SU732381A1 - Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent - Google Patents
Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent Download PDFInfo
- Publication number
- SU732381A1 SU732381A1 SU772477281A SU2477281A SU732381A1 SU 732381 A1 SU732381 A1 SU 732381A1 SU 772477281 A SU772477281 A SU 772477281A SU 2477281 A SU2477281 A SU 2477281A SU 732381 A1 SU732381 A1 SU 732381A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- mycelium
- pigment
- wednesday
- substrate
- developed
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
ff
Изобретение относитс к микробиологической промышленности и касаетс получени ферментов.This invention relates to the microbiological industry and relates to the production of enzymes.
Известен штамм Streptomyces albus 5 АТСС 21132 - продуцент глюкозоизомеразы 1.A known strain of Streptomyces albus 5 ATCC 21132 - producing glucose isomerase 1.
Недостатком данного штамма вл етс его невысока продуктивность и ферментативна активность (The disadvantage of this strain is its low productivity and enzymatic activity (
ГлИЕ/мл белка).GLI / ml protein).
Обладающий повышенной способностью к биосинтезу внутриклеточной глюкозоизомеразы и высокой продуктивностью , штамм Actinomyces albogri-. seolus 28-3 (ВКМ А-588) вьаделен из образцов почвы. Хранитс в коллекции МТИЦП под .номером 28.-: и во Всесоюзной Коллекции Микроорганизмов под номером ВКМ А-588.„Having increased ability to biosynthesis of intracellular glucose isomerase and high productivity, the strain Actinomyces albogri-. seolus 28-3 (VKM A-588) is derived from soil samples. Stored in the collection of the MITIC under the number 28.-: and in the All-Union Collection of Microorganisms under the number VKM A-588. „
Культуральчо-мэрфологические признаки .Cultural-merphological signs.
Спороносцы спирапьные, спирали раст нутые от двух до шести завитков. Споры овальные с гладкой и бородав- 25 чатой поверхностью.Sporosy spirals, spirals stretched from two to six curls. The spores are oval with a smooth and warty surface.
Синтетическа среда СР-1 с-глюкозой . Воздушный мицелий скудный, мелово-белый (ДЗ). Субстратный мицелий палевый (04); пигмента нет.Synthetic medium CP-1 with glucose. Aerial mycelium scanty, chalky white (DZ). Substrate mycelium fawn (04); no pigment.
Среда Ваксмана. Воздушный мицелий очень скудный, белесоватей (Д1) . Субстратный мицелий темно-кремовый (Об); пигмента нет. Среда Гаузе № 1. Воздушный мицелий развит слабо, ле Е ино-серый (А4) , Субстратный мицелий темно- кремовый (06); пигмента нет.Waxman Wednesday. Aerial mycelium is very poor, whitish (D1). Substrate mycelium dark cream (On); no pigment. Wednesday Gauze No. 1. Aerial mycelium is poorly developed, Le E foreign gray (A4), Substrate mycelium dark cream (06); no pigment.
Соева : среда. Воздушный мицелий скудный, мучнистый, палевый (04); субстратный мицелий золотисто-желтый (М7); пигмента нет.Soeva: Wednesday. Aerial mycelium scanty, mealy, fawn (04); substrate mycelium golden yellow (M7); no pigment.
Овс на среда. Воздушный мицелий развит умеренно, темно-пепельный (В4). Субстратный мицелий темно-кремовый (06); пигмрнта нет.Oats on Wednesday. Aerial mycelium is moderately developed, dark ashen (B4). Substrate mycelium dark cream (06); there is no pygmy.
Среда Гаузе 2. Воздушный мицелий развит отдельными островками, белесоватый (Д1). Субстратный мицелий бледно-медовый (ПЗ); пигмента нет.Wednesday Gause 2. Aerial mycelium is developed by separate islets, whitish (D1). Mycelium pale honey (PZ); no pigment.
Кукурузна среда 2. Воздушный мицелий отсутствует, штрих сильно развит, складчатый. Cyбcтpaтный мицелий темно-кремовьтй (06); пигмента нет.Corn environment 2. Aerial mycelium is absent, the stroke is highly developed, folded. Sacrificial mycelium of dark cream (06); no pigment.
