SU922142A1 - Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity - Google Patents
Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity Download PDFInfo
- Publication number
- SU922142A1 SU922142A1 SU802948047A SU2948047A SU922142A1 SU 922142 A1 SU922142 A1 SU 922142A1 SU 802948047 A SU802948047 A SU 802948047A SU 2948047 A SU2948047 A SU 2948047A SU 922142 A1 SU922142 A1 SU 922142A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- activity
- microorganisms
- tyrosinase activity
- beta
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ИММОБИЛИЗАЦИИ КЛЕТОК МИКРООРГАНИЗМОВ С |)-ТИРОЗИНАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ(54) METHOD FOR IMMOBILIZATION OF MICROORGANISM CELLS WITH |) -TYROSYNASE ACTIVITY
II
Изобретение относитс к органической химии, а именно к способам получени иммобилизованных клеток микроорганиз-; мов с fb -тирозиназной (КФ 4.1.99.2) активностью.This invention relates to organic chemistry, and specifically to methods for producing immobilized microorganism cells; mov with fb-tyrosinase (EC 4.1.99.2) activity.
Использование иммобилизованных клеток микроорганизмов дл получени различных веществ в последнее врем очень расшир етс . Иммобилизаци клеток позвол ет более эффективно использовать каталитические свойства микроорганизмов , так как исключаютс затраты на выделение и очистку ферментов. Иммобилизованные клетки с 1 -тирозиназной активностью могут быть использованы дл ферментного синтеза ,Li -тирозина, аминокислоты, получение которой другими способами вл етс сложным и дорогим .The use of immobilized microbial cells for the production of various substances has recently been greatly expanded. Immobilization of cells allows more efficient use of the catalytic properties of microorganisms, since the costs of isolation and purification of enzymes are eliminated. Immobilized cells with 1-tyrosinase activity can be used for enzymatic synthesis, Li-tyrosine, an amino acid, which is difficult and expensive to produce by other means.
Известен лишь один способ иммобилизации клеток микроорганизмов с | -тирозиназной активностью путем включени в гель.There is only one method of immobilization of cells of microorganisms with | tyrosinase activity by incorporation into a gel.
По этому способу иммобилизацию клеток Erwimq Vierb uOBc| штамм АТСС 21434 провод т включением в гель, образуюишйс путем смешивани водорастворимых полимеров поливинилового спирта , желатина, карбоксиметшщеллюлозы и тетраалкоксисйлана с добавлением кислоты . Гель сушат в замороженном состо нии в течениенескольких суток. Все операции хфовод т при температуре ниto же 5 С. Удельна активность полученного препарата составл етAccording to this method, the immobilization of cells Erwimq Vierb uOBc | The ATCC strain 21434 is carried out by incorporation into a gel, formed by mixing water-soluble polymers of polyvinyl alcohol, gelatin, carboxymethylcellulose and tetraalkoxysylane with the addition of acid. The gel is dried in a frozen state for several days. All operations are covodt at a temperature of no less than 5 ° C. The specific activity of the obtained preparation is
мольmole
лl
7-107-10
. Далее. Further
с.мг белка клеток по стабильности препарата в описании изобретени отсутствуют Cl.cmg of cell protein according to the stability of the preparation; in the description of the invention, there is no Cl.
