SU201249A1 - METHOD FOR OBTAINING ENZYME PREPARATIONS - Google Patents

METHOD FOR OBTAINING ENZYME PREPARATIONS

Info

Publication number
SU201249A1
SU201249A1 SU1017366A SU1017366A SU201249A1 SU 201249 A1 SU201249 A1 SU 201249A1 SU 1017366 A SU1017366 A SU 1017366A SU 1017366 A SU1017366 A SU 1017366A SU 201249 A1 SU201249 A1 SU 201249A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
medium
culture
mycelium
enzyme preparations
temperature
Prior art date
Application number
SU1017366A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Эунике Джин Напиер Иностранец
фирма Иностранна
Лабораториз Лимитед Глаксо
Publication of SU201249A1 publication Critical patent/SU201249A1/en

Links

Description

Известны способы получени  ферментных препаратов путел культивировани  продуцирующих их микроорганизмов на питательной среде, содержащей источники азота, с добавлением других питательных веществ, нацример углеводов и минеральных солей, необходимых дл  роста, при температуре 20-35°С в аэробных услови х с последующим выделением ферментных препаратов из биомассы одним из известных способов, например высаливанием сульфатом аммони , адсорбцией, высущиванием культуральной жидкости.There are known methods for producing enzyme preparations by cultivating microorganisms producing them on a nutrient medium containing nitrogen sources, with the addition of other nutrients, the carbohydrate and mineral salts necessary for growth, at a temperature of 20-35 ° C under aerobic conditions, followed by the release of enzyme preparations from biomass one of the known methods, for example salting out with ammonium sulfate, adsorption, drying the culture fluid.

Согласно предлагаемому способу получают препараты с высокой активностью, содержащие протеолитические ферменты, способные к расщеПоТепию кератина, в сочетании с ламинариназой , хитиназой, эластазой и липазой. Дл  этого в качестве продуцирующих микроорганизмов используют бактерии рода Цитофага (Cytofaga) «NCIB 9497.According to the proposed method, preparations with high activity are obtained containing proteolytic enzymes capable of spreading keratin in combination with laminarinase, chitinase, elastase and lipase. For this purpose, bacteria of the genus Cytofaga (NCIB 9497) are used as producing microorganisms.

Предлагаемый способ заключаетс  в следующем .The proposed method is as follows.

Культуру бактерии рода Цитофага (Cytofaga ) «NCIB 9497 выращивают на питательной среде поверхностным способол или глубинным в аэробных услови х.Bacteria culture of the Cytofaga genus (Cytofaga) "NCIB 9497 is grown on nutrient media by surface method or deep in aerobic conditions.

раллельны, концы закруглены, разделены, а иногда спарены между собой. Окрашивают по Граму после выдерживани  на питательном агаре в течение трех дней при 20°С. Грам - отрицательные, короткие, пр мые палочки с параллельными сторонами, концы закруглены, внещний вид окраски - неровные полоски.are parallel, the ends are rounded, divided, and sometimes paired with each other. Gram is stained after incubation on nutrient agar for three days at 20 ° C. Gram - negative, short, straight sticks with parallel sides, rounded ends, outer appearance of color - uneven stripes.

Аналогичный внещпий вид имеют при выращивании на агаре, содержащем пептон и глюкозу . Окращивапие однородно после культивировани  на кров ном агаре.A similar outland species is when grown on agar containing peptone and glucose. Okrashchapie uniformly after cultivation on blood agar.

Рост на различных средах. На агаре (четырехдневное культивирование при 20°С) -светло-желтые , просвечивают, округлой формы , выпуклые, полностью гладкие, лосн щиес , 1 -1,5 мм в диаметре, с острым запахом.Growth on various environments. On agar (four days cultivation at 20 ° C) is light yellow, translucent, rounded, convex, completely smooth, shiny, 1-1.5 mm in diameter, with a pungent smell.

На агаре, пептоне и глюкозе (четырехдневное культивирование при 20°С) - светло-желтые , просвечивают, округлой формы, выпуклые , полностью гладкие, лосн щиес , слизеподобны , 1-2,5 мм Е диаметре, с острым запахом .On agar, peptone and glucose (four-day cultivation at 20 ° C) - light yellow, translucent, rounded, convex, completely smooth, glossy, slimy, 1-2.5 mm E in diameter, with a pungent smell.

