TWI722181B

TWI722181B - 一種對突變型多巴脫羧酶基因做剪接調整的反義寡核苷酸及其使用方法

Info

Publication number: TWI722181B
Application number: TW106114680A
Authority: TW
Inventors: 蔡啟仁; 遲景上; 李秀芬
Original assignee: 臺中榮民總醫院
Priority date: 2016-05-03
Filing date: 2017-05-03
Publication date: 2021-03-21
Also published as: TW201739915A; TW201817873A; CN107338250A; CN107338250B; US10920225B2; TWI669394B; US20170321217A1

Abstract

本發明揭露一種對突變型多巴脫羧酶基因做剪接調整的反義寡核苷酸，其序列與SEQ ID NO：1互補，這種反義寡核苷酸能調整突變型之多巴脫羧酶基因的選擇性剪接點，有助於研究發展治療芳香族L-胺基酸脫羧酶缺乏症的藥物。本發明還揭露了上述反義寡核苷酸於體外細胞的使用方法。

Description

一種對突變型多巴脫羧酶基因做剪接調整的反義寡核苷酸及其使用方法

本發明係關於一種反義寡核苷酸，尤指一種可調整突變型多巴脫羧酶基因序列剪接的反義寡核苷酸。

芳香族L-胺基酸脫羧酶(aromatic L-amino acid decarboxylase，簡稱AADC)為人類神經傳導物質多巴胺(dopamine)及血清素(serotonin)的合成酶。AADC的關鍵基因為多巴脫羧酶基因(dopa decarboxylase gene，簡稱DDC基因)，具有15個表現子。AADC缺乏症屬罕見隱性遺傳疾病，發明人於2009年研究發現，台灣的AADC缺乏症主要為DDC基因介入子6的5端剪接位點下游第四個鹼基(+4)由A突變為T，簡稱IVS6+4A>T突變。IVS6+4A>T突變繼而使得DDC基因的pre-mRNA從一個錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)剪接，使得突變的DDC基因的mRNA於表現子6之後多插入37個鹼基對的介入子6序列，因此，IVS6+4A>T突變造成基因異常剪接。

反義寡核苷酸(antisense oligonucleotide，簡稱ASO)是一種人工合成的單股DNA或RNA分子，長度約為13至45個鹼基，可與互補的mRNA雜交而抑制該mRNA轉譯成蛋白質。此外，先前研究已報導過將不同型式的ASO送入細胞中能成功地調整基因剪接異常。

發展針對DDC基因的異常剪接進行調整甚至修正的ASO有助於發展治療AADC缺乏症的藥物，而針對IVS6+4A>T突變的DDC基因所設計的ASO對台灣AADC缺乏症的藥物研發更是有助益。因此，本發明設計特定序列之ASO以調整IVS6+4A>T突變的DDC基因的剪接位置。

本發明之主要目的在於實現一種反義寡核苷酸，其可調整IVS6+4A>T突變的多巴脫羧酶基因剪接。

為達成前述目的，本發明揭露一種對突變型多巴脫羧酶基因做剪接調整的反義寡核苷酸，其序列與SEQ ID NO：1互補。

本發明中一較佳實施例所揭露的反義寡核苷酸，其中該突變型多巴脫羧酶基因的突變型可為IVS6+4A>T。

本發明中一較佳實施例所揭露的反義寡核苷酸，其可提升IVS6+4A>T突變細胞內的血清素含量。

本發明中一較佳實施例所揭露的反義寡核苷酸，其可調整IVS6+4A>T突變型多巴脫羧酶基因的剪接片段分布。

本發明中一較佳實施例所揭露的反義寡核苷酸，其可減少IVS6+4A>T突變型多巴脫羧酶基因異常剪接片段。

本發明中一較佳實施例所揭露的反義寡核苷酸，其序列可為SEQ ID NO：2-12或14中任一種。

本發明之主要目的在於實現一種以反義寡核苷酸對IVS6+4A>T突變的多巴脫羧酶基因剪接發生調整的方法。

為達成前述目的，本發明揭露一種利用反義寡核苷酸調整體外IVS6+4A>T突變細胞中的多巴脫羧酶基因剪接的方法，包含有以下步驟：加入如上述任一反義寡核苷酸至含有IVS6+4A>T突變細胞的培養液中，培養72小時。

如此，本發明所揭露的反義寡核苷酸及方法對IVS6+4A>T突變的多巴脫羧酶基因剪接發生調整。

有關本發明之詳細特點，將於後續之詳細說明中予以描述。然而，在本發明領域中具有通常知識者應能瞭解，該等詳細說明以及實施本發明所列舉之特定實施例，僅用於說明本發明，並非用以限制本發明之專利申請範圍。

