RU2360962C2 - Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation - Google Patents

Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation Download PDF

Info

Publication number
RU2360962C2
RU2360962C2 RU2007122604/13A RU2007122604A RU2360962C2 RU 2360962 C2 RU2360962 C2 RU 2360962C2 RU 2007122604/13 A RU2007122604/13 A RU 2007122604/13A RU 2007122604 A RU2007122604 A RU 2007122604A RU 2360962 C2 RU2360962 C2 RU 2360962C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
nutrient
hydrolyzate
nutrient base
yeast
vibrio
Prior art date
Application number
RU2007122604/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2007122604A (en
Inventor
Инна Александровна Кузьмиченко (RU)
Инна Александровна Кузьмиченко
Ольга Викторовна Громова (RU)
Ольга Викторовна Громова
Михаил Николаевич Киреев (RU)
Михаил Николаевич Киреев
Олег Петрович Плотников (RU)
Олег Петрович Плотников
Ирина Васильевна Грачева (RU)
Ирина Васильевна Грачева
Наталья Александровна Виноградова (RU)
Наталья Александровна Виноградова
Николай Сергеевич Солодовников (RU)
Николай Сергеевич Солодовников
Надежда Сергеевна Червякова (RU)
Надежда Сергеевна Червякова
Сергей Анатольевич Нижегородцев (RU)
Сергей Анатольевич Нижегородцев
Марина Владимировна Антонычева (RU)
Марина Владимировна Антонычева
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") filed Critical Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority to RU2007122604/13A priority Critical patent/RU2360962C2/en
Publication of RU2007122604A publication Critical patent/RU2007122604A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2360962C2 publication Critical patent/RU2360962C2/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: food products.
SUBSTANCE: method provides for protein raw material hydrolysis. Baker's yeasts and caseine are used as protein raw material. Hydrolysis is performed by enzymic complex, obtained from choleric vaccine production wastes - ultrafiltrate culture liquid - cholera vibrio producing strain M 41 at 45°C and pH 7.4±0.2 during 20-22 hours with nutrient base production. Baker's yeasts enzymic hydrolyzate or caseine enzymic hydrolyzate are used as nutrient base in mentioned nutritional mediums. Nutritional mediums contain baker's yeasts enzymic hydrolyzate or caseine enzymic hydrolyzate, chloride natrium, tapwater and agar. Nutritional medium additionally contains yeast autolysate if there is nutritional medium as nutrient base of caseine enzymic hydrolyzate.
EFFECT: reduced time of raw materials hydrolyzate while keeping nutritional medium growing properties, reduced quantity of digesting agent and expanded range of nutritional mediums.
5 cl, 1 tbl, 6 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии, а именно к способу получения белковых гидролизатов и питательной среды, предназначенной для выращивания микроорганизмов.The invention relates to microbiology and biotechnology, and in particular to a method for producing protein hydrolysates and a nutrient medium intended for growing microorganisms.

Предпосылки для создания изобретения.Background to the invention.

В настоящее время в конструировании полноценных питательных сред мясные основы в основном уступают место казеину, широкое распространение получили также гидролизаты рыбного сырья и дрожжей. Сырье для изготовления питательных компонентов должно быть доступным, стандартным и дешевым. Изыскиваются и новые способы гидролиза исходного сырья.Currently, in the construction of high-grade nutrient media, meat bases are mainly giving way to casein, hydrolysates of fish raw materials and yeast are also widely used. Raw materials for the manufacture of nutrients should be affordable, standard and cheap. New methods of hydrolysis of the feedstock are also being sought.

Известны питательные среды для культивирования различных микроорганизмов, в том числе и патогенных, приготовленные путем триптического гидролиза мяса по Хоттингеру, из панкреатического гидролизата казеина, соевых бобов и гороха, каспийской кильки, пекарских дрожжей (Козлов Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. - М.: Медгиз., 1950, - с.51-111).Nutrient media are known for the cultivation of various microorganisms, including pathogens, prepared by tryptic hydrolysis of meat according to Hottinger, from pancreatic hydrolyzate of casein, soybeans and peas, Caspian sprat, baker's yeast (Kozlov Yu.A. Nutrient media in medical microbiology. - M .: Medgiz., 1950, p. 51-111).

Известна питательная среда для выращивания микроорганизмов, содержащая панкреатический гидролизат казеина, экстракт пекарских дрожжей, лактозу, соли марганца и магния, аскорбиновую кислоту (патент RU №2027754, C12N 1/20).Known nutrient medium for growing microorganisms containing pancreatic hydrolyzate of casein, baker's yeast extract, lactose, salts of manganese and magnesium, ascorbic acid (patent RU No. 2027754, C12N 1/20).

Известна монокомпонентная, по белковой основе, среда культивирования чумного микроба на основе панкреатического перевара пекарских дрожжей, полученного по способу Хоттингера (Питательная среда культивирования чумного микроба при 37°С на основе панкреатического перевара пекарских дрожжей: отчет о выполнении НИР: 01.200.2 12994: Ростовский-на-Дону науч. - исслед. противочум. ин-т, Северо-Кавказская противочум. станция; исполн.: Мазрухо А.Б., Криваченко К.Б., Каминский Д.К., [и др.] / Методические документы и отчеты по сан. - эпид. охране территории РФ: Реферат, сб. / Под ред. докт. мед. наук, профессора В.В.Кутырева. - Саратов: ОАО «Приволжское книжное издательство», 2005. - c.39, ISBN 5-7633-1061-6).A known monocomponent, protein-based, plague microbe cultivation medium based on pancreatic digest of baker’s yeast obtained by the Hottinger method (Nutrient plague microbial culture medium at 37 ° C based on pancreatic digest of baker’s yeast: R&D report: 01.200.2 12994: Rostov -on-Don scientific - research anti-plague institute, North Caucasian anti-plague station; performed by: Mazrukho AB, Krivachenko KB, Kaminsky DK, [et al.] / Methodical documents and reports on a dignity - epidemiological protection of the territory of the Russian Federation: Verat, collection / Under the editorship of Doctor of Medical Sciences, Professor V.V. Kutyrev. - Saratov: OJSC "Volga Book Publishing House", 2005. - p.39, ISBN 5-7633-1061-6).

