SU1756354A1 - Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 - Google Patents
Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 Download PDFInfo
- Publication number
- SU1756354A1 SU1756354A1 SU894794718A SU4794718A SU1756354A1 SU 1756354 A1 SU1756354 A1 SU 1756354A1 SU 894794718 A SU894794718 A SU 894794718A SU 4794718 A SU4794718 A SU 4794718A SU 1756354 A1 SU1756354 A1 SU 1756354A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- buffer
- sodium sulfate
- mol
- fractions
- chitinase
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к получению ферментов, в частности хитиназ, продуцируемых актиномицетами. Целью изобретени вл етс повышение степени очистки хитиназ. Изобретение заключаетс в том, что хитиназы (XI, XII, XIII) выдел ют непосредственно из культуральной жидкости Actinomyces kurssanovil 93 в две стадии: ли- гандообменной хроматографией на имино- диуксусной агарозе, зар женной ионами двухвалентной меди, путем ступенчатого понижени рН сначала от 6,0-7,5 до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5 (перва и втора фракции соответственно). После этого фракции подвергают дополнительной очистке с помощью гидрофобной хроматографии на бутил-Тойоперле в градиенте концентрации сульфата натри от 1,5-1,0 М до 0, хитиназы вымывают фосфатным буфером, содержащим сульфат натри в концентрации 0,1-0,2 М и не содержащим сульфат натри . Степень очисгки до 25. 2 табл. fe
Description
Изобретение относитс к способам выделени и очистки ферментов хроматографией , конкретно к способам выделени хитинзз из Kurssanovii 93.
Известен способ выделени хитиназ из культуральной жидкости путем сорбции ферментов на хитине с последующим его гидролизом хитиназами. Этот метод приводит к потере более 60% исходной хитиназ- ной активности и не позвол ет разделить ферменты, близкие по сродству к хитину.
Наиболее близким к предолженному по технической сущности и достигнутыми результатам вл етс способ выделени хитиназ из культуральной жидкости Act. Kurssanovii 93 осаждением фермента этиловым спиртом или сульфатом аммони .
Однако, данный способ не позвол ет получать ферменты высокой степени очистки . Активность препарата составл ет только 18-22 ед/мл.
Целью изобретени вл етс повышение степени очистки хитиназ.
Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости Actinomyces Kurssanovii заключаетс в том, что ее нанос т на имино- диуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди и уравновешенную буфером, создающим рН 6,0-7,5, вымывают балластные белки при рН 6,0-7.5. затем последовательно элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижени рН сначала до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, после чего каждую из двух фракций белков
VI
01
о со
СП
Јь
после доведени в них рН до 6,8-/,2, нанос т на бутил-Тойоперл 650 М, уравновешенный буфером, создающим рН 6,8-7,2 и содержащим сульфат натри с концентрацией 1,0-1,5 М, затем примеси первой фракции вымывают раствором сульфата натри с концентрацией, понижающейс с 1,0-1,5 до-0,1 М, а хитиназу вымывают фосфатным буфером с концентрацией 0,01-0,02 М, примеси второй фракции вымывают раствором сульфата натри с концентрацией, понижающейс с 1,0-1,5 до 0,3-0, 4 М, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором сульфата натри с концентрацией 0,1-0,2 М, хитиназу с мол.м, 42 кДа вымывают фосфатным буфером с концентрацией 0,01-0,02 М.
Способ осуществл етс следующим образом .
На колонку с иминодиуксуснокислой агарозой, зар женной ионами двухвалентной меди и уравновешенной буфером с рН 6,0-7,5, содержащим 0,5-1,0 М хлористого натри , нанос т кулътуральную жидкость Actlnomyces Kurssanovli 93 в объеме, равном объему колонки. Элюцию провод т со скоростью 0,8-1,0 мл/мин при ступенчатой смене буферов следующего состава:
А - 0,1 М натрий-ацетатный буфер. рН 6,0-7,5, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри ;
Б - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 4,8-5,6, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри ;
3 - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 3,8-4,5, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри .
При этом на колонке не сорбируютс ft -N-ацетилглюкоззминидаза, протеазы (80% протеазной активности культуральной жидкости) и другие примеси. Белки, обладающие хитиназной активностью по коллоидному хитину, которую оценивают по количеству восстанавливающих Сахаров с помощью 3,5- динитросалициловой кислоты, элюируют путем ступенчатого понижени рН сначала буфером Б, а затем буфером В (перва и втора фракции соответственно).
