TH93160A - ส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์สำหรับการเพิ่มจำนวนหรือการดิฟเฟอเรนทิเอชั่นของโปรเจนิเตอร์ของตับ - Google Patents
ส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์สำหรับการเพิ่มจำนวนหรือการดิฟเฟอเรนทิเอชั่นของโปรเจนิเตอร์ของตับInfo
- Publication number
- TH93160A TH93160A TH601005688A TH0601005688A TH93160A TH 93160 A TH93160 A TH 93160A TH 601005688 A TH601005688 A TH 601005688A TH 0601005688 A TH0601005688 A TH 0601005688A TH 93160 A TH93160 A TH 93160A
- Authority
- TH
- Thailand
- Prior art keywords
- liver
- approximately
- extracellular matrix
- projector
- type iii
- Prior art date
Links
Abstract
DC60 (08/02/50) วิธีการถูกจัดหาของการแพร่ขยายโปรเจนิเตอร์ของตับในหลอดทดลองบนหรือในหนึ่งหรือ หลายส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่ถูกพบในส่วนของสเต็มเซลล์หรือสภาพแวดล้อมของตับ ภาชนะสำหรับการแพร่ขยายของโปรเจนิเตอร์และซึ่งประกอบรวมด้วยจานเพาะเชื้อ, ไบโอรีแอกเตอร์, หรือแล็บชิพ วิธีการถูกจัดหาของการแพร่ขยายโปรเจนิเตอร์ของตับในหลอดทดลองบนหรือในหนึ่งหรือ หลายส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่ถูกพบในส่วนของสเต็มเซลล์หรือสภาพแวดล้อมของตับ ภาชนะสำหรับการแพร่ขยายของโปรเจนิเตอร์และซึ่งประกอบรวมด้วยจานเพาะเชื้อ, ไบโอรีแอกเตอร์, หรือแล็บชิพ
Claims (30)
1. วิธีการของการแพร่ขยายโปรเจนิเตอร์ของตับในหลอดทดลองซึ่งประกอบรวมด้วย: (a) การจัดหาโปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกแยกและ (b) การเพาะเลี้ยงโปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกแยกบนส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์หนึ่งหรือ มากกว่าที่ถูกพบในส่วนของสเต็มเซลล์ของตับ
2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ในที่ซึ่งส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่ถูกพบในส่วนของ สเต็มเซลล์ของตับถูกเลือกจากกลุ่มซึ่งประกอบด้วยคอลลาเจนไทป์ III, คอลลาเจนไทป์ IV, ลามินิน, ไฮยาลูโรแนนหรือการรวมกันของสิ่งนั้น
3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 2 ในที่ซึ่งส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่ถูกพบในส่วนของ สเต็มเซลล์ของตับคือคอลลาเจนไทป์ III หรือไทป์ IV หรือการรวมกันของสิ่งนั้น
4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 2 ในที่ซึ่งโปรเจนิเตอร์ของตับถูกเพาะเลี้ยงต่อไปบนส่วนประกอบ เมทริกซ์นอกเซลล์ที่ถูกเลือกจากกลุ่มซึ่งประกอบด้วยคอลลาเจนไทป์ III, โมเลกุลการติดพื้นฐาน, โปรตีโอไกลแคน (PG), ไกลโคซามิโนไกลแคนเฮพาแรนซัลเฟต, อิลาสติน การรวมกันของสิ่งนั้น
5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 4 ในที่ซึ่งโมเลกุลการติดพื้นฐานคือไฟโบรเนคติน
6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 4 ในที่ซึ่ง PG คือเฮพาแรนซัลเฟต-PG, คอนดรอยตินซัลเฟต PGs หรือการรวมกันของสิ่งนั้น
7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 4 ในที่ซึ่งไกลโคซามิโนไกลแคนคือเฮพาแรนซัลเฟต, เฮพาริน, คอนครอยตินซัลเฟต, เดอมาแทนซัลเฟต, ไฮยาลูโรแนนหรือการรวมกันของสิ่งนั้น
8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 2 ในที่ซึ่งส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์คือคอลลาเจนไทป์ III และลามินิน
9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ในที่ซึ่งโปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกแยกคือสเต็มเซลล์ของตับที่ถูก แยก, เฮพาโตบลาสท์ที่ถูกแยก, โปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกกำหนด, หรือการรวมกันของสิ่งนั้น
10. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 9 ในที่ซึ่งโปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกแยกคือสเต็มเซลล์ของตับ ที่ถูกแยก
11. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ในที่ซึ่งโปรเจนิเตอร์ของตับต่อไปถูกเพาะเลี้ยงในการมีของ ฟีดเดอร์เซลล์
12. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 11 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์เป็นเอ็มบริโอหรือทารกในครรภ์
13. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 12 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์คือแองจิโอบลาสท์หรือเซลล์ตั้งต้น รูปดาวจากตับ
14. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 11 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์มาจากเนื้อเยื่อสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมใดๆ
15. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 11 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์มาจากสปีชีส์ที่เหมือนกันเป็น โปรเจนิเตอร์ของตับ
16. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์คือมิวรีน
17. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 16 ในที่ซึ่งฟีดเดอร์เซลล์คือ STO ฟีดเดอร์เซลล์
18. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ต่อไปซึ่งประกอบรวมด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีซีรัม
19. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ในที่ซึ่งโปรเจนิเตอร์ของตับถูกได้รับจากตับผู้ใหญ่
20. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 19 ในที่ซึ่งตับผู้ใหญ่คือตับมนุษย์ผู้ใหญ่
21. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 2 ในที่ซึ่งลามินินคือที่ความเข้มข้นระหว่างประมาณ 0.1 ถึง ประมาณ 10 มิวg/cm2
22. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 21 ในที่ซึ่งลามินินคือที่ความเข้มข้นระหว่างประมาณ 0.5 ถึง ประมาณ 5 มิวg/cm2
23. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 22 ในที่ซึ่งลามินินคือที่ความเข้มข้นของประมาณ 0.5 มิวg/cm2
24. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 22 ในที่ซึ่งลามินินคือที่ความเข้มข้นของประมาณ 1 มิวg/cm2
25. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 2 ในที่ซึ่งคอลลาเจนไทป์ III หรือ IV แต่ละไทป์คือที่ ความเข้มข้นระหว่างประมาณ 0.1 ถึงประมาณ 15 มิวg/cm2
26. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 25 ในที่ซึ่งคอลลาเจนไทป์ III หรือ IV แต่ละไทป์คือที่ ความเข้มข้นระหว่างประมาณ 0.5 ถึงประมาณ 8 มิวg/cm2
27. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 25 ในที่ซึ่งคอลลาเจนไทป์ III หรือ IV คือที่ความเข้มข้นระหว่าง ประมาณ 1 ถึงประมาณ 7 มิวg/cm2
28. วิธีการของการแพร่ขยายโปรเจนิเตอร์ของตับซึ่งประกอบรวมด้วย: (a) การจัดหาชั้นที่หนึ่งของซึ่งประกอบรวมด้วยส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่หนึ่งที่ถูก พบในส่วนสเต็มเซลล์ของตับ; (b) การจัดหาชั้นที่สองซึ่งประกอบรวมด้วยส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่สองที่ถูกพบใน ส่วนของสเต็มเซลล์ของตับ; และ (c) การเพาะเลี้ยงโปรเจนิเตอร์ของตับที่ถูกแยกระหว่างชั้นที่หนึ่งและที่สอง
29. ภาชนะสำหรับการแพร่ขยายของโปรเจนิเตอร์ของตับซึ่งประกอบรวมด้วย: (a) ภาชนะ, และ (b) วัสดุไม่ละลายซึ่งประกอบรวมด้วยอย่างน้อยที่สุดหนึ่งส่วนประกอบเมทริกซ์นอกเซลล์ที่ ถูกพบในส่วนของสเต็มเซลล์ของตับ; ในที่ซึ่งวัสดุไม่ละลายเคลือบอย่างแท้จริงอย่างน้อยที่สุดหนึ่งพื้นผิวของภาชนะ
30. ภาชนะของข้อถือสิทธิที่ 24 ในที่ซึ่งภาชนะคือเพลทเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ,ไบโอรีแอกเตอร์, แล็บเซลล์หรือแล็บชิพ
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| TH93160B TH93160B (th) | 2009-01-30 |
| TH93160A true TH93160A (th) | 2009-01-30 |
Family
ID=
