SU1756354A1 - Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 - Google Patents

Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 Download PDF

Info

Publication number
SU1756354A1
SU1756354A1 SU894794718A SU4794718A SU1756354A1 SU 1756354 A1 SU1756354 A1 SU 1756354A1 SU 894794718 A SU894794718 A SU 894794718A SU 4794718 A SU4794718 A SU 4794718A SU 1756354 A1 SU1756354 A1 SU 1756354A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
buffer
sodium sulfate
mol
fractions
chitinase
Prior art date
Application number
SU894794718A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Алексеевна Стояченко
Валерий Петрович Варламов
Вадим Александрович Даванков
Нина Яковлевна Кобзева
Наталья Андреевна Тиунова
Алексей Михайлович Безбородов
Original Assignee
Институт элементоорганических соединений им.А.Н.Несмеянова
Институт биохимии им.А.Н.Баха
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт элементоорганических соединений им.А.Н.Несмеянова, Институт биохимии им.А.Н.Баха filed Critical Институт элементоорганических соединений им.А.Н.Несмеянова
Priority to SU894794718A priority Critical patent/SU1756354A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1756354A1 publication Critical patent/SU1756354A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к получению ферментов, в частности хитиназ, продуцируемых актиномицетами. Целью изобретени   вл етс  повышение степени очистки хитиназ. Изобретение заключаетс  в том, что хитиназы (XI, XII, XIII) выдел ют непосредственно из культуральной жидкости Actinomyces kurssanovil 93 в две стадии: ли- гандообменной хроматографией на имино- диуксусной агарозе, зар женной ионами двухвалентной меди, путем ступенчатого понижени  рН сначала от 6,0-7,5 до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5 (перва  и втора  фракции соответственно). После этого фракции подвергают дополнительной очистке с помощью гидрофобной хроматографии на бутил-Тойоперле в градиенте концентрации сульфата натри  от 1,5-1,0 М до 0, хитиназы вымывают фосфатным буфером, содержащим сульфат натри  в концентрации 0,1-0,2 М и не содержащим сульфат натри . Степень очисгки до 25. 2 табл. fe