В каждой из двух фракций белков довод т рН до 6,8-7.2. после чего их нанос т на колонку с бутил-Тойоперлом 650 М, уравновешенным 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 М сульфата натри . Элюцию провод т убывающим градиентом концентрации сульфата натри , задаваемым автоматическим смесителем в течение 2 ч, со скоростью 0,8-1,0 мл/мин. Начальный буфер: 0,1 М фосфатный буфер, рН 6,8-7,2, содержащий 1,0-1,5 М сульфата натри , конечный буфер: 0,01- 0,02 М фосфатный буфер, рН 6,8-7,2.
Примеси первой фракции элюируют в градиенте концентрации сульфата натри , хитиназу (XI) вымывают 0,01-0,02 М фосфатным буфером рН 6,8-7,2, примеси второй
5 фракции вымывают раствором сульфата натри с концентрацией, понижающейс от 1,0-1,5 до 0,3-0,4 М, хитиназу с мол.м. 26 кДа (XI) вымывают раствором сульфата натри с концентрацией 0,1-0,2 М, а хитиназу
0 с мол.м, 42 кДа (XIII) вымывают 0,01-0,02 М фосфатным буфером рН 6,8-7,2, не содержащим сульфата натри .
Рели иминодиуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди,
5 уравновесить буфером, имеющим рН меньше 6,0, и проводить сорбцию белков культуральной жидкости Actlnomyces Kurssanlvii 93 при этом рН, то хитмназа первой фракции не будет задерживатьс на колонке, а будет
0 элюировзтьс вместе с балластными ми, что исключает ее выделение в индивидуальном виде.
Если рН уравновешивающего буфера и буфера А больше 7,5, происходит частична
5 инактиваци ферментов.
Если первую фракцию белков вымывать с иминодиуксуснокислой агарозы при рИ меньше 4,8, не удаетс ее полностью отделить от второй фракции, при рН больше 5,6,
0 хитиназа не элюируетс с сорбента.
Если вторую фракцию белков вымывать с сорбента при рН меньше 3,8, происходит частична инактиваци ферментов, при рЫ больше 4,5, фракци не элюируотс с ими5 нодиуксуснокислой агарозы.
Интервал рН 6,8-7,2 соответствует минимуму потерь хитинззной активности, поэтому данный интервал рН использован дл хроматографической очистки первой и вто0 рой фракций белков на бутил-Тойоперле. Уравновешивающий буфер содержит сульфат натри в концентрации 1,0-1,5 М. При меньшей концентрации наблюдаетс неполна сорбци хиткчаз, при более высокой
5 концентрации - высаливание белков.
Хитиназа, содержаща с в первой фракции, элгаируетс с бутил-Тойоперла в 0,01-0,02 М фосфатном буфере. Если проводить элюцию буфером с концентрацией
0 больше 0,02 М или меньше 0,01 М, не произойдет полного элюировани фермента, По аналогичным соображени м выбран интервал концентрации сульфата натри 0,1- 0,2 М дл элюированил хитинази второй
5 фракции.
Осуществление способа в объеме изложенных признаков позвол ет получать препараты высокоочищенных ферментов, гомогенных по данным электрофореза в полиакриламмдном геле в денатурирующих услови х , имеющих активность; 0,9 ± 0,02 мкМ/мг мин, (XI), 1,59 ± 0,02 мкМ/м мин (XII), 5,13 ± 0,02 мкМ/мг мин (XIII), что превышает активность продукта, получаемого по известному способу в 5, 10 и 32 раза соответственно дл ферментов XI, XII и XIII.
Иминодиуксуснокисла агароза, зар женна ионами двухвалентной меди, ранее использовалась дл разделени ферментов класса нуклеаз, однако она не использовалась дл разделени карбогид- раз, к которым относ тс хитинззы; указанна функци носител не вытекает с очевидностью из его изчстных свойств.
Пример 1. Колонку с иминодиуксус- нокислой агарозой зар жают ионами меди промыванием колонки п тью объемами 0,5 М раствора сульфата меди, уравновешивают 0,1 М натри - ацетатным буфером рН 6,5, содержащим 0,5 М хлористого натри . На колонку (2,0 4,5 см) нанос т 15 мл куль- туральной жидкости. Элюцию провод т со скоростью 0,8 мл/мин при ступенчатой смене буфером следующего состава:
А - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 6,5. содержащий 0,5 М хлористого натри ;
Б - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 5,0, содержащий 0,5 М хлористого натри ,
В - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 4,0, содержащий 0,5 М хлористого натри , объем фракций 4 мл.
