RU2032737C1 - Method of growing methane-oxidizing microorganisms - Google Patents
Method of growing methane-oxidizing microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- RU2032737C1 RU2032737C1 SU4757285A RU2032737C1 RU 2032737 C1 RU2032737 C1 RU 2032737C1 SU 4757285 A SU4757285 A SU 4757285A RU 2032737 C1 RU2032737 C1 RU 2032737C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nitrogen
- phosphorus
- concentration
- methane
- fermenter
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к технической микробиологии, а именно к способам выращивания метанокисляющих микроорганизмов, и может быть использовано для промышленного производства белково-витаминного концентрата из природного газа. The invention relates to technical microbiology, and in particular to methods for growing methane-oxidizing microorganisms, and can be used for the industrial production of protein-vitamin concentrate from natural gas.
Известен способ культивирования метанокисляющих микроорганизмов, согласно которому в процессе культивирования микроорганизмов в условиях аэрации на водной минеральной питательной среде, содержащей источники азота, фосфора и других макро- и микроэлементов, а также метан в качестве источника углерода, в культуральной среде поддерживают концентрацию фосфора на уровне 20-60 мг/л, а отношение концентраций калия, магния, железа, меди, марганца и цинка к концентрации фосфора соответственно на уровне 1:2, 1:4, 1:40, 1:60, 1:80 и 1:100. A known method for the cultivation of methane-oxidizing microorganisms, according to which during the cultivation of microorganisms under aeration on an aqueous mineral nutrient medium containing sources of nitrogen, phosphorus and other macro- and microelements, as well as methane as a carbon source, the phosphorus concentration in the culture medium is maintained at a level of 20 -60 mg / l, and the ratio of the concentrations of potassium, magnesium, iron, copper, manganese and zinc to the concentration of phosphorus, respectively, at the levels of 1: 2, 1: 4, 1:40, 1:60, 1:80 and 1: 100.
Согласно известному способу процесс культивирования ведут, используя в качестве источника азотного питания аммиачную воду, которая одновременно служит регулятором величины рН, численное значение которой поддерживают на уровне 5,0-6,0 ед. Однако в зависимости от величины рН культивирования в указанных пределах содержание аммонийного азота в аппарате для выращивания микроорганизмов будет варьироваться в очень широких пределах. При этом понижение или превышение содержания азота в среде культивирования против оптимального неуклонно приведет соответственно к азотному голоданию или ингибированию процесса культивирования избытком азота и в обоих случаях к снижению продуктивности. According to the known method, the cultivation process is carried out using ammonia water as a nitrogen source, which simultaneously serves as a regulator of the pH value, the numerical value of which is maintained at the level of 5.0-6.0 units. However, depending on the pH of the cultivation within the specified limits, the content of ammonium nitrogen in the apparatus for growing microorganisms will vary within very wide limits. At the same time, a decrease or excess of the nitrogen content in the cultivation medium versus the optimal one will steadily lead to nitrogen starvation or inhibition of the cultivation process with excess nitrogen, and in both cases, a decrease in productivity.
Известен также способ выращивания метанокисляющих микроорганизмов, по которому поддерживают концентрацию, например, азота, на уровне 80-200 мг/л путем регулирования различных технологических параметров. На неоптимальность содержания азота в среде культивирования, выраженного указанным пределом (80-200 мг/л), свидетельствует большой разброс получаемых при этом результатов. Кроме того, продуктивность процесса культивирования зависит не только от содержания азота, но и других источников питания и, в первую очередь, от оптимального содержания в среде фосфора. There is also known a method of growing methane-oxidizing microorganisms, which maintain the concentration of, for example, nitrogen, at a level of 80-200 mg / l by adjusting various technological parameters. The non-optimality of the nitrogen content in the cultivation medium, expressed by the indicated limit (80-200 mg / l), is evidenced by the large spread in the results obtained. In addition, the productivity of the cultivation process depends not only on the nitrogen content, but also on other food sources, and, first of all, on the optimal phosphorus content in the medium.
