SU339191A1 - METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMS - Google Patents
METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMSInfo
- Publication number
- SU339191A1 SU339191A1 SU1634070A SU1634070A SU339191A1 SU 339191 A1 SU339191 A1 SU 339191A1 SU 1634070 A SU1634070 A SU 1634070A SU 1634070 A SU1634070 A SU 1634070A SU 339191 A1 SU339191 A1 SU 339191A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- microorganisms
- light
- medium
- sowing
- culture
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, точнее к способам культивировани микроорганизмов.The invention relates to the microbiological industry, more specifically to methods for the cultivation of microorganisms.
Известен снособ культивировани микроорганизмов , включающий подготовку посевной культуры, засев ее на питательную среду и освещение светом видимой области.A known method of cultivation of microorganisms is involved, including preparing a seed culture, sowing it on a nutrient medium and illuminating the visible area with light.
Предлагаемый способ позвол ет интенсифицировать процесс биосинтеза, повысить выход продуцируемых микроорганизмами веществ и ускорить отдельные стадии цикла развити . Это достигаетс тем, что освещеиию подвергают посевную культуру перед ее посевом на питательную среду, причем освещение провод т светом спектрального диапазона 300- 650 нм, интенсивностью не более 5- 10 эрг/см -сек в течение от 1 до 30 мин.The proposed method allows to intensify the process of biosynthesis, to increase the yield of substances produced by microorganisms and to accelerate certain stages of the development cycle. This is achieved by subjecting the seed culture to light before sowing it on a nutrient medium, and the light is transmitted with a spectral range of 300 to 650 nm and an intensity of no more than 5 to 10 erg / cm-sec for 1 to 30 minutes.
Сущность изобретени заключаетс в следующем .The essence of the invention is as follows.
Посевной материал микроорганизмов (инокул т ) непосредственно перед посевом освещают светом спектрального состава 300- 650 им в течение от 1 до 30 мин. Интенсивность света не превышает 5-10 эрг/см -сек.The seed of microorganisms (inoculum) immediately before sowing is illuminated with the light of the spectral composition of 300-650 for 1 to 30 minutes. The intensity of light does not exceed 5-10 erg / cm-sec.
Предпосевпое освещепие шюкул та вызывает значительную интенсификацию процессов жизнеде тельности микроорганизмов, например биосинтеза белка, витаминов, и ускорени отдельных стадий цикла развити приThe pre-seeding illumination causes a significant intensification of the vital processes of microorganisms, for example, protein and vitamin biosynthesis, and acceleration of certain stages of the development cycle during
посеве микроорганизмов на культуральную среду.sowing of microorganisms on the culture medium.
Дл р да микроорганизмов, например Pseudomonas fluorescens, Clostridium butiricum , Schizosaccharomyces pombe, обнаружен стабильный эффект увеличени выхода белковых продуктов до 75%, повышени скорости клеточного делени до 170%, сокращени продолжительности лагфазы почти в два раза (с 6 час до 3,5 час), увеличени выхода витамина В до 130%. Свет спектрального состава 300-390 им играет основную роль в инте)1сификации процессов биосинтеза у микроорганизмов .For a number of microorganisms, for example, Pseudomonas fluorescens, Clostridium butiricum, Schizosaccharomyces pombe, a stable effect was found to increase the yield of protein products up to 75%, increase the speed of cell division to 170%, reduce the duration of lag phase by half (from 6 hours to 3.5 hours). ), increasing the yield of vitamin B to 130%. The light of the spectral composition of 300-390 plays the main role in the integration of the processes of biosynthesis in microorganisms.
Одна из основных особенностей предлагаемого способа заключаетс в использовании в опытах культур микроорганизмов, наход щихс в строго определенном физиологическом возрасте.One of the main features of the proposed method is the use of microorganism cultures in experiments that are in a strictly defined physiological age.
Пример 1. КультуруPseudomonas fluorescens дважды пересевают на м сопептонном бульоне с 0,1% селитры. Третий пересев производ т с таким расчетом, чтобы к началу оиыта посевной материал имел возраст 18 час.Example 1. Pseudomonas fluorescens culture was subcultured twice in m septon broth with 0.1% saltpeter. The third reseeding was done in such a way that by the beginning of the harvest, the seed had 18 hours of age.
