SU722197A1 - Process for producing immobilized enzymes - Google Patents
Process for producing immobilized enzymes Download PDFInfo
- Publication number
- SU722197A1 SU722197A1 SU782624302A SU2624302A SU722197A1 SU 722197 A1 SU722197 A1 SU 722197A1 SU 782624302 A SU782624302 A SU 782624302A SU 2624302 A SU2624302 A SU 2624302A SU 722197 A1 SU722197 A1 SU 722197A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- amount
- enzyme
- activity
- solution
- polymerization
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММОБИЛИЗОВАННЫХ ФЕРМЕНТОВ путем совместной полимеризации акрильных мономеров в растворе фермента в присутствии глутарового альдегида и инициаторов полимеризации,о т л и ч а ю- щ и и с тем,что, с целью повышени активности и стаби;"1ьности целевых продуктов, в полимеризационную смесь добавл ют диизоцианат винной кислоты в количестве 0,25-0,5%, гексвмети- лендиамин в количестве 0,25-0,4% и сахарозу в количестве 20-30% от веса полимеризационной смеси и процесс ведут-при 5-10°С.2.Способ по П.1, отличающийс , тем, что используют глу- таровый альдегид в количестве 0,5-1% от веса полимеризационной смеси.3.Способ по П.1, отличающий с тем, что в качестве инициаторов полимеризации используютN, N, .N', N-тетраметилэтилендиамин и надсернокислый аммоний.(О(Л1. THE METHOD OF OBTAINING IMMOBILIZED ENZYMES by co-polymerizing acrylic monomers in an enzyme solution in the presence of glutaraldehyde and polymerization initiators, so that, in order to increase activity and stabilize; tartaric acid diisocyanate is added to the polymerization mixture in an amount of 0.25-0.5%, hexvmethylenediamine in an amount of 0.25-0.4% and sucrose in an amount of 20-30% by weight of the polymerization mixture and the process is carried out at 5 -10 ° C.2. Method according to claim 1, characterized in that glutar is used New aldehyde in the amount of 0.5-1% by weight of the polymerization mixture. 3. The method according to claim 1, characterized in that N, N, .N ', N-tetramethylethylenediamine and ammonium sulphate are used as polymerization initiators. (O ( L
Description
Изобретение относитс к микробиологической и химической промышленности , в частности к способам получени иммобилизованных ферментов , которые могут найти применение при получении биохимических реактивов , используемых в молекул рной биологии и генной инженерии.The invention relates to the microbiological and chemical industry, in particular to methods for producing immobilized enzymes that can be used in the preparation of biochemical reagents used in molecular biology and genetic engineering.
Известен способ получени иммобилизованных ферментов, заключающийс в полимеризации акрильных мономеров в растворе фермента в присутствии глутарового альдегида и инициаторов полимеризации, причем в реакционную смесь добавл ют порошкообразный поликарбамид в количестве 5-10% с содержанием аминогрупп 0,3-0,7 миллиэквивалентов на грамм вещества и процесс ведут при комнатной температуре СП ,A known method for producing immobilized enzymes consists in polymerizing acrylic monomers in an enzyme solution in the presence of glutaraldehyde and polymerization initiators, with powdered polycarbamide in the amount of 5-10% with an amino group content of 0.3-0.7 milliequivalents per gram of substance added to the reaction mixture. and the process is carried out at room temperature SP,
Однако указанный способ не обеспечивает достаточно высокой абсолютной и относительной активности и стабильности получаемого продукта (в частности иммобилизованную транс-N-дезоксирибозиллазу получают с . абсолютной активностью не более 30 ед/г и коэффициентом сохранени активности не более 0,1, а после 5 дней хранени активность иммобилизованного фермента не превышает 20%).However, this method does not provide a sufficiently high absolute and relative activity and stability of the obtained product (in particular, immobilized trans-N-deoxyribosyllase is obtained with an absolute activity of not more than 30 units / g and an activity preservation coefficient of not more than 0.1, and after 5 days of storage the activity of the immobilized enzyme does not exceed 20%).