Известна питательная среда для глубинного культивирования вакцинного штамма чумного микроба на основе ферментативного гидролизата белков обезжиренного молока с содержанием аминного азота 120 мг% и концентрацией водородных ионов рН 6,8-7,2. В состав этой среды входит питательная основа, калий фосфорнокислый однозамещенный, калий фосфорнокислый двузамещенный, магния сульфат, натрия хлорид (патент RU №2270856, C12N 1/20, C12QN 1/10).A known nutrient medium for deep cultivation of the plague microbe vaccine strain based on the enzymatic hydrolyzate of skim milk proteins with an amine nitrogen content of 120 mg% and a concentration of hydrogen ions of pH 6.8-7.2. The composition of this medium includes a nutrient base, monosubstituted potassium phosphate, disubstituted potassium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride (patent RU No. 2270856, C12N 1/20, C12QN 1/10).

Известна питательная среда для культивирования вакцинного штамма чумного микроба следующего состава: панкреатический гидролизат соевых бобов, натрий хлористый, натрий фосфорнокислый двузамещенный, натрий сернокислый, дистиллированная вода (патент RU, №2245362, C12N 1/20, C12QN 1/04).A known nutrient medium for cultivating a plague microbe vaccine strain of the following composition is: pancreatic soybean hydrolyzate, sodium chloride, disubstituted sodium phosphate, sodium sulfate, distilled water (RU patent No. 2245362, C12N 1/20, C12QN 1/04).

Недостатком микробиологических сред, приготовленных на основе панкреатических гидролизатов, является возросшая стоимость поджелудочной железы, ее нестандартность, а также длительность (5 суток и более) процесса ферментативного гидролиза, что также увеличивает конечную стоимость среды. При этом использование сырья животного происхождения может привести к контаминации питательных сред биологическими агентами (микоплазмами, прионами, и др.).The disadvantage of microbiological media prepared on the basis of pancreatic hydrolysates is the increased cost of the pancreas, its non-standard, as well as the duration (5 days or more) of the process of enzymatic hydrolysis, which also increases the final cost of the medium. Moreover, the use of raw materials of animal origin can lead to the contamination of nutrient media with biological agents (mycoplasmas, prions, etc.).

Наиболее близким аналогом является среда для культивирования микроорганизмов, содержащая ферментативный гидролизат сои, автолизат пекарских дрожжей, натрия хлорид, и водопроводную воду (Дьяченко Ю.В., Левицкий А.П. Соевые бактериологические питательные среды и перспективы их использования в клинической бактериологии // Клиническая лабораторная диагностика, 2001, №3. - с.49-50).The closest analogue is a medium for the cultivation of microorganisms containing an enzymatic hydrolyzate of soy, an autolysate of baker's yeast, sodium chloride, and tap water (Dyachenko Yu.V., Levitsky A.P. Soybean bacteriological growth media and the prospects for their use in clinical bacteriology // Clinical laboratory diagnostics, 2001, No. 3. - p. 49-50).

Известены способы получения белковых гидролизатов, основанные на ферментативном гидролизе белкового сырья протеолитическими препаратами, выделенными из некоторых бактерий или плесневых грибов.Known methods for producing protein hydrolysates based on the enzymatic hydrolysis of protein raw materials with proteolytic preparations isolated from certain bacteria or molds.

Известен способ получения гидролизата дрожжевой биомассы. Способ предусматривает гидролиз дрожжевой биомассы комплексным ферментным препаратом, полученным на основе штамма микромицета Aspergillus oryzae ВКПМ F-683 или его культуральной жидкости при рН 4,5-6,0, с последующей пастеризацией при 80-90°С в течение 15-20 мин и сушкой (патент RU №2104300, C12N 1/06, A23J 1/18, A23L 1/28).A known method of producing a hydrolyzate of yeast biomass. The method involves the hydrolysis of yeast biomass with a complex enzyme preparation obtained on the basis of the Aspergillus oryzae VKPM F-683 micromycete strain or its culture fluid at pH 4.5-6.0, followed by pasteurization at 80-90 ° C for 15-20 minutes and drying (patent RU No. 2104300, C12N 1/06, A23J 1/18, A23L 1/28).

Проведенный поиск по патентам и научно-техническим источникам информации показал, что в настоящее время среди бактериальных ферментных препаратов отечественного и зарубежного производства наиболее часто используют препарат протосубтилин, обладающий протеазной активностью.A search by patents and scientific and technical sources of information showed that at present, among the bacterial enzyme preparations of domestic and foreign production, the most commonly used drug is protosubtiline, which has protease activity.

Наиболее близким к заявляемому является способ получения белковых основ для приготовления бактериологических питательных сред (Дьяченко Ю.В., Левицкий А.П. Соевые бактериологические питательные среды и перспективы их использования в клинической бактериологии // Клиническая лабораторная диагностика, 2001, №3. - с.49-50). Способ предлагает использование в качестве сырья соевого экстракта и проведение ферментативного гидролиза протосубтилином при 47-50°С и рН 7,3 в течение 5-8 ч или проназой при 37°С, рН 7,2 в течение 2 ч.Closest to the claimed is a method of obtaining protein bases for the preparation of bacteriological culture media (Dyachenko Yu.V., Levitsky A.P. Soy bacteriological culture media and the prospects for their use in clinical bacteriology // Clinical laboratory diagnostics, 2001, No. 3. - .49-50). The method suggests the use of soybean extract as a raw material and enzymatic hydrolysis with protosubtilin at 47-50 ° C and pH 7.3 for 5-8 hours or pronase at 37 ° C, pH 7.2 for 2 hours.

Однако использование таких препаратов бактериальной природы пока не получило широкого распространения в силу их меньшей доступности и недостаточной изученности.However, the use of such preparations of a bacterial nature has not yet received wide distribution due to their lower availability and insufficient knowledge.

Изобретение направлено на достижение получения питательной среды, не уступающей по своим ростовым свойствам прототипам и одновременно использующей в технологии приготовления побочный продукт производства холерной вакцины в качестве источника ферментного комплекса для переваривания питательной основы, что решает задачу утилизации отходов производства.The invention is aimed at achieving a nutrient medium that is not inferior in its growth properties to prototypes and at the same time uses a by-product of the production of cholera vaccine as a source of enzyme complex for digestion of the nutrient base in the preparation technology, which solves the problem of recycling production waste.

