SU977463A1 - Иммобилизованные на полимерной матрице @ и @ -амидные производные нуклеозид-51-ди или трифосфатов в качестве сорбентов дл афинной хроматографии и способ их получени - Google Patents

Description

тиДрёдуктазы из экстракта E.coli, индуцированной фагом Т4 31. Однако получение указанных-сорб тов  вл етс  процессом трудоемким многостадийным, включающим три дос таточно трудоемких стадии синтеза лара-нитрофениловых эфироэ АТФ в .абсолютных растворител х, а также ионообменную хроматографию, хроматографию на силикагелевых пластинах , центрифугирование. Следующа  стади  - получение пара-аминофенило вого эфира АТФ над палладием, затем снова хроматографи  на ДЭЛЭ-сефаде се А-25 и обработка пара-аминофенилового эфира АТФ активированной бро циансефарозой. Метод иммобилизации описан только дл  АТФ и dATФ, дл  остальных нуклеозид-5 -ди- трифос фатов не описан. Цель изобретени  - получение новых высокоэффективных сорбентов дл  афинной хроматографии, сохран ющих максимальное сродство лиганда к ферменту. Доставленна  цель достигаетс  путем, получени  новых иммобилизованных на полимерной матрице ъ - и у -амидннх производных нуклеозид-ди- -или трифосфатов.общей формулы / Ч . -KHf-P-0 + ЙНг. А 1 У rN -° - kj/t -2 или 3; де п R X А -полимерна  матрица/ -Н или ОН; -природное основание. Присоединение производных нуклеозид-5 -ди- или трифосфатов по (Ь - или у -фосфатной группе позвол ет не затрагивать наиболее специфичные части молекул нуклеозид-5-дии . трифосфатов. соединени  формулы (i; получают путем взаимодействи  нуклеозид-5 -ди- или трифосфатов общей формулы где п , X и А - приведенные выше значени , шэдверрают взаимодействию с 10-15кратным избытком карбодиимида в водной среде при рН 5-6 и 10-15 с с добавлением в реакционную смесь полимерной матрицы,содержащей свободные аминогруппы. Способ получени , например Г -амидных производных нуклеозид 5 -трифосфатов описываетчс  следующей схемой

/О

/-ч@ f Z

:о4--1 -о4- toz ( VlT CjK-cJzH N (о

U

Lс}нг сГНг

Ч-г

шЬн

енг-%

11,

(

4.f vi ли

он он нуклеозид-5 -трифосфат; водорастворимый карбодиимид , циклический нуклеозид-5 -триметафосфат (активное промежуточное соединение); полимерна  матрица со свободными NHij- группами; -уамидное производное нуклеозид-5-трифосфата (целевой продук).6

g

окон Известен способ получени  иммобилизованных ферментов с помощью водорастворимого карбодиимида, атакующего первичные аминогруппы белкаС4. И хот  водорастворимый карбодиимид используетс  в данном способе дл  иммобилизсщии субстратов нуклеозид-5 -ди- и трифосфатов в качестве конденсирующего йгента, так же как и в случае иммобилизации ферментов, он

осуществл ет другую реакцию. Реакци  идет через активацию фосфорильных групп субстратов - циклический нуклеозйд-5 -триметафосфат (активное промежуточное соединение) и конечным (целевым) продуктом реакции  вл етс  иммобилизованный нуклеозид-5 -трифосфат, который  вл  сь афинным аналогом субстрата, легко узнаетс  соответствующим ферментом. А это позвол ет в свою очередь использовать афинные аналоги субстратов (афинные сорбенты) дл  получени  высокоочищенных ферментов.

Осуществление процесса в определенных параметрах позвол ет осуществить процесс без затрачивани  наиболее специфичных частей нукле .озид-5 -ди- или трифосфатов.

Способ осуществл етс  следующим образом4

Взаимодействие нуклеозид-5 -диили трифосфатов с карбодиимидом идет через образование активного проме .жуточного соединени , которое обладает способностью вступать во взаимодействие с нуклеофилами-, представл юJBIHMH собой полимерную матрицу со свободными с1миногруппами. За реакцией образовани  активного промежуточного соединени  след т по расходу кислоты , : необходимой Дл  поддержани  пб сто йнога значени . рН реакционной сйеси, равного 5-6. Процесс ведут при 1015 с. После достижени  максимальной концентрации активного промежуточного соединени  в реакционную добавл ют соответствующую нерастворимую полимерную матрицу.

