SU608830A1 - Способ выращивани микроорганизмов - Google Patents

Способ выращивани микроорганизмов

Info

Publication number
SU608830A1
SU608830A1 SU772454452A SU2454452A SU608830A1 SU 608830 A1 SU608830 A1 SU 608830A1 SU 772454452 A SU772454452 A SU 772454452A SU 2454452 A SU2454452 A SU 2454452A SU 608830 A1 SU608830 A1 SU 608830A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
mixture
distilled water
polyphosphoric acid
biomass
rest
Prior art date
Application number
SU772454452A
Other languages
English (en)
Inventor
Модрис Янович Витол
Аустра Яновна Лишмане
Силвия Рейнгольдовна Вилкс
Original Assignee
Латвийский Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им. П.Стучки
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Латвийский Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им. П.Стучки filed Critical Латвийский Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им. П.Стучки
Priority to SU772454452A priority Critical patent/SU608830A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU608830A1 publication Critical patent/SU608830A1/ru

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ МИКРООРГАНИЗМОВ
тальное дистиллированна  вода. рН среды 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К2НРО4-31-120 0,5%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеСи-бНгО 0,0001%, диметилсульфоксид 150 р. р. т, остальное дистиллированна  вода. рН среды 7,2-7,3.
Прирост биомассы М. lacticolum в среде с неорганической полифосфорной кислотой на вторые сутки 1,06 г/л, что на 125% больше количества биомассы М. lacticolum в контрольной среде (0,85 г/л), а на третьи сутки - 1,50 г/л (125%).
Пример 3. Проводилась инкубаци  Pseudomonas fluorescens 310 при 28°С в течение 5 суток на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4-ЗН2О 0,05%, MgS04-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеСЬ-бН О 0,0001%, неорганическа  полифосфорна  кислота 0,1%, остальное дистиллированна  вода. рН среды 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К2НРО4-ЗП20 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,ООГ%, (NH4)2SO4 0,1%, РеСЬ-бНгО 0,0001%, диметилсульфоксид 100 р. р. т, остальное дистиллированна  вода.
Прирост биомассы Р. fluorescens в среде с неорганической полифосфорной кислотой на вторые сутки 0,70 г/л, что на 180% больше количества биомассы Р. fluorescens в контрольной среде (0,39 г/л), а на шестые сутки- 1,50 г/л (125%).
Пример 4. Проводилась инкубаци  Pseudomonas fluorescens 310 при 28°С в течение 5 суток на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4-ЗН2О 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2S04 0,1%, PeCU-GHsO 0,0001%, неорганическа  полифосфорна  кислота 0,1%, остальное дистиллированна  вода.
Состав контрольной среды: К2НРО4-ЗН20 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеС1з-6Н20 0,0001%, диметилсульфоксид 100 р. р. т, остальное дистиллированна  вода.
Прирост биомассы Р. fluorescens 310 в среде с неорганической полифосфорной кислотой на вторые сутки 0,71 г/л, что на 183% больше биомассы в контрольной среде (0,39 г/л), а на шестые сутки - 1,35 г/л (113%).
Пример 5. Проводилась инкубаци  Р. fluorescens 310 при 28°С в течение 5 суток
на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4-ЗН2О 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота- 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2S04 0,1%, РеСи-бНаО 0,0001%, неорганическа  полифосфорна  кислота 0,003%, остальное дистиллированна  вода.
Состав контрольной среды: К2НРО4-31-120 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%,  нтарна  кислота 0,1%, глицерин 0,4%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеС1з-6Н2О 0,0001%, диметилсульфоксид 100 р. р.т.
Прирост биомассы Р. fluorescens 310 в среде с неорганической полифосфорной кислотой на вторые сутки 0,42 г/л, что на 108% больше количества биомассы Р. fluorescens
310 в контрольной среде (0,39 г/л), а на шестые сутки - 1,26 г/л (105%).
Пример 6. Проводилась инкубаци  Plavobacterium suaveolens при 28°С в течение 24 ч на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4-ЗН2О 0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%, сахароза 6%, пептон 1%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат
0,001% (NH4)2S04 0,1%, РеС1з-6Н2О 0,0001%,
неорганическа  полифосфорна  кислота
0,05%, остальное дистиллированна  вода. рН
среды 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К2НРО4-ЗН2О
0,05%, MgSO4-7H2O 0,003%, сахароза 6%, пентон 1%, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (МП4)25О4 0,1%, РеС1з-6Н2О 0,0001%, диметилсульфоксид 500 р. р. т, остальное дистиллированна 
вода. рН среды 7,2-7,3.
Эффект стимул ции неорганической полифосфорной кислоты на рост Р. suaveolens на 11-ом часу 0,50 г/л, что на 115% превышает прирост биомассы в контрольной среде
(0,37 г/л), а через 24 ч - 1,13 г/л (101,6%). Пример 7. Проводилась инкубаци  Bacillus subtilis при 28°С в течение 24 ч на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4 .ЗН2О 0,050%, MgSO4-7H20 0,0003%, сусло (а 1,028) 25 об. %, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеС1з-6Н20 0,0001%, неорганическа  полифосфорна  кислота 0,05%, остальпое дистиллированна  вода. рН 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К2НРО4-ЗП2О
0,05%, MgSO4-7H20 0,003%, сусло (а
1,028) 25 об. %; смесь микроэлементов
1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%,
(NH4)2SO4 0,1% РеС1з-6Н20 0,0001%, днметилсульфоксид 500 р. р. т, остальное дистиллированна  вода. рН среды 7,2-7,3.
Эффект стимул ции неорганической полифосфорной кислоты на рост В. subtilis через
12 ч 1,40 г/л, что на 124% больше количества
биомассы В. subtilis в контрольной среде (1,2 г/л), а через 15 ч 1,52 г/л (117%).
Пример 8. Проводилась инкубаци  Flavobacterium suaveolens при 28°С в течение 48 ч на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НР04-ЗП2О 0,05%, MgSO...-7H.O 0,0003% сусло (ее 1,028) 25 об. %, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (ЫП4)2504 0,1%,РеС1з-бН2О0,0001%, неорганическа  полифосфорна  кислота 0,05%, остальное дистиллированна  веда. рН среды 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К4ПР04-ЗН2О 0,05%, MgSO4-7H2O 0,0003%, сусло (а 1,028) 25 об. %, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеСЬ-бНоО 0,0001%, диметилсульфоксид 500 р. р. т, остальное дистиллированна  вода. рП среды 7,2-7,3.
Эффект стимул ции неорганической полифосфорной кислоты на рост F. suaveolens через 26 ч 0,48 г/л, что на 150% больше биомассы F. suaveolens в контрольной среде (0,32 г/л), а через 48 ч - 1,2 г/л (120%).
Пример 9. Проводилась инкубаци  Pseudomonas fluorescens 310 нри 28°С в течение 24 ч на качалках со скоростью 100 об/мин в питательной среде следующего состава: К2НРО4-ЗН2О 0,05%, MgSOV7H2O 0,003%, сусло (а 1,028) 25 об. %, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO40,1%, РеС1з-6Н20 0,0001%, неорганическа  нолифосфорна  кислота 0,05%, остальное дистиллированна  вода. рП среды 7,2-7,3.
Состав контрольной среды: К2НРО4-ЗН2О (.05%. MgS04-7n2O 0,003%, сусло (а 1,028) 25 об. %, смесь микроэлементов 1 мл/л, дрожжевой автолизат 0,001%, (NH4)2SO4 0,1%, РеС1з-6Н2О 0,0001%, диметилсульфоксид 500 р.р. т, остальное дистиллированна  вода, рН среды 7,2-7,3.
Эффект стимул ции неорганической нолифосфорной кислоты на рост Р. fliu)rcscens 310 через 12 ч 1,01 г/л, что на 138,6% болыне количества биомассы Р. fluorescens 310 в контрольной среде (0,73 г/л), а через 19 ч - 1,18 г/л (129,6%).
Использование предлагаемого способа выращивани  микроорганизмов с применением неорганической нолифосфорной кислоты обеспечивает увеличение биомассы на 120-130% дл  бактерий но сравнению с диметилсульфоксидом , 140% дл  грибов и 120% дл  актиномицетов .