На кров ном агаре (четырехдневное культивирование при 20°С) - серовато-желтые, просвечивают, округлой формы, выпуклые, полностью гладкие, лосн щиес , 1 -1,5 мм в диаметре, с острым запахом.On the blood agar (four days cultivation at 20 ° С) - grayish-yellow, translucent, rounded, convex, completely smooth, glossy, 1-1.5 mm in diameter, with a pungent smell.

назначительное липкое, т гучее и в зкое отложение . Слабый рост . отмечалс  также приgood sticky, thick and viscous deposits. Weak growth also noted

опор supports

.V- j «%-- „,.V- j "% -„,

На воде, содержащей пептон (двухдневное культивирование при 20 и 30°С) - рост незначительный , очень слаба  неоднородна  замутненность .On water containing peptone (two-day cultivation at 20 and 30 ° C) - the growth is insignificant, turbidity is very weak and non-uniform.

На воде, содерл ащей пептон и глюкозу {двухдневное культивирование при 20 и 30°С)-умеренный рост, слаба , неоднородна  замутненность.On water containing peptone and glucose {two-day cultivation at 20 and 30 ° C) - moderate growth, weak, non-uniform turbidity.

Зависимость между ростом и температурой. При температуре 5 или 10°С роста не наблюдаетс . Недостаточный рост при 37°С. Отсутствует чувствительность к пенициллину и стрептомицину. Чувствительность к хлорамфениколу и гидротетрациклину. Не вызывает образовани  кислоты или газообразных продуктов в результате воздействи  па глюкозу, мальтозу, маннитол или крахмал при 20 или 30°С. Отсутствует реакци  в среде по Хьюгу и Лейфсону, содержащей глюкозу.The relationship between growth and temperature. No growth at 5 or 10 ° C. Insufficient growth at 37 ° C. There is no sensitivity to penicillin and streptomycin. Sensitivity to chloramphenicol and hydrotetracycline. Does not cause the formation of acid or gaseous products as a result of exposure to glucose, maltose, mannitol or starch at 20 or 30 ° C. There is no reaction in the medium according to Hyug and Leifson containing glucose.

Лакмусовое молоко пептопизируетс , а индикатор восстанавливаетс  при 20°С и нептонизируетс  при 30°С. Желатину разжижает при 20°С. Оксидаза по Коваку положительна При 20 и 30°С. Образовани  индола не происходит, метил-красный отрицателен, ацетометилкарбинол не вырабатываетс , аммиак выдел етс  из пептона при температурах 20 и 30°С. Цитрат утилизируетс  как источник углерода в виде зол  при 20 и 30°С. Образовани  липазы или лецитиназы на агаре, содержащем желток куриного  йца, не наблюдаетс  при 20 илп 30°С.Litmus milk is petopicized, and the indicator is restored at 20 ° C and non-tonized at 30 ° C. Gelatinu thins at 20 ° C. Kovac oxidase is positive at 20 and 30 ° C. No indole formation occurs, methyl red is negative, acemethylcarbinol is not produced, ammonia is released from peptone at temperatures of 20 and 30 ° C. Citrate is utilized as a carbon source in the form of ash at 20 and 30 ° C. The formation of lipase or lecithinase on agar containing chicken egg yolk is not observed at 20 or 30 ° C.

Питательные среды, используемые дл  культивировани , содержат главным образом источник азота с добавлением в случае необходимости углевода и (или) питательных солей . К числу источников азота относ тс  солодовый экстракт, м сной экстракт, пептон, замочна  жидкость кукурузы или зерна, однако , наиболее пригодным источником азота  вл етс  мицелий, подученный как отход в производстве антибиотиков. При этом необходимо отметить, что источник азота может полностью удовлетворить потребность выращиваемого организма Цитофага «NCIB 9497 в углероде или в других питательных сол х без их добавлени . Так, например, данный микроорганиз .м сможет развиватьс  на среде, состо щей только из м сного экстракта и пептона . В некоторых случа х добавление углеводов , например глюкозы, мальтозы, оказываетс  необходимым.Nutrient media used for cultivation mainly contain a nitrogen source with the addition of carbohydrate and / or nutrient salts, if necessary. Nitrogen sources include malt extract, meat extract, peptone, corn or grain locking fluid, however, the most suitable nitrogen source is mycelium, derived as a waste in the production of antibiotics. It should be noted that the source of nitrogen can fully satisfy the need of the grown organism Cytophage "NCIB 9497" in carbon or in other nutrient salts without adding them. Thus, for example, this microorganism can develop on a medium consisting only of meat extract and peptone. In some cases, the addition of carbohydrates, such as glucose, maltose, is necessary.