Целью изобретени вл етс повышение активности и стабильности иммобилизованного фермента.The aim of the invention is to increase the activity and stability of the immobilized enzyme.
Указанна цель достигаетс тем, что в известном способе в полимеризационную смесь добавл ют диизоцианат винной кислоты в количестве 0,25-0,5%, гексаметилендиамин в количестве 0,25-0,4% и сахарозу в количестве 20-30% от веса полимеризационной смеси и процесс полимеризацик ведут при 5-10 С.This goal is achieved by adding tartaric diisocyanate in an amount of 0.25-0.5%, hexamethylenediamine in an amount of 0.25-0.4% and sucrose in an amount of 20-30% by weight of polymerization in a known process. the mixture and the process of polymerization are carried out at 5-10 C.
При осуществлении способа глутаровый альдегид кспользугот в количестве 0,5-1S от веса полимерИзационной смеси; а в качестве инициаторов полимеризации - N, М5М,; -тетраметилэтиленднамин и надсернокислый акмоний .In the process of implementation, glutaraldehyde is used in the amount of 0.5-1S by weight of the polymerisation mixture; and as polymerization initiators - N, M5M; - tetramethylethylennamin and acmonium sulphate.
пример 1. Дл получени препарата имглобилизоваы ой транс-N-дезоксирибозилазы (КФ 2,4,2,6) приготовл ют следующие растворы; 1%-ный раствор фермента в дистилль:рованной воде с активностью 8,000 е/д.акт./мл (за единицу агтивности принимаетс количество фе) мента-катализирующее превращение 1 нмоль субстрата за 1 мин при 37°С); 50%-ный раствор мономеров в дистиллированной воде, в котором содержитс 19 в ее. ч. акрил амидс. и 1 вес.ч, N,N-мeтилeнбиc-aкpклaмида/ 50%-ный раствор сахарозы в дистиллированной воде; 50%-ный раствор мономеров в 50%-ной сахарозе с содержанием 19 вес.ч. акриламида и 1 вес,ч. М,Ы-метиленбис-экриламиRa-f 10%-ный раствор гексаметилендиамина (ГММА) в дистиллированной воде; 10%-ный раствор диизоцианата винной кислоты (ДИЦВК) в дистиллированной воде-, 10%-ный раствор надсернокислого аммони (НСА) в дистиллированной воде; 10%-ный раствор N, N, N, N-тетраметилэтилендиамина (ТЕМЕД) в дистиллированной воде.Example 1. The following solutions were prepared for the preparation of an imglobilizable trans-N-deoxyribosylase preparation (EC 2,4,2,6); 1% solution of the enzyme in distilled water: with an activity of 8,000 e / d.Act / ml (the amount of the enzyme is taken as the amount of the enzyme) catalyzing the conversion of 1 nmol of substrate per 1 minute at 37 ° C); A 50% solution of monomers in distilled water, which contains 19 in it. including acrylic amides. and 1 wt.h, N, N-methylenebis-acruclad / 50% sucrose solution in distilled water; 50% solution of monomers in 50% sucrose with a content of 19 weight.h. acrylamide and 1 weight, h. M, N-methylenebis-ecrilam Ra-f 10% solution of hexamethylenediamine (GMMA) in distilled water; 10% solution of tartaric acid diisocyanate (DICVK) in distilled water; 10% solution of ammonium persulphate (HCA) in distilled water; 10% solution of N, N, N, N-tetramethylethylenediamine (TEMED) in distilled water.