Целью настоящего изобретения является увеличение продуктивности процесса путем поддержания в культуральной среде оптимальных концентраций азота и фосфора. The aim of the present invention is to increase the productivity of the process by maintaining the optimal concentrations of nitrogen and phosphorus in the culture medium.
Цель достигается тем, что в способе выращивания метанокисляющих микроорганизмов в ферментере, предусматривающем непрерывное аэробное культивирование метанокисляющих бактерий, включающих Methylococcus capsulatus, на водной питательной среде, содержащей источник азота, фосфора, калия, магния и другие микроэлементы, а также метан в качестве источника углеродного питания, концентрации азота и фосфора в среде регулируют в зависимости от величины протока и объема ферментера согласно формулам
CN= 
F проток через ферментер, м3/ч;
Yp рабочий объем ферментера, м3;
KN 0,00165 м3/ч ˙ г азота удельный проток в расчете на 1 г азота в питательной среде;
Кр 0,00295 м3/ч ˙ г фосфора удельный проток в расчете на 1 г фосфора в питательной среде.The goal is achieved in that in a method for growing methane-oxidizing microorganisms in a fermenter, providing continuous aerobic cultivation of methane-oxidizing bacteria, including Methylococcus capsulatus, in an aqueous nutrient medium containing a source of nitrogen, phosphorus, potassium, magnesium and other trace elements, as well as methane as a source of carbon nutrition , the concentration of nitrogen and phosphorus in the medium is regulated depending on the size of the duct and the volume of the fermenter according to the formulas
C N =
F duct through the fermenter, m 3 / h;
Y p the working volume of the fermenter, m 3 ;
K N 0,00165 m 3 / h ˙ g of nitrogen specific duct per 1 g of nitrogen in the nutrient medium;
To p 0,00295 m 3 / h ˙ g of phosphorus specific duct per 1 g of phosphorus in a nutrient medium.
Как видно из приведенных формул, в ферментерах с одним и тем же рабочим объемом концентрации азота и фосфора, а следовательно и остальных элементов минерального питания, для каждого значения протока через ферментер имеют строго определенные (оптимальные) значения. При этом с увеличением протока концентрации элементов минерального питания необходимо увеличивать, а с уменьшением протока снижать. Это можно объяснить тем, что с возрастанием протока уменьшается время пребывания биомассы в ферментере и для создания нормальных условий протекания биохимических процессов указанное уменьшение времени пребывания должно компенсироваться при прочих равных условиях изменением какого-либо другого параметра, в данном случае увеличение градиента концентрации через цитоплазматическую мембрану клетки, как движущей силы биохимического процесса, т.е. увеличением концентраций минерального питания в ферментере, и наоборот, с уменьшением протока уменьшением этих концентраций. Численные значения удельных протоков KN и Кр находят экспериментальным путем из графика зависимости продуктивности от соотношений D/CN и D/Cp (где D скорость протока, ч-1) в виде значений указанных соотношений, отвечающих максимальной продуктивности процесса, осуществляемого в непрерывном строго стационарном режиме.As can be seen from the above formulas, in fermenters with the same working volume, the concentrations of nitrogen and phosphorus, and therefore the remaining elements of the mineral nutrition, for each value of the flow through the fermenter have strictly defined (optimal) values. At the same time, with an increase in the duct, the concentration of mineral nutrition elements must be increased, and with a decrease in the duct, it is necessary to decrease. This can be explained by the fact that, with an increase in the duct, the residence time of the biomass in the fermenter decreases, and in order to create normal conditions for the course of biochemical processes, this decrease in the residence time must be compensated, ceteris paribus, by a change in some other parameter, in this case, an increase in the concentration gradient through the cytoplasmic membrane of the cell as the driving force of the biochemical process, i.e. an increase in the concentration of mineral nutrition in the fermenter, and vice versa, with a decrease in duct and a decrease in these concentrations. The numerical values of the specific ducts K N and K p are found experimentally from the graph of productivity versus the ratios D / C N and D / C p (where D is the flow rate, h -1 ) in the form of values of these ratios corresponding to the maximum productivity of the process carried out in continuous strictly stationary mode.