Claims (1)

1. Патент США № 3558434, кл. 195-81, опублик. 1971.
SU772454452A 1977-02-16 1977-02-16 Способ выращивани микроорганизмов SU608830A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772454452A SU608830A1 (ru) 1977-02-16 1977-02-16 Способ выращивани микроорганизмов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772454452A SU608830A1 (ru) 1977-02-16 1977-02-16 Способ выращивани микроорганизмов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU608830A1 true SU608830A1 (ru) 1978-05-30

Family

ID=20696271

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU772454452A SU608830A1 (ru) 1977-02-16 1977-02-16 Способ выращивани микроорганизмов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU608830A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4529701A (en) * 1982-10-20 1985-07-16 American Genetics International, Inc. Product and process for stimulating bacterial action in an anaerobic digestion system

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4529701A (en) * 1982-10-20 1985-07-16 American Genetics International, Inc. Product and process for stimulating bacterial action in an anaerobic digestion system

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2264270A1 (en) Mass production of paclitaxel by changing the temperature of the medium during the plant cell culture
US3634195A (en) Production of lipase
US4248966A (en) Synthesis of isopenicillin derivatives in the absence of living cells
DE3679718D1 (de) Bakterielle inokulume fuer die landwirtschaft.
GB1455993A (en) Glucose isomerase
SU608830A1 (ru) Способ выращивани микроорганизмов
US3391059A (en) Process for producing l-aspartic acid
NZ311317A (en) Bacillus cereus strain DGA34 useful for the control of fungal damping in field crop plants as the strain produces a high titre of zwittermicin A
KR20000021764A (ko) 노루궁뎅이버섯의 인공재배법
US3770589A (en) Process for the production of glucose isomerase
KR960040126A (ko) 버섯재배방법
GB978593A (en) Method for producing l-homoserine by fermentation
SU922139A1 (ru) Питательна среда дл выращивани энтомопатогенных бактерий васILLUS popILLIae
KR910017938A (ko) 농작물의 생자극 활성을 갖는 스트렙토마이세스 ncimb 40227
US2686147A (en) Production of dextransucrase
Kopper An atypical strain of Pseudomonas aeruginosa
SU1449581A1 (ru) Штамм бактерий ALcaLIGeNeS paRaDoxUS - продуцент катехол-1,2-оксигеназы
SU810180A1 (ru) Питательна среда дл выращивани
ES2044943T3 (es) Uso de preparaciones de celulasa en el cultivo y en el uso de microorganismos que producen celulosa.
SU617473A1 (ru) Штамм гриба -продуцент липазы дл сыродели
SUZUKI et al. STUDIES ON DEXTRANSUCRASE II. FACTORS AFFECTING THE FORMATION OF RIBOFLAVINYLGLUCOSIDE IN GROWING CULTURES OF LEUCONOSTOC MESENTEROIDES
SU960256A1 (ru) Штамм eRWINIa саRотоVоRа МЛ-1-продуцент транс-элиминазы
JPS57132880A (en) Preparation of choline oxidase by fermentation method
Perlman et al. Substrate specificity of Actinoplanes antibiotic peptide lactonases
US4053361A (en) Process for the preparation of glucose isomerase using curtobacterium