SU959634A3 - Process for producing fermentation broth - Google Patents
Process for producing fermentation broth Download PDFInfo
- Publication number
- SU959634A3 SU959634A3 SU772512150A SU2512150A SU959634A3 SU 959634 A3 SU959634 A3 SU 959634A3 SU 772512150 A SU772512150 A SU 772512150A SU 2512150 A SU2512150 A SU 2512150A SU 959634 A3 SU959634 A3 SU 959634A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- fermentation
- xanthomonas
- citric acid
- solution
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C09—DYES; PAINTS; POLISHES; NATURAL RESINS; ADHESIVES; COMPOSITIONS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; APPLICATIONS OF MATERIALS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR
- C09K—MATERIALS FOR MISCELLANEOUS APPLICATIONS, NOT PROVIDED FOR ELSEWHERE
- C09K8/00—Compositions for drilling of boreholes or wells; Compositions for treating boreholes or wells, e.g. for completion or for remedial operations
- C09K8/60—Compositions for stimulating production by acting on the underground formation
- C09K8/84—Compositions based on water or polar solvents
- C09K8/86—Compositions based on water or polar solvents containing organic compounds
- C09K8/88—Compositions based on water or polar solvents containing organic compounds macromolecular compounds
- C09K8/90—Compositions based on water or polar solvents containing organic compounds macromolecular compounds of natural origin, e.g. polysaccharides, cellulose
- C09K8/905—Biopolymers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/04—Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
- C12P19/06—Xanthan, i.e. Xanthomonas-type heteropolysaccharides
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Emulsifying, Dispersing, Foam-Producing Or Wetting Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Colloid Chemistry (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
вующего образованию хелатных соеди нений , ввод т этилендиаминтетрауксусную кислоту. После культивировани в ферментационный бульон ввод т формальдегид в количестве 0,2-10 г/л. В качестве источника азота используют нитраты аммони , натри и кали . Вода дл приготовлени питательной среды содержит менее чем 20 г/л кальци и других осаждающих в виде фосфатов катионов, После культивировани ферментацион . ный бульон выдерживают в течение 3-4 дней дл получени бульона, прак-t тически свободного от нерастворимых частиц, превышающих размер 0,65 мкм. Средой дл выращивани данного мик роорганизма может быть бульон УМ (Difco) или среда, содержаща неочищенную глюкозу (церелозу), фосфаты натри и кали j сульфат магни и любое органическое соединение, вл юще с источником азота, например энзимную выварку соевых бобов или энзимную выварку казеина. После аэробно го размножени в течение примерно 30 ч при 25°С аликвоту бульона перенос т в ферментер дл осуществлени второй стадии инокул ции. Предпочтительными углеводами вл ютс глюкоза, мальтоза, фруктоза, отфильтрованный крахмал или их смеси. Предпочтительным источником азота вл етс неорганический нитрат: нитрат аммони , нитрат натри и нитрат кали в заданных концентраци х. Магний, как один из необходимых микроэлементов, используют в виде MgSO -7HnO, или горькой соли, добавл ее в концентрации до 1 г/л, нар ду с наличием следов магни и железа . Веществом, способствующим образЪванио хелатов, вл етс этилендиаминтетрауксусна кислота или, предпочтительно , лимонна кислота, котора используетс в качестве реагента, спо собствующего росту, а также пассивато ра /У1Я кальци . В качестве буфера дл среды, обеспечивающего значение рН 5 8,5 предпочтительно 6,0-7,5 ввод т большое количество моно- и дифосфатов кали . .После аэробного размножени в течение ч при , предпочтительно при 28-30°С, аликвоту раствора внос т в бродильный чан, содержащий .обеспечивающую получение вещества среду. Эта среда подобна по составу среде, наход щейс во йторой стадии инокул ции , за исключением того, что вместо фосфатов кали предпочтительно используют фосфаты натри (в св зи с их низкой стоимостью) и малое количество кальци в форме солей, таких как хлористый кальций или нитрат кальци , или окислов, которые добавл ют дл увеличени выхода ксантана. Количество добавл емогокальци зависит от количестна кальци , присутствующего в воде , используемой при приготовлении среды, используемого источника получени азота и видов и цепей используемого микроорганизма Xanthomonas Если вместе нитрата аммони используют нитрат .