Технический результат изобретения заключается: в замене дорогостоящих нестандартных переваривающих агентов на более дешевые и стандартные; в сокращении времени процесса гидролиза (в 5-7 раз), с сохранением ростовых свойств питательной среды; в существенном уменьшении количества переваривающего агента; в рациональной утилизации отходов производства и расширении набора полноценных сред, в том числе для производственного культивирования бактерий.The technical result of the invention is: to replace expensive non-standard digesting agents with cheaper and standard; in reducing the time of the hydrolysis process (5-7 times), while maintaining the growth properties of the nutrient medium; a significant reduction in the amount of digesting agent; in the rational utilization of industrial wastes and the expansion of a set of high-grade environments, including for the industrial cultivation of bacteria.

Поставленная задача решается использованием в качестве агента для переваривания питательной основы низкомолекулярного ферментного комплекса холерного вибриона, выделенного из отхода производства холерной вакцины - ультрафильтрата культуральной жидкости производственного штамма М 41 и названного протеовибрином. Для приготовления питательной основы в качестве исходного сырья возможно использование белкового сырья различного происхождения: в качестве такового выбраны дрожжи пекарские и казеин.The problem is solved by using a cholera vibrio low molecular weight enzyme complex isolated from the waste product of the cholera vaccine - ultrafiltrate of the culture fluid of production strain M 41 and called proteovibrin as an agent for digesting the nutrient base. For the preparation of a nutrient base, protein raw materials of various origins can be used as feedstock: baker's yeast and casein are chosen as such.

Предварительно подготовленное белковое сырье подвергают гидролизу ферментным комплексом холерного вибриона - протеовибрином. Соотношение ферментного комплекса к белку составляет 1:400-1:500, гидролиз ведут при температуре 45°С, рН 7,4±0,2 в течение 20-22 ч.Pre-prepared protein raw materials are subjected to hydrolysis with the enzyme complex of cholera vibrio - proteovibrin. The ratio of the enzyme complex to protein is 1: 400-1: 500, hydrolysis is carried out at a temperature of 45 ° C, pH 7.4 ± 0.2 for 20-22 hours

На полученной основе можно готовить полноценную и доступную жидкую или плотную питательную среду для выращивания микроорганизмов. В питательную основу можно добавлять при необходимости другие компоненты для расширения спектра культивируемых микроорганизмов в зависимости от их питательных потребностей.On the basis of this, it is possible to prepare a complete and affordable liquid or dense nutrient medium for growing microorganisms. If necessary, other components can be added to the nutrient base to expand the range of cultivated microorganisms depending on their nutritional needs.

Ферментативный комплекс протеовибрин получают из ультрафильтрата детоксицированной культуральной жидкости производственного штамма холерного вибриона серовара Огава М 41. При одном выращивании в реакторе, после концентрирования O-антигенсодержащего компонента вакцины на ультрафильтрационном аппарате марки УВА-ПС-20-1040, накапливается ультрафильтрат (более 200 л), являющийся отходом производства. Его концентрируют в 15-17 раз на аналогичном аппарате ПС-17-1040 с меньшей пропускной способностью волокон и осаждают сернокислым аммонием до 80% от насыщения с последующим центрифугированием и диализом против дистилированной воды. Препарат в жидком виде может длительно храниться (до 1 года) в замороженном состоянии без потери активности. Препарат может быть лиофилизирован и сохраняться продолжительное время (более 2 лет), выход сухого продукта составляет 0,25±0,05 г на 1 л. Плановый выпуск холерной вакцины обеспечивает получение требуемого количества ферментного комплекса. Высокоактивный ферментный комплекс протеовибрин, полученный описанным способом из отходов производства холерной химической вакцины, до настоящего времени не имел дальнейшего производственного использования.The enzymatic complex of proteovibrin is obtained from the ultrafiltrate of a detoxified culture fluid of the production strain of cholera vibrio of serovar Ogawa M 41. During one cultivation in the reactor, after concentrating the O-antigen-containing component of the vaccine, ultrafiltrate (more than 200 l) accumulates on the UVA-PS-20-1040 ultrafiltration apparatus. , which is a waste of production. It is concentrated 15-17 times on a similar apparatus PS-17-1040 with a lower fiber throughput and precipitated with ammonium sulfate to 80% of saturation, followed by centrifugation and dialysis against distilled water. The drug in liquid form can be stored for a long time (up to 1 year) in a frozen state without loss of activity. The drug can be lyophilized and stored for a long time (more than 2 years), the yield of dry product is 0.25 ± 0.05 g per 1 liter. The planned release of the cholera vaccine provides the required amount of the enzyme complex. The highly active proteovibrin enzyme complex obtained in the described manner from the waste products of the production of cholera chemical vaccines has not yet had further industrial use.

Протеовибрин представляет собой темно-коричневую жидкость или сыпучий порошок темно-коричневого цвета, хорошо растворимый в воде. Жидкий протеовибрин содержит 18±2 мг/мл белка, в сухом препарате содержание белка составляет 55±77%. Протеовибрин в своем составе содержит 16000±2000 усл. ед./мг нейтральной протеазы (тест-среда с молоком рН 7,2), 20000±4000 усл. ед./мг белка щелочной протеазы (тест-среда с молоком рН 8,5), 8000±400 усл. ед./мг белка кислой протеазы (тест-среда с молоком рН 5,6), 12500±2000 усл. ед./мг белка фосфолипазы А; (тест-среда с желтком рН 7,5), 770±10 усл. ед./мг белка фосфолипазы С (тест-среда с желтком рН 7,5).Proteovibrin is a dark brown liquid or loose powder of a dark brown color, readily soluble in water. Liquid proteovibrin contains 18 ± 2 mg / ml protein; in a dry preparation, the protein content is 55 ± 77%. Proteovibrin in its composition contains 16000 ± 2000 conv. units / mg of neutral protease (test medium with milk pH 7.2), 20,000 ± 4000 conv. units / mg protein of alkaline protease (test medium with milk pH 8.5), 8000 ± 400 conv. units / mg of acidic protease protein (test medium with milk pH 5.6), 12500 ± 2000 conv. units / mg of protein phospholipase A; (test medium with yolk pH 7.5), 770 ± 10 srvc. units / mg of protein phospholipase C (test medium with yolk pH 7.5).

