RU1426089C - Способ очистки щелочной фосфатазы - Google Patents

Способ очистки щелочной фосфатазы

Info

Publication number
RU1426089C
RU1426089C SU864152924A SU4152924A RU1426089C RU 1426089 C RU1426089 C RU 1426089C SU 864152924 A SU864152924 A SU 864152924A SU 4152924 A SU4152924 A SU 4152924A RU 1426089 C RU1426089 C RU 1426089C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
alkaline phosphatase
carried out
activity
sorbent
preparation
Prior art date
Application number
SU864152924A
Other languages
English (en)
Inventor
И.Ю. Сахаров
И.Е. Макарова
Э.А. Аренс
Original Assignee
Научно-исследовательская лаборатория биологически активных веществ гидробионтов
Научно-производственное объединение "Биолар"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательская лаборатория биологически активных веществ гидробионтов, Научно-производственное объединение "Биолар" filed Critical Научно-исследовательская лаборатория биологически активных веществ гидробионтов
Priority to SU864152924A priority Critical patent/RU1426089C/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU1426089C publication Critical patent/RU1426089C/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии , а именно к препаративной биохимии. Цель изобретени  - повышение удельной активности щелочной фосфатазы. Способ заключаетс  вхроматографической очистке, причем в качестве сорбента используют фосфоцеллюлозу, сорбцию провод т при рН 5,3-6,5, а элюцмю - 8-12 мМ Na2HP04. Выход продукта по активности 80-84%, а удельна  активность 750-770 ед./мг белка.

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии , а именно к препаративной биохимии, и используетс  дл  получени  очищенной щелочной фосфатазы животного происхождени , котора  находит применение в генной инженерии, иммуногистохимических процедурах и иммуноферментном анализе, научно-исследовательской работе.
Цель изобретени  - повышение удельной активности щелочной фосфатазы.
Способ заключаетс  в том. что очистку препарата щелочной фосфатазы провод т на ионообменном сорбенте, причем в качестве сорбента используют фосфоцеллюлозу . сорбцию провод т при рН 5.3-6.5, а элюцию - 8-12 мМ Na2HP04. Удельна  активность полученной фосфатазы достигает 750-770 ед./мг белка против 70-194 ед./мг по известным способам.
Пример 1. 15 мг препарата щелочной фосфатазы. выделенной из тонкого кишечника тюлен  (20 ед./мг белка), раствор ют в 10 мл 10 мМ фосфатного буфера рН 5.3, содержащего 1 мМ хлористого магни . Раствор фермента нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой (26x280 мги), уравновешенной буфером А, и отмывают тем же буфером до оптической плотности раствора при 280 нм, равной 0,03, Фермент элюируют 10 мМ Na2HPO/5. Ионообменную хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции 30 мл/ч. Фракции, содержащие ферментную активность объедин ют и вычисл ют удельную активность полученного препарата щелочной фосфатазы, котора  равна 750 ед,/мг белка. Выход по активности 80%.
Пример 2,15мг препарата щелочной фосфатазы тюлен  (120 ед,/мг белка) раствор ют в 10 мл 10 мМ фосфатного буфера рН 5,8, содержащего 1 мМ хлористого магни . Раствор фермента нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой (26x280 мм), уравновешенной буфером А, и отмывают ионообмен- никтем же буфером до А280 0,03, Фермент элюируют 10 мМ NaHPG. Ионообменную хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции 30 мл/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и вычисл ют активность полученного препарата щелочной фосфатазы. Удельна  ;1ктивLO
ю
Ю
иость равна 770 ед./мг белка. Выход по активности 84%.
Пример 3. 15 мг препарата щелочной фосфатазы тюлен  (120 ед./мг белка) раствор ют в 10 мл 10 мМ фосфатного буфера рН G.5, содержащего 1 мМ хлористого магни , Раствор фермента нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой (26x280 мм), уравновешенной буфером А, и отмывают ионообмен- ник тем же буфером до А280 0,03. Фермент элюируют 10 мМ Na2HP04. Ионообменную хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции 30 мл/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и. вычисл ют активность полученного препарата щелочной фосфатазы. Удельна  активность равна 755 ед,/мг белка, по активности 80%,
Верхн   граница рН обусловлена тем, что при рН выше 6,5 сорбируемость щелочной фосфатазы на фосфоцеллюлозе резко уменьщаетс , что используетс  при элюции.
Нижн   граница рН обусловлена тем, что при рН ниже 5,3 наблюдаетс  быстра  денатураци  щелочной фосфатазы.
П р и м е р 4. 15 мг препарата щелочной фосфатазы тюлен  (НПО Биолар) раствор ют в 1-0 мл 10 мМ фосфатного буфера, рН 5,8 содержащего 1 мМ (буфер А). Раствор фермента нанос т на колонку с фосфо- ;.;,е/ш1олозой (26x280 мм), уравновешенной буферам 1/1, и отмувэтт тем же буфером до АЗШ, равной 0,03. Фермент элюируют 8 мМ Ма2НР04. Ионообменную хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюцми 30 мл/ч. Фракции, содержащие фермеитатив- К УЮ актмзность, объедин ют и аычис/т ют 3.:т лвность полученного препарата щелочной фосфзтаэы, котора  равна 760 ед./мг балка,
Пример 5. 15 мг препарата щелочной фосфатазы тюлен  (НПО Биолар) раствор ют в 10 10 мМ фосфатного буфера рН
5
0
0
0
5
0
5
5,8, содержащего 1 мМ MgClj, Раствор фермента нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой (26x280 мм), уравновешенной буфером А, и отмывают тем же буфером до А280, равной 0,03. Фермент элюируют 12 мМ NaaHPO/j, Ионообменную хроматографию провод т при . Скорость элюции 30 мл/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и вычисл ют активность полученного препарата щелочкой фосфатазы, котора  равна 745 ед./мг белка.
При использовании растворов NaaHPO i концентрацией ниже 8 мМ резко ухудшаетс  элюци  щелочной фосфатазы с сорбента. Растворы iNJa2HPO i концентрацией выше 12 мМ элюируют не только щелочную фосфатз- зу, но и р д балластных белков, что приводит к понижению удельной активности целевого продукта.
При использовании вместо фосфата натри  растворов NaCt вплоть до концентрации 0,5 М не наблюдаетс  какой-либо десорбции фермента.
Изобретение поэвол ет создать простой и легко масштабируемый процесс выделени  и очистки щелочной фосфатазы при небольших затратах материалов, рабочего и технологического времени и сырь .