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2008124158A (ru) | Внеклеточные матриксные компоненты для экспансии и дифференцировки гепатических клеток-предшественников | |
| DeQuach et al. | Simple and high yielding method for preparing tissue specific extracellular matrix coatings for cell culture | |
| JP2009515558A5 (th) | ||
| Lang et al. | Three-dimensional culture of hepatocytes on porcine liver tissue-derived extracellular matrix | |
| US12252712B2 (en) | Use of engineered liver tissue constructs for modeling liver disorders | |
| Kim et al. | 3D hepatic cultures simultaneously maintain primary hepatocyte and liver sinusoidal endothelial cell phenotypes | |
| Levorson et al. | Direct and indirect co-culture of chondrocytes and mesenchymal stem cells for the generation of polymer/extracellular matrix hybrid constructs | |
| Parry et al. | Collagenous substrata regulate the nature and distribution of glycosaminoglycans produced by differentiated cultures of mouse mammary epithelial cells | |
| Ruhnke et al. | Human monocyte-derived neohepatocytes: a promising alternative to primary human hepatocytes for autologous cell therapy | |
| Sztankovics et al. | 3D bioprinting and the revolution in experimental cancer model systems—A review of developing new models and experiences with in vitro 3D bioprinted breast cancer tissue-mimetic structures | |
| Sakai et al. | Comparative analysis of gene expression in rat liver tissue and monolayer-and spheroid-cultured hepatocytes | |
| US8404483B2 (en) | Paracrine signals from mesenchymal feeder cells and regulating expansion and differentiation of hepatic progenitors using same | |
| Tasnim et al. | Functionally enhanced human stem cell derived hepatocytes in galactosylated cellulosic sponges for hepatotoxicity testing | |
| Wei et al. | Three‐dimensional coculture of primary hepatocytes and stellate cells in silk scaffold improves hepatic morphology and functionality in vitro | |
| Sebinger et al. | ECM modulated early kidney development in embryonic organ culture | |
| Arisaka et al. | A heparin-modified thermoresponsive surface with heparin-binding epidermal growth factor-like growth factor for maintaining hepatic functions in vitro and harvesting hepatocyte sheets | |
| Zhang et al. | Direct comparison of different coating matrix on the hepatic differentiation from adipose-derived stem cells | |
| Ghodsizadeh et al. | Galactosylated collagen matrix enhanced in vitro maturation of human embryonic stem cell-derived hepatocyte-like cells | |
| KR20140072883A (ko) | 시험관내 연구 용도를 위한 조작된 조직, 이의 어레이 및 이의 제조방법 | |
| Lee et al. | Optimization of 3D hydrogel microenvironment for enhanced hepatic functionality of primary human hepatocytes | |
| Hoshiba et al. | Effects of extracellular matrices derived from different cell sources on chondrocyte functions | |
| Sorrell et al. | Human mesenchymal stem cells induced to differentiate as chondrocytes follow a biphasic pattern of extracellular matrix production | |
| Abbott et al. | HepaRG maturation in silk fibroin scaffolds: toward developing a 3D in vitro liver model | |
| Wang et al. | Radially aligned porous silk fibroin scaffolds as functional templates for engineering human biomimetic hepatic lobules | |
| Nigam et al. | Growth factor–heparan sulfate “switches” regulating stages of branching morphogenesis |