В ферментном комплексе - протеовибрине, полученном из отходов производства холерной химической вакцины, присутствуют протеолитические и липолитические ферменты, необходимые для гидролиза питательной основы в широком диапазоне рН и некоторых липидсодержащих компонентов в ней, что указывает на определенное сходство с препаратами из поджелудочной железы. При этом для эффективного гидролиза белкового сырья требуются малые дозы протеовибрина - соотношение его к белку составляет 1:400-1:500.In the enzyme complex - proteovibrine, obtained from the waste products of cholera chemical vaccines, there are proteolytic and lipolytic enzymes necessary for hydrolysis of the nutrient base in a wide range of pH and some lipid-containing components in it, which indicates a certain similarity with preparations from the pancreas. Moreover, for effective hydrolysis of protein raw materials, small doses of proteovibrin are required - its ratio to protein is 1: 400-1: 500.

Задача решается тем, что питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio содержит питательную основу, дрожжевой автолизат, натрий хлористый, воду, а в качестве питательной основы гидролизат казеина, полученный путем гидролиза казеина ферментным комплексом холерного вибриона, при следующем соотношении компонентов, г/л:The problem is solved in that the nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio contains a nutrient base, yeast autolysate, sodium chloride, water, and casein hydrolyzate obtained by hydrolysis of casein by the cholera vibrio enzyme complex in the following ratio of components, g / l:

ферментативный гидролизат казеинаcasein enzymatic hydrolyzate 300-330300-330 натрий хлористыйsodium chloride 30thirty дрожжевой автолизатyeast autolysate 50fifty водопроводная водаtap water остальноеrest

Как вариант питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio содержит питательную основу, натрий хлористый, воду, а в качестве питательной основы ферментативный гидролизат пекарских дрожжей, полученный путем гидролиза пекарских дрожжей ферментным комплексом холерного вибриона, при следующем соотношении, г/л:Alternatively, the nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio contains a nutrient base, sodium chloride, water, and as a nutrient base an enzymatic hydrolyzate of baker's yeast obtained by hydrolysis of baker's yeast with the cholera vibrio enzyme complex, in the following ratio, g / l:

ферментативный гидролизат пекарских дрожжейbaker's yeast enzymatic hydrolyzate 350-380350-380 натрий хлористыйsodium chloride 30thirty водопроводная водаtap water остальноеrest

Питательная среда по второму варианту не требует добавления дрожжевого автолизата - стимулятора роста.The nutrient medium according to the second embodiment does not require the addition of a yeast autolysate, a growth stimulator.

Количество питательной основы на 1 л среды рассчитывают в зависимости от исходного содержания в ней аминного азота, доводя его значение до 100±10 мг%.The amount of nutrient base per 1 liter of medium is calculated depending on the initial content of amine nitrogen in it, bringing its value to 100 ± 10 mg%.

Для приготовления плотной питательной среды по первому и второму вариантам дополнительно добавляют агар-агар в количестве 15-20 г/л.To prepare a dense nutrient medium according to the first and second options, agar-agar is additionally added in an amount of 15-20 g / l.

Пример 1. Приготовление ферментативного гидролизата пекарских дрожжей.Example 1. Preparation of enzymatic hydrolyzate of baker's yeast.

200 г прессованных дрожжей суспендируют в 800 мл водопроводной питьевой воды и проводят автолиз в течение 5-6 ч при 48-50°С в присутствии 2% хлороформа - индуцирующего агента с консервирующими свойствами. На этой стадии процесс может быть прекращен, а автолизат использован в качестве стимулирующей добавки к среде по примеру 4 в соотношении 1:20. Для этого его инактивируют при 90°С в течение 30 мин, отстаивают 24 ч на холоде при температуре 4-6°С, декантируют и дважды фильтруют через ткань бельтинг. Разливают в стеклянные флаконы и стерилизуют при 110°С 30 мин. При продолжении гидролиза в дрожжевой автолизат вносят 5 мл жидкого или 150-160 мг сухого протеовибрина (соотношение к дрожжевому белку 1:450-1:500), устанавливают рН 7,4±0,2, инкубируют еще 16-18 ч при периодическом перемешивании. По окончании гидролиза ферментолизат подкисляют 6 н. HCl до рН 4,6±0,2 и кипятят на водяной бане в течение 10 мин. Осадок удаляют после отстаивания в течение 24 ч на холоде декантацией и фильтрованием. В фильтрате доводят значения до рН 8,5±0,1 с помощью 5 н. NaOH и повторно кипятят 10 мин с последующим удалением осадка. В прозрачной питательной основе устанавливают рН 7,4±0,2 с помощью 6 н. HCl. Основа содержит 590±20 мг% общего азота, 280±20 мг% аминного азота, степень расщепления белка 47±2%.200 g of pressed yeast are suspended in 800 ml of tap drinking water and autolysis is carried out for 5-6 hours at 48-50 ° C in the presence of 2% chloroform, an inducing agent with preservative properties. At this stage, the process can be stopped, and the autolysate is used as a stimulating additive to the medium according to example 4 in a ratio of 1:20. To do this, it is inactivated at 90 ° C for 30 min, left to stand for 24 hours in the cold at a temperature of 4-6 ° C, decanted and filtered twice through a belting cloth. Poured into glass vials and sterilized at 110 ° C for 30 minutes. With continued hydrolysis, 5 ml of liquid or 150-160 mg of dry proteovibrin (ratio to yeast protein 1: 450-1: 500) is added to the yeast autolysate, the pH is adjusted to 7.4 ± 0.2, incubated for another 16-18 hours with periodic stirring . At the end of hydrolysis, the fermentolizate is acidified with 6 N. HCl to pH 4.6 ± 0.2 and boiled in a water bath for 10 minutes. The precipitate is removed after settling for 24 hours in the cold by decantation and filtration. The filtrate was adjusted to pH 8.5 ± 0.1 with 5 N NaOH and re-boil for 10 minutes, followed by removal of the precipitate. In a transparent nutrient basis, a pH of 7.4 ± 0.2 is set with 6 N HCl. The base contains 590 ± 20 mg% of total nitrogen, 280 ± 20 mg% of amine nitrogen, the degree of protein breakdown is 47 ± 2%.