Выход целевого продукта составл ет по исходному нуклеозид-ди- или трифосфату. Полученный продукт анализироваши путем проведени 

кислотного гидролиза, хроматографии на бумаге, сн ти  УФ-спектров. Определение емкости сорбента проводили по количеству иммобилизованных нуклеозид-5 гди- или трифосфатных

остатков на 1 г сорбента.

На основании предлагаемого способа синтезированы сорбенты, дл  получени  которых использовсшись следующие нуклеозид-5 -ди- или трифосфатй:

аденозин-5-дифосфат и -трифосфат/ дезоксиаденозин-5 -трифосфат t гуанозин-5-дифосфат и -трифосфат уридин-з-трифосфат; цитизин-5-три фосфат.

; В качестве полимерных матриц даспользованы:

Аминоэтилцеллюлоза (АЕ-целлюлоза)

1|-с Нг-с Нг-ЗШг .

Гидразид карбоксиметилцеллюлозы

(КМа-гидразидОQ

g-ciHz-ci

3NH- КНг

Аминоэтилированное производное полиакриламида (АЕ-биогель)

Х

Я

NH-CtiHzl JfHiz

Гексаметилендиаминсефароза (АНсефароза 4В)

-Лн((}Нг)

35

Данные по синтезированным иммобилизованным на полимерных матрицах

нуклеji - и 1 -амидным.производным озид- 5 -ди- и трифосфатам -т. представлены в табл.1.

о о t-i I о

00

о о

О

00

I о

N

1Л

о 1Л т-( о СЧ го ГГ N гН тН

} «Ь

1 РМ А &1 f

ft Л П. п. к RI Pi

г г JT Jfc Л

1 Т f Т

ллл-х

§

СО О

О Г N -1 Пример. Синтез аминоэтилцеллкшозных аналогов нуклеозид-З -ди- и трифосфатов провод т в термостатированной кювете при 10-15°С. 45 мкмоль нуклеозид-5 -ди- или трифосфата (аденоэин-5-ди- или трифосфата; гуанозин-5-ди- или трифо фата,- цитидин-5 -ди- или трифосфата/ уридин-5-трифосфата) раствор ют в 15 мл воды рН довод т до 5,6. При непрерывном перемешивании добавл ют 380 мг водорастворимого карбодиимида. Посто нное значение рН поддерживают при непрерывном под титровывании 0,5 N сол ной кислотой контролиру  рН с помощью потенциометра ЛПУ-.01. Через 30 мин добавл ют 1 аминоэтил-целлюлозы. Реакционную смесь нанос т на с1екл нный фильтр, промывают М,КС1.до исчезновени  оптической плотности, затем - водой. Синтезированный продукт анализируют проведением кислот ного гидролиза. Хроматографией на бумаге и сн тием УФ-спектра. Пример 2. Синтез гидразид карбоксиметилцеллюлозного аналога ещенозин-Б -трифосфата (АТФ) шровод т при сохранении всех параметров и условий, указанных в примере 1. Полимерную матрицу - гидразид карбоксиметилцеллюлозу добавл ют в количестве 0,5г. Пример 3. Синтез аминоэтили рованного производного полиакриламида с ковалентно свйзанным аденоэин- и гуанозингЗ -трифосфатами про вод т при сохранении всех параметро и условий процесса, указанных в при мере 1. Полимерную матрицу - аминоэтилированное производное полиакрил амида добавл ют в реакционную смесь в количестве 0,5г. П р и м ё р 4. Синтез гексаметил диаминсефарозного производного аден зин- и гуанозин-5 -ди- и трифосфато провод т при сохранении всех параме ров и .условий процесса, указанных в

Аминоэтилцеллюло3ный аналог нуклеозид 5 -диили трифосфата после кислотного гидролиза