натри или кали , требуетс меньшее количество кальци (примерно 27 Ч. на млн). Дл полумени среды можно использовать такие деионизован-т 1Уую воду, дистиллированную воду- или 1 воду, содержащую менее 20 ч на млн. кальци и других осаждаемых при образовании фосфатов катионов, Ионы кальци можно добавл ть в требуемой концентрации . Роль ионов кальци в обеспечении получени ксантата велика,.но дл предложенного способа наиболее существенным вл етс предотвращение избыточного осаждени катионов кальци и других катионов в виде нерастворимых фосфатных солей. Это осуществл ют путем добавлени реагента, способствующего образованию хелатов, такого как этилендиаминтетрауксусна кислота. Важным параметром дл обеспечени роста бактерий Xanthomonas вл етс рН среды. Предпочтительными значени ми вл ютс величины от 6,0 до 7,5. Регулирование рН в указанных пределах осуществл ют использованием буферных соединений, таких как динатрийфосфат, Дл предотвращени осаждени ионов кальци введенных в воду, в виде нерастворимых солей кальци в буфер добавл ют этилендиаминтетрауксусную кислоту. Пpeдпoчtитeльнo регулировать рН в ходе цикла ферментации путем добавлени растворов гидратов окиси натРй или кали , при использовании которых обеспечиваетс дополнительное преимущество, заключающеес в уменьшении в зкости бульона без уменьшени выхода ксантана и в отсутствии необходимости хелатации буферного раствора . Дл быстрой ферментации необходимо точное количество кислорода, обеспе595 чивающее рост бактериальной культуры. Ферментационную среду аэрируют с целью обеспечени требуемого количества кислорода дл получени значени сульфитного окислени , в пределах от 1,5 до 3,5 ммоль кислорода на литр в минуту. Величина сульфитного окислени вл етс мерой скорости кисло . рода на входе в бродильный чан при перемешивании и осуществлении аэрации Ферментацию провод т при температуре около до тех пор, пока концентраци ксантана в бульоне не станет по крайней мере 100 ч. на млн., предпочтительно около 1 и наиболее предпочтительно около 1,k% (30-96 ч). В зкость раствора составл ет обычно 4,000 сП, предпочтительно 7,000 сП. Желательно убивать микробные клетки путем добавлени бактерицида. Пред почтительным бактерицидом вл етс формальдегид в концентрации 0,210 ,2 г/л, который может быть добавлен на заключительной стадии Ферментации, до или во врем хранени . Предложенный способ пригоден дл работы со многими вариантами бактерий Xanthomonas. Предпочтительным видом вл етс Xanthomonas carnpestris. Испытание на фильтруемость вл етс экспериментальной методикой, при которой измер етс скорость протекани через фильтр, имеющий микропоры размером 0,45-3,0 мкм, как функци от объема при посто нном давлении (2,82 кг/см ). Фильтрационное отношение соответствует отношению периода времени, необходимого дл собирани четвертых 250 мл раствора дл регулировани подвижности, к времени, которое необходимо дл собирани первых 250 мл этого раствора. Фильтрационное отношение, равное 1 свидетельствует о том, что раствор не обладает тенден - -цией к забиванию. Допустимые значени фильтрационных отношений дл растворов дл регулировани подвижности составл ют 1-3 (микропористые фильтры с размером пор 0,45-3 мкм), предпочтительно 1,7. Требуемые значени фильтрационных отношений и размеры пор фильтров, используемых дл испытаний конкретного раствора.дл регулировани подвижности , завис т от проницаемости подземных слоев нефт ного месторождени , дл которого планируетс вытеснение нефти. Растворы дл регулировани подвижности на основе завершенных ферментационных растворов, полученных в соответствии с предложенным способом, имеют фильтрационные отношени , которые пригодны дл большинства нефтеносных месторождений. Если проницаемость подземных слоев очень низка , то используют растворы дл регулировани подвижности с малыми фильтрационными отношени ми, причем целые или неочищенные бульоны предпочтительно не должны иметь никаких нерастворимых веществ с размерами частиц, превышающими 0,б5 мкм. Это можно осуществить простым хранением готового ферментационного бульона в присутствии формальдегида в течение дней. В процессе старени клетки Xanthomonas сжимаютс таким образом, что их размеры не превышают 0,б5 мкм. Клетки, имеют форму стерхш , причем обычно наибольший размер по длине превышает 0,65 мкм а меньший размер составл ет 0,4-1,0 мкм., Температура хранени некритична (О135°С , предпочтительно 20-45 0). На практике хранение при комнатной температуре в течение длительного времени осуществл етс до тех пор, пока микроскопическое исследование не показыва- ет, что