Пример 2. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio, (по варианту 2).Example 2. Nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio, (option 2).

Для приготовления питательной среды дрожжевой гидролизат, приговленный в соответствии с заявляемым способом, разводят по расчету водопроводной водой до содержания аминного азота 100±10 мг%, корректируют рН до требуемой величины, добавляют 0,3% NaCl и воду до 1 л. Для приготовления плотной среды в нее добавляют 15-20 г/л агар-агара. Среду разливают в стеклянные флаконы и стерилизуют автоклавированием при 110°С 30 мин.To prepare a nutrient medium, the yeast hydrolyzate, sentenced in accordance with the claimed method, is diluted according to the calculation with tap water to an amine nitrogen content of 100 ± 10 mg%, the pH is adjusted to the required value, 0.3% NaCl and water are added to 1 l. To prepare a dense medium, 15-20 g / l agar-agar is added to it. The medium is poured into glass bottles and autoclaved at 110 ° C for 30 minutes.

Готовая среда содержит следующие компоненты, г/л:The finished medium contains the following components, g / l:

ферментолизат пекарских дрожжейbaker's yeast fermentolizate 350 (содержание аминного азота 90 мг%)350 (amine nitrogen content 90 mg%) NaClNaCl 30thirty водопроводная водаtap water остальноеrest

Использование данной питательной среды обеспечивает ростовые потребности микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio с сохранением их морфологических признаков.The use of this nutrient medium provides the growth needs of the microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio with the preservation of their morphological characteristics.

Пример 3. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio, (по варианту 2).Example 3. Nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio, (option 2).

Для приготовления питательной среды дрожжевой гидролизат, приговленный в соответствии с заявляемым способом, разводят по расчету водопроводной водой, корректируют рН до требуемой величины, добавляют 0,3% NaCl и воду до 1 л. Для приготовления плотной среды в нее добавляют 15-20 г/л агар-агара. Среду разливают в стеклянные флаконы и стерилизуют автоклавированием при 110°С 30 мин.To prepare a nutrient medium, the yeast hydrolyzate, sentenced in accordance with the claimed method, is bred according to the calculation with tap water, the pH is adjusted to the required value, 0.3% NaCl and water are added to 1 l. To prepare a dense medium, 15-20 g / l agar-agar is added to it. The medium is poured into glass bottles and autoclaved at 110 ° C for 30 minutes.

Готовая среда содержит следующие компоненты, г/л:The finished medium contains the following components, g / l:

ферментолизат пекарских дрожжейbaker's yeast fermentolizate 380 (содержание аминного азота 110 мг%)380 (amine nitrogen content 110 mg%) NaClNaCl 30thirty водопроводная водаtap water остальноеrest

Использование данной питательной среды обеспечивает ростовые потребности микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio с сохранением их морфологических признаков.The use of this nutrient medium provides the growth needs of the microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio with the preservation of their morphological characteristics.

Пример 4. Приготовление ферментативного гидролизата казеина.Example 4. Preparation of enzymatic casein hydrolyzate.

60 г сухого казеина заливают 1 л водопроводной питьевой воды, добавляют 8 г NaHCO3, (рН 7,4±0,2) и нагревают в водяной бане до 90-95°С в течение 5 мин. После охлаждения до 40-50°С в расплавленный казеин вносят 5 мл жидкого протеовибрина (соотношение к белку казеина 1:400-1:500) или сухой протеовибрин в количестве 150-160 мг, предварительно растворенный в минимальном количестве воды. Ферментативный гидролиз казеина проводят в течение 20-22 ч при 45°С с периодическим перемешиванием. По окончании процесса гидролизат подкисляют до рН 4,5±0,2 с помощью 6 н. HCl для инактивации фермента и осаждения не прореагировавших белков и выдерживают на водяной бане в течение 10 мин. После охлаждения и удаления осадка фильтрованием через тканевый или бумажный фильтр, устанавливают рН 7,4±0,2 с помощью 5 н. NaOH. Полученная питательная основа содержит 640±30 мг% общего азота, 300±20 мг% аминного азота, степень расщепления белка 52±3%.60 g of dry casein is poured into 1 liter of tap drinking water, 8 g of NaHCO 3 are added (pH 7.4 ± 0.2) and heated in a water bath to 90-95 ° C for 5 minutes. After cooling to 40-50 ° C, 5 ml of liquid proteovibrin (ratio to casein protein 1: 400-1: 500) or dry proteovibrin in an amount of 150-160 mg, previously dissolved in a minimum amount of water, is added to the molten casein. The enzymatic hydrolysis of casein is carried out for 20-22 hours at 45 ° C with periodic stirring. At the end of the process, the hydrolyzate is acidified to pH 4.5 ± 0.2 using 6 N. HCl for inactivation of the enzyme and precipitation of unreacted proteins and incubated in a water bath for 10 minutes After cooling and removing the precipitate by filtration through a fabric or paper filter, set pH 7.4 ± 0.2 using 5 N. NaOH. The resulting nutrient base contains 640 ± 30 mg% of total nitrogen, 300 ± 20 mg% of amine nitrogen, the degree of protein breakdown is 52 ± 3%.

Пример 5. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio (по варианту 1).Example 5. Nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio (option 1).

Для приготовления питательной среды казеиновый ферментолизат, приговленный в соответствии с заявляемым способом, разводят по расчету водопроводной водой, корректируют рН до требуемой величины, добавляют 0,3% NaCl, дрожжевой автолизат 0,5% и воду до 1 л. Для приготовления плотной среды в нее добавляют 15-20 г/л агар-агара. Среду разливают в стеклянные флаконы и стерилизуют автоклавированием при 110°С 30 мин.To prepare a nutrient medium, a casein fermentolizate, which was sentenced in accordance with the claimed method, is diluted with tap water, the pH is adjusted to the required value, 0.3% NaCl, 0.5% yeast autolysate and water up to 1 l are added. To prepare a dense medium, 15-20 g / l agar-agar is added to it. The medium is poured into glass bottles and autoclaved at 110 ° C for 30 minutes.