Юкраска мицели дана по-шкале Бонарцева.The coloring of the mycelium is given according to the Bonartsev scale.
Физиолого-биохимические свойства.Physiological and biochemical properties.
Аэрофил, оптимум температуры выращивани около 30 С.Aerofil, the optimum temperature for growing is about 30 C.
Культура не образует меланойдного пигмента.Culture does not form a melanoid pigment.
Крахмал гидролизует (зона гидролиза 3 мм) .Starch hydrolyzes (hydrolysis zone 3 mm).
Желатину разжижает.Gelatinu liquefies.
Молоко не коагулирует и не пептонизирует .Milk does not coagulate and does not peptonize.
Отношение к углеводам. Усваивает Д-глюкозу, сахарозу, Д-ксилозу, i-и.нозит, Д-маннит, Д-фруктозу, рамнозу . Не усваивает рафинозу.Attitude to carbohydrates. It absorbs D-glucose, sucrose, D-xylose, i-i. Inositol, D-mannitol, D-fructose, rhamnose. Does not assimilate raffinose.
Пример . Штамм Actinomyces albogriseolus 28-3 (ВКМ А-588) выравают в течение семи суток на скошенном ксилозо-крахмальном агаре в пробирках . Состав среды, %:An example. Strain Actinomyces albogriseolus 28-3 (VKM A-588) is etched for seven days on beveled xylose-starch agar in test tubes. The composition of the medium,%:
Растворимый картофель1 ,0 ный крахмал 1,0 Soluble potatoes1, starch starch 1.0
Д-ксилоза 1,0 D-xylose 1.0
ПептонPeptone
Дрожжевойэкстракт 0,5 Yeast Extract 0.5
HgSOif 0,1 HgSOif 0.1
2 - 6HgO 2 - 6HgO
CoCl. 0,024 Агар СDifco) 2 ,0 7,0, стрН среды до стерилизацииCoCl. 0.024 Agar CDifco) 2, 0 7.0, str medium before sterilization
рилиэаци при 0,5 ати в течение 30 мин.relieve at 0.5 ati for 30 min.
Полученным споровым материалом засевают колбы, содержащие по 35 мл основной питательной среды следующего состава, %;The resulting spore material seeded flasks containing 35 ml of the main nutrient medium of the following composition,%;
1,0 1.0
Д-ксилоза 1,0 D-xylose 1.0
Пептон 1,0 Peptone 1.0
Дрожжевой экстракт 0,3Yeast Extract 0.3
K.jHPOyK.jHPOy
MgSOy. 7Н„00,1MgSOy. 7Н „00,1
Агар CDifco)0,1Agar CDifco) 0.1
рН среды до стерилизаций 5,5, стерилизаци при О,5ати в течение 30 миpH before sterilization 5.5, sterilization at 0, 5 for 30 minutes
Колбы с засе нной питательной средой помещают на круговые Качалки (200 об/мин). Температура культивирвани 30°С. Выращенный в течение 4В ч инокул т (5 мл) используют дл засева 50 мл свежей основной питательной среды. Культивирование продуцента на второй стадии провод т в течение 24 ч, как на первой стадии .Flasks with inoculated nutrient medium are placed on circular rocking machines (200 rpm). Cultivation temperature is 30 ° C. The inoculum grown during 4 hours (5 ml) is used for inoculation of 50 ml of fresh basic nutrient medium. The cultivation of the producer in the second stage is carried out for 24 hours, as in the first stage.
Полученную культуральную жидкост центрифугируют в течение 15 мин при 5000 сэб/мнн; отделенную биомассу дважды промывают дистиллированной вдой , разрушают и центрифугируют в течение 25 мин при 8000 об/мин. Получ нный сУпернатант используют в качестве ферментного препарата.The obtained culture fluid is centrifuged for 15 min at 5,000 seb / mn; the separated biomass is washed twice with distilled water, destroyed and centrifuged for 25 minutes at 8000 rpm. The resulting supernatant is used as an enzyme preparation.