Description

Изобретение относитс  к способам выделени  и очистки ферментов хроматографией , конкретно к способам выделени  хитинзз из Kurssanovii 93.
Известен способ выделени  хитиназ из культуральной жидкости путем сорбции ферментов на хитине с последующим его гидролизом хитиназами. Этот метод приводит к потере более 60% исходной хитиназ- ной активности и не позвол ет разделить ферменты, близкие по сродству к хитину.
Наиболее близким к предолженному по технической сущности и достигнутыми результатам  вл етс  способ выделени  хитиназ из культуральной жидкости Act. Kurssanovii 93 осаждением фермента этиловым спиртом или сульфатом аммони .
Однако, данный способ не позвол ет получать ферменты высокой степени очистки . Активность препарата составл ет только 18-22 ед/мл.
Целью изобретени   вл етс  повышение степени очистки хитиназ.
Способ выделени  хитиназ из культуральной жидкости Actinomyces Kurssanovii заключаетс  в том, что ее нанос т на имино- диуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди и уравновешенную буфером, создающим рН 6,0-7,5, вымывают балластные белки при рН 6,0-7.5. затем последовательно элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижени  рН сначала до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, после чего каждую из двух фракций белков
VI
01
о со
СП
Јь
после доведени  в них рН до 6,8-/,2, нанос т на бутил-Тойоперл 650 М, уравновешенный буфером, создающим рН 6,8-7,2 и содержащим сульфат натри  с концентрацией 1,0-1,5 М, затем примеси первой фракции вымывают раствором сульфата натри  с концентрацией, понижающейс  с 1,0-1,5 до-0,1 М, а хитиназу вымывают фосфатным буфером с концентрацией 0,01-0,02 М, примеси второй фракции вымывают раствором сульфата натри  с концентрацией, понижающейс  с 1,0-1,5 до 0,3-0, 4 М, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором сульфата натри  с концентрацией 0,1-0,2 М, хитиназу с мол.м, 42 кДа вымывают фосфатным буфером с концентрацией 0,01-0,02 М.
Способ осуществл етс  следующим образом .
На колонку с иминодиуксуснокислой агарозой, зар женной ионами двухвалентной меди и уравновешенной буфером с рН 6,0-7,5, содержащим 0,5-1,0 М хлористого натри , нанос т кулътуральную жидкость Actlnomyces Kurssanovli 93 в объеме, равном объему колонки. Элюцию провод т со скоростью 0,8-1,0 мл/мин при ступенчатой смене буферов следующего состава:
А - 0,1 М натрий-ацетатный буфер. рН 6,0-7,5, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри ;
Б - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 4,8-5,6, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри ;
3 - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 3,8-4,5, содержащий 0,5-1,0 М хлористого натри .
При этом на колонке не сорбируютс  ft -N-ацетилглюкоззминидаза, протеазы (80% протеазной активности культуральной жидкости) и другие примеси. Белки, обладающие хитиназной активностью по коллоидному хитину, которую оценивают по количеству восстанавливающих Сахаров с помощью 3,5- динитросалициловой кислоты, элюируют путем ступенчатого понижени  рН сначала буфером Б, а затем буфером В (перва  и втора  фракции соответственно).
В каждой из двух фракций белков довод т рН до 6,8-7.2. после чего их нанос т на колонку с бутил-Тойоперлом 650 М, уравновешенным 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 М сульфата натри . Элюцию провод т убывающим градиентом концентрации сульфата натри , задаваемым автоматическим смесителем в течение 2 ч, со скоростью 0,8-1,0 мл/мин. Начальный буфер: 0,1 М фосфатный буфер, рН 6,8-7,2, содержащий 1,0-1,5 М сульфата натри , конечный буфер: 0,01- 0,02 М фосфатный буфер, рН 6,8-7,2.
Примеси первой фракции элюируют в градиенте концентрации сульфата натри , хитиназу (XI) вымывают 0,01-0,02 М фосфатным буфером рН 6,8-7,2, примеси второй
5 фракции вымывают раствором сульфата натри  с концентрацией, понижающейс  от 1,0-1,5 до 0,3-0,4 М, хитиназу с мол.м. 26 кДа (XI) вымывают раствором сульфата натри  с концентрацией 0,1-0,2 М, а хитиназу
0 с мол.м, 42 кДа (XIII) вымывают 0,01-0,02 М фосфатным буфером рН 6,8-7,2, не содержащим сульфата натри .
Рели иминодиуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди,
5 уравновесить буфером, имеющим рН меньше 6,0, и проводить сорбцию белков культуральной жидкости Actlnomyces Kurssanlvii 93 при этом рН, то хитмназа первой фракции не будет задерживатьс  на колонке, а будет
0 элюировзтьс  вместе с балластными ми, что исключает ее выделение в индивидуальном виде.
Если рН уравновешивающего буфера и буфера А больше 7,5, происходит частична 
5 инактиваци  ферментов.
Если первую фракцию белков вымывать с иминодиуксуснокислой агарозы при рИ меньше 4,8, не удаетс  ее полностью отделить от второй фракции, при рН больше 5,6,
0 хитиназа не элюируетс  с сорбента.