наименьший размер клеток не превышает 0,5 мкм (через 3-4 дн ). Методики испытаний. Готоб т 1000 мл раствора, содержащего 750 ч. -на млн. ксантана в растворе соли с концентрацией 500 ч. на млн (10:1 NaCJ-CaCl), следующим образом. В смесителе типа Варинга (Waring), снабженном реостатом, замер ют количество бульона (основыва сь на содержании ксантана), необходимое дл получени 0,75 г твердого ксантана, Провод т разбавление от 1 до 6 раствором соли. Сдвигают смесь следующим образом: 40% мощности (2 мин 60 мощности ) 2 мин, 80 мощности 2 мин. Разбавл ют раствор в смесителе до концентрации ксантана 750 ч. на млн. и сдвигают при 40% мощности в теуение 2 мин (раствор также используют дл определени в зкости). Используют экспериментальное устроиство , которое позвол ет определ ть скорость протекани через диск из микропористого фильтра (47 мм, размер пор 0,46-8,0 мкм) как функцию от объема при посто нном давлении в 28 н/м . Резервуар емкостью 1 л заполн ют 1 л ксантанового раствора (750 ч.ethylene diamine tetraacetic acid is added to form chelate compounds. After cultivation, formaldehyde was introduced into the fermentation broth in an amount of 0.2-10 g / l. As the nitrogen source, ammonium, sodium and potassium nitrates are used. The water for the preparation of the nutrient medium contains less than 20 g / l of calcium and other precipitating cations in the form of phosphates. After cultivation, fermentation. The broth is aged for 3-4 days to obtain a broth that is practically free of insoluble particles greater than the size of 0.65 µm. The growth medium for this microorganism may be a UM broth (Difco) or a medium containing crude glucose (cerelose), sodium and potassium phosphates, magnesium sulfate and any organic compound that is a source of nitrogen, for example, soy bean enzyme or casein enzyme evaporation . After aerobic propagation for about 30 hours at 25 ° C, an aliquot of the broth is transferred to a fermenter to effect the second inoculation step. Preferred carbohydrates are glucose, maltose, fructose, filtered starch, or mixtures thereof. The preferred nitrogen source is inorganic nitrate: ammonium nitrate, sodium nitrate and potassium nitrate in predetermined concentrations. Magnesium, as one of the necessary microelements, is used in the form of MgSO-7HnO, or bitter salt, by adding it in a concentration of up to 1 g / l, along with traces of magnesium and iron. The chelating agent is ethylenediaminetetraacetic acid or, preferably, citric acid, which is used as a growth-promoting agent, as well as a calcium passivator / calcium carbonate. As a buffer for a medium providing a pH value of 8.5 to 8.5, preferably 6.0 to 7.5, large amounts of potassium mono- and diphosphates are added. After aerobic propagation for an hour at, preferably at 28-30 ° C, an aliquot of the solution is introduced into a fermentation tank containing the medium that provides the substance. This medium is similar in composition to the medium in the second stage of inoculation, except that instead of potassium phosphates, it is preferable to use sodium phosphates (due to their low cost) and a small amount of calcium in the form of salts, such as calcium chloride or nitrate. calcium, or oxides, which are added to increase xanthan yield. The amount of added calcium depends on the amount of calcium present in the water used in the preparation of the medium, the source of nitrogen used and the species and chains of the Xanthomonas microorganism used. If ammonium nitrate is used together with sodium nitrate or potassium nitrate, less calcium is needed (about 27 ppm) ). For the medium medium halfway, such deionized water can be used, distilled water - or 1 water containing less than 20 hours per million of calcium and other cations precipitated during the formation of phosphates. Calcium ions can be added in the required concentration. The role of calcium ions in ensuring the production of xanthate is great, but for the proposed method, the most important is to prevent excessive precipitation of calcium cations and other cations in the form of insoluble phosphate salts. This is done by adding a chelating reagent, such as ethylenediaminetetraacetic acid. An important parameter for ensuring the growth of Xanthomonas bacteria is the pH of the medium. Preferred values are from 6.0 to 7.5. Adjusting the pH within the indicated ranges is carried out using buffer compounds such as disodium phosphate. To prevent