Полученный посевной материал разливают в кварцевые пробирки и освещают 1-30 мин монохроматическим светом от лампы ДРШ1000 . После этого производ т посев облученных и необлученных образцов на средуThe seed obtained is poured into quartz test tubes and illuminated for 1-30 minutes with monochromatic light from a DRSh1000 lamp. After that, irradiated and non-irradiated samples are sown on Wednesday
пробирки. На поверхность среды паиос т слой парафина дл создани строго анаэробных условий. После посева все образцы с освепдеппыми культзрами Р. lluorescens помепдают в термостат при . В момент выхода на стационарную фазу развити в культуре определ от общее содержание белка и подсчитывают количество клеток.test tubes. A paraffin layer is applied to the surface of the medium to create strictly anaerobic conditions. After seeding, all specimens with P. lluorescens osteppepym cultivars are put into a thermostat at. At the time of entering the stationary phase of development in culture, the total protein content is determined from and the number of cells is counted.
П р и м е р 2. Используют споровый материал Clostridium butiricum, который получают следующим образом. 25%-ный картофельный затор разливают высоким слоем в иробирки, на дне которых находитс немного мела. Перед носевом среду прогревают 40-60 мин па кип щей вод ной бане. После охлаждени пробирок до 30-40 С в каждую из них на дно внос т 0,2 мл спорового материала. Брожение продолжаетс 7-10 дпей при . По окопчаиии бролсени пробирки запаивают и хран т в темпоте. Перед постановкой опыта споры проращивают па глюкозо-пептонной среде; глюкоза 2%, пептон 1%, КН2РО4 0,1%, мел па дпе пробирок, водопроводна вода. Перед посевом среду прогревают, как в примере 1. Посевной материал в количестве 1% от объема среды впос т на дно кварцевой пробирки и выращивают 24 час в темпоте при . Кварцевые пробирки с посевной культурой освепдают светом от лампы БУВ-30 в течение 1-30 мин или монохроматическим светом от лампы ДРШ-1000. Из облученных и необлученных образцов С1, Buliricum производ т посев на синтетическую среду с 1% глюкозы, 0,1% фумаровой кислоты, 0,3% (NH4)2HPO4, калием в составе КОП 140 мг/мл, биотинолом - 0,001 мг/мл, рП среды 6,7-6,8. Затем все образны со свежезасе иными культурами С1. bntiricum помещают в темиовой термостат при 37°С. Через 21 час роста в момент окончани экснотепциальной фазы развити в культуре определ ют общее содержание белка и подсчитывают количество клеток.PRI mme R 2. Use the spore material Clostridium butiricum, which is obtained as follows. A 25% potato mash is poured in a high layer into microbeads, with a little chalk at the bottom. Before the nasal medium, they are heated 40–60 min by a boiling water bath. After cooling the tubes to 30-40 ° C, 0.2 ml of the spore material is introduced into each of them. Fermentation lasts 7-10 dpi at. By filling the tube, the tubes are sealed and stored at a tempo. Before setting the experience, spores are germinated in a glucose-peptone medium; glucose 2%, peptone 1%, KH2PO4 0.1%, chalk pas dpe tubes, tap water. Before sowing, the medium is heated as in example 1. The seed in the amount of 1% of the volume of the medium is added to the bottom of the quartz tube and grown for 24 hours at a tempo at. Quartz test tubes with seed culture will be inspected with light from the BUV-30 lamp for 1-30 minutes or with monochromatic light from the DRSh-1000 lamp. From irradiated and non-irradiated samples of C1, Buliricum were sown on synthetic medium with 1% glucose, 0.1% fumaric acid, 0.3% (NH4) 2HPO4, potassium in the composition of the CPC 140 mg / ml, biotinol - 0.001 mg / ml , RP environment 6.7-6.8. Then all are imaged with svezhezase other cultures C1. bntiricum is placed in a single thermostat at 37 ° C. After 21 hours of growth at the end of the exothermal phase of development in culture, the total protein content is determined and the number of cells is counted.
Пример 3. Используют инокул т Schizosaccharomyses pombe, который перед опытом дважды пересевают на среде Гаизепа: 10 г пептона, 3 г КН2РО4; 4 г MgSO47H2O, 20 гExample 3. Schizosaccharomyses pombe inoculum is used, which is seeded twice before the experiment on Gaisep medium: 10 g peptone, 3 g KH2PO4; 4 g MgSO47H2O, 20 g
ГЛЮКОЗЫ в 1000 мл дистиллированной воды. Третий пересев производ т с таким расчетом, чтобы к иачалу опыта инокул т был в возрасте 24 час. После этого ипокул т освещают 1-30 мин монохроматическим светом от ламны ДРШ-1000. Освещенные и неосвещенные образцы Sch. pombe пересевают в колбы со средой Ридера, разлитой тоиким слоем дл хорошей аэрации.GLUCOSES in 1000 ml of distilled water. The third reseeding was done in such a way that by the beginning of the experiment the inoculum was at the age of 24 hours. After that, the ipocool is illuminated for 1–30 min with monochromatic light from the DRSh-1000 lamina. Illuminated and unlighted samples Sch. The pombe is subcultured into Reader medium flasks, poured with a Toiki layer for good aeration.
