到體重的顯著差異。說明疫苗對仔豬沒有明顯的不良影響。
實驗 8: 臨床評分。
在PEDV-PT攻毒之前，在所有組中均未觀察到臨床病徵。以PEDV-PT-P6＆7對豬進行口服攻毒後（第十圖 ），對照組中5隻豬中的3隻（3/5）呈現輕度至中度下痢，在攻毒後2天（DPC）得分為1至2。在4至7 DPC時，對照組中的所有豬均顯示中度至重度臨床病徵。在研究期間，對照組的所有豬都有5至6天的水樣下痢（得分3），並在9 DPC時恢復。與對照組中的豬相較，經S-Bac和S1-Bac免疫的豬隻顯示下痢的總體嚴重性降低、疾病發作延遲並縮短病程。與研究期間的對照組相較，經S1-Bac免疫組的臨床症狀的出現被推遲至3至4個DPC，並且所有豬隻皆顯示較輕的症狀，得分為1至2。重要的是，經S-Bac免疫組在研究期間五隻（4/5）豬中有四隻沒有出現臨床症狀，僅有一隻豬在6 DPC時出現軟糞便（得分1）和11 DPC時半流糞（得分2）之外。
實驗 9 ：糞便病毒排出。
PEDV的病毒排出係經由基於PEDV N蛋白質即時RT PCR偵測。於第十一圖 中。對照組中的豬在1 DPC時開始將PEDV排出到糞便中，複製數的平均值為4.6 ± 0.19 log10 複製數/mL，在3至8 DPC期間出現連續增加和波動，在5 DPC時，病毒排出峰值為7.6±0.57 log10複製數/mL，並在8 DPC後下降。12 DPC後，對照組的大多數豬隻的病毒排出量均低於偵測極限。在經S1-Bac免疫組中，在3 DPC時開始偵測到病毒，平均複製數為2.5±3 log10複製數/mL，持續5天，5 DPC時病毒排出峰值為4.2±3.5 log10複製數/mL。重要的是，經S-Bac組中除了1隻豬在6 DPC時表現出間歇性病毒排出4.5 log10複製數/mL，以及在11 DPC時表現出7.7 log10複製數/mL，的大多數豬隻在0至10 DPC期間，並未偵測到病毒排出，。與對照組相較，S-Bac組的糞便病毒排出量在統計學上顯著降低(p<0.05)。
實驗10：使用趨化因子(CCL27/CTACK、CCL28/MEK、及CCL25/TECK)作為黏膜免疫調節子。
第12及13圖分別顯示，經肌肉內免疫失活性PEDV病毒顆粒(iPEDV)，並佐以CCL27/CTACK(SEQ ID NO：8)、CCL28/MEK(SEQ ID NO：9)、及/或CCL25/TECK(SEQ ID NO：10)的豬隻中觀察到PEDV專一性之全身性IgG及黏膜IgA的增多。在接種後(DPI)第28天，相較於對造組及iPEDV實驗組，經iPEDV組合CCL28、CCL25及CCL28、CCL25及CCL27、或CCL25、CCL27及CCL28免疫的仔豬可誘發更高的PEDV專一性之IgG的量(第12圖)。另關於PEDV專一性之黏膜IgA，在接種後(DPI)第28天，相較於對照組，在經iPEDV+CCL28及iPEDV+CCL25^27^28的實驗組中可觀察到具統計上顯著意義之PEDV專一性之黏膜IgA的增加(第13圖)。
使用基於昆蟲細胞之ELISA偵測經實驗性感染之仔豬的抗血清的專一性及靈敏度。第14圖顯示經PFDV感染之仔豬產生的抗體的吸光值(上排)及在受感染之前採集自該等仔豬的血漿的吸光值。該些實驗結果清楚的證實該基於昆蟲細胞之ELISA具有低的背景值且對於PEDV專一性血漿呈現高靈敏度（第14圖）。
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<213> porcine epidemic diarrhea virus
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Figure 108121966-A0305-02-0055-42

Claims (18)

  1. 一種桿狀病毒，其表現：(1)豬流行性下痢病毒S蛋白質；或(2)一融合蛋白質，該融合蛋白質包括：豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質；及外套膜醣蛋白，其中該外套膜醣蛋白實質上由SEQ ID NO：4所組成。
  2. 如請求項1之桿狀病毒，其表現豬流行性下痢病毒S蛋白質；其中該S蛋白質包含SEQ ID NO：1。
  3. 如請求項1之桿狀病毒，其表現該S蛋白質和該外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：5的融合蛋白質。
  4. 如請求項1之桿狀病毒，其表現該S1結構域和外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：6的融合蛋白質。
  5. 如請求項1之桿狀病毒，其表現該N蛋白質和該外套膜醣蛋白形成包含SEQ ID NO：7的融合蛋白質。
  6. 一種醫藥組合物，其包含如請求項1至5中任一項所述之桿狀病毒，以及醫藥上可接受的載體。
  7. 如請求項6之醫藥組合物，其更包含佐劑。
  8. 如請求項7之醫藥組合物，其中該佐劑包含熱不穩定腸毒素B次單位(LTB)、霍亂毒素B(CTB)、趨化因子(C-C模體)配體25、趨化因子(C-C模體)配體27、趨化因子(C-C模體)配體28、完全弗氏佐劑(complete Freund’s adjuvant)、不完全弗氏佐劑、氧化鋁凝膠、界面活性劑、陰離子聚合物、油性乳化物，或其組合。
  9. 一種表現卡匣，包含：一啟動子；及(1)編碼一融合蛋白質之一多核苷酸，包括：一第一多核苷酸，其編碼SEQ ID NO：4；以及一第二多核苷酸，其編碼為豬流行性下痢病毒S蛋白質、S蛋白質的S1結構域、或豬流行性下痢病毒N蛋白質；或(2)該第二多核苷酸，其編碼為該豬流行性下痢病毒S蛋白質。
  10. 如請求項9之表現卡匣，其中該第二多核苷酸編碼SEQ ID NO：1。
  11. 如請求項9之表現卡匣，其中該多核苷酸編碼SEQ ID NO：5。
  12. 如請求項9之表現卡匣，其中該多核苷酸編碼SEQ ID NO：6。
  13. 如請求項9之表現卡匣，其中該多核苷酸編碼SEQ ID NO：7。
  14. 如請求項9之表現卡匣，其包含：SEQ ID NO：11；該第一多核苷酸，其編碼SEQ ID NO：4；以及該第二多核苷酸，其編碼為該豬流行性下痢病毒S蛋白質、該S蛋白質的S1結構域、或該豬流行性下痢病毒N蛋白質。
  15. 一種細胞，其包含如請求項9至14中任一項所述之表現卡匣。
  16. 如請求項15之細胞，其中該細胞為昆蟲細胞或哺乳類細胞。
  17. 一種於活體外評估豬流行性下痢病毒感染的方法，其包含： 取得一待評估之個體的樣本；使該樣本與如請求項1至5中任一項所述之桿狀病毒或如請求項15或16所述之細胞接觸；及偵測結合於該桿狀病毒或該細胞之一抗體。
  18. 如請求項17之方法，其中該樣本為血漿。
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