К числу элементов, которые также могут оказатьс  необходимыми, относ тс  магний, железо и цинк.Elements that may also be necessary include magnesium, iron, and zinc.

Культивируют Цитофагу «NCIB 9497 при температуре 20-35°С (оптимальной  вл етс  температура 26°С), рН среды находитс  в пределах 5-8, предпочтительно 5,5-6.Cytology NCIB 9497 is cultivated at a temperature of 20-35 ° C (the optimum temperature is 26 ° C), the pH of the medium is in the range of 5-8, preferably 5.5-6.

Образующуюс  культуральную жидкость можно или использовать непосредственно, или извлечь из нее ферментный комплекс одним из известных способов. Так, например, куль5 туральную жидкость высущивают или осветл ют (цептрифугированием), после чего высушивают (можно методом вымораживани ), получа  при этом неочищенный препарат. Дл  получени  очищенного препарата производ т осаждение последнего ацетоном илп высаливанием сульфатом аммони , или адсорбцией на каолине.The resulting culture fluid can either be used directly, or the enzyme complex can be extracted from it by one of the known methods. Thus, for example, the culture liquid is dried or clarified (by means of centrifugation), and then dried (by freezing method), thus obtaining a crude preparation. To obtain a purified preparation, the latter is precipitated with acetone or salting out with ammonium sulfate, or by adsorption on kaolin.

Полученный нрепарат содержит комплекс следующих ферментов: протеазу, ламинарина5 зу, хитиназу, кератиназу, эластазу и липазу. Этот комплекс ферментов способен вызывать распад мицели  у различных грибковых организмов , например плесени рода Пенициллиум и Цефалоспориум.The resulting preparation contains a complex of the following enzymes: protease, laminarine, chitinase, keratinase, elastase, and lipase. This complex of enzymes can cause the disintegration of the mycelium in various fungal organisms, such as mold of the genus Penicillium and Cephalosporium.

0 Способность вызывать распад грибкового мицели  позвол ет использовать вышеуказанный комплекс ферментов дл  уничтожени  отходов мицели  после производства антибиотиков , особенно продуктов цефалоспорина.0 The ability to cause the breakdown of fungal mycelium allows the use of the above enzyme complex to destroy mycelium waste after the production of antibiotics, especially cephalosporin products.

5 Полученный при этом растворимый материал может быть использован как питательна  среда дл  проведени  последующих процессов ферментации. Степень, до которой ферментный комплекс воздействует па грибковый мицелий, зависит от видов мицели  в каждом конкретном случае.5 The soluble material thus obtained can be used as a nutrient medium for the subsequent fermentation processes. The extent to which the enzyme complex acts on the fungal mycelium depends on the species of mycelium in each particular case.

Отмечалось кератиназное действие комплекса ферментов, который действует, по-видимому . Не. волосы.It was noted keratinase action of a complex of enzymes, which acts, apparently. Not. hair.

5 Способен разлагать желатину, казеин, воздействовать на кератин, причем действие его протекает быстро.5 Able to decompose gelatin, casein, affect keratin, and its action proceeds quickly.

Данный комплекс можно использовать: в производстве хлебобулочных изделий; 0 при изготовлении блюд из хлебных злаков (например, овс нка, кукурузные хлопь );This complex can be used: in the production of bakery products; 0 in the manufacture of dishes from cereals (for example, oats nka, corn flakes);

дл  ускоренного созревани  м са с целью его разм гчени ;for the accelerated ripening of the meat in order to soften it;

дл  защиты от охлаждени  во врем  циво5 варени ;for protection against cooling during zivo5 boiling;

в производстве кормов дл  животных; в производстве протеиновых гидролизатов; дл  м гчени  крупного кожевенного сырь  и обезволашиванп  щкур;in animal feed production; in the production of protein hydrolysates; for softening of large leather raw materials and dehairing cheeks;

дл  удалени  п тен по методу сухой чистки; дл  удалени  щлихты с текстильных изделий;to remove stains by dry cleaning; to remove slippage from textiles;

в медицине.in medicine.