Недостатками способа вл ютс недостаточно высока jb -тирозиназна удельна активность препарата, сложность и длительность процесса иммобиX лизации из-за осуществлени всех операций при низкой температуре, применение дефицитных и дорогосто щих полимеров, в том числе пищевого сырь . Цель изобретени - повышение удрпь нойактивности препарата, упрощение и удешевление процесса. Указанна цель достигаетс тем, что согласно способу иммобилизации клеток микроорганизмов с (Ь -тирозиназной активностью путем включени их в гель, иммобилизацию привод т в присутствии стйбипизатора- ацетата аммони - или пирувата натри или I, тирозина при этом в качестве гел используют полиакриламидный гель, а из микроорганизмов используют штамм Citrobcioter reund N 62. Иммобилизацию клеток провод т в фосфатном буфере рН 7-8 с добавлением ацетата аммони , либо в ацетатном буфере при рН 8. В буфере смешивают сус пеНзию клеток, растворы акрипамида и мегиленбисакриламица, N , Ы , N4 N тетраметилендиймина и персульфата аммони . Реакционный сосуд погружают в баню со льдом. Полимеризаци заканчиваетс через минуту. Блок полученного полиакриламидного гел с включенными клетками протирают через полиэтиленовое сито с размером пор мм и от мывают от свободных клеток, В гель включаетс 89% клеток. При иммобилизации сохран етс 65% первоначальной активности. Удельна каталитическа ак тивность иммобилизованных клеток составл ет (в зависимости от партии) 3-Oj4-10 моль/с «мг белка. Препарат хран т в буфере при рН 8 и +4 , через мес ц хранени иммобилизованные клетки сохран ют 6О% активности от исходн в то врем как натйвные клетки за этот срок полностью тер ют /Ь -тиразиназную активность. Иммобилизованные клетки можно неоднократно использовать дл . синтеза тирозина. При этом после перво го использовани сохран етс 95% акти ности, после второго - 80%, после трет его - 50%. П р и м е р 1. К О,4 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,0 добавл ют 1 м М ацетета аммони (доведенного концентрированным расйзором аммиака до рН 8) 0,2 мл суспензии клеток Citr batter freoncliV 62, содержащей 53 мг белка с удельной (Js -тирозиназной каталйтичеснэй активностью, определенной стандартным методом по синтезу тирози на 4,6 «Ю моль/с-мг белка, 1 мл 5р%-ного раствора акрил амида с добавл нием метиленбисакриламида в соотношении 19:lj 0,3 мл 109&-НОГО раствора , N , N, N-тетраметилэтилендиамина и 0,3 мл 10%-ного раствора персульфата аммони . Все растворы готов т на 0,01 М фосфатном буфере рН 7,0. Смесь быстро перемешивают в чашке Петри, помешенной в лед. Полимеризаци начинаетс через 30 с и заканчиваетс через 1 мин, .блок полиакриламидного гел с включенными в него клетками протирают через полиэтиленовое сито с размером пор 1x1 мм . Частицы гел отмывают от свободйых клеток 0,05 М аммоний-ацетатным буфером рН 8,0. В гель включаетс количество клеток, соответствующее 47,7 мг белка, т.е. 90%. Удельна каталитическа активность по синтезу ,{i тирозина иммобилизованных клеток равна 3 моль/с, мг белка, что составл ет 65% от исходной. Препарат хран т в буфере при рН 8 и +4°С, Через мес ц хранени активность иммобилизованных клеток составл ет 6О% от первоначальной . При проведении иммобилизации без ацетата аммони , сохран етс лишь 20% Р -тирозиназной активности. П р и м е р 2. Способ осуществл ют , согласно примеру 1, но все растворы готов т в 0,05 М аммоний-ацетатном буфере рН 8,0. Результаты аналогичны полученным в примере 1. П р и м е р 3. Способ осуществл ют согласно примеру 1. Используют другую партию клеток с исходной удельной JS тирозиназной активностью, равной 1,2510 моль/с, мг белка. К смеси дл полимеризации акрильных мономеров добавл ют вместо Ъ,5 М ацетата аммо- . ни 0,5 М пирувата натри до конечной концентрации 0,2 М. Получают иммобилизованные клетки C.ire.UT(3ii 62 с удельной активностью 0,74-10 моль/смг белка, т.е. с Сохранением 59% активности свободных клеток и 9О%-ным включением клеток в полиакриламидный П р и м е р 4. Способ осуществл ют согласно пршлеру 1. Используют ту же партию клеток . 