Йри определении активности реакцию изомеризации.провод т в смеси следующего состава, мл: 0,2 М фосфатный буфер (рН 7,0) 2,52,5The determination of the activity of the isomerization reaction is carried out in a mixture of the following composition, ml: 0.2 M phosphate buffer (pH 7.0) 2.52.5
1 М Д-глюкоза1,01 M D-glucose1,0
О, 1 М MgsO; - 7Н2ОО, 5O, 1 M MgsO; - 7H2OO, 5
ферментный препарат 1,0 Общий объем смеси довод т дистиллированной водой до 10 мл. РеакциюEnzyme preparation 1.0 The total volume of the mixture was adjusted to 10 ml with distilled water. Reaction
.провод т в вод ной бане при в течение 60 мин, и останавливают добавл равный объем 0,5 М НС. Количество образовавшейс Д-фруктозы определ ют цистеин-карбазольным методом . За единицу активности глюкозоизомеразы принимают количество фермента , которое приводит к образовани 1 мл Д-фруктозы в течение 1 ч при 70°Св среде приведенного состава. Удельна активность глюкозоизомеразы в полученном препарате 8-9,5 ГлИЕ/мг белка. Количество биомассы по сухому весу колеблетс от 10 до 14 кг/мл среды.It is carried out in a water bath for 60 minutes, and an equal volume of 0.5 M HC is stopped by adding. The amount of D-fructose formed is determined by the cysteine-carbazole method. Per unit of glucose activity, an amount of enzyme is taken that results in the formation of 1 ml of D-fructose for 1 hour at 70 ° C. The specific activity of the glucose isomerase in the resulting preparation is 8-9.5 GLI / mg protein. The dry weight of biomass ranges from 10 to 14 kg / ml of medium.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU772477281A SU732381A1 (en) | 1977-04-13 | 1977-04-13 | Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU772477281A SU732381A1 (en) | 1977-04-13 | 1977-04-13 | Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU732381A1 true SU732381A1 (en) | 1980-05-05 |
Family
ID=20705484
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU772477281A SU732381A1 (en) | 1977-04-13 | 1977-04-13 | Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU732381A1 (en) |
-
1977
- 1977-04-13 SU SU772477281A patent/SU732381A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JPH0698010B2 (en) | Novel method for producing immunosuppressant | |
Parenti et al. | Gardimycin, a new antibiotic from Actinoplanes I. Description of the producer strain and fermentation studies | |
SU732381A1 (en) | Actinomyces albogriseolus 28-3(vkm a-588) strain as glucoseisomerase producent | |
JPH03173892A (en) | Microbiologically transformed l-683 and 590 product | |
EP0059918B1 (en) | Physiologically active novel substance mutastein and process for its production | |
US4973552A (en) | Staurosporine fermentation process | |
Wu et al. | Identification of the Streptomyces strain KS3-5 | |
SU457723A1 (en) | Strain 313-152 actinomyces sp.as producer of uratoxydase | |
JP3107455B2 (en) | New antibiotic MI481-42F4-A and method for producing the same | |
KR850001230B1 (en) | Process for preparing narasin | |
US4007090A (en) | Novel fermentation process for the preparation of Sulfomycin | |
IE51169B1 (en) | Process for preparing polyether antibiotic | |
JPH0494693A (en) | Production of aphidicolin | |
RU2152432C1 (en) | Strain streptomyces hygroscopicus-7 as producer of proteolytic enzyme gigrolytin | |
US3551294A (en) | Erythromycin process | |
Lawson et al. | A waterborne actinomycete resembling strains causing mycetoma | |
US3310468A (en) | Antifungal antibiotic rutamycin and process for the production thereof | |
SU806760A1 (en) | Method of producing cultural filtrate of basidial russula decolorans fungus | |
US3699002A (en) | Dextran hydrolizing enzymes | |
SU407945A1 (en) | METHOD OF OBTAINING LITICAL ENZYMES | |
RU2098483C1 (en) | Method of avermectin preparing, strain streptomyces avermitilis - a producer of avermectin | |
SU896069A1 (en) | Aspergillis insuetus g-116 strain as dextranase producent | |
SU1151217A3 (en) | Method of obtaining cholesterolesterase | |
SU1117318A1 (en) | Streptomyces lavendofuses 3/2000 strain - producer of koa coferment | |
KR800000807B1 (en) | Process for preparation of bacterial sporelytic enzyme |