第1A圖為一代表的電泳膠照片，顯示肇因於IVS6+4A>T突變的AADC缺乏症病人(Pt)與正常人(Ct)的細胞中的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至8之間可能出現的剪接片段。

第1B圖為第1A圖的量化結果。

第1C圖示意DDC基因表現子5至8的選擇性剪接模式(alternative splicing pattern)。

第2A圖顯示ASO與DDC基因互補的位置。

第2B圖為一代表的電泳膠照片，顯示IVS6+4A>T突變型細胞經ASO處理後的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至8之間可能出現的剪接片段。

第2C圖為第2B圖的量化結果。

第2D圖顯示IVS6+4A>T突變型細胞經ASO處理後，其細胞內的血清素的含量上升。

第3A圖示意ASO與DDC基因互補的位置。

第3B圖為一代表的電泳膠照片，顯示IVS6+4A>T突變型細胞經不同濃度的ASO處理後的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至8的位置。

第3C圖為第3B圖的量化結果。

第3D圖為一代表的電泳膠照片，顯示IVS6+4A>T突變型細胞經不同濃度的ASO處理後的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至8的位置。

第3E圖為第3D圖的量化結果。

第3F圖為一代表的電泳膠照片，顯示 IVS6+4A>T突變型細胞經ASO處理後的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至表現子8的位置。

第3G圖為第3F圖的量化結果。

第4A圖為一代表的照片，顯示IVS6+4A>T突變型細胞經ASO處理後的蛋白質表現，其中標出信號識別顆粒蛋白30、40、55在西方墨點法轉漬膜上的位置和強度。

第4B圖為一代表的電泳膠照片，顯示IVS6+4A>T突變型細胞經ASO處理後的mRNA片段，其中標出DDC基因的表現子5至8的位置。

第4C圖為第4B圖的量化結果。

第5A圖為IVS6+4A>T突變型細胞(Mut)與正常細胞(Ct)的DDC蛋白質表現。

第5B圖為IVS6+4A>T突變型細胞與經不同ASO處理後的DDC蛋白質表現。

第6A圖為IVS6+4A>T突變型細胞(Mut)與正常細胞(Ct)的血清素表現。

第6B圖為IVS6+4A>T突變型細胞經不同ASO處理後的血清素表現。

第7A圖為本發明各式ASO對錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)的影響示意圖。

第7B圖為電腦預測會影響正常DDC基因選擇性剪接模式的各種因子。

第7C圖為電腦預測會影響IVS6+4A>T突變型DDC基因選擇性剪接模式的各種因子。

第8圖為本發明以DDC基因的介入子6為互補目標所設計出的29個ASO序列。

第9圖為本發明所揭露的所有ASO序列位置圖。

為方便理解本發明，以下定義一些術語：核苷酸(nucleotide)：一單分子之去氧核醣核酸(DNA)或核醣核酸(RNA)，其包含一五碳醣(pentose)、一磷酸根(phosphate)及一含氮雜環鹼基(nitrogenous heterocyclic base)。該鹼基鍵結該五碳醣之第一個碳原子(1端碳)，且該鹼基及五碳醣的組合係一核苷(nucleoside)。包含與該五碳醣之第三個碳原子(3端位置)與第五個碳原子(5端位置)鍵結之至少一個磷酸根的一核苷係一核苷酸。該五碳醣若為去氧核醣則稱為去氧核醣核苷酸，該五碳醣若為核醣則稱為核醣核苷酸。

寡核苷酸(oligonucleotide)：包含兩個以上之核苷酸，其中之一核苷酸的五碳醣的5端位置磷酸根與相鄰的核苷酸的五碳醣的3端位置磷酸根相接合形成，其較佳地係超過三個，而通常超過十個，其確切長度取決於許多因素，其依次係依照該寡核苷酸之最佳功能或用途而定。

核酸(nucleic acid)：核苷酸之一聚合物，去氧核醣核苷酸聚合為去氧核醣核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)，核醣核苷酸聚合為核醣核酸(ribonucleic acid,RNA)。