4геипс1м , что и в при- . мере 3. К смеси дл полимеризации акрильных мономеров добавл ют 2,.25 мг 1Ь -тирозина и довод т фосфатным буфером до общего объема 5 мл. Получают иммобилизованные включением в полиакрш1амид1аый гель клетки С. reur(3ii 62 с удельной Ь -тирозиназной активностью, равной 0,5 10 моль/с« MI белка,т.е, равной 40% от первоначальной в 93%-ным включением клеток в потиакриламидный гель.The disadvantages of the method are not high enough jb tyrosine, the specific activity of the preparation, the complexity and duration of the immobilization process due to the implementation of all operations at low temperature, the use of scarce and expensive polymers, including food raw materials. The purpose of the invention is to increase the noise immunity of the drug, simplifying and cheapening the process. This goal is achieved in that according to the method of immobilizing microbial cells with (L-tyrosinase activity by incorporating them into the gel, immobilization is carried out in the presence of ammonium acetate or pyruvate sodium or I tyrosine, while polyacrylamide gel is used as gel, from microorganisms, the strain Citrobcioter reund N 62 is used. Immobilization of cells is carried out in phosphate buffer pH 7-8 with the addition of ammonium acetate, or in acetate buffer at pH 8. The buffer is mixed with suspension of cells, solutions of acripamide megylenbisacrylamite, N, S, N4 N of tetramethylenedimine and ammonium persulphate. The reaction vessel is immersed in an ice bath. Polymerization is completed in a minute. includes 89% of the cells. When immobilized, 65% of the initial activity is retained. The specific catalytic activity of the immobilized cells is (depending on the batch) 3-Oj4-10 mol / s mg protein. The preparation is stored in a buffer at pH 8 and +4, after a month of storage, the immobilized cells retain 6% of the activity of the original while the nodular cells completely lose the I-tyrazinase activity. Immobilized cells can be repeatedly used for. tyrosine synthesis. At the same time, after the first use, 95% of the activity is retained, after the second - 80%, after tert its use - 50%. EXAMPLE 1. To O, 4 ml of 0.01 M phosphate buffer pH 7.0, add 1 mM ammonium acetate (adjusted to pH 8 with a concentrated ammonium solvent) 0.2 ml of a suspension of Citr batter freoncliV 62, containing 53 mg of protein with a specific (Js-tyrosinase catalytic activity, determined by the standard method for the synthesis of tyrosis on 4.6 "mol / s-mg protein, 1 ml of 5p% acryl amide solution with the addition of methylene bisacrylamide in a ratio of 19: lj 0.3 ml of a 109 & solution of N, N, N-tetramethylethylenediamine and 0.3 ml of a 10% solution of ammonium persulfate. All solutions are prepared in 0.01 M fo. fat buffer pH 7.0. The mixture is rapidly stirred in a Petri dish placed in ice. Polymerization begins after 30 seconds and ends after 1 minute. A block of polyacrylamide gel with cells included in it is rubbed through a 1 × 1 mm polyethylene screen. Gel particles 0.05 M ammonium acetate buffer pH 8.0 is washed free of free cells. The gel contains the number of cells corresponding to 47.7 mg of protein, i.e. 90%. The specific catalytic activity for the synthesis of {i tyrosine immobilized cells is 3 mol / s, mg protein, which is 65% of the original. The drug is stored in a buffer at pH 8 and + 4 ° C. After a month of storage, the activity of the immobilized cells is 6 O% of the original. When immobilized without ammonium acetate, only 20% P-tyrosinase activity is retained. PRI mme R 2. The method is carried out according to Example 1, but all solutions are prepared in 0.05 M ammonium acetate buffer pH 8.0. The results are similar to those obtained in Example 1. PRI me R 3. The method is carried out according to Example 1. Another batch of cells with initial JS tyrosinase activity equal to 1.2510 mol / s, mg protein, is used. To the mixture for the polymerization of acrylic monomers, instead of b, 5 M ammonium acetate is added. nor 0.5 M sodium pyruvate to a final concentration of 0.2 M. C. Immunized C.ire.UT cells are obtained (3ii 62 with a specific activity of 0.74-10 mol / cmg of protein, i.e. with 59% of free cells remaining active and 9O% cell incorporation into polyacrylamide Example 4: The method is carried out according to the predler 1. The same batch of cells is used. 4 geips1m as in example 3. To the mixture for the polymerization of acrylic monomers add 2 , .25 mg 1b-tyrosine and made up to a total volume of 5 ml with phosphate buffer. 