the precipitation of calcium ions introduced into water, ethylene diamine tetraacetic acid is added to the buffer as insoluble calcium salts. It is preferable to adjust the pH during the fermentation cycle by adding solutions of sodium or potassium hydrate solutions, which provide the additional advantage of reducing the viscosity of the broth without decreasing the xanthan yield and eliminating the need for buffer solution chelation. For fast fermentation, an exact amount of oxygen is necessary to ensure the growth of the bacterial culture. The fermentation medium is aerated to provide the required amount of oxygen to obtain a sulphite oxidation value in the range of 1.5 to 3.5 mmol of oxygen per liter per minute. The amount of sulfite oxidation is a measure of the acidic rate. Fermentation is carried out at a temperature of about until the concentration of xanthan in the broth reaches at least 100 ppm, preferably about 1 and most preferably about 1, k% ( 30-96 h). The viscosity of the solution is usually 4,000 cP, preferably 7,000 cP. It is desirable to kill microbial cells by adding a bactericide. A preferred bactericide is formaldehyde at a concentration of 0.210, 2 g / l, which can be added at the final stage of fermentation, before or during storage. The proposed method is suitable for working with many variants of Xanthomonas bacteria. The preferred species is Xanthomonas carnpestris. The filterability test is an experimental technique that measures the flow rate through a filter having micropores of 0.45-3.0 µm in size as a function of volume at constant pressure (2.82 kg / cm). The filtration ratio corresponds to the ratio of the time required to collect the fourth 250 ml of motility control solution to the time required to collect the first 250 ml of this solution. The filtration ratio of 1 indicates that the solution does not have a tendency to - -thation to clogging. Valid filtration ratios for mobility control solutions are 1–3 (microporous filters with a pore size of 0.45–3 µm), preferably 1.7. The required filtration ratios and pore sizes of the filters used to test a particular solution for controlling mobility depend on the permeability of the underground layers of the oil field for which the oil is being squeezed out. Solutions for mobility control based on the completed fermentation solutions obtained in accordance with the proposed method have filtration ratios that are suitable for most oil fields. If the permeability of the subterranean layers is very low, then solutions are used to control mobility with low filtration ratios, and whole or unpurified broths should preferably not have any insoluble substances with particle sizes greater than 0, b5 microns. This can be accomplished by simply storing the finished fermentation broth in the presence of formaldehyde for days. During the aging process, Xanthomonas cells are compressed in such a way that their sizes do not exceed 0 μm to 5 μm. The cells are in the form of a corkscale, and usually the largest size in length exceeds 0.65 microns and the smaller size is 0.4-1.0 microns. The storage temperature is non-critical (O135 ° C, preferably 20-45 0). In practice, storage at room temperature for a long time is carried out until a microscopic examination shows that the smallest cell size does not exceed 0.5 µm (after 3-4 days). Test methods. A gotob is 1000 ml of a solution containing 750 p. -A million xanthan in a salt solution with a concentration of 500 ppm (10: 1 NaCJ-CaCl), as follows. In a Waring type mixer equipped with a rheostat, the amount of broth (based on xanthan content) needed to obtain 0.75 g of solid xanthan is measured. Dilution is made from 1 to 6 with salt solution. Shift the mixture as follows: 40% power (2 min 60 power) 2 min, 80 power 2 min. Dilute the solution in a blender until the concentration of xanthan gum is 750 ppm and shift at 40% power per minute for 2 minutes (the solution is also used to determine the viscosity). An experimental device was used which allowed the flow rate to be determined through a microporous filter disc (47 mm, pore size 0.46-8.0 µm) as a function of volume at a constant pressure of 28 n / m. A 1 liter tank is filled with 1 l of xanthan solution (750 h.
а млн.), создают давление 28 H/M, отpbiBarot клапан и регистрируют объем ильтрата и врем (с).a million), create a pressure of 28 H / M, select the Barbi valve and record the volume of the filtrate and the time (s).