5端(5-prime,5’)：指相接合的核苷酸之五碳醣的第五個碳原子(5端位置)處缺少一核苷酸的一端，在該端可以有其它基，如一或多個磷酸根。

3端(3-prime,3’)：指相接合的核苷酸之五碳醣的第三個碳原子(3端位置)處缺少一核苷酸的一端，在該端可以有其它基，通常係一氫氧根。

基因(gene)：一核酸，其核苷酸序列係針對一RNA及/或一多肽類(蛋白質)編碼。一基因可以是RNA或DNA。

先驅訊息核醣核酸(precursor messenger RNA,pre-mRNA)：一種前驅轉錄分子(primary transcript)，其經由轉錄(transcription)作用在真核細胞中以RNA聚合酶(RNA polymerase)產生。一pre-mRNA序列包含：5端非轉譯區(5’ untranslated region)、3端非轉譯區(3’ untranslated region)、表現子、及介入子。

表現子(exon)：一基因轉錄分子序列之一部分或許多部分，其編碼蛋白質讀框(open reading frame)。

介入子(intron)：一基因轉錄分子序列之一部分或多個部分，其編碼非蛋白質讀框，介入子的5端為5端剪接位點(5’ splice donor site)，介入子的3端為3端剪接位點(3’ splice acceptor site)。

訊息核醣核酸(messenger RNA,mRNA)：pre-mRNA表現子之組合，其在細胞核內剪接結構除去介入子之後形成，並作為用於蛋白質合成的一蛋白質編碼RNA。

反義(antisense)：當轉錄作用進行時，雙股DNA中會被RNA聚合酶當作模板的一股即為正義(sense strand或sense nucleic acid)，其序列與轉錄出的mRNA互補。而與sense strand互補的一股則為反義(antisense strand或antisense nucleic acid)。反義寡核苷酸可為一種DNA或RNA片段，與pre-mRNA或mRNA互補。

互補(complemetary)：一寡核苷酸或一核酸的鹼基排序(一序列之核苷酸)與另一寡核苷酸或另一核酸的鹼基排序(另一序列之核苷酸)依鹼基對原則(base-pairing rule)，則稱該二寡核苷酸或該二核酸互補。例如：序列「A-G-T」與序列「T-C-A」及「T-C-U」互補。互補可以在一股寡核苷酸與一股核酸之間、兩股DNA之間、一股DNA與一股RNA之間、或是在兩股RNA之間。

雜交(hybridization)：一條單股的核酸或寡核苷酸與另一條單股且互補的核酸或寡核苷酸組合成一雙股分子的過程。

剪接(splicing)：經轉錄作用形成的pre-mRNA變成mRNA的過程之一，即將pre-mRNA中的介入子移除及合併表現子。剪接還分為分子內剪接(cis splicing)以及分子間剪接(trans splicing)。

選擇性剪接(alternative splicing)：一個由DNA經轉錄作用後的pre-mRNA能藉由多種選擇性剪接產生不同序列的mRNA，即產生各種剪接片段，各種剪接片段再經由轉譯作用產生多種相似卻又獨特的蛋白質。

異常的剪接片段：若一mRNA序列與正常細胞中所出現的mRNA序列不同，稱為異常的剪接片段。

調整基因的剪接片段：加入細胞中的反義寡核苷酸若與互補的pre-mRNA鍵結，則將影響pre-mRNA剪接，產生與平常不同的剪接片段，或是產生種類相同但數量與平常不同的剪接片段。上述情況稱為該反義寡核苷酸能調整該基因的剪接片段。

血清素(serotonin)：又稱5-羥色胺酸(簡稱為5-HT)，為一種神經傳導物質，由5-hydroxytryptophan經芳香族L-胺基酸脫羧酶(AADC)轉化為血清素，因此血清素可做為L-胺基酸脫羧酶正常表現的檢測指標。

以下說明本發明相關的實驗方法，其中mRNA片段的含量係相較於細胞中所有的mRNA含量且以百分比表示。由於傳統的ASO進入細胞後會被核酸內切酶(endonucleases)或核酸外切酶(exonucleases)迅速地分解，因此本發明以嗎啉基ASO(morpholino ASO)取代傳統的ASO。嗎啉基ASO即是以嗎啉環(morpholine ring)取代傳統ASO的六碳環(deoxyribosoe ring)結構。嗎啉基ASO結構較穩定且擁有更佳的效率與專一性。

實驗一：細胞培養

實驗用之人類淋巴母細胞(human lymphoblastoid cells)分離自正常人及肇因於IVS6+4A>T突變型的AADC缺乏症病人的同型合子(homozygous IVS6+4A>T cells)，並培養在含有20%胎牛血清、100units/ml青黴素、100μg/ml鏈黴素及0.25μg/ml兩性黴素B(amphotericin B)的培養液中。培養的溫度為37℃，二氧化碳為5%的大氣壓。所有培養液及化學物質購自HyClone(GE Healthcare Life Sciences,Logan,UT,USA)。