Готовая среда содержит следующие компоненты, г/л:The finished medium contains the following components, g / l:

ферментолизат казеинаcasein fermentolizate 300 (содержание аминного азота 90 мг%)300 (amine nitrogen content 90 mg%) дрожжевой автолизатyeast autolysate 50fifty NaClNaCl 30thirty водопроводная водаtap water остальноеrest

Использование данной питательной среды обеспечивает ростовые потребности микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio с сохранением их морфологических признаков.The use of this nutrient medium provides the growth needs of the microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio with the preservation of their morphological characteristics.

Пример 6. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio (по варианту 1).Example 6. Nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio (option 1).

Для приготовления питательной среды казеиновый ферментолизат, приговленный в соответствии с заявляемым способом, разводят по расчету водопроводной водой, корректируют рН до требуемой величины, добавляют 0,3% NaCl, дрожжевой автолизат 0,5% и воду до 1 л. Для приготовления плотной среды в нее добавляют 15-20 г/л агар-агара. Среду разливают в стеклянные флаконы и стерилизуют автоклавированием при 110°С 30 мин.To prepare a nutrient medium, a casein fermentolizate, which was sentenced in accordance with the claimed method, is diluted with tap water, the pH is adjusted to the required value, 0.3% NaCl, 0.5% yeast autolysate and water up to 1 l are added. To prepare a dense medium, 15-20 g / l agar-agar is added to it. The medium is poured into glass bottles and autoclaved at 110 ° C for 30 minutes.

Готовая среда содержит следующие компоненты, г/л:The finished medium contains the following components, g / l:

ферментолизат казеинаcasein fermentolizate 330 (содержание аминного азота 110 мг%)330 (amine nitrogen content 110 mg%) дрожжевой автолизатyeast autolysate 50fifty NaClNaCl 30thirty водопроводная водаtap water остальноеrest

Использование данной питательной среды обеспечивает ростовые потребности микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio с сохранением их морфологических признаков.The use of this nutrient medium provides the growth needs of the microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio with the preservation of their morphological characteristics.

Для оценки пригодности предлагаемых питательных сред проведено выращивание возбудителей чумы, псевдотуберкулеза и холерного вибриона на жидких и плотных питательных средах. Контрольной была среда, приготовленная на основе гидролизата по Хоттингеру.To assess the suitability of the proposed culture media, plague, pseudotuberculosis and cholera vibrio pathogens were grown on liquid and solid culture media. The control was medium prepared on the basis of the hydrolyzate according to Hottinger.

Заявляемые жидкие питательные среды по примеру 2,3 и 5,6 обеспечивают отчетливо видимый типичный рост чумного микроба штаммов EV линии НИИЭГ и 708 (К-1) при посеве 1000 м.кл./мл - не позднее, чем через 24 ч инкубации при 28°С в виде прозрачного бульона с рыхлым осадком на дне, псевдотуберкулезного микроба И-199 - в виде равномерного помутнения среды при тех же условиях, холерного вибриона биовара eitor 103 - в виде равномерного помутнения среды с пленкой на поверхности при посеве 20 м.кл./мл - не позднее, чем через 6 ч инкубации при 37°С.The inventive liquid nutrient media according to examples 2,3 and 5,6 provide a clearly visible typical growth of the plague microbe of strains of the EV strain NIIEG and 708 (K-1) when sowing 1000 mcl / ml - no later than after 24 hours of incubation at 28 ° C in the form of a clear broth with loose sediment at the bottom, I-199 pseudotuberculosis microbe as a uniform turbidity of the medium under the same conditions, eitor 103 biovar cholera vibrio as a uniform turbidity of the medium with a film on the surface when sowing 20 mcl ./ml - not later than after 6 hours of incubation at 37 ° C.

Эффективность роста на жидких средах определяют по приросту оптической плотности, измеренной на фотоколориметре фотоэлектрическом концентрационном КФК-2 при 670 нм.The growth efficiency in liquid media is determined by the increase in optical density, measured on a photocolorimeter photoelectric concentration KFK-2 at 670 nm.

Чувствительность заявляемых сред определяют по количеству колоний, образованных на агаровых пластинках при посеве 10 и 100 м.кл./мл. На плотной питательной среде по примеру 2 и 4 штамм EV линии НИИЭГ чумного микроба образует через 48 ч инкубации при температуре 28°С сглаженные, со слабой зернистостью, более окрашенные, чем на агаре Хоттингера, колонии. Эти изменения в морфологии колоний не имеют принципиального значения. Штамм И-199 псевдотуберкулезного микроба и штамм 103 холерного вибриона на среде по примеру 2 и 4 дают рост колоний с типичной морфологией. Данные приведены в таблице.The sensitivity of the claimed media is determined by the number of colonies formed on agar plates at sowing 10 and 100 mcl / ml. On a solid nutrient medium according to examples 2 and 4, the strain of the NIIEG strain of the plague microbe forms after 48 hours of incubation at 28 ° C smoothed, weakly granular, more colored colony than on the Hottinger agar. These changes in the morphology of the colonies are not fundamental. The strain I-199 of the pseudotuberculosis microbe and strain 103 of the cholera vibrio on the medium according to examples 2 and 4 give the growth of colonies with typical morphology. The data are given in the table.

Таким образом, реализация изобретения позволяет впервые использовать для ферментативного гидролиза питательных основ питательных сред низкомолекулярный ферментный комплекс холерного вибриона - протеовибрин, выделенный из отхода производства холерной вакцины - ультрафильтрата культуральной жидкости производственного штамма холерного вибриона М 41. По характеру действия протеовибрин может служить в качестве заменителя дорогостоящего нестандартного компонента - поджелудочной железы. Заявляемые питательные среды, приготовленные предложенным способом из ферментолизата пекарских дрожжей или казеина, отличаются простотой изготовления, доступностью сырья и по ростовым характеристикам близки к среде по Хоттингеру для возбудителей чумы, псевдотуберкулеза и холерного вибриона. Кроме того, существенно сокращается время гидролиза белкового сырья и исключается опасность контаминации питательных основ и сред биологическими агентами (микоплазмами, прионами и т.д.).Thus, the implementation of the invention allows for the first time to use for enzymatic hydrolysis of nutrient bases of nutrient media low molecular weight enzyme complex of cholera vibrio - proteovibrin isolated from the waste product of cholera vaccine - ultrafiltrate of the culture fluid of the production strain of cholera vibrio M 41. By the nature of the action of proteovibrin can serve as a substitute for expensive non-standard component - the pancreas. The inventive nutrient medium prepared by the proposed method from a baker's yeast or casein fermentolysate is distinguished by its simplicity of manufacture, availability of raw materials and growth characteristics close to the Hottinger medium for pathogens of plague, pseudotuberculosis and cholera vibrio. In addition, the time of hydrolysis of protein raw materials is significantly reduced and the risk of contamination of nutrient bases and media with biological agents (mycoplasmas, prions, etc.) is eliminated.