Если вторую фракцию белков вымывать с сорбента при рН меньше 3,8, происходит частична  инактиваци  ферментов, при рЫ больше 4,5, фракци  не элюируотс  с ими5 нодиуксуснокислой агарозы.
Интервал рН 6,8-7,2 соответствует минимуму потерь хитинззной активности, поэтому данный интервал рН использован дл  хроматографической очистки первой и вто0 рой фракций белков на бутил-Тойоперле. Уравновешивающий буфер содержит сульфат натри  в концентрации 1,0-1,5 М. При меньшей концентрации наблюдаетс  неполна  сорбци  хиткчаз, при более высокой
5 концентрации - высаливание белков.
Хитиназа, содержаща с  в первой фракции, элгаируетс  с бутил-Тойоперла в 0,01-0,02 М фосфатном буфере. Если проводить элюцию буфером с концентрацией
0 больше 0,02 М или меньше 0,01 М, не произойдет полного элюировани  фермента, По аналогичным соображени м выбран интервал концентрации сульфата натри  0,1- 0,2 М дл  элюированил хитинази второй
5 фракции.
Осуществление способа в объеме изложенных признаков позвол ет получать препараты высокоочищенных ферментов, гомогенных по данным электрофореза в полиакриламмдном геле в денатурирующих услови х , имеющих активность; 0,9 ± 0,02 мкМ/мг мин, (XI), 1,59 ± 0,02 мкМ/м мин (XII), 5,13 ± 0,02 мкМ/мг мин (XIII), что превышает активность продукта, получаемого по известному способу в 5, 10 и 32 раза соответственно дл  ферментов XI, XII и XIII.
Иминодиуксуснокисла  агароза, зар женна  ионами двухвалентной меди, ранее использовалась дл  разделени  ферментов класса нуклеаз, однако она не использовалась дл  разделени  карбогид- раз, к которым относ тс  хитинззы; указанна  функци  носител  не вытекает с очевидностью из его изчстных свойств.
Пример 1. Колонку с иминодиуксус- нокислой агарозой зар жают ионами меди промыванием колонки п тью объемами 0,5 М раствора сульфата меди, уравновешивают 0,1 М натри  - ацетатным буфером рН 6,5, содержащим 0,5 М хлористого натри . На колонку (2,0 4,5 см) нанос т 15 мл куль- туральной жидкости. Элюцию провод т со скоростью 0,8 мл/мин при ступенчатой смене буфером следующего состава:
А - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 6,5. содержащий 0,5 М хлористого натри ;
Б - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 5,0, содержащий 0,5 М хлористого натри ,
В - 0,1 М натрий-ацетатный буфер, рН 4,0, содержащий 0,5 М хлористого натри , объем фракций 4 мл.
Хитиназна  активность была обнаружена во фракци х белков, элюирующихс  буферами Б и В. Каждую из этих фракций после доведени  рН до 7,0 нанос т на колонку с бутил-Тойоперлом 650 М, уравновешенную 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 7,0, содержащим 1,0 М сульфата натри . Размер колонки (2,5 х 7,5 см), нанос т 16 оптических единиц (280 нм). Элюцию провод т линейным градиентом сульфата натри  от 1,0 до О М, задаваемым автоматическим смесителем Ультраград, со скоростью 0,8 МЛ/РШН в течение 2 ч. Начальный буфер: 0,1 М натрий-фосфатный, рН 7,0, содержащий 1,0 М сульфата натри ; конечный буфер: 0,02 М натрий-фосфатный, рН 7,0. После
этого колонку промывают конечным буфером .
Пример 2-9. Способ осуществл етс  аналогично примеру 1.
Режимы его проведени  представлены
в табл.1, активность полученного продукта проведена в табл. 2.
Таким образом, предлагаемый способ
позвол ет повысить степень очистки хитиназ XI, XII, XIII из культуральной жидкости
Actlnomyces Kurssanovll 93 в 5, 10 и 32 раз 
соответственно,
ф ормула изобретени 
Способ выделени  хитиназ из культуральной жидкости Actlnomyces Kurssanovll 93, отличающийс  тем, что, с целью повышени  степени очистки хитиназ. куль- туральную жидкость нанос т на иминодиуксуснокислую агарозу, зар женную ионами двухвалентной меди и уравновешенную 0,1 М натрий-ацетатным буфером рН 6,0-7,5, содержащим хлористый натрий, отмывают балластные белки, затем последовательно
элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижени  рН сначаладо4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, в каждой из двух фракций довод т рН до 6,8-7,2, после чего нанос т их на бутил-тойоперл 650 М, уравновешенный 0,1 М натрий-фосфатным буфером рН 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 моль сульфата натри , вымывают примеси первой фракции тем же буфером с сульфатом натри  в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5
до 0,1 моль, а элюцию хитиназы осуществл ют убывающим от 1,0-1,5 доО мол. градиентом концентрации сульфата натри  в 0,01-0,02 М натрий-фосфатном буфере, при этом примеси второй фракции вымывают
буферным раствором, содержащим сульфат натри  в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1.5 до 0,3-0,4 моль, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором, содержащим сульфат натри  в концентрации 0,20 ,1 моль, а хитиназу с мол.м. 42 кДа вымывают 0,01-0,02 М натрий-фосфатным буфером.
Таблица 1