實驗二：反義寡核苷酸轉染(transfect)細胞

取8x10⁶細胞/ml與10-30μM的ASO共同培養在含有胎牛血清的RPMI-1640中72小時，其中ASO以8μM Endoporter(Genetool,Philomath,OR,USA)攜帶。

本發明所使用到的ASO如以下表所示：

實驗三：分離RNA及對DDC mRNA做定量逆轉錄聚合酶鏈式反應(quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction，簡稱定量RT-PCR)

培養細胞中所有的RNA皆由TRI Reagent(Molecular Research Center,Ohio,USA)萃取出來，再從中取出500ng RNA進行定量RT-PCR(Superscript III,Invitrogen Co.,Carlsbad,CA,USA)，其中DDC mRNA表現子5至8將被增量。增量的設定簡述如下：RT步驟以55℃持續60分鐘，接著的PCR步驟由95℃持續30秒、60℃持續30秒及72℃持續50秒進行30個循環。定量RT-PCR的產物以2%瓊脂糖凝膠分離，續以凝膠綠染劑(Gelgreen,Biotium,Inc.Hayward,CA,USA)染色，最後以藍光燈箱觀察。亮帶的光強度以低量DNA梯度(low DNA mass ladder,Invitrogen)校正並以影像分析軟體(AlphaView,Protein Simple,San Jose,CA,USA)計算。

實驗四：蛋白質分離及西方墨點分析(Western blot analysis)

從經ASO處理過的細胞中萃取三種絲胺酸/精胺酸豐富蛋白質(Ser/Arg-rich protein，簡稱SR蛋白質)，分別為SRp30c、SRp40及SRp55。取40μg的細胞均質(homogenate)與等量的2倍標準SDS樣本緩衝溶液混合，並在電泳前煮沸10分鐘。2倍標準SDS樣本緩衝溶液包含125mM Tris-HCl(pH 6.8)，4%十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate，SDS)，20%甘油，10% β-巰基乙醇(β-mercaptoethanol)及0.25%溴酚藍。蛋白質以12% SDS-PAGE分離並使用轉印槽轉移到轉印模片上。膜片接著依照順序以阻隔溶液處理，續經適當稀釋的SR蛋白質抗體(SRp30c抗體購自Proteintech group,Manchester,UK、SRp40抗體購自MBL,Nagoya,Japan、SRp55抗體購自Santa Cruz Biotechnology,Texas)處理，之後再經IgG抗體(goat anti-rabbit IgG(H+L)polyclonal antibody conjugated to peroxidase,Jackson,PA,USA)處理。接著膜片經過清洗之後，蛋白質的免疫活性以Immobilon Western HRP Substrate(EMD Millipore,Darmstadt,Germany)觀察，並以ImageQuant LAS 4000(GE Healthcare,Bucks,UK)紀錄。阻隔溶液為具有5%脫脂牛奶的磷酸鹽緩衝生理食鹽水。

實驗五：血清素含量測定

依照廠商建議的實驗流程，利用酵素免疫分析系統(serotonin high sentivity ELISA,IBL,Germany)測定細胞中的血清素含量。以免疫沈澱溶解緩衝液(immunoprecipitation lysis buffer)採集並且萃取細胞後，取出上清液進行ELISA分析。依照廠商的建議，使用非線性迴歸模型進行曲線擬合法(curve fitting)。最後，利用雙尾學生T測試(two-tailed student’s t-test)比較ASO處理後的細胞與控制組中以雜燴寡核苷酸處理處理後的細胞當中血清素的表現濃度。

實驗六：DDC蛋白質檢測

細胞內的DDC蛋白質濃度係使用鄰近延伸檢測技術(proximity extension assay,PEA)，利用Proseek檢測套組(Proseek Assay development Kit,Olink Bioscience,Sweden)以及廠商建議的實驗流程來進行。以免疫沈澱溶解緩衝液採集並且萃取細胞後，取出上清液進行PEA分析。寡核酸A和寡核酸B嵌合在多株人類DDC抗體(R&D Systems,USA)，分別創造出DDC蛋白質的Proseak探針A和探針B。然後，將Proseek探針A和B在分析溶液中混合，以準備探針混合溶液(probe master mixture)。接著將3μl探針混合溶液和13μl細胞萃取液置入反應管中，在室溫下培養2個小時。接著在探針延長步驟中，將反應管放置在已經預熱的PCR反應器，於37℃培養5分鐘，再將76μl預延長混合液(pre-extention master mixture)加入並且在37℃培養5分鐘。培養結束後，加入20μl含有延長合成酶的延長混合液(extention master mixture)，在37℃培養20分鐘進行合成步驟，接著在85℃下培養10分鐘來去除延長合成酵素的活性。最後，使用Rotorgene 6000(Cobett Research,Australia)以下列條件進行即時PCR，95℃下5分鐘進行1循環，接著95℃下15秒和60℃ 1分鐘進行45循環。