-РРА

-PPG -РРРА

227

230

259

230 228 224

258

252 227 230

259 примере 1. Полимерную матрицу - гекСс1метилендиаминсефарозу добавл ют в реакционную смесь в количестве 1 г. При проведении повторных реакций с синтезированным сорбентом можно достичь дополнительной иммобилизации производных нуклеозид-З -ди- или трифосфатов , что позвол ет получать сорбенты заданной емкости. Кислотный гидролиз синтезированных продуктов дл  количественного определени  амина и нуклеотиднрго материала провод т в 1 hJHCI в течение 2-х ч при 40°С. Затем гидролизат нейтрализуют, нанос т на стекл нный фильтр. Нуклеотидный материал заме р ют на спектрофотометре. В результате кислотного гидролиза происходит разрыв фосфоамидной св зи -N-P и в реакционной смеси получают исходный соответствующий нуклеОзид-5 -ди- или трифосфат и полимерную матрицу, несущую свободную аглнногруппу . Нуклеозид-5 -ди- или трифосфат, предварительно отделенный от полимерной матрицы (на стекл нном фильтре, анализируют методом бумажной хроматографии дл  определени  R и доказательства индивидуальности продукта в системах растворителей; (А )этанол : 1 М ацетат аммони , 7 s 3 по объему, рН 7,5,- (В) 1Изомасл на  кислота : конц. аммиак : вода, 6б51:33, рН 3,7. УФ-спектры снимают на автоматическом регистрирующем спектрофотометре при р11 1,2,7,11 и концентрации 0,75 по нуклеотидному материалу. Таким образом, анализ синтезированных новых химических соединений, иммобилизованных на полимерной матрице производн лх fj-H у-амидов нуклеозид-Б -дн- и трифосфатов показал , что соединени  химически чисты , строение их доказано и данные анализа приведены в табл.2. Таблица 2

Гидролиз карбоксиметилцеллюло з ный аналог аденозин- -трифосфата после кисшотного гидролиза

-РРРА

0,20

0,04

Аминоэтилированное производное полиакриламида с крвалентно св ванными аденозини гуанозин-5-триосфатами посе кислотного гидролиза

0,20

0,04

-РРА 0,03

-PPG 0,05

-. Гексаметилендй-аминсефароэное производное аденозин- и гуанизин-5-ди- и трифосфатов

-PPG

0,06 0,09 0,04 0,20

-РРРА

-PPPG 0,03 0,05 Во всех синтезированных . 7 амидных производных нуклеозид-5 -ди- и трифосфатов, иммобилизованны на полимерных матрицах, фосфоаьшдна  св зь стабильна в диапазоне рН от б до 11 и температура от О до 50®С при указанных рН, Синтезированные сорбенты обладают высоким сродством лиганда к специфическим взаимодействи м с ферментами , и могут быть использованы в качестве афинных сорбентов дл  выделени , очистки и разделени  биологичес ки активных компонентов.