Claims (1)

  1. Формула изобретени  Способ очистки щелочной фосфатззы, зключающий адсорбцию препарата щелочной фосфатазы на ионообг-ченном сорбенте и злюцию целевого продукта водным буферным раствором, отличающийс  тем, что, с целью повышени  удельной активности целевого продукта, в качестве ионообменного сорбента используют фос- фоцеллюлозу, адсорбцию провод т при рН 5,3-6,5, а элюцию осуществл ют 8-12 мМ раствором натри  фосфорнокислого одно- замещенного.
SU864152924A 1986-11-28 1986-11-28 Способ очистки щелочной фосфатазы RU1426089C (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864152924A RU1426089C (ru) 1986-11-28 1986-11-28 Способ очистки щелочной фосфатазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864152924A RU1426089C (ru) 1986-11-28 1986-11-28 Способ очистки щелочной фосфатазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1426089C true RU1426089C (ru) 1992-11-07

Family

ID=21269680

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864152924A RU1426089C (ru) 1986-11-28 1986-11-28 Способ очистки щелочной фосфатазы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1426089C (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Engstrom L, Biochim, Blophls,, Acta, 1961.V. 52, p, 36. Авторское свидетельство СССР Ns 1218677, кл. С 12 N 9/16. 1984. 2 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Colowick [11] Separation of proteins by use of adsorbents
Seegers et al. Further studies on the purification of thrombin
US7351801B2 (en) Method, use and kit for separating albumin from contaminants in a liquid
CA2034826A1 (en) Process for the production of thrombin and high purity thrombin preparations thereby obtained
Danishefsky et al. Synthesis of heparin-sepharoses and their binding with thrombin and antithrombin-heparin cofactor
US4259447A (en) Process for the production of urokinase in pure condition
Andersson Recognition of phosphate groups by immobilized aluminium (III) ions
HU219828B (hu) Eljárás K-vitamin-függő proteinek izolálására és tisztítására
RU1426089C (ru) Способ очистки щелочной фосфатазы
Lascu et al. Rapid large-scale purification of pig heart nucleoside diphosphate kinase by affinity chromatography on Cibacron Blue 3G-A Sepharose
RU2186849C2 (ru) Способ очистки тромбиноподобной протеазы из змеиного яда
JPH0466559B2 (ru)
US4160697A (en) Method for purification of crude urokinase
Wood et al. The affinity chromatography of transketolase
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
Kothari Fractionation of DNA on a metal ion equilibrated cation exchanger: I. Chromatographic profiles of DNA on an IR-120 Al3+ column
US4308204A (en) Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma
RU2036236C1 (ru) Способ очистки щелочной фосфатазы из тонкого кишечника тюленя
RU1554377C (ru) Способ очистки щелочной фосфатазы
JPH0260316B2 (ru)
FI65629C (fi) Foerfarande foer isolering av mb-kreatinkinas och testfoerpackning foer detta aendamaol
JPS61224996A (ja) マウスインタ−フエロンの精製法
SU874754A1 (ru) Способ очистки дрожжевой гексокиназы
JPS61181395A (ja) マウスインタ−フエロンの精製法
JPH0795894A (ja) リポコルチンの精製方法