實驗七：電腦模擬

潛在的基因剪接調節因子以SpliceAid(http：//www.in-troni.it/splicing.html)，ESRsearch(http：//ibis.tau.ac.il/ssat/ESR.htm)及ESEfinders(http：//rulai.cshl.edu/cgi-bin/tools/ESE3/esefinder.cgi？process=home)預測。剪接調節因子的調節強度則是以MaxEntScan(http：//genes.mit.edu/burgelab/maxent/Xmaxentscan_scoreseq.html)預測。

結果一：正常人與IVS6+4A>T突變型AADC缺乏症病人在分離淋巴細胞中的表現模式

首先進行實驗一取得正常人的淋巴母細胞(正常細胞Ct1-Ct3)及肇因於IVS6+4A>T突變型的AADC缺乏症病人的淋巴母細胞(Pt1-Pt3)，接著進行實驗三分析兩種細胞中的DDC基因剪接片段分布。

請見第1A、1B圖，正常細胞中的DDC基因以剪接片段5-6-7-8所占比例最多，其他還有包含較少量的一新穎表現子6a的片段5-6-6a-7-8，及片段5-7-8。而IVS6+4A>T突變型細胞中的DDC基因以剪接片段5-7-8所占比例為大宗，其他則是包含了在表現子6之後多出的一段長37個核苷酸的異常片段(5-6+37-7-8及5-6+37-6a-7-8)。需注意的是，剪接片段5-7-8代表基因剪接跳過表現子6+37或表現子6，此外，正常細胞中也含有片段5-7-8，只是所佔比例低於11%。

第1C圖是根據第1B圖的結果歸納出DDC基因的選擇性剪接模式(alternative splicing pattern)示意圖，圖中的斜線連接DDC基因剪接後的mRNA片段，斜線越粗代表以此方式剪接的機率越大。

結果二：ASOs修正IVS6+4A>T突變型AADC缺乏症病人在淋巴細胞中的基因剪接異常

本發明所設計的ASO長度為25個核苷酸序列長度，購自Genetools(Philomath,OR,USA)。一共有四類ASO。第一類ASO的互補目標為DDC基因的介入子6，設計的互補序列由介入子6的5端剪接位點(即表現子6與介入子6的交界處)開始，逐一向下游移動直到包含IVS6+4A>T突變型DDC基因的錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)，設計並考量ASO與互補目標的結合能(ASO-targeting binding energy)、變性溫度(melting temperature，Tm)及RNA的二級結構。共有29個適合的ASO，代號為A-2、A-1、A~Z、AA，其詳細的序列請見第8圖。

此外，本發明還利用一種長度相同、載體相同，但隨機序列的寡核苷酸做為控制組(scr)，以驗證ASO之功效。

進行實驗一製備實驗用的細胞，再由上述29個ASO挑選其中5個(ASO-D、ASO-K、ASO-R、ASO-W、ASO-AA)進行實驗二、三以證明其調整IVS6+4A>T突變型DDC基因剪接之功效，上述5種ASO與DDC基因互補的位置請見第2A圖。

將上述5種濃度為30μM的ASO轉染入IVS6+4A>T突變細胞並培養72小時。由定量RT-PCR後的結果發現，5種ASO都能使IVS6+4A>T突變細胞中出現數量不一的正常剪接片段(第2B、2C圖中的5-6-7-8)。由十個獨立的重複操作歸納出這5種ASO的校正潛力(restoration potential)，即正常剪接片段百分比除以異常剪接片段 (5-6+37-7-8)百分比。ASO-AA將正常剪接片段由0%增加為7%，異常剪接片段僅剩3.5%，因此校正潛力為2：1。ASO-W將正常剪接片段增加為13%，異常剪接片段僅剩3%，因此校正潛力為4.3：1。ASO-R將正常剪接片段增加為24%，異常剪接片段僅剩8%，因此校正潛力為3：1。ASO-K將正常剪接片段增加為12%，異常剪接片段為18%，因此校正潛力為0.7：1。ASO-D將正常剪接片段增加為41%，而完全沒有異常剪接片段(5-6+37-7-8)出現，因此，ASO-D修正了IVS6+4A>T突變型DDC基因的異常剪接。不過，ASO-D使得另外二種新穎卻是異常的剪接片段出現，片段5-6+37-6a-6b-7-8出現7.81%及片段5-6+37-6a'-6b’-7-8出現3.6%。除此之外，ASO-D及ASO-R相較於控制組還能減少剪接片段5-7-8的比例，其中，ASO-R減少剪接片段5-7-8至49%，ASO-D減少剪接片段5-7-8至38%。