Определ ют фильтрационное отношеие .5The filtration ratio is determined .5
Определение в зкости. В зкость опедел ют с помощью синхроэлектрического вискозиметра Брукфильда (модель LVT с VL-приставкой). Измерени ведут . при 25°С и скорост х 6 и 12 об/мин. ю В зкость выражают в сантипаузах,Viscosity determination. The viscosity is determined by a Brookfield synchronous viscometer (LVT model with a VL attachment). Measurements lead. at 25 ° С and speeds x 6 and 12 rpm. Viscosity is expressed in centipas,
Определение содержани ксантана. Ксантан высокой степени очистки содерит около 18, глюкуроновой кислоты. Количество глюкуроновой кислоты в ком-is позици х на основе ксантана определ ют в отсутствие формальдегида и без бората при по методу Кнутсона и Джинса.Determination of xanthan content. Highly purified xanthanum contains about 18 glucuronic acid. The amount of glucuronic acid in the xanthan-based com-is positions is determined in the absence of formaldehyde and without borate using the Knutson and Jeans method.
Содержание ксантана определ ют по 20 формулеThe xanthan content is determined according to formula 20
Глюкуронова кислота, % к ТОО о,Glucuronic acid,% o LLP,
., fgnp., fgnp
Пример 1. Клетки Xanthomonas campestris из косого агара перенос т в 300 мл бульона УМ, наход щегос в Z,, 8-литровой колбе Фернбаха, и встр хивают на вращающемс шейкере в течение 31 ч при 28°С. Аликвоту 25 мл перенос т в колбу Фернбаха (2,8 л) , содержащую 500 мл среды следующего состава , г/л:Example 1. Xanthomonas campestris cells from oblique agar are transferred to 300 ml of UM broth, located in Z ,, 8-liter Fernbach flask, and shaken on a rotating shaker for 31 hours at 28 ° C. A 25 ml aliquot is transferred to a Fernbach flask (2.8 L) containing 500 ml of medium of the following composition, g / l:
Глюкоза-фруктозаGlucose-fructose
(Изосвит 100) 10,1(Izosvit 100) 10.1
Неочищенна глю-3SCrude Glu-3S
коза (церелоза) 25,1goat (cerelosis) 25.1
NH4N031,0NH4N031.0
MgS04-7H iO0,10MgS04-7H iO0,10
MnS04HiO0,03MnS04HiO0.03
FeS04-7HxO0,0140FeS04-7HxO0,0140
Безводна лимонна Waterless lemon
кислота1 0acid1 0
КаНР04,1KANP04.1
KHaPL40,69KHaPL40,69
Церелозу и Изосвит 100 раствор - ют в дистиллированной воде и обрабатывают в автоклаве по отдельности. Остальные ингредиенты объедин ют, довод т рН до 6,Ц.и также обрабатывают в автоклаве. Прошедшие раздельную об-работку в автоклаве материалы затем объедин ют вместе.Cereose and Isosvit 100 are dissolved in distilled water and treated separately in an autoclave. The remaining ingredients are combined, adjusted to pH 6, C., and also autoclaved. The separated autoclave processing materials are then combined together.
После встр хивани при 28С в течение 33 ч 200 мл раствора перемеща- ют в 4-литровый ородильный бак с механической мешалкой, содержащей 2 л среды следующего состава, г/л:After shaking at 28 ° C for 33 hours, 200 ml of the solution is transferred to a 4-liter orifice tank with a mechanical stirrer containing 2 liters of the medium of the following composition, g / l:
Церелоза 25,7 автоклавируют ю отдельности. Изосвит 100 10,1 NH4H031,0 Cerelose 25.7 autoclave separately. Izosvit 100 10.1 NH4H031.0
MgS047H-iO0,10MgS047H-iO0,10
,03, 03
FeS04-7H,2.00.10FeS04-7H, 2.00.10
Безводна лимонна кислота1,0 СаС1-2Но О 0,20 NaHP04 3,3 0,70 Сахара раствор ют в 300 мл воды, .обрабатывают в автоклаве по отдельности , остальные ингредиенты раствор ют в 1700 мл воды, обрабатывают в автоклаве , после чего объедин ют оба раствора . Затем провод т аэрацию с такой скоростью, чтобы обеспечить количество кислорода 1, ммоль/л в минутуAnhydrous citric acid, 1.0 CaC1-2No O 0.20 NaHP04 3.3 0.70 Sugar is dissolved in 300 ml of water, processed separately in an autoclave, the remaining ingredients are dissolved in 1700 ml of water, processed in an autoclave, and then combined both solutions. Then, aeration is carried out at such a rate as to ensure the amount of oxygen 1 mmol / l per minute.