Продолжение табл. 2

257 259

230 227

259

230

227

258 252 228 223

230

252

258

228

224

230

259 230 227 252 228

258 224

230 П р и м е р 5. Афинна  хроматографи . Испытани  провод т на следующих сорбентах: аминоэтилцеллкшозный аналог гуанозин-5 -дифосфата; аминоэтилцеллюлоэный аналог гуанозин-5-трифосфата; аминоэтилированное производное полиакриламида с ковалентно св занным гуанозин-5-трифосфатом; гексаметилендиаминосефарозное производное гуанозин-5 -дифосфата; гексаметилендиаминосёфарозное производное гуанозин-5 -трифосфата. Клетки E.coli MRE 600 разрушают помощью звукового генератора УЗДН iy4 ,2,(22 кГц, 3 0,5-0,6 ампер). Белковый осадок, полученный из 10500.0 xg супернатанта насьпдением сульфата аммони  между 37% и 67%, раствор ют в буфере 1, содержащем 2тМ трис-НС1, ,0, 10 тМ ацетата магни , 2mMDTT, 0,35 М НС1, 5тМ ЭДТА,-и провод т диализ против этого же буфера. 1 г влажного аминоэтилированного производного полиакриламида с ковалентно св занным гуанозин-5-трифосфатом (ГТФ-АЕ-биогель) перемешивают с белком (20 о.е. Л 280 нм) в течение 3-4 ч при 4°С. Смесь внос т в колонку и элюируют сначала бу ром 1 до исчезновени  оптической плотности белка ( Л 280 нм ), затем буфером II, содержащем дополнительно к составу буфера I 100уи.МГТФ. фракции белка, содержащие EF-Tu активность, концентрируют и провод т дисшиз против 10 тМ натрий фосфатного буфера (,0),содержащего 0,1% SDS и 0,1% fb-меркаптоэтанола . Электрофорез белков провод т в полиакриламидном геле с SDS, Бело элюированный с афинной колонки, по данным электрофоретического анализа получен в индивидуальном состо НИИ с молекул рным весом 4200044€00 . Сходные результаты были полу чены и с другими сорбентами. В результате испытани  установлено , что синтезированные соединени  могут быть использованы в каче ве эффективных сорбентов дл  афинной хроматографии биологически активных компонентов, имеющих сродст ( афинность) к нуклеозид-З -ди- и трифосфатом, таких как белковые фа торы элонгации и другие. Способ получени  сорбентов экспериментально прост, а их использо вание дл  выделени  и очистки ферм тов дает возможность сократить это многостадийный процесс практически до одной стадии. Сорбент легко рег нерируетс  и может быть использова многократно. Примере. Афинна  хроматог фи . Испытани  провод т на следуквдих сорбентах: аминоэтилцеллюлозный аналог аденозин-5 -дифосфата; амин этилцеллюлозный аналог аденозин-З -трифосфата; аминоэтилированное про водное полиакриламида с ковалентно св занным аденозин-5 -трифосфатом; гидразидкарбоксиметилцеллюлозный ан лог аденозин-5 -трифосфата; гексаме тилендиаминсефарозное производное аденозин-5-трифосфата; аминоэтилцеллюлоэный аналог цитидин-Б -трифо , фата; аминоэтилцеллюлозный аналог ури-. дин-5-трифосфата. Все четыре субстрата (АТР, ГТР, УТР, ЦТР), иммобилизованные на нерастворимых матрицах, способны образовывать специфический комплекс с ферментами: 1)Креатинкиназу КФ 2.7.32.АТР: креатинфосфотрансфераза из мышц кролика вьщел ют по методу Кьюби. В случае применени  афинных сорбентов ткань мышц кролика разрушают., экстрагируют 0,3 М КС1 в буфере, содержащем 10 мМ трис-НС1 рН 85, 5 мМ уксуснокислый магний, 100 мМ уксуснокислый натрий, 1 мМ (-меркаптоэтанол , 10 мМ ЭДТА и провод т диализ против того же буфера А. 1 г влажного аминоэтилцеллюлоэного производного аденозин-5-трифосфата перемешивают с белком 50ос. 280 нм ) в течение 4-5 ч при 4°С. . Смесь внос т в колонку и элюируют буфером А до исчезновени  оптической плотности белка{А 280 нм ). Затем буфером Б (к буферу А добавл ют АТР в конечной концентрации 100 мкМ) , элюировали белок, который образовывает специфичный комплекс с сорбентом . До 70% исходной активности креатинкиназы определ ютво фракции, полученной при элюировании афинной колонки буфером Б (активность креатинкиназы измер ют потенциометрически ,использу  рН-метр марки рН-340). Эти данные свидетельствуют о том, что креатинкиназа образует достаточно прочный комплекс с афинным сорбентом, что хорошо согласуетс  с константой ингибировани  Ki, равной 4, ПО отношению к АГР дл  афинного реагента креатйнкиназы JT -амидного прЬизводного АТР. 2)Пиру ватки назу (КФ 2.7.1.40, АТР; фосфотрансфераза) выдел ют из бактериальной массы E.coli iMRIi-600. Клетки E.coli обрабатывают, как указано в примере 5. Белковой осадок, содержащий большую часть ферментов клетки, полученный из 105000 хд супернатанта фракционированием сульфатом аммони , раствор ют в буфере I, содержаи ем 10 мМ трис-НС1, рН 7.2, 10 мМ магний ацетат, 1 мМ (ъ-меркаптоэтанол , 5 мМ ЭДТА. После каждого фракционировани  сульфатом аммони  осадки белка диализуют против того же буфера. Поскольку дл  пируваткиназы донором кроме аденозин-5 -трифосфата (АТР) могут служить уридин-5 -трифосфат (УТР), цетозин-5-три фосфат (ЦТР) и деэоксиаденозин-5-трифосфат (ДАТР), то в качестве афинного сорбента используют амнноэтилцеллюлозное производное АТР или УТР, или ЦТР по 0,5 г каждого влажно

го сорбента смешивалось с 10 iA а 280 им белка.