因此，上述ASO-D ASO-K、ASO-R、ASO-W、ASO-AA均能修正異常片段5-6+37-7-8，產生出正常的剪接片段5-6-7-8，並且能夠減少片段5-7-8。

進行實驗五測量IVS6+4A>T突變型細胞中的血清素發現，請見第2D圖，經過上述5種ASO轉染的細胞，與控制組轉染的細胞相較，具有較多的血清素，說明了本發明所設計的第一類ASO能藉由修正DDC基因剪接異常，改善血清素生成不足的問題。

結果三：阻斷表現子6a增加IVS6+4A>T突變型細胞中5-6+3-7-8片段的表現量

基於以上結果，本發明設計第二類ASO其雜交目標為新穎表現子6a。請見第3A圖，ASO-6as與包含介入子6的5端剪接位點(5’ splice donor site)互補。ASO-6ae與包含介入子6的5端剪接位點的下游潛在剪接促進區(exonic splicing enhancers，ESEs)互補。

進行實驗一至三後結果請見第3B、3C圖，發現10μM、20μM、30μM的ASO-6as及ASO-6ae皆減少片段5-6+37-6a-7-8，且濃度越高減少得越顯著。相較於10μM的ASO-6as(6as10)的5-6+37-6a-7-8片段的比例為34%，30μM的ASO-6as(6as30)將5-6+37-6a-7-8片段的比例降至1.3%。相較於10μM的ASO-6ae(6ae10)，30μM的ASO-6ae(6ae30)將5-6+37-6a-7-8片段的比例由18%降至0%。但ASO-6as及ASO-6ae卻使得異常片段5-6+37-7-8增加，例如，10μM的ASO-6as(6as10)的5-6+37-7-8片段為30%，30μM的ASO-6as(6as30)的5-6+37-7-8片段增至77%。10μM的ASO-6ae(6ae10)的5-6+37-7-8片段為10%，30μM的ASO-6ae(6ae30)的5-6+37-7-8片段增至64%。此外，ASO-6as及ASO-6ae能使得片段5-7-8減少，例如，ASO-6as的5-7-8片段由37%減少至13%，ASO-6ae的5-7-8片段由60%減少至31%。

結果四：利用ASO阻斷找出調控表現子6+37片段的異常剪接

本發明設計第三類ASO其雜交目標為突變的表現子6+37片段。請見第3A圖，ASO-6s以包含正常的介入子6的5端剪接位點為雜交目標，ASO-6e以包含表現子6中電腦預測的ESEs結合區為雜交目標。

進行實驗一至三後結果請見第3D、3E圖，兩種ASO都使異常片段5-6+37-7-8減少，並使片段5-7-8增多。例如，10μM ASO-6e(6e10)的異常片段5-6+37-7-8為31%，片段5-7-8為68%，而30μM ASO-6e(6e30)使異常片段5-6+37-7-8減少至2.4%，使5-7-8增多至86%，但出現了12%的片段5-6+37-6a-7-8。同樣的，比較10μM與30μM，ASO-6s使5-6+37-7-8由27%減少至0%，使5-7-8由64%增多至90%，但5-6+37-6a-7-8由8%增加至11%。

本發明還針對IVS6+4A>T突變型DDC基因的錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)的下游處的剪接抑制區(exonic splicing silencer，ESS)為雜交目標，設計出一ASO-9AA。

進行實驗一至三後結果請見第3F、3G圖，與控制組(Scr)相較，30μM的ASO-9AA能使片段5-7-8由43%降為3%，能使片段5-6+37-7-8由11%增為37%，也使片段5-6+37-6a-7-8由45%增為59%。

結果五：SR蛋白質SRp30c和SRp55調控表現子6+37片段的異常剪接

本發明設計第四類ASO是針對基因剪接的外部因子(trans-acting factors)進行轉譯阻擋(translation blocking，TB)，用以剔除(knockdown)SR蛋白質。分別針對SRp30c、SRp40及SRp55的mRNA設計與之互補的阻擋ASO，簡稱為TB30、TB40及TB55。