Ферментацию провод т при 30°С в течение 8 ч, при этом рН раствора поддерживают на уровне 5-7,5 добавлением буфера на основе фосфата натри разведенного Ъ водопроводной воде. В буфер на основе фосфата натри добавл ют также этилендиаминтетрауксусную кислоту дл предотвращени осаждени фосфата кальци . В конце ферментации в зкость бульона 7ВОО сП (при скорости сдвига 6,27 ), выход ксантана 1,5.Fermentation is carried out at 30 ° C for 8 hours, while the pH of the solution is maintained at 5-7.5 by adding sodium phosphate-based buffer diluted with tap water. Ethylene diamine tetraacetic acid is also added to the sodium phosphate buffer to prevent calcium phosphate from precipitating. At the end of the fermentation, the viscosity of the 7ВОО cP broth (at a shear rate of 6.27), xanthan yield is 1.5.
Раствор дл регулировани подвижноти имеет фильтрационнЬе отношение 1,7 (микропористый фильтр с размером пор 3 мкм).The motility regulation solution has a filtration ratio of 1.7 (microporous filter with a pore size of 3 µm).
Пример 2. Повтор ют методику примера 1 с использованием следующей ферментационной среды, г/л:Example 2. The procedure of Example 1 was repeated using the following fermentation medium, g / l:
Г1осевна среда 1- стади Церелоза10,0General Wednesday 1-stage Tsereloza 10,0
(NH4)T.HP042,0(NH4) T.HP042.0
KHQ,P041,0KHQ, P041.0
MgS04-7HlO0,5MgS04-7HlO0,5
NZ-амин УТ (энзимна выварка казеина ) рН -7,0 11,0 Посевна среда (2- стади / D-глюкозаNZ-Amin UT (Casein Vyvarka enzyme) pH -7.0 11.0 Sowing medium (2-stage / D-glucose
Claims (6)
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US71184376A | 1976-08-05 | 1976-08-05 | |
US05/793,274 US4119546A (en) | 1976-08-05 | 1977-05-03 | Process for producing Xanthomonas hydrophilic colloid, product resulting therefrom, and use thereof in displacement of oil from partially depleted reservoirs |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU959634A3 true SU959634A3 (en) | 1982-09-15 |
Family
ID=27108715
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU772512150A SU959634A3 (en) | 1976-08-05 | 1977-08-04 | Process for producing fermentation broth |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
BR (1) | BR7705160A (en) |
CA (1) | CA1094479A (en) |
DE (1) | DE2734364C2 (en) |
EG (1) | EG12843A (en) |
ES (1) | ES461344A1 (en) |
FR (1) | FR2360665A1 (en) |
GB (1) | GB1531970A (en) |
IE (1) | IE45543B1 (en) |
IL (1) | IL52609A (en) |
IT (1) | IT1080085B (en) |
NL (1) | NL168554B (en) |
NO (1) | NO150965C (en) |
SU (1) | SU959634A3 (en) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
PT69430A (en) * | 1978-04-13 | 1979-05-01 | Merck & Co Inc | Process for preparing a xanthan gum with low calcium content |
US4265673A (en) | 1978-06-23 | 1981-05-05 | Talres Development (N.A.) N.V. | Polymer solutions for use in oil recovery containing a complexing agent for multivalentions |
NL7907884A (en) * | 1978-11-06 | 1980-05-08 | Pfizer | METHOD FOR PREPARING A MOTION CONTROLLING SOLUTION FOR USE IN OIL EXTRACTION |
FR2442955A1 (en) * | 1978-12-01 | 1980-06-27 | Ceca Sa | IMPROVEMENTS TO ASSISTED OIL RECOVERY |
US4263399A (en) * | 1979-05-31 | 1981-04-21 | Merck & Co., Inc. | High phosphate process for making low calcium, smooth flow xanthan gum |
CA1153971A (en) * | 1980-07-14 | 1983-09-20 | Standard Oil Company | Semi-continuous method for production of xanthan gum using xanthomonas campestris atcc 31601 |
DE19512731C1 (en) * | 1995-04-05 | 1996-07-11 | Preussag En Gmbh | Flooding agent used to recover oil and natural gas from underground deposits |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DD121954A1 (en) * | 1975-09-05 | 1976-09-05 |