Проведенный заявителем анализ уровня техники установил, что аналоги, характеризующиеся совокупностями признаков, тождественных всем признакам заявленных объектов, отсутствуют, следовательно, изобретение соответствует условию "новизна".The analysis of the prior art carried out by the applicant has established that there are no analogues characterized by sets of features identical to all the features of the claimed objects, therefore, the invention meets the condition of “novelty”.

Результаты поиска известных технических решений в данной и смежных областях техники с целью выявления признаков, совпадающих с отличительными от прототипов признаками заявленного изобретения, показали, что они не следуют явным образом из уровня техники.Search results for known technical solutions in this and related fields of technology in order to identify features that match the distinctive features of the claimed invention from the prototypes have shown that they do not follow explicitly from the prior art.

Из определенного заявителем уровня техники не выявлена известность влияния предусматриваемых существенными признаками заявленного изобретения преобразований на достижение указанного технического результата, следовательно, заявленное изобретение соответствует "изобретательскому уровню".From the prior art determined by the applicant, the influence of the transformations provided for by the essential features of the claimed invention on the achievement of the specified technical result has not been revealed, therefore, the claimed invention corresponds to the "inventive step".

В заявке соблюдено требование единства изобретения, поскольку заявляемые объекты: способ получения питательной основы и питательная среда образуют единый изобретательский замысел.The application complied with the requirement of unity of invention, since the claimed objects: a method of obtaining a nutrient base and a nutrient medium form a single inventive concept.

ТаблицаTable Вид возбудителя и штаммType of pathogen and strain Т °С выращи-
ва-ния
T ° C grown
va-niya
Показатели ростаGrowth indicators Питательная средаCulture medium
по примеру 2, 3according to example 2, 3 по примеру 5, 6according to example 5, 6 по Хоттингеру (контроль)Hottinger (control) Yersinia pestis EV линии НИИЭГYersinia pestis EV NIIEG lines 28°С28 ° C Характер роста в бульоне, 24 ч инкубацииGrowth pattern in broth, 24 hr incubation Прозрачный бульон с рыхлым осадкомTransparent broth with loose sediment Посевная доза, при которой есть видимый рост в 5 мл бульонаSowing dose at which there is a visible increase in 5 ml of broth 104 м.кл10 4 m.cl 104 м.кл10 4 m.cl 104 м.кл10 4 m.cl Оптическая плотность взвесей при 670 нм, 24 ч инкубацииThe optical density of the suspensions at 670 nm, 24 hours of incubation 0,51-0,580.51-0.58 0,54-0,570.54-0.57 0,61-0,640.61-0.64 Кол-во колоний при посеве 100 м.кл.The number of colonies when sowing 100 mcl 75-8075-80 92-9592-95 96-9796-97 Морфология, диаметр колоний через 48 чMorphology, colony diameter after 48 hours Сглаженные колонии со слабо выраженной зернистостью, слегка окрашенные, 1,4-1,6 ммSmooth colonies with weak granularity, slightly stained, 1.4-1.6 mm Колонии с кружевной зоной, светлые 1,8-2 ммColonies with lace, light 1.8-2 mm Yersinia pseudo-tuberculosis И-199Yersinia pseudo-tuberculosis I-199 28°С28 ° C Характер роста в бульоне, 24 чGrowth pattern in broth, 24 hours Равномерно мутный бульонEvenly muddy broth Посевная доза, при которой есть видимый рост в 5 мл бульонаSowing dose at which there is a visible increase in 5 ml of broth 103 м.кл10 3 sq.m. 103 м.кл10 3 sq.m. 103 м.кл10 3 sq.m. Оптическая плотность взвесей при 670 нм, 24 ч инкубацииThe optical density of the suspensions at 670 nm, 24 hours of incubation 0,66-0,720.66-0.72 0,61-0,690.61-0.69 0,68-0,750.68-0.75 Кол-во колоний при посеве 100 м.кл.The number of colonies when sowing 100 mcl 80-8280-82 78-8378-83 83-8583-85 Морфология, диаметр колоний через 48 чMorphology, colony diameter after 48 hours Круглые колонии с ровным краем, с голубоватым оттенком в проходящем свете, 0,2-0,5 ммRound colonies with a smooth edge, with a bluish tint in transmitted light, 0.2-0.5 mm Vibrio cholerae биовар eltor 103Vibrio cholerae biovar eltor 103 37°С37 ° C Характер роста в бульоне, 18 ч инкубацииGrowth pattern in broth, 18 hr incubation Равномерно мутный бульон с пленкой на поверхностиEvenly cloudy broth with a film on the surface Посевная доза, при которой есть видимый рост в 5 мл бульонаSowing dose at which there is a visible increase in 5 ml of broth 50 м.кл50 mcl 50 м.кл50 mcl 50 м.кл50 mcl Оптическая плотность взвесей при 670 нм, 24 ч инкубацииThe optical density of the suspensions at 670 nm, 24 hours of incubation 1,08-1,171.08-1.17 1,14-1,191.14-1.19 1,12-1,221.12-1.22 Кол-во колоний при посеве 100 м.кл.The number of colonies when sowing 100 mcl 36-3836-38 34-3934-39 40-4240-42 Морфология, диаметр колоний через 18 чMorphology, colony diameter after 18 hours Круглые полупрозрачные колонии с ровным краем, 2,0-2,5 ммRound translucent colonies with a smooth edge, 2.0-2.5 mm

Claims (5)