進行實驗一至四後結果請見第4A圖，與未經阻擋ASO處理的IVS6+4A>T突變型細胞(Ct)相較，30μM的TB30、TB40及TB55分別使得IVS6+4A>T突變型細胞中的SRp30c、SRp40及SRp55被剔除了50%，細胞中的肌動蛋白(actin)作為不受TB30、TB40及TB55影響的參照。請見第4B、4C圖，與控制組(Scr)相較，經TB30處理的IVS6+4A>T突變型細胞的片段5-6+37-7-8由23%降為7.4%、片段5-7-8由64%增為89%。經TB55處裡的IVS6+4A>T突變型細胞的片段5-6+37-7-8由23%降為9%、片段5-7-8由64%增為90%。而經TB40處裡後各片段的比例大致不變。

結果六：IVS6+4A>T突變型AADC缺乏症病人在淋巴細胞中的DDC蛋白質與血清素在ASOs處理後增加

為了驗證ASO處理後能夠有效增加DDC蛋白質的含量及其活性，進行實驗五、六來測定DDC蛋白質以及下游產物血清素的濃度。第5A圖所示，相較於IVS6+4A>T 突變型細胞(257.4pg/ml)，正常的淋巴細胞含有高濃度的DDC蛋白質(18861.7pg/ml)。如第5B圖所示，相較於控制組(17.1pg/ml)的DDC蛋白質量，經過ASO-D、ASO-K、ASO-R、ASO-W或ASO-AA處理之後，分別提昇至252.8、154.4、335.4、151.5和69.4pg/ml。

血清素的含量利用ELISA分析來測定，結果如第6A圖所示，正常淋巴細胞內的血清素含量(4.108±0.096pg/10⁵細胞)顯著高於未處理的IVS6+4A>T突變型細胞(2.133±0.164pg/10⁵細胞)(P<0.001)。然而，以ASOs轉染IVS6+4A>T突變型細胞造成血清素含量的顯著增加。相較於控制組(1.453±0.018pg/10⁵細胞)的血清素含量，以ASO-D、ASO-K、ASO-R、ASO-W或ASO-AA處理之後，血清素含量分別增加至1.588±0.042、1.575±0.011、1.612±0.015、1.528±0.009和1.614±0.014pg/10⁵細胞(各個P<0.001)。

結果七：電腦預測剪接調控蛋白(splice regulatory proteins)與DDC基因結合的位置及強度

為了要了解被剔除的SR蛋白質在DDC基因上結合的位置，接下來進行電腦預測剪接調控蛋白(splice regulatory proteins)與DDC基因結合的位置及強度，SR蛋白質即為一種剪接調控蛋白。

第7B、7C圖中的彩色柱狀的位置代表與DDC基因結合的位置，彩色柱狀的高度代表結合的強度，朝上的彩色柱狀代表促進剪接，朝下的彩色柱狀代表抑制剪接。第7B圖以正常的DDC基因預測，可以發現除了SRp30c、SRp55，還有一種小核醣核蛋白質U1 SNRNp會結合在介入子6的5端剪接位點幫助正常基因剪接。第7C圖以IVS6+4A>T突變型DDC基因預測，發現U1 SNRNp已不再原本的結合位置，而是結合在錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)。SRp30c及SRp55會結合在介入子6的5端剪接位點附近，最遠結合在介入子6的5端剪接位點朝下游-45處，也就是在表現子6的5端往上游+20處(圖中的20)。黑色的橫條代表其他的ASO結合在IVS6+4A>T突變型DDC基因的位置，例如ASO-6e結合的位置也是某一類SR蛋白質(圖中具有問號的藍色橢圓形)結合的位置，ASO-6e調整剪接的功效可能來自於阻擋該類SR蛋白質的運作。又例如ASO-6s及ASO-D結合的位置也是SRp30c及SRp55結合的位置，ASO-6s、ASO-D調整剪接的功效可能來自於阻擋SRp30c及SRp55的運作。

值得注意的是，ASO-9AA可能阻擋了許多抑制的剪接調控蛋白(圖中具有問號的黃色橢圓形)，這些抑制的剪接調控蛋白結合在IVS6+4A>T突變型DDC基因介入子6的5端剪接位點往上游+65至+86處(圖中的149至170)。如第9圖所示，有鑑於本發明設計的ASO涵蓋了IVS6+4A>T突變型DDC基因介入子6的5端剪接位點往上游+324至下游-45之間(SEQ ID NO：1)，任一ASO可與IVS6+4A>T突變型介入子6的5端剪接位點往上游+324至下游-45之間(SEQ ID NO：1)雜交，即可以阻擋剪接調控蛋白的運作，也就具有調整剪接的功效。