В охлаждаемом сосуде смешиваютIn a cooled vessel mixed
0,3 мл раствора фермента, 0,3 мл 50%-ного раствора сахарозы 1,5 мл раствора мономеров в 50%-ной сахарозе , 0,12 мл 10%-ного раствора ГМДА, 0,08 мл 25%-ного раствора0.3 ml of enzyme solution, 0.3 ml of 50% sucrose solution, 1.5 ml of monomer solution in 50% sucrose, 0.12 ml of 10% HMDA solution, 0.08 ml of 25% solution
глутарового альдегида (ГА) (фирма Мерк, ФРГ), 0,13 мл 13%-ного раствора ДИЦВК, 0,23 мл 10%-ного раствора ТЕМЕД, 0,23 мл 10%-ного раствора НСА. Конечные концентраЦии реагентов в полимеризационной смеси следующие,% г мономеры 25, сахароза 30, ГМДА 0,4, ГА. 0,7, ДРПДВК 0,4, НСА 0,75, ТЕМЕД 0,75, фермент 0,1, Температура полимеризационной смеси не должна превышать +5-10°С.glutaraldehyde (GA) (Merck, Germany), 0.13 ml of a 13% aqueous solution of DITsVK, 0.23 ml of a 10% aqueous solution of TEMED, 0.23 ml of a 10% aqueous solution of HCA. The final concentrations of the reagents in the polymerization mixture are as follows,% g monomers 25, sucrose 30, HMDA 0.4, HA. 0.7, DRAPA 0.4, NSA 0.75, TEMED 0.75, enzyme 0.1, The temperature of the polymerization mixture should not exceed + 5-10 ° C.
Полученную смесь тщательно перешивают и выдерживают в течение 30-60 сек до образовани гел .Образовавшийс блок гел измельчаютThe resulting mixture is thoroughly altered and held for 30-60 seconds until the formation of a gel. The formed gel block is crushed
до размера гранул 0,3-0,5 мл иto the size of granules 0.3-0.5 ml and
определ ют его активность по общеприн той дл данного фермента методике . Получают 4 г препарата с активностью 270 ед.акт./г вл,гел ,чтоits activity is determined according to the generally accepted enzyme method. Get 4 g of the drug with an activity of 270 units of act. / G ow, gel, that
составл ет 41% от исходной активности . Полученный гель - фермент выдерживают при 4°С в течение 5 сут в буфере и повторно определ ют его активность, котора оказываетс accounts for 41% of the initial activity. The obtained gel - enzyme is kept at 4 ° C for 5 days in a buffer and its activity is repeatedly determined, which occurs
равной 210 ед.акт./г вл. гел ., что составл ет 78% от исходной активности полученного .гел .equal to 210 units of act. / g ow. gel., which is 78% of the initial activity of the obtained gel.
Полученные результаты показывают, что данный состав гел обеспечива- ет достаточную активность и ..стабильность препарата ::ч«у1обилизованной транс-. -деаоксирибозилазы.The obtained results show that this composition of the gel provides sufficient activity and stability of the drug: h “mobilized trans-. -deoxyribosylase.
П р :; м е р 2, Имм:обилизацию фермента гфовод т так, как это описано в примере 1, с и.спользованием тех жз исходных растворов с изменением количества отдельных реагентов . В табл.1 приведены конечные концентрации компоненто.в полимеризационной смеси к результаты, полученные при определении активности препаратов иммобилизованного фермента .Etc :; meper 2, Imm: the abundance of the enzyme gvodod t as described in example 1, and using those zhz initial solutions with changing the number of individual reagents. Table 1 shows the final concentrations of the components in the polymerization mixture to the results obtained in determining the activity of preparations of the immobilized enzyme.
Таблица 1Table 1
в этих услови х гель не образуетс Фермент вымывани из гел . Under these conditions, no gel is formed. The enzyme is leaching from the gel.
Пример 3. Иммобилизованный ферментный препарат, полученными аналогично примеру 1, примен етс дл получени , дезоксиаденозина из аденина и тимидина. Дл этого ферментный препарат добавл ют в реакционную смесь, содержащую 1,75 нмоль/мл еденина и 8,5 нмоль/мл тимидина в цитрат-фосфатном буфереExample 3. An immobilized enzyme preparation, prepared as in Example 1, is used to prepare deoxyadenosine from adenine and thymidine. For this, the enzyme preparation is added to the reaction mixture containing 1.75 nmol / ml of edenine and 8.5 nmol / ml of thymidine in citrate-phosphate buffer
Данные табл.2 убедительно показывают стабильность и реакционноспособность полученных препаратов.The data in Table 2 convincingly show the stability and reactivity of the preparations obtained.