Пример 1. Конические колбы (250 мл), содержащие по 40 мл следующей среды, (%): мальтоза4Example 1. Conical flasks (250 ml) containing 40 ml of the following medium, (%): maltose4

солодовый экстракт2,4malt extract2,4

пептон1peptone1

дистиллированна  вода - до 100.distilled water - up to 100.

Водородный показатель рН 7 установлен dOT на аппарате путем возвратно-поступательного движени  с амплитудой 5 см, действующей при 200 об/мин при температуре окружаюш .ей среды 26°С. Через два дн  после начала инкубации культура характеризуетс  сильным литическим действием по отношению к Цефалоснориум акремониум (Бротцу) «IMI -49137. При мер 2. Конические колбы (250 жл), содержащие 100 мл следующей среды, %: м сной экстракт1 пептон1 хлористый натрий0,5. Водородный показатель среды устанавливают до значени  рН 8 добавлением гидрата окиси натри , кип т т 1 час, фильтруют, довод т среду до рН 7,2 путем добавлени  сол ной кислоты, инокулируют с помощью петли культурой микроорганизма Цитофага «NCIB 9497 и инкубируют при температуре 26°С. Содержимое колб перемешивают на аппарате с возвратно-поступательным движением, с амплитудой 5 см, при 200 об/мин. Спуст  один день после начала инкубации культура характеризуетс  сильным литическим действием по отношению к «К. акремониум. Пример 3. З.Л среды следующего состава (стерилизована 30 мин при температуре 120°С), %: мицелий «К. акремониум, отжатый в сыром виде6 кислый фосфорно-кислый калий вторичный0,07 первичный0,03 сернокислый магний 7Н2О0,05 сернокислое железо 7Н2О0,001 сернокислый цинк 7Н200,001 глюкоза (стерилизована отдельно) 0,25. Инокулируют 60 мл хорошо разросшейс  культуры микроорганизма Цитофага «NCIB 9497. Культуру выдерживают при температуре 26°С, перемешивают при 550 об/мин и аэрируют путем пропускани  воздуха со скоростью 3л/мин в течение 20 час, затем следующие 4час - со скоростью 1 л/мин и в заключение 2 час - со -скоростью 0,5 л/мин. Культуру осветл ют центрифугированием и всплывшую жидкость лиофизуют. Получают 6,6 г твердого вещества кремовой окраски, обладающего литической активностью по отношению к «К- акремониум и протеолитической активностью по отношению к казеину. Пример 4. 1,5 л жидкой культуры, выращенной , как указано в примере 3, центрифугируют , довод т среду до рН 6,1 добавлением уксусной кислоты и затем концентрируют в вакууме при температуре ниже 40°С до объема 250 Л1л. Концентрат медленно добавл ют к 2 л ацетона, охлажденного до +5°С, при энергичном перемешивании. Продукт светлокоричневой окраски в количестве 7,4 г промывают ацетоном и высушивают над п тиокисью фосфора. Полученный продукт характеризуетс  высокой активностью. Пример 5. 2л жидкой культуры, выращенной , как указано в примере 3, освобождают от твердых примесей центрифугированием и затем медленно выливают при перемешивании в 20 .л ацетона, охлаждаемого льдом. Продукт отфильтровывают, промывают водой и высушивают над п тиокисью фосфора; вес продукта - 10 г. Продукт обладает полной активностью, присушей первоначальной жидкой среде. Пример 6. Кусочки свежей тел чьей шкуры погружают в 1%-ный раствор ферментного препарата (полученного, как описано в примере 5) в буферной среде «Трис М/50 при рН 7. Выдерживают 18 час при температуре 37°С, после чего волос ной покров легко удал ют, осторожно соскребыва . Диалогична  обработка в буферной среде «Трис без добавлени  приготовленного препарата оставл ет волос ной покров таким же, каким он был до обработки. Пример 7. Мицелий «Трихофитон рубрум (один из грибков, вызывающих грибковое заболевание ног) приготовл ют путем культивировани  в сосуде, приспособленном дл  встр хивани  в течение 24 час при температуре 26°С в среде, содержащей пептон и солодовый экстракт. Полученный мицелий отфильтровывают и суспендируют на уровне 0,2% в 0,2%-ном растворе заранее приготовленного ферментного препарата (полученного, как указано в примере 5) в буферной среде «Трис М/50 при значении рН 7. Мицелий полностью раствор етс  после трехчасовой выдержки при температуре 27°С. Пример 8. Адсорбци  ферментного препарата на каолине. К 600 мл ферментационной жидкой среды, полученной, как указано в примере 4, добавл ют 1,65 г каолииа, затем отдельными порци ми внос т 180 г сульфата аммони  при механическом перемешивании до полного растворени . Смесь каолина с протеином отдел ют фильтрованием, промывают водой и затем высушивают при комнатной температуре в вакуум-сушильном шкафу. Продукт весом 11,7 г обладает полной активностью, присущей первоначальной жидкой среде. Предмет изобретени  Способ получени  ферментных препаратов путем выращивани  продуцирующих их микроорганизмов на питательной среде, содержащей источники азота, с добавлением других питательных веществ, необходимых дл  роста, например углеводов и минеральных солей, в аэробных услови х, с последующим выделением ферментных препаратов из полученной биомассы одним из известных способов, отличающийс  тем, что, с целью получени  препаратов с высокой активностью, содержащих протеолитические