總結來說，本發明設計了四類ASO以調整IVS6+4A>T突變型DDC基因的剪接，所有揭露的ASO位置與序列如第9圖所示。請一併參照第7A圖和第9圖所示，第一類ASO包含ASO-A至ASO-AA與ASO-9AA，其互補序列為DDC基因介入子6的5端剪接位點往下游+4至+84。第二類ASO包含ASO-6as和Aso-6ae，其雜交目標為包含新穎表現子6a(圖中未示)。第三類ASO以ASO-6e、ASO-6s為代表，其雜交目標為包含表現子6+37片段。第四類ASO以TB30、TB55為代表，其互補序列為SR蛋白質30c、SR蛋白質55的mRNA，第7A圖中的箭號表示該ASO對錯誤的剪接點(+38 cryptic splice site)利用的機率，箭號往上代表促進利用，箭號往下代表抑制利用。

以電腦預測能調整基因剪接的蛋白質與正常DDC基因(第7B圖)互相雜交的位置，及與IVS6+4A>T突變型DDC基因(第7C圖)互相雜交的位置，可以發現受第四類ASO剔除的SR蛋白質可與表現子6至介入子6之間結合，佐以第二類ASO的實驗結果，可以知道若是表現子7之前還具有一新穎表現子6a，則本發明設計的ASO也能針對該新穎表現子6a做剪接調整。因此，本發明可調整IVS6+4A>T突變型DDC基因剪接的ASO與IVS6+4A>T突變型介入子6的5端剪接位點往上游+324至下游-45之間的序列(SEQ ID NO：1)互補。

在此必須說明者為，以上配合圖式所為之詳細描述，僅係為了說明本發明之技術內容及特徵而提供之一實施方式，凡在本發明之技術領域中具有一般通常知識之人，在瞭解本發明之技術內容及特徵之後，於不違背本發明之精神下，所為之種種簡單之修飾、替換或構件之減省，皆應屬於以下所揭示之申請專利範圍之內。

<110> 臺中榮民總醫院

<120> 一種針對突變型多巴脫羧酉每基因做剪接調整的反義寡核甘酸及其使用方法

<160> 14

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 369

<212> DNA

<213> Human

<220>

<221> Precursor_RNA

<222> (1)..(170)

<400> 1

<210> 2

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-D

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 2

<210> 3

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-K

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 3

<210> 4

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-R

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 4

<210> 5

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-W

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 5

<210> 6

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-AA

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 6

<210> 7

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-6as

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為表現子6a

<400> 7

<210> 8

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-6ae

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為表現子6a

<400> 8

<210> 9

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-9AA

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為介入子6

<400> 9

<210> 10

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-6e

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為表現子6

<400> 10

<210> 11

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> ASO-6s

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為表現子6

<400> 11

<210> 12

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> TB30

<222> (1)..(23)

<223> 結合目標為SRp30c蛋白質的precursor_RNA

<400> 12

<210> 13

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> TB40

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為SRp40蛋白質的precursor_RNA

<400> 13

<210> 14

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<221> TB55

<222> (1)..(25)

<223> 結合目標為SRp55蛋白質的precursor_RNA

<400> 14

Claims

一種對突變型多巴脫羧酶基因做剪接調整的反義寡核苷酸，其序列與SEQ ID NO：1的第1至134號核苷酸或第319至369號核苷酸互補，其中該突變型多巴脫羧酶基因的突變型為IVS6+4A>T。
如請求項1所述之反義寡核苷酸，其可提升IVS6+4A>T突變型細胞內的血清素含量。
如請求項2所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：2。
如請求項2所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：3。
如請求項2所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：4。
如請求項2所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：5。
如請求項2所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：6。
如請求項1所述之反義寡核苷酸，其可調整IVS6+4A>T突變型多巴脫羧酶基因的剪接片段分布。
如請求項8所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：7。
如請求項8所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：8。
如請求項9所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：9。
如請求項1所述之反義寡核苷酸，其可減少IVS6+4A>T突變型多巴脫羧酶基因異常剪接片段。
如請求項12所述之反義寡核苷酸，其中該異常剪接片段為5-6-+37-7-8片段。
如請求項13所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：10。
如請求項13所述之反義寡核苷酸，其序列為SEQ ID NO：11。
一種利用反義寡核苷酸調整多巴脫羧酶基因突變細胞中的突變型多巴脫羧酶基因剪接的方法，包含有以下步驟：加入如請求項1至15中任一項所述之反義寡核苷酸至含有IVS6+4A>T突變的細胞中培養。