Выращивание метанокисляющих микроорганизмов Methylococcus capsulatus осуществляют в условиях аэрации с использованием природного газа в качестве источника углерода, а в качестве источника кислородного питания воздуха или смеси воздуха с кислородом. В качестве элементов минерального питания используют азот, фосфор, магний, калий, медь, железо, марганец, цинк, кобальт и другие микроэлементы преимущественно в виде сульфатов. Источником азотного питания служит аммиачная вода, являющаяся одновременно титрантом, автоматически поддерживающим рН культуральной среды на уровне 4,9-5,7 ед. The cultivation of methane-oxidizing microorganisms Methylococcus capsulatus is carried out under aeration conditions using natural gas as a carbon source, and as an oxygen supply source for air or a mixture of air and oxygen. As elements of mineral nutrition, nitrogen, phosphorus, magnesium, potassium, copper, iron, manganese, zinc, cobalt and other trace elements are mainly used in the form of sulfates. The source of nitrogen nutrition is ammonia water, which is also a titrant, which automatically maintains the pH of the culture medium at the level of 4.9-5.7 units.
Давление в среде выращивания поддерживают в пределах 1-4 ати. Процесс культивирования проводят при 42-44оС и скорости протока 0,15-0,35 ч-1.The pressure in the growing medium is maintained within the range of 1-4 atmospheres. The cultivation process is carried out at 42-44 about C and a flow rate of 0.15-0.35 h -1 .
Сопоставительный анализ предложенного способа с прототипом позволил определить "Новые признаки":
концентрации азота и фосфора в среде регулируют;
концентрации азота и фосфора регулируют в зависимости от величины протока и объема ферментера.A comparative analysis of the proposed method with the prototype allowed us to determine the "New features":
the concentration of nitrogen and phosphorus in the medium is regulated;
the concentration of nitrogen and phosphorus is regulated depending on the size of the duct and the volume of the fermenter.
Следовательно, предложенное техническое решение соответствует критерию "Новизна". Therefore, the proposed technical solution meets the criterion of "Novelty."
Аналогов, содержащих признаки, отличающие заявленное решение от прототипа, не обнаружено. Отличительные признаки заявленного решения не являются функционально самостоятельными, они не характеризуют часть способа, а следовательно, не могут быть проклассифицированы как самостоятельные объекты, т. е. их поиск отдельно от других частей объекта не производится. Заявленное решение соответствует критерию "Существенные отличия". Analogues containing signs that distinguish the claimed solution from the prototype were not found. Distinctive features of the claimed solution are not functionally independent, they do not characterize part of the method, and therefore, cannot be classified as independent objects, that is, they are not searched separately from other parts of the object. The claimed solution meets the criterion of "Significant differences".
В качестве засевного материала использовалась полученная в производственных условиях культура метанокисляющих микроорганизмов Methylococcus capsulatus, штамм ВСБ-874 с сопутствующей микрофлорой. Однако, исходя из теоретических соображений, следует ожидать, что обнаруженная закономерность, составляющая сущность изобретения, будет соблюдаться при использовании и других штаммов указанного вида микроорганизмов. A culture of methane-oxidizing microorganisms Methylococcus capsulatus, strain VSB-874 with accompanying microflora obtained under production conditions was used. However, based on theoretical considerations, it should be expected that the discovered pattern, which is the essence of the invention, will be observed when using other strains of the specified type of microorganisms.
П р и м е р 1. Выращивание метанокисляющей культуры вида Methylococcus capsulatus производили на водной минеральной питательной среде следующего состава (на 1 л раствора): Ортофосфорная кислота 0,5 мл Сернокислый калий 0,29 г Сульфат магния 0,20 г Сульфат марганца 19,0 мг Сульфат железа 21,0 мг Сульфат цинка 3,0 мг Сульфат меди 20,0 мг Сульфат кобальта 0,50 мг Молибдат натрия 0,50 мг Борная кислота 12,5 мг
Источником азота и титрующим агентом служил 10%-ный водный раствор NH4OH.Example 1. The cultivation of a methane-oxidizing culture of the species Methylococcus capsulatus was carried out on an aqueous mineral nutrient medium of the following composition (per 1 liter of solution): Phosphoric acid 0.5 ml Potassium sulfate 0.29 g Magnesium sulfate 0.20 g Manganese sulfate 19 , 0 mg Ferrous sulfate 21.0 mg Zinc sulfate 3.0 mg Copper sulfate 20.0 mg Cobalt sulfate 0.50 mg Sodium molybdate 0.50 mg Boric acid 12.5 mg
A nitrogen source and titration agent was a 10% aqueous solution of NH 4 OH.