Claims (1)

  1. Формула изобретения
    Способ выделения хитиназ из культуральной жидкости Actinomyces Kurssanovli 93, отличающийся тем, что, с целью повышения степени очистки хитиназ, культуральную жидкость наносят на иминодиуксуснокислую агарозу, заряженную ионами двухвалентной меди й уравновешенную 0,1 М натрий-ацетатным буфером pH 6,0-7,5, содержащим хлористый натрий, отмывают балластные белки., затем последовательно элюируют две фракции белков путем ступенчатого понижения pH сначала до 4,8-5,6, затем до 3,8-4,5, в каждой из двух фракций доводят pH до 6,8-7,2, после чего наносят их на бутил-тойоперл 650 М, уравновешенный 0,1 М натрий-фосфатным буфером pH 6,8-7,2, содержащим 1,0-1,5 моль сульфата натрия, вымывают примеси первой фракции тем же буфером с сульфатом натрия в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5 до 0,1 моль, а элюцию хитиназы осуществляют убывающим от 1,0-1,5 доО мол. градиентом концентрации сульфата натрия в 0,01-0,02 М натрий-фосфатном буфере, при этом примеси второй фракции вымывают буферным раствором, содержащим сульфат натрия в убывающем градиенте концентрации от 1,0-1,5 до 0,3-0,4 моль, хитиназу с мол.м. 26 кДа вымывают раствором, содержащим сульфат натрия в концентрации 0,20,1 моль, а хитиназу с мол.м. 42 кДа вымывают 0,01-0,02 М натрий-фосфатным буфером.
    Таблица!
    Показатели для способа по примеру
    Условия разделения
    -L.J 5 ΕΞΙ J.J ----- pH буфера, уравновешивалщего ИДК-агарозу 6,0 7,5 7,5 5,0 7.0 / 7,0 7,0 7,0 pH элюирования балластных белков 6,0 7,0 7,5 5,0 7,0 7,0 7,0 7,0 оН элюций первой фракции белков, содержа|в(их *хити- . назу ‘ _ . · ’ ♦ 5,0 А.8 М 6,0 5,0 5,0 pH элюции второй фракции белков, содержащих хитиназу 1»,0 3,8 3,9 М 4,0 М 3,0 pH буфера,уравновешивающего бутип-Тойоперл 7,0 6,8 6,9 6,9 7,0 7,0 7,2 7,0 Концентрация,м: сульфата натрия в уравновешивающем буфере 1,0 1,5 1,3 1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 то’же в элюирующем растворе 0,2 0,1 0,2 0,2 0.2 0,2 0,2 0,2 фосфатного буфера 0,02 0,01 0,015 0,02 0,02 0,02 0,02 0,0
    Таблица2
    Способ по примеру
    Активность,
    MkMG/cNAc___ (мин-мгЛс^
    Примечание
    Предлагаемый
    1 X 1 -92, X II - 160, X III -515 2 V Λ I - 09, X II - 159, X III-510 3 X 1-90, w Λ II - 160, X III- 512 4 X I - 80, X 11-158, X III-513
    '5
    Ί
    Известный 18-22
    Первая фракция не отделяется от балластных белков
    Первая й вторая фракции не разделяются
    Первая и вторая фракции белков не разделяются
    Частичная инактивация фермен-. тов
    Плохое разделение первой и второй фракции белков
    Концентрация белка 1 мг/мл
SU894794718A 1989-09-26 1989-09-26 Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93 SU1756354A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894794718A SU1756354A1 (ru) 1989-09-26 1989-09-26 Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894794718A SU1756354A1 (ru) 1989-09-26 1989-09-26 Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1756354A1 true SU1756354A1 (ru) 1992-08-23

Family

ID=21497958

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894794718A SU1756354A1 (ru) 1989-09-26 1989-09-26 Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1756354A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Roberts R.L., Cabib E. Serratla marcescens chitinase: one-step purification and useforthe determination of chifin. -Anal. Blochem., 1982, 127, p, 402-412. Авторское свидетельство СССР № 413189, кл. С 12 N 9/26, 1973. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Steers et al. The purification of β-galactosidase from Escherichia coli by affinity chromatography
Dean et al. Ethylene biosynthesis-inducing xylanase: II. Purification and physical characterization of the enzyme produced by Trichoderma viride
EP0140386B1 (en) Method for the purification of lpf-ha
US5346993A (en) Isolated, large latent complexes of TGF-β2 and TGF-β3, and new binding protein for latent form TGF-β1, TGF-β2 and TGF-β3 LTBP-2
KR890001927B1 (ko) 섬유질 헤마글루티닌의 정제방법
SU1523046A3 (ru) Способ очистки человеческого @ -интерферона
FI88308C (fi) Foerfarande foer rengoering av tpa fraon raoapreparat
Nakayama et al. Use of a monoclonal antibody to purify the tetrodotoxin binding component from the electroplax of Electrophorus electricus.
US20230143163A1 (en) Protein a chromatography purification of an antibody
US4743551A (en) Purification of microbial rennet from Mucor miehei
SU1756354A1 (ru) Способ выделени хитиназ из культуральной жидкости АстINомYсеS KURSSaNoVII 93
Boyer et al. Adsorption equilibrium of proteins on a dye-ligand adsorbent
RU2186849C2 (ru) Способ очистки тромбиноподобной протеазы из змеиного яда
US4985362A (en) Process of purifying tPA
CN108101982A (zh) 一种单克隆抗体的纯化方法
JP4565230B2 (ja) グリコシル化および非グリコシル化タンパク質の分離法
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
Kessner et al. Isolation of human urinary protease inhibitor by single-step affinity chromatography
US5698104A (en) Purification process for hirudin using affinity chromatography
CN1392878A (zh) 钙离子结合蛋白的提纯方法
Kunio et al. Separation of human renin substrate from renin and a major contaminating albumin using a concanavalin A-Sepharose column
RU1426089C (ru) Способ очистки щелочной фосфатазы
US4308204A (en) Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma
Yasmin et al. Purification of placental alkaline phosphatase by sulphate-mediated chromatography on Cibacron Blue 3G-A
DE2309280A1 (de) Verfahren zur herstellung von reiner alpha-amylase durch affinitaetschromatographie