Затем все образцы со свежезасе ннымиThen all samples with fresh
культурами помещают в темповой термостат при 30°С. Через 16 час роста (носледп треть экспотепциалыюй фазы) в культуре определ ют общее содержание белка и подсчитывают количество клеток.cultures placed in a temp thermostat at 30 ° C. After 16 hours of growth (nasledp one-third of the expo-phase phase), the total protein content in the culture is determined and the number of cells is counted.
В ириведе1П1ых примерах общее содержапие белка определ ют по Лоури, а количество клеток подсчитывают по Випоградскому. Ощибка в определении процента стимул ции образовани общего белка в опыте но сравнению с контролем пе превыщает 4%, а при подсчете клеток . Определение количества витамина В2 провод т на флуорометре.In examples, the total protein content is determined according to Lowry, and the number of cells is calculated according to Vipogradsky. The error in determining the percentage of stimulation of the formation of total protein in the experiment compared with the control does not exceed 4%, and when counting cells. The determination of the amount of vitamin B2 is carried out on a fluorometer.
Предмет изобретени Subject invention
Claims (2)
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1634070A SU339191A1 (en) | 1971-03-30 | 1971-03-30 | METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMS |
DE19722215113 DE2215113C3 (en) | 1971-03-30 | 1972-03-28 | Method for cultivating microorganisms |
GB1471672A GB1382329A (en) | 1971-03-30 | 1972-03-29 | Method of cultivating microorganisms |
FR7211101A FR2132201B1 (en) | 1971-03-30 | 1972-03-29 | |
US404735A US3880717A (en) | 1971-03-30 | 1973-10-09 | Method of cultivating microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1634070A SU339191A1 (en) | 1971-03-30 | 1971-03-30 | METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMS |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU339191A1 true SU339191A1 (en) | 1973-10-19 |
Family
ID=20468961
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1634070A SU339191A1 (en) | 1971-03-30 | 1971-03-30 | METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMS |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU339191A1 (en) |
-
1971
- 1971-03-30 SU SU1634070A patent/SU339191A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Udaka | Screening method for microorganisms accumulating metabolites and its use in the isolation of Micrococcus glutamicus | |
FR2461006A1 (en) | PROCESS FOR THE PREPARATION OF L-THREONINE | |
Carter | Egg yolk agar for isolation of coagulase-positive staphylococci | |
SU339191A1 (en) | METHOD FOR CULTIVATING MICROORGANISMS | |
Darby et al. | Studies on media for coliform organisms | |
SU558649A3 (en) | The method of obtaining zeaxanthin | |
DE2215113C3 (en) | Method for cultivating microorganisms | |
SU939549A1 (en) | Method for preparing seed material for producing citric acid | |
GB396206A (en) | Improvements in the manufacture of yeast and other microorganisms | |
Fred et al. | THE OCCURRENCE OF A RED PIGMENT PRODUCING ORGANISM IN CORN MASH OF THE ACETONE BUTYL ALCOHOL FERMENTATION | |
SU427050A1 (en) | METHOD OF OBTAINING DIOXYACETONE | |
Loughheed | The effect of nutrition on synnemata formation in Hirsutella gigantea Petch | |
SU1708820A1 (en) | Strain of fungus penicillium rubrum - a producer of pigment, color analogue of hollyhock | |
SU136856A1 (en) | Method of producing antimycotic antibiotic-nystatin | |
SU562205A3 (en) | Method for producing ergot alkaloids | |
SU664994A1 (en) | Method of differentiation of brucella by sowing culture of brucella | |
SU464615A1 (en) | Liquid nutrient medium for the cultivation of catalase producer | |
SU1730143A1 (en) | Nutrient medium for cultivation of franoisella tularensis | |
SU427989A1 (en) | ||
AU596103B2 (en) | Microbiological method for preparation of citric acid | |
SU1100303A1 (en) | Culture medium for culturing pasteurella multocida | |
MATSUOKA et al. | STUDIES ON THE INTERMEDIATE METABOLISM OF CHLORAMPHENICOL PRODUCTION II. On the carbohydrate metabolism of Streptomyces venezuelae | |
RU1593234C (en) | Method of prostaglanding preparing | |
SU1263711A1 (en) | Nutrient medium for isolating and selecting bacteria - producers of protease | |
US2195629A (en) | Butyl-acetone fermentation process and inoculant |