-
1977
- 1977-07-26 NO NO772654A patent/NO150965C/en unknown
- 1977-07-27 IL IL52609A patent/IL52609A/en not_active IP Right Cessation
- 1977-07-29 DE DE2734364A patent/DE2734364C2/en not_active Expired
- 1977-08-03 NL NL7708587.A patent/NL168554B/en not_active Application Discontinuation
- 1977-08-04 IE IE1628/77A patent/IE45543B1/en not_active IP Right Cessation
- 1977-08-04 SU SU772512150A patent/SU959634A3/en active
- 1977-08-04 CA CA284,129A patent/CA1094479A/en not_active Expired
- 1977-08-04 IT IT50559/77A patent/IT1080085B/en active
- 1977-08-04 ES ES461344A patent/ES461344A1/en not_active Expired
- 1977-08-04 FR FR7724107A patent/FR2360665A1/en active Granted
- 1977-08-04 BR BR7705160A patent/BR7705160A/en unknown
- 1977-08-05 GB GB33003/77A patent/GB1531970A/en not_active Expired
- 1977-08-06 EG EG465/77A patent/EG12843A/en active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
NO150965C (en) | 1985-01-16 |
IL52609A0 (en) | 1977-10-31 |
FR2360665A1 (en) | 1978-03-03 |
NL7708587A (en) | 1978-02-07 |
NO772654L (en) | 1978-02-07 |
IL52609A (en) | 1980-06-30 |
FR2360665B1 (en) | 1982-07-09 |
ES461344A1 (en) | 1978-12-01 |
NO150965B (en) | 1984-10-08 |
GB1531970A (en) | 1978-11-15 |
DE2734364C2 (en) | 1982-12-02 |
IE45543B1 (en) | 1982-09-22 |
DE2734364A1 (en) | 1978-02-09 |
IT1080085B (en) | 1985-05-16 |
CA1094479A (en) | 1981-01-27 |
BR7705160A (en) | 1978-04-25 |
IE45543L (en) | 1978-02-05 |
NL168554B (en) | 1981-11-16 |
EG12843A (en) | 1980-03-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4119546A (en) | Process for producing Xanthomonas hydrophilic colloid, product resulting therefrom, and use thereof in displacement of oil from partially depleted reservoirs | |
CA1113875A (en) | Xanthomonas biopolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs | |
SU1162375A3 (en) | Composition for drive of oil out of formation | |
US4352741A (en) | Xanthomonas biopolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs | |
SU959634A3 (en) | Process for producing fermentation broth | |
US3391060A (en) | Process for producing a polysaccharide | |
US2961311A (en) | Metal ion control | |
EP0400300A1 (en) | Biosynthesis of hyaluronic acid | |
US3346463A (en) | Stabilization and enhancement of the activity of flocculants | |
US3391061A (en) | Process for producing polysaccharides | |
RU2447143C2 (en) | METHOD FOR SUBMERGED CULTIVATION OF Bacillus brevis FOR PRODUCING GRAMICIDIN S | |
CA1134301A (en) | Fermentation process for production of xanthan | |
Hopkins et al. | The effect of the H ion concentration on the availability of iron for Chlorella sp | |
GB2139638A (en) | Improvements in or relating to a process for microbial production of polysaccharides | |
CN101434922B (en) | Optimal dissolved oxygen control method for producing magnetosome by cultivating magnetotactic bacteria | |
US4371622A (en) | Micromonospora culture | |
US4104193A (en) | Imparting superior viscosity to aqueous polysaccharide solutions | |
US4340678A (en) | Xanthomonas biopolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs | |
RU2095409C1 (en) | Method of preparing vaccine for control of anthrax in animals | |
RU2032737C1 (en) | Method of growing methane-oxidizing microorganisms | |
SU425934A1 (en) | METHOD FOR PREPARATION OF SOLUTION OF MINERAL NUTRIENT SALTS FOR CULTIVATION OF MICROORGANISMS | |
JPS61173795A (en) | Improved production of xanthan gum | |
SU825615A1 (en) | Culture medium for culturing microorganisms | |
SU452236A1 (en) | The method of growing microorganisms | |
JPS63296A (en) | Production of thiostrepton |