ферменты, способные к расщеплению кератина, а также ла7 мнкарииазу, хитиназу, эластазу и липазу, в качестве продуцирующих микроорганизмов ис8 пользуют бактерии рода Цитофага (Cytofaga) К° «NCIB 9497.The pH of pH 7 is set on the machine by reciprocating motion with an amplitude of 5 cm, operating at 200 rpm at an ambient temperature of 26 ° C. Two days after the start of incubation, the culture is characterized by a strong lytic effect with respect to the Cephalosnorium acremonium (Brotsu). "IMI -49137. Example 2. Conical flasks (250 ml) containing 100 ml of the following medium,%: minus extract1 peptone1 sodium chloride 0.5. The pH of the medium is adjusted to pH 8 by the addition of sodium hydroxide, boiled for 1 hour, filtered, the medium is adjusted to pH 7.2 by addition of hydrochloric acid, inoculated with a loop by a culture of the microorganism Cytophage "NCIB 9497, and incubated at 26 ° s The contents of the flasks are mixed on a reciprocating apparatus, with an amplitude of 5 cm, at 200 rpm. One day after the start of incubation, the culture is characterized by a strong lytic effect on "K. acremonium. Example 3. Z.L environment of the following composition (sterilized for 30 minutes at a temperature of 120 ° C),%: mycelium "K. acremonium, squeezed raw 6 acidic phosphoric acid potassium secondary 0.07 primary 0.03 magnesium sulphate 7H2O0.05 iron sulphate 7H2O0.001 zinc sulphate 7H200.001 glucose (sterilized separately) 0.25. 60 ml of a well-expanded culture of the cytophage microorganism NCIB 9497 are inoculated. The culture is maintained at a temperature of 26 ° C, stirred at 550 rpm and aerated by passing air at a rate of 3 liters / minute for 20 hours, then 4 hours later - at a rate of 1 l / min and finally 2 hours - with a speed of 0.5 l / min. The culture was clarified by centrifugation and the supernatant was lyophilized. 6.6 g of a cream-colored solid are obtained, which has lytic activity with respect to “K-acremonium and proteolytic activity with respect to casein. Example 4. 1.5 l of a liquid culture grown as indicated in example 3 is centrifuged, the medium is adjusted to pH 6.1 by the addition of acetic acid and then concentrated under vacuum at a temperature below 40 ° C to a volume of 250 liters. The concentrate is slowly added to 2 liters of acetone cooled to + 5 ° C, with vigorous stirring. A light brown product in the amount of 7.4 g is washed with acetone and dried over phosphorus pentoxide. The resulting product is characterized by high activity. Example 5. 2l liquid culture grown as indicated in example 3 is freed from solid impurities by centrifugation and then slowly poured with stirring into 20 liters of acetone, cooled with ice. The product is filtered off, washed with water and dried over phosphorus pentoxide; product weight - 10 g. The product has full activity, drying the original liquid medium. Example 6. Pieces of fresh calfskin are immersed in a 1% solution of an enzyme preparation (prepared as described in Example 5) in a Tris M / 50 buffer at pH 7. Soak for 18 hours at 37 ° C, after which the hair Noah cover is easily removed by gently scraping. Dialogical treatment in a buffer environment. Tris without adding a prepared preparation leaves hair the same as it was before processing. Example 7. Mycelium Trichophyton rubrum (one of the fungi causing fungal disease of the legs) is prepared by cultivation in a vessel adapted to shake for 24 hours at a temperature of 26 ° C in a medium containing peptone and malt extract. The obtained mycelium is filtered and suspended at a level of 0.2% in a 0.2% solution of a previously prepared enzyme preparation (prepared as indicated in Example 5) in a Tris M / 50 buffer medium at a pH of 7. Mycelium is completely dissolved after a three-hour exposure at a temperature of 27 ° C. Example 8. Adsorption of the enzyme preparation on kaolin. 1.65 g of kaolium was added to 600 ml of the fermentation liquid medium prepared as indicated in Example 4, then 180 g of ammonium sulfate was added in separate portions with mechanical stirring until complete dissolution. The kaolin-protein mixture is filtered off, washed with water and then dried at room temperature in a vacuum oven. A product weighing 11.7 g has full activity inherent in the original liquid medium. The subject of the invention is a method for producing enzyme preparations by growing the microorganisms producing them on a nutrient medium containing nitrogen sources, adding other nutrients necessary for growth, such as carbohydrates and mineral salts, under aerobic conditions, followed by isolating the enzyme preparations from the biomass obtained by one of known methods, characterized in that, in order to obtain preparations with high activity, containing proteolytic enzymes capable of cleaving keratin, and Also, la7 mncariasis, chitinase, elastase and lipase, bacteria of the genus Cytofaga К ° «NCIB 9497 are used as producing microorganisms8.