5 cells obtained immobilized by inclusion in polyacrylamide 1 gel are obtained. C. reur (3ii 62 with a specific L-tyrosinase activity of 0.5 10 mol / s M MI protein, i.e., equal to 40% of the initial 93% inclusion of the cells in the chloracrylamide gel.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802948047A SU922142A1 (en) | 1980-06-30 | 1980-06-30 | Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802948047A SU922142A1 (en) | 1980-06-30 | 1980-06-30 | Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU922142A1 true SU922142A1 (en) | 1982-04-23 |
Family
ID=20905036
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU802948047A SU922142A1 (en) | 1980-06-30 | 1980-06-30 | Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU922142A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2754927C1 (en) * | 2020-12-28 | 2021-09-08 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Белгородский государственный национальный исследовательский университет" (НИУ "БелГУ") | Method for immobilizing microorganisms on montmorillonite clays |
-
1980
- 1980-06-30 SU SU802948047A patent/SU922142A1/en active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2754927C1 (en) * | 2020-12-28 | 2021-09-08 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Белгородский государственный национальный исследовательский университет" (НИУ "БелГУ") | Method for immobilizing microorganisms on montmorillonite clays |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3962038A (en) | Preparation of water-insoluble enzymes | |
Torchilin et al. | Immobilization of enzymes on slowly soluble carriers | |
EP0054800B1 (en) | Process for the production of immobilized microorganisms | |
US3915797A (en) | Immobilized enzymes | |
JPH0416156B2 (en) | ||
Chibata et al. | Continuous production of L-aspartic acid: Improvement of productivity by both development of immobilization method and construction of new Escherichia coli strain | |
SU922142A1 (en) | Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity | |
US4525457A (en) | Method of immobilizing enzymatically active materials | |
Švec et al. | Immobilization of amyloglucosidase on poly [(glycidyl methacrylate) co (ethylene dimethacrylate)] carrier and its derivatives | |
Tanaka et al. | Immobilization of invertase by the use of photocrosslinkable resin oligomers and properties of the immobilized enzyme | |
Kawashima et al. | Preparation of membranous immobilized invertase and it's characterisics | |
EP0056111B1 (en) | Immobilized enzymatic active substance and method for preparing the same | |
US4081327A (en) | Preparation of d-fructose | |
JPS6331538A (en) | Immobilizing carrier | |
US3860486A (en) | Insolubilizing enzymes with polystyrene derivatives | |
SU810718A1 (en) | Method of preparing immobilized enzymic preparates | |
Karube et al. | Bacteriolysis by immobilized enzymes | |
RU2054481C1 (en) | Method of immobilized enzyme preparing | |
SU698970A1 (en) | Method of immobilizing proteolytic complex-trypsin, chymotripsin and carboxypentidase (pancreatin) | |
SU722197A1 (en) | Process for producing immobilized enzymes | |
JPH0424992B2 (en) | ||
DK143165B (en) | METHOD FOR PREPARING 6-AMINOPENICILLANIC ACID BY ENZYMATIC REVERSION OF PENICILLIN WITH A PENICILLINAMIDASE-PRODUCING MICROORGANISM | |
SU586182A1 (en) | Method of preparing immobilized a-amylase | |
SU1326616A1 (en) | Method of producing immobilized ribosephosphateisomerase | |
SU575352A1 (en) | Method of obtaining immobilized aminocylase |