Хитиназна активность была обнаружена во фракци х белков, элюирующихс буферами Б и В. Каждую из этих фракций после доведени рН до 7,0 нанос т на колонку с бутил-Тойоперлом 650 М, уравновешенную 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 7,0, содержащим 1,0 М сульфата натри . Размер колонки (2,5 х 7,5 см), нанос т 16 оптических единиц (280 нм). Элюцию провод т линейным градиентом сульфата натри от 1,0 до О М, задаваемым автоматическим смесителем Ультраград, со скоростью 0,8 МЛ/РШН в течение 2 ч. Начальный буфер: 0,1 М натрий-фосфатный, рН 7,0, содержащий 1,0 М сульфата натри ; конечный буфер: 0,02 М натрий-фосфатный, рН 7,0. После
этого колонку промывают конечным буфером .
Пример 2-9. Способ осуществл етс аналогично примеру 1.
Режимы его проведени представлены
в табл.1, активность полученного продукта проведена в табл. 2.
Таким образом, предлагаемый способ
позвол ет повысить степень очистки хитиназ XI, XII, XIII из культуральной жидкости
Actlnomyces Kurssanovll 93 в 5, 10 и 32 раз
соответственно,
ф ормула изобретени
Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости Actlnomyces Kurssanovll 93, отличающийс тем, что, с целью повышени степени очистки хитиназ. куль- туральную жидкость нанос т на иминодиуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди и уравновешенную 0,1 М натрий-ацетатным буфером рН 6,0-7,5, содержащим хлористый натрий, отмывают балластные белки, затем последовательно
элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижени рН сначаладо4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, в каждой из двух фракций довод т рН до 6,8-7,2, после чего нанос т их на бутил-тойоперл 650 М, уравновешенный 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 моль сульфата натри , вымывают примеси первой фракции тем же буфером с сульфатом натри в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5
до 0,1 моль, а элюцию хитиназы осуществл ют убывающим от 1,0-1,5 доО мол. градиентом концентрации сульфата натри в 0,01-0,02 М натрий-фосфатном буфере, при этом примеси второй фракции вымывают
буферным раствором, содержащим сульфат натри в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1.5 до 0,3-0,4 моль, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором, содержащим сульфат натри в концентрации 0,20 ,1 моль, а хитиназу с мол.м. 42 кДа вымывают 0,01-0,02 М натрий-фосфатным буфером.
Таблица 1
Claims (1)
- Формула изобретенияСпособ выделения хитиназ из культуральной жидкости Actinomyces Kurssanovli 93, отличающийся тем, что, с целью повышения степени очистки хитиназ, культуральную жидкость наносят на иминодиуксуснокислую агарозу, заряженную ионами двухвалентной меди й уравновешенную 0,1 М натрий-ацетатным буфером pH 6,0-7,5, содержащим хлористый натрий, отмывают балластные белки., затем последовательно элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижения pH сначала до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, в каждой из двух фракций доводят pH до 6,8-7,2, после чего наносят их на бутил-тойоперл 650 М, уравновешенный 0,1 М натрий-фосфатным буфером pH 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 моль сульфата натрия, вымывают примеси первой фракции тем же буфером с сульфатом натрия в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5 до 0,1 моль, а элюцию хитиназы осуществляют убывающим от 1,0-1,5 доО мол. градиентом концентрации сульфата натрия в 0,01-0,02 М натрий-фосфатном буфере, при этом примеси второй фракции вымывают буферным раствором, содержащим сульфат натрия в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5 до 0,3-0,4 моль, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором, содержащим сульфат натрия в концентрации 0,20,1 моль, а хитиназу с мол.м. 42 кДа вымывают 0,01-0,02 М натрий-фосфатным буфером.Таблица!Показатели для способа по примеруУсловия разделения