Предварительно экспериментальным путем были найдены значения констант Кр и KN для приведенного выше состава водной минеральной среды, которые составили соответственно 0,00295 м3/ч ˙ г фосфора и 0,00165 м3/ч ˙ г азота. Выращивание осуществляли в ферментере струйного типа с рабочим объемом 1 м3 при 43оС, давлении 2,5 ати, рН 5,4-5,7 ед. Расход природного газа и воздуха поддерживали соответственно на уровне 11 нм3/ч и 26,0 нм3/ч в расчете на 1 кг абсолютно сухой биомассы (АСБ).Preliminarily experimentally, the constants K p and K N were found for the above composition of the aqueous mineral medium, which amounted to 0.00295 m 3 / h ˙ g of phosphorus and 0.00165 m 3 / h ˙ g of nitrogen, respectively. Cultivation was carried out in a fermenter jet type with a working volume of 1 m 3 at 43 ° C, a pressure of 2.5 atm, pH 5.4-5.7 units. The consumption of natural gas and air was maintained at 11 nm 3 / h and 26.0 nm 3 / h, respectively, per 1 kg of absolutely dry biomass (ASB).
Процесс непрерывного выращивания производили при протоке через ферментер, равном 250 л/ч. По приведенным выше формулам рассчитывали оптимальное содержание азота и фосфора в ферментере:
CN= 
Cp= 
C N =
C p =
Продуктивность процесса непрерывного выращивания микроорганизмов составила 4,05 кг/м3 ˙ ч; в контрольном же опыте, проведенном при тех же условиях, но при поддержании концентрации фосфора в культуральной жидкости на уровне 50-100 мг/л и концентрации азота на уровне 100-150 мг/л продуктивность процесса составила 3,29 кг/м3 ˙ ч.The productivity of the process of continuous cultivation of microorganisms was 4.05 kg / m 3 ˙ h; in the control experiment conducted under the same conditions, but while maintaining the concentration of phosphorus in the culture fluid at the level of 50-100 mg / l and the nitrogen concentration at the level of 100-150 mg / l, the productivity of the process was 3.29 kg / m 3 ˙ h .
П р и м е р 2. Выращивание смешанной метанокисляющей культуры проводили в ферментере с рабочим объемом 320 м3 так, как описано в примере 1, но в качестве источника кислородного питания использовали смесь кислорода с воздухом с концентрацией кислорода 80% об. Расход источника кислородного питания и природного газа поддерживали соответственно на уровне 3,5 нм3/ч и 2,9 нм3/ч в расчете на 1 кг/ч абсолютно сухой биомассы. Непрерывное выращивание микроорганизмов при протоке, равном 70 м3/ч, осуществляли, поддерживая в ферментере концентрации азота и фосфора на заданном уровне известными приемами, причем заданный уровень находили из приведенных выше формул:
концентрации азота
CN= 
концентрация фосфора
Cp= 
Продуктивность непрерывного выращивания составила 3,56 кг/м3 ˙ ч. В контрольном опыте, проведенном в тех же условиях при поддержании концентрации азота и фосфора в пределах 100-150 мг/л и 50-100 мг/л соответственно, продуктивность не превышает 2,9 кг/м3 ˙ ч.PRI me R 2. The cultivation of a mixed methane-oxidizing culture was carried out in a fermenter with a working volume of 320 m 3 as described in example 1, but as a source of oxygen supply used a mixture of oxygen with air with an oxygen concentration of 80% vol. The flow rate of the oxygen supply and natural gas was maintained at 3.5 nm 3 / h and 2.9 nm 3 / h, respectively, per 1 kg / h of absolutely dry biomass. Continuous growth of microorganisms with a duct equal to 70 m 3 / h was carried out, maintaining the concentration of nitrogen and phosphorus in the fermenter at a given level by known methods, and a given level was found from the above formulas:
nitrogen concentration
C N =
phosphorus concentration
C p =
The productivity of continuous cultivation was 3.56 kg / m 3 ˙ h. In the control experiment carried out under the same conditions while maintaining the concentration of nitrogen and phosphorus in the range of 100-150 mg / l and 50-100 mg / l, respectively, the productivity does not exceed 2 9 kg / m 3 ˙ h
П р и м е р 3. Смешанную метанокисляющую культуру выращивали в ферментере с рабочим объемом 30 м3, как описано в примере 2, при протоке, равном 5 м3/ч, и поддерживая концентрации азота и фосфора в культуральной жидкости постоянными и на уровне
CN= 
Cp= 
C N =
C p =
Таким образом, выращивание метанокисляющих микроорганизмов в среде со строго определенными концентрациями азота и фосфора, зависящими от величины протока и объема ферментера, дает возможность увеличить продуктивность на 20-25%
Кроме того, удельные протоки по азоту KN и фосфору Кр являются критериями масштабного перехода, пригодными для применения к ферментерам с различным рабочим объемом и не зависящими от рабочего объема.Thus, the growth of methane-oxidizing microorganisms in an environment with strictly defined concentrations of nitrogen and phosphorus, depending on the size of the duct and the volume of the fermenter, makes it possible to increase productivity by 20-25%
In addition, the specific ducts for nitrogen K N and phosphorus K p are the criteria for a large-scale transition, suitable for application to fermenters with different working volumes and independent of the working volume.
Предлагаемый способ прост в осуществлении и позволяет поддеpживать оптимальные концентрации азота и фосфора в культуральной жидкости, тем самым дает возможность не только увеличить продуктивность процесса, но и предотвратить непроизводительные расходы раствора минерального питания, а следовательно, и снизить себестоимость конечного продукта белково-витаминного концентрата. The proposed method is simple to implement and allows you to maintain the optimal concentration of nitrogen and phosphorus in the culture fluid, thereby making it possible not only to increase the productivity of the process, but also to prevent unproductive costs of the mineral nutrition solution, and therefore, reduce the cost of the final product of protein-vitamin concentrate.
Установление закономерности изменения оптимальных концентраций азота и фосфора в зависимости от объема ферментера и протока позволяет легко автоматизировать процесс непрерывного выращивания микроорганизмов и стабилизировать его на различных значениях продуктивности. Establishing the pattern of changes in the optimal concentrations of nitrogen and phosphorus depending on the volume of the fermenter and the duct makes it easy to automate the process of continuous cultivation of microorganisms and stabilize it at various productivity values.
Claims (1)
где CN и CP концентрации азота и фосфора в питательной среде, г/м3;
F скорость протока, м3/ч;
V рабочий объем ферментера, м3.METHOD FOR GROWING METHANOID-OXIDATING MICROORGANISMS, including continuous aerobic cultivation of a culture of methane-oxidizing bacteria Methylococcus capsulatus in an aqueous nutrient medium containing sources of nitrogen and phosphorus, as well as methane as a carbon source, characterized in that the concentration of nitrogen and phosphorus in the medium is regulated according to
where C N and C P the concentration of nitrogen and phosphorus in the nutrient medium, g / m 3 ;
F duct speed, m 3 / h;
V working volume of the fermenter, m 3 .