SU1017366A METHOD FOR OBTAINING ENZYME PREPARATIONS SU201249A1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU201249A1 true SU201249A1 (en)

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3937693A (en) Production of edible protein containing substances
DK146964B (en) PROTEOLYTIC ENZYM PRODUCT AND PROCEDURE FOR ITS PREPARATION
DK143164B (en) METHOD OF PREPARING ACID PROTEASE
Kanmani et al. Studies on detergent additives of protease enzyme from an estuarine bacterium Bacillus cereus
US3988207A (en) Preparation of a milk-coagulating enzyme
JP3876046B2 (en) Novel phytase and method for producing the same
US3330738A (en) Production of enzyme complex by cytophaga (flavobacterium) ncib 9497
SU201249A1 (en) METHOD FOR OBTAINING ENZYME PREPARATIONS
El-Shafei et al. Optimizing some factors affecting alkaline protease production by a marine bacterium Streptomyces albidoflavus
RU2360962C2 (en) Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation
US3096253A (en) Enzyme production
SU1042602A3 (en) Method for preparing substance 41 200 rp having immunostimulating effect
RU2774366C1 (en) Aspergillus clavatus strain - producer of proteolitic enzymes with keratinolytic activity
Fitriyanto et al. Characterizing hydrolysate from duck feather degradation by Pseudomonas sp. PK4, Bacillus cereus TD5B, and Bacillus cereus LS2B
US3843445A (en) Asparaginase production
SU575037A3 (en) Method of preparing zeaxanthin
RU2157843C1 (en) Bacterial strain bacillus cereus b 3b for oxidation of petroleum hydrocarbons and derivatives
Patil et al. Keratinase Enzyme Production from Bacillus Licheniformis KP9 Isolated from Chicken Feathers
RU2103345C1 (en) Method of hydrolyzate preparing and their using for nutrient media preparing for microorganism culturing
Avdiyuk et al. Substrate Specificity of Bacillus megaterium UСM B-5710 Keratinase
NO134260B (en)
SU413189A1 (en)
Oktavia et al. Biodegradation of surimi processing and crab canning wastewater using indigenous bacteria consortium
Blieva et al. SCREENING OF ASPERGILLUS FUNGI FOR EXTRA CELLULAR PROTEASE AND COLLAGENASE PRODUCTION
JPH01104158A (en) Microorganism and method for treating shell of crustacea using the same