-L.J 5 ΕΞΙ J.J ----- pH буфера, уравновешивалщего ИДК-агарозу 6,0 7,5 7,5 5,0 7.0 / 7,0 7,0 7,0 pH элюирования балластных белков 6,0 7,0 7,5 5,0 7,0 7,0 7,0 7,0 оН элюций первой фракции белков, содержа|в(их *хити- . назу ‘ _ . · ’ ♦ 5,0 А.8 М 6,0 5,0 5,0 pH элюции второй фракции белков, содержащих хитиназу 1»,0 3,8 3,9 М 4,0 М 3,0 pH буфера,уравновешивающего бутип-Тойоперл 7,0 6,8 6,9 6,9 7,0 7,0 7,2 7,0 Концентрация,м: сульфата натрия в уравновешивающем буфере 1,0 1,5 1,3 1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 то’же в элюирующем растворе 0,2 0,1 0,2 0,2 0.2 0,2 0,2 0,2 фосфатного буфера 0,02 0,01 0,015 0,02 0,02 0,02 0,02 0,0 Таблица2Способ по примеруАктивность,MkMG/cNAc___ (мин-мгЛс^ПримечаниеПредлагаемый1 X 1 -92, X II - 160, X III -515 2 V Λ I - 09, X II - 159, X III-510 3 X 1-90, w Λ II - 160, X III- 512 4 X I - 80, X 11-158, X III-513 '5ΊИзвестный 18-22Первая фракция не отделяется от балластных белковПервая й вторая фракции не разделяютсяПервая и вторая фракции белков не разделяютсяЧастичная инактивация фермен-. товПлохое разделение первой и второй фракции белковКонцентрация белка 1 мг/мл
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894794718A SU1756354A1 (ru) | 1989-09-26 | 1989-09-26 | Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894794718A SU1756354A1 (ru) | 1989-09-26 | 1989-09-26 | Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1756354A1 true SU1756354A1 (ru) | 1992-08-23 |
Family
ID=21497958
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894794718A SU1756354A1 (ru) | 1989-09-26 | 1989-09-26 | Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1756354A1 (ru) |
-
1989
- 1989-09-26 SU SU894794718A patent/SU1756354A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Roberts R.L., Cabib E. Serratla marcescens chitinase: one-step purification and useforthe determination of chifin. -Anal. Blochem., 1982, 127, p, 402-412. Авторское свидетельство СССР № 413189, кл. С 12 N 9/26, 1973. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Steers et al. | The purification of β-galactosidase from Escherichia coli by affinity chromatography | |
Dean et al. | Ethylene biosynthesis-inducing xylanase: II. Purification and physical characterization of the enzyme produced by Trichoderma viride | |
EP0140386B1 (en) | Method for the purification of lpf-ha | |
US5346993A (en) | Isolated, large latent complexes of TGF-β2 and TGF-β3, and new binding protein for latent form TGF-β1, TGF-β2 and TGF-β3 LTBP-2 | |
KR890001927B1 (ko) | 섬유질 헤마글루티닌의 정제방법 | |
SU1523046A3 (ru) | Способ очистки человеческого @ -интерферона | |
FI88308C (fi) | Foerfarande foer rengoering av tpa fraon raoapreparat | |
Nakayama et al. | Use of a monoclonal antibody to purify the tetrodotoxin binding component from the electroplax of Electrophorus electricus. | |
US20230143163A1 (en) | Protein a chromatography purification of an antibody | |
US4743551A (en) | Purification of microbial rennet from Mucor miehei | |
SU1756354A1 (ru) | Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 | |
Boyer et al. | Adsorption equilibrium of proteins on a dye-ligand adsorbent | |
RU2186849C2 (ru) | Способ очистки тромбиноподобной протеазы из змеиного яда | |
US4985362A (en) | Process of purifying tPA | |
CN108101982A (zh) | 一种单克隆抗体的纯化方法 | |
JP4565230B2 (ja) | グリコシル化および非グリコシル化タンパク質の分離法 | |
Pogell et al. | [32] Specific elution with substrate | |
Kessner et al. | Isolation of human urinary protease inhibitor by single-step affinity chromatography | |
US5698104A (en) | Purification process for hirudin using affinity chromatography | |
CN1392878A (zh) | 钙离子结合蛋白的提纯方法 | |
Kunio et al. | Separation of human renin substrate from renin and a major contaminating albumin using a concanavalin A-Sepharose column | |
RU1426089C (ru) | Способ очистки щелочной фосфатазы | |
US4308204A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
Yasmin et al. | Purification of placental alkaline phosphatase by sulphate-mediated chromatography on Cibacron Blue 3G-A | |
DE2309280A1 (de) | Verfahren zur herstellung von reiner alpha-amylase durch affinitaetschromatographie |