1. Способ получения питательной основы, включающий ферментативный гидролиз белкового сырья, отличающийся тем, что гидролиз предварительно подготовленного сырья проводят ферментным комплексом холерного вибриона, выделенным из отхода производства холерной вакцины - ультрафильтрата культуральной жидкости производственного штамма холерного вибриона М 41, при соотношении ферментного комплекса к белку 1:400-1:500, температуре 45°С, рН 7,4±0,2 в течение 20-22 ч.1. A method of obtaining a nutrient base, including enzymatic hydrolysis of protein raw materials, characterized in that the hydrolysis of previously prepared raw materials is carried out by the cholera vibrio enzyme complex isolated from the waste product of cholera vaccine - ultrafiltrate of the culture fluid of the production strain of cholera vibrio M 41, with the ratio of the enzyme complex to protein 1: 400-1: 500, temperature 45 ° C, pH 7.4 ± 0.2 for 20-22 hours 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве белкового сырья используют пекарские дрожжи или казеин.2. The method according to claim 1, characterized in that baking yeast or casein is used as the proteinaceous feed. 3. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio, содержащая питательную основу, дрожжевой автолизат, натрий хлористый, воду, отличающаяся тем, что в качестве питательной основы содержит ферментативный гидролизат казеина, полученный способом по п.1, при следующем соотношении компонентов, г/л:
ферментативный гидролизат казеина 300-330 натрий хлористый 30 дрожжевой автолизат 50 водопроводная вода остальное
3. A nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio, containing a nutrient base, yeast autolysate, sodium chloride, water, characterized in that the nutrient base contains the enzymatic hydrolyzate of casein obtained by the method according to claim 1, in the following ratio of components, g / l:
casein enzymatic hydrolyzate 300-330 sodium chloride thirty yeast autolysate fifty tap water rest
4. Питательная среда для культивирования микроорганизмов родов Yersinia и Vibrio, содержащая питательную основу, натрий хлористый, воду, отличающаяся тем, что в качестве питательной основы содержит ферментативный гидролизат пекарских дрожжей, полученный способом по п.1, при следующем соотношении компонентов, г/л:
ферментативный гидролизат пекарских дрожжей 350-380 натрий хлористый 30 водопроводная вода остальное
4. Nutrient medium for the cultivation of microorganisms of the genera Yersinia and Vibrio, containing a nutrient base, sodium chloride, water, characterized in that the nutrient base contains an enzymatic hydrolyzate of baker's yeast obtained by the method according to claim 1, in the following ratio of components, g / l :
baker's yeast enzymatic hydrolyzate 350-380 sodium chloride thirty tap water rest
5. Питательная среда по пп.3 и 4, отличающаяся тем, что дополнительно содержит агар-агар в количестве 15-20 г/л. 5. Nutrient medium according to claims 3 and 4, characterized in that it additionally contains agar-agar in an amount of 15-20 g / l.
RU2007122604/13A 2007-06-15 2007-06-15 Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation RU2360962C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007122604/13A RU2360962C2 (en) 2007-06-15 2007-06-15 Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007122604/13A RU2360962C2 (en) 2007-06-15 2007-06-15 Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2007122604A RU2007122604A (en) 2008-12-20
RU2360962C2 true RU2360962C2 (en) 2009-07-10

Family

ID=41045967

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007122604/13A RU2360962C2 (en) 2007-06-15 2007-06-15 Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2360962C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2501014C1 (en) * 2012-08-15 2013-12-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Иркутский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" Method for determining lipolytic activity in subcellular fractions of bacteria
RU2511436C2 (en) * 2012-04-12 2014-04-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИЭМ" СО РАМН) Differential diagnostic nutrient medium for identification of yersinia bacterium

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОЗЛОВ Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. - М.: Медгиз, 1950, с.51-79. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2511436C2 (en) * 2012-04-12 2014-04-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИЭМ" СО РАМН) Differential diagnostic nutrient medium for identification of yersinia bacterium
RU2501014C1 (en) * 2012-08-15 2013-12-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Иркутский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" Method for determining lipolytic activity in subcellular fractions of bacteria

Also Published As

Publication number Publication date
RU2007122604A (en) 2008-12-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Das et al. Isolation, purification & mass production of protease enzyme from Bacillus subtilis
JP5583927B2 (en) C. Growth medium without mammalian source components for historicum
CN107488640B (en) Oxidation-resistant low-temperature glucose oxidase and production method and application thereof
CN107488600B (en) Aspergillus niger capable of producing oxidation-resistant low-temperature glucose oxidase with high yield
CN103232963A (en) Collagenase producing strain
RU2360962C2 (en) Nutrient base production method and nutrient base for yersinia and vibrio microorganisms fermentation
RU2580028C1 (en) Heavy nutrient medium for the cultivation of brucella
Pereira et al. Evaluation of protein content and antimicrobial activity of biomass from Spirulina cultivated with residues from the brewing process
CN110734903B (en) Method for producing high-temperature-resistant neutral protease
CN103014109B (en) Method for preparing peptone by hydrolyzing lactalbumin with compound enzymes and peptone obtained by using same
CN116024114B (en) Intestinal bacillus subtilis strain and preparation method and application thereof
RU2407786C1 (en) Nutrient medium for deinococcus radiodurans cultivation
RU2518282C1 (en) Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe
Dasari et al. Optimization and production of protease using Aspergillus cervinus
JP6330237B2 (en) Lactobacillus lactic acid bacteria culture-grade culture medium, Lactobacillus lactic acid bacteria culture method, and Lactobacillus lactic acid bacteria culture production method
RU2169472C2 (en) Method of preparing bacterial ferment for fermented-milk product
JP3957132B2 (en) Separation medium for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria, separation method for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria using the same medium, and method for producing highly clear soy sauce using the same lactic acid bacteria
RU2701343C1 (en) Nutrient medium for detection of lactic acid bacteria (versions)
RU2245362C2 (en) Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain
RU2303066C1 (en) Bacterium strain bacillus licheniformis as alkaline protease producer
Emochone et al. Isolation, Partial Purification and Characterization of Proteases from Aspergillus niger under Solid-State Fermentation
RU2410424C1 (en) Culture medium for growing microorganism
RU2722071C1 (en) Nutrient medium for cultivation of bacillus subtilis vkpm b-12079
CN107699504A (en) A kind of Bradley yeast culture medium and preparation method thereof
CN110760466B (en) Bacillus subtilis for producing high-temperature-resistant neutral protease and application thereof

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20100616