Пример 4. Иммобилизацию фосфодизстеразы провод т аналогично примеру 1, примен в качестве Example 4. The immobilization of phosphodisterase is performed as in Example 1, used as
рН 6,0. Реакцию провод т при посто нном перемешивании при 37°С. После завершени первого цикла использовани гел -фермента, его отдел ют от реакционной смеси на фильтре, промывают буфером и используют в следующем цикле,pH 6.0. The reaction is carried out with constant stirring at 37 ° C. After completing the first cycle of using the gel enzyme, it is separated from the reaction mixture on a filter, washed with buffer and used in the next cycle.
Результаты 16 последовательных циклов описаны в табл.2.The results of 16 consecutive cycles are described in table 2.
Таблица 2table 2
раствора фермента раствор фосфодиэстеразы из змеиного да с активностью 3000 ед.акт./мл (за.единицу активности принимаетс такое количество фермента, которое обеспечивает прирост оптической плотности при Л 400 нм на 0,1 о.е. при гидр лизе Са-бис-пара-нитрофенилфосфата за 30 мин, при . Исходное коли чество фермента 2.400 ед.акт. концентраци остальных компонентов полимеризационной смеси,%: мономеры 25, сахароза 20, ГМДА 25, ГА 0,63,. ДИЦВК 0,24, НСА 0,75, ТЕМЕД 0,75. При этом получаетс ферментный препарат с активностью 220 ед.акт. вла;жного гел , суммарна активность - 1.230 ед.акт, что составл ет 51% от исходной активности фермента . При хранении в течение 10 дней при иммобилизованный фермент полностью сохран ет свою активность. Пример 5. Иммобилизацию нуклеозидфосфотрансферазы из морко ви провод т по примеру 1, примен в качестве раствора фермента раств нуклеозидфосфотрансферазы из морко ни с активностью lilOO ед.акт./мл (за единицу активности принимаетс количество фермента, которое обеспечивает образование 1 мкмоль нуклеотида из нуклеозида и паранитрофенилфосфата за 1 ч при 3°С в растворе 0,05 М натри уксуснокислого в 0,18 М растворе кали фосфорнокислого рН 5 , 2) . Исходное количество фермента 550 ед.акт., концентраци остальных компонентов полимеризационной смеси,% г мономеры 25, сахароза 20, ГМДА 0,24, ГА 0,63, ДИЦЕК О,24,НСА 0,75, ТЕМЕД 0,75. ПриЭТОМ получаетс ферментный препарат с активностью 14,7 ед.акт./г влажного гел ,суммарна активность 10 ед.акт, что составл ет 20% от исходной активности фермента. При хранении в течение 14 дней при 4°С иммобилизованный фермент полностью сохран ет свою активность.enzyme solution, phosphodiesterase solution from snake and with an activity of 3000 units of actin / ml (the unit of activity is that amount of the enzyme that provides an increase in optical density at L 400 nm by 0.1 p. o with Ca-bis hydrolysis para-nitrophenyl phosphate per 30 min, at the initial amount of the enzyme 2.400 unit concentration of the remaining components of the polymerization mixture,%: monomers 25, sucrose 20, HMDA 25, HA 0.63, .DICVC 0.24, HCA 0.75 , TEMED 0.75. At the same time, an enzyme preparation with an activity of 220 units of a moisture gel is obtained, the total active - 1.230 units of actus, which is 51% of the initial activity of the enzyme.When stored for 10 days with the immobilized enzyme, it retains its activity. Example 5. Immunization of carcinoma is carried out as in Example 1, used as a solution enzyme nucleoside phosphotransferase solution from seaweed with lilOO unit activity / ml (unit of activity is taken as the amount of enzyme that ensures the formation of 1 µmol nucleotide from nucleoside and para-nitrophenylphosphate per 1 hour at 3 ° C in 0.05 M sodium solution phosphate pH 5, 2) acetic acid in 0.18 M potassium solution. The initial amount of the enzyme is 550 units of act., The concentration of the remaining components of the polymerization mixture,% g monomers 25, sucrose 20, HMDA 0.24, HA 0.63, DICEC O, 24, HCA 0.75, TEMED 0.75. An ATEM obtained an enzyme preparation with an activity of 14.7 units of act. / G of a wet gel, a total activity of 10 units of act, which is 20% of the initial activity of the enzyme. When stored for 14 days at 4 ° C, the immobilized enzyme retains its activity completely.