И второй вариант, когда три сорбента (аминрэтилцеллкшоэное производное АТР, УТР и ЦТР) смешивают, в эквивалентных количествах, паремешивают в течение 3-4 ч при С с 30 А 280 белка и затем смесь внос т в колонку. Как в первом варианте так и во втором, афинна  колонка элюировалась буфером I дл  удалени  всех балластных белков (до исчезновени  оптической плотности белка А 280), Буфером 11(буфер 1 с до авлениём соответству1а1цего субстрата до 100 мкм концентрации eroj элюировали белок, образующий специфический комплекс с афинным.сорбентом. Об образовании комплекса в каждом случае суд т по количеству белка, вы1иываемого с афииной колонки бУФвром I и буфером II с определением в каждой фракции пируваткинаэной активности .

В результате испытани  установлено , что ируваткиназа образует комплеке с афинными сорбентами, причем

более прочный комплекс (почти в 2 раза ) образуетс  и случае испытани  трех сорбентов одновременно.

Таким образом, данные .сорбенты обладают высоким сродством лиганда к специфическому взгшмодействию фермента, которое позвол ет многостадийные трудоемкие процессы выделени  и очистки ферментов сократить практически .до одной стадии, получа  индивидуальньй) белок; сорбенты стойки, стабильны в диапазоне рН от 6 до 11 при температуре от О до , гидрофильны, имеют большую удельную поверхность, механически прочны, имеют однородную форму. Ввиду легкой регенергщии-и возможности длительного хранени  синтезированные сорбенты могут быть многократйо использованы дл  выделени  и очистки индивидуальных белков.

Данные по использованию получен-. ных новых соединений в качестве афинных сорбентов дл  афинной хроматографии , а также данные-ПОрегенерированию и хранению афинных сорбентов представлены .3.

Claims (4)

1.Иммобилизованные на полимерной матрице п - и г-амидные производные нуклеозид-5 -ди- или трифос ато

Ьбщей формулы

/9 Л

R-NH-f-F-O-bdHz А

-° iCJ

онх

где п - 2 или 3;

R - полимерна  матрица;

X - Н или ОН;

А - природное основание, в качестве сорбентов дл  афинной хроматографии.

2.Способ получени  иммобилизованных на полимерной матрице /S - и

У -амидных производных нуклеозид-з -ди- или трифосфатов общей формулы

Ч

i«.

Л

Jn

Q

ОНХ

2 или 3)

полимерна  Матрица;

Н или ОН;

природное основание,

35

чающийс

тем, что

нуклеозид-5 -ди- или трифосфат общей формулыg,

of-P-o4-ciH, Л U Jn Ч

Чт

онх

где п, X и А - приведенные выше значени , подвергают

взаимодействию с 10-15-кратным избытком карбодиимида в водной среде при рН 5-6 и 10-15 С с добавлением в реакционную смесь полимерной матрицы, содержащей свободные аминогруппы.

Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе

1. Тгауег I.P., Тгауег R. Affinity Chromatography of Nicotinamid Nucleotide-Dependent Dehydrogenases on Immobilized Nucleotide Derivatives gj .ochemical Journal, 1974, 141, 775779 .

. Kapnjayer H. , Lappi D.A., Kaplan N.O. The synthesis of 8-(6-aminoliexy )-amino-GTF and GDP and their application as Ligands in affinity chroraatography. - Analytical Biochem 1979, 99, 189-199.

3.Labow R.S., Layne D.S., The formation of Glucosides of Isoflavones and of some other .phenols by

.Rabbit Liver Microsomal Fraction. Biochemical Journal, 1972, 28.45f-498

4.Иммобилизованные ферменты.

Под ред. И.В.Березина, т.1, М., 1976 с. 170-171.