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU4757285 RU2032737C1 (en) | 1989-11-20 | 1989-11-20 | Method of growing methane-oxidizing microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU4757285 RU2032737C1 (en) | 1989-11-20 | 1989-11-20 | Method of growing methane-oxidizing microorganisms |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2032737C1 true RU2032737C1 (en) | 1995-04-10 |
Family
ID=21478645
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU4757285 RU2032737C1 (en) | 1989-11-20 | 1989-11-20 | Method of growing methane-oxidizing microorganisms |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2032737C1 (en) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2626592C2 (en) * | 2015-12-16 | 2017-07-28 | Общество с ограниченной ответственностью "Центр Промышленной Биотехнологии имени Княгини Е.Р. Дашковой" | Method and device for obtaining haprin |
| RU2699293C1 (en) * | 2018-08-14 | 2019-09-04 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-производственное объединение Биосинтез" | Method of producing biomass of methane-oxidising bacteria |
| RU2755727C2 (en) * | 2019-12-23 | 2021-09-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) | Method for cultivation of methane-oxidising bacteria |
| RU2768401C1 (en) * | 2021-04-02 | 2022-03-24 | Общество с ограниченной ответственностью "Комита Биотехнологии" | Method for cultivating aerobic methane-assimilating microorganisms |
-
1989
- 1989-11-20 RU SU4757285 patent/RU2032737C1/en active
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Авторское свидетельство СССР N 1309578, кл. C 12N 1/30, 1985. * |
| Авторское свидетельство СССР N 906181, кл. C 12P 1/04, 1974. * |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2626592C2 (en) * | 2015-12-16 | 2017-07-28 | Общество с ограниченной ответственностью "Центр Промышленной Биотехнологии имени Княгини Е.Р. Дашковой" | Method and device for obtaining haprin |
| RU2699293C1 (en) * | 2018-08-14 | 2019-09-04 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-производственное объединение Биосинтез" | Method of producing biomass of methane-oxidising bacteria |
| RU2755727C2 (en) * | 2019-12-23 | 2021-09-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) | Method for cultivation of methane-oxidising bacteria |
| RU2768401C1 (en) * | 2021-04-02 | 2022-03-24 | Общество с ограниченной ответственностью "Комита Биотехнологии" | Method for cultivating aerobic methane-assimilating microorganisms |
| WO2022211674A1 (en) * | 2021-04-02 | 2022-10-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Комита Биотехнологии" | Method of cultivating aerobic methane-assimilating microorganisms |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA3003944A1 (en) | Process for improved fermentation of a microorganism | |
| JP2022536668A (en) | Methods for controlling fermentation processes | |
| RU2032737C1 (en) | Method of growing methane-oxidizing microorganisms | |
| EP1123896B1 (en) | Method for producing high concentration carbon dioxide product | |
| Sikyta et al. | Growth of Streptomyces aureofaciens in continuous culture | |
| GB2124652A (en) | Production of single cell protein and microorganisms for use therein | |
| RU2699293C1 (en) | Method of producing biomass of methane-oxidising bacteria | |
| CN116676233A (en) | Method for producing single-cell protein by methane oxidizing bacteria through methane | |
| CN106544293A (en) | A kind of method that use Pichia sp. fermentation bacterium mud produces Clostridium butyricum | |
| US3440141A (en) | Production of amino acids by the fermentation of c15-c22 olefins | |
| CN115927125A (en) | Production process of high-load short-cut nitrifying bacteria agent and application method of bacteria agent | |
| CN108358309A (en) | A method of improving denitrification anaerobic methane oxidizing microorganism operation stability | |
| GB1579012A (en) | Method and apparatus for micro biological production of single cell protein | |
| RU2768401C1 (en) | Method for cultivating aerobic methane-assimilating microorganisms | |
| SU671738A3 (en) | Method of obtaining biomass of microorganisms | |
| CN112746052B (en) | Culture method for improving resistance of nitrobacteria | |
| RU2807059C1 (en) | Method for obtaining biomass of methane-oxidizing bacteria | |
| RU2742472C1 (en) | Nutrient medium for the cultivation of yeast biomass and a method for its production | |
| SU1655980A1 (en) | Method of producing biomass of microorganisms | |
| RU2755539C1 (en) | Method for producing a biomass of methane-oxidising microorganisms and a line for production thereof | |
| SU1712420A1 (en) | Method for cultivation of microorganisms | |
| RU2092560C1 (en) | Method of biomass producing | |
| BG105839A (en) | Method for the selection of microorganisms, degrading insoluble or hard to dissolve easily volatile lipophil organic compounds (voc) or for continuous biological degradation of voc | |
| SU1493665A1 (en) | Method of producing protein and vitamin concentrate | |
| RU2026830C1 (en) | Method of biological treatment of sewage containing nitrocellulose |