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU782624302A SU722197A1 (en) | 1978-06-22 | 1978-06-22 | Process for producing immobilized enzymes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU782624302A SU722197A1 (en) | 1978-06-22 | 1978-06-22 | Process for producing immobilized enzymes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU722197A1 true SU722197A1 (en) | 1984-01-30 |
Family
ID=20768337
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU782624302A SU722197A1 (en) | 1978-06-22 | 1978-06-22 | Process for producing immobilized enzymes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU722197A1 (en) |
-
1978
- 1978-06-22 SU SU782624302A patent/SU722197A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. Авторское' свидетельство СССР по за вке № 2429389/28-04, кл. С 07 G/02, 1976 н/п (прототип). * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
SU1299501A3 (en) | Method for producing solutions of acrylamide or methacrylamide | |
US3912588A (en) | Creatine amidohydrolase in the conversion of creatinine to creatine | |
JPS5840474B2 (en) | A method of using enzymes to convert an organic substance into at least one other organic substance by an enzymatic reaction | |
CA1296665C (en) | Method of preparing immobilized enzyme or immobilized microbe | |
Weetall et al. | Preparation and characterization of isolubilized l‐amino acid oxidase | |
Chibata et al. | Continuous production of L-aspartic acid: Improvement of productivity by both development of immobilization method and construction of new Escherichia coli strain | |
GB1417486A (en) | Liquid circulation and gas contacting device | |
SU722197A1 (en) | Process for producing immobilized enzymes | |
Oguntimein et al. | Properties of soluble and immobilized Aspergillus niger β‐xylosidase | |
EP0107400B1 (en) | Hybrid plasmid and process for producing glutathione using said plasmid | |
EP4192950A2 (en) | Scalable production of polyribonucleotides of controlled size | |
Konecny et al. | Effects of carrier morphology and buffer diffusion on the expression of enzymatic activity | |
US3860486A (en) | Insolubilizing enzymes with polystyrene derivatives | |
JPH066601B2 (en) | Method for producing gel or immobilized gel | |
SU1521775A1 (en) | Method of obtaining immobilized galactosoxidase | |
Okamoto et al. | Fibrin membrane endowed with biological function. V. Multienzyme complex of uricase, catalase, allantoinase and allantoicase | |
RU2054481C1 (en) | Method of immobilized enzyme preparing | |
US3839309A (en) | Polyacrylamide derivatives and method of insolubilizing enzymes therewith | |
SU922142A1 (en) | Method for immobilizing cells for microorganisms with beta-tyrosinase activity | |
SU1239148A1 (en) | Method of producing immobilized cells of cryptococcus species no.112 yeast possessing l-lysinamidase and l-alpha-aminocaprolactamhydrolysis activities | |
JPH0998779A (en) | Trehalose synthetase, its production and production of trehalose using the enzyme | |
Samejima et al. | Production of 5’-Mononucleotides Using Immobilized 5’-Phosphodiesterase and 5’-AMP Deaminase | |
Miura et al. | Immobilization of urea cycle enzymes. I. Characterization of immobilized carbamoylphosphate synthetase and ornithine carbamoyltransferase | |
JPS5963190A (en) | Preparation of itaconic acid using immobilized microorganism | |
ŽU̇rková et al. | Immobilization of Escherichia coli cells with penicillin‐amidohydrolase activity on solid polymeric carriers |