SU1523570A1 - Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи - Google Patents
Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи Download PDFInfo
- Publication number
- SU1523570A1 SU1523570A1 SU874344215A SU4344215A SU1523570A1 SU 1523570 A1 SU1523570 A1 SU 1523570A1 SU 874344215 A SU874344215 A SU 874344215A SU 4344215 A SU4344215 A SU 4344215A SU 1523570 A1 SU1523570 A1 SU 1523570A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- tris
- buffer
- ammonium sulfate
- protein
- cpa
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к способу получени ферментного препарата карбоксипептидазы A (КПА) из поджелудочной железы свиньи, примен емого в белковой химии дл структурных исследований. Цель изобретени - повышение активности целевого продукта и упрощение процесса. КПА получают экстракцией сырь 0,005 М трис-HCL буфером при рН 7,5-7,6. Из полученного экстракта сульфатом аммони при насыщении 0,64-0,66 и рН 7,5-7,6 выдел ют белковую фракцию, содержащую целевой продукт. Очистку КПА осуществл ют двукратной ионообменной хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе, уравновешенной 0,005 М трис-HCL буфером при рН 7,5-7,6. Кристаллизуют из воды. Удельна активность КПА 29,7-32,5 ед/мг белка. Выход по активности 31,5-32%.
Description
Изобретение относитс к способам получени ферментных препаратов, а именно карбоксипептидазы А.
Цель изобретени - повышение активности целевого продукта и упрощение процесса.
Изобретение заключаетс в том, что экстракцию сырь (ацетоновый порошок поджелудочной железы свиньи) провод т 0,005 М трис-НС буфером при рН 7,5-7,6, из полученного экстракта сульфатом аммони при насыщении 0,64-0,66 и рН 7,5-7,6 выдел ют белковую фракцию, содержащую целевой продукт, а очистку КПА осуществл ют двукратной ионообменной хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе, уразновешен- ной 0,005 М трис-НС буфером при рН
7,5-7,6,и кристаллизуют фермент из воды.
Пример 1.0,7 кг свежезамороженных поджелудочных желез свиньи разрезают на кусочки 4-6 мм и оставл ют дл автолиза при комнатной температуре на 24 ч. Полученную массу обрабатывают 4 раза ацетоном, затем смесью ацетона и эфира (в соотношении 1:1) и эфиром при интенсивном перемешивании в течение 1 мин, высушивают при комнатной температуре. Полумают l40 г ацетонового порошка.
Ацетоновый порошок перед экстракцией размельчают в лабораторной мельнице . l40 г ацетонового порошка размешивают с 1400 мл 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,5 в течение 45 мин на
СП
to
оэ ел
магнитной мешалке при комнатной температуре . Осадок отдел ют центрифугированием при 6000 об/мин в течение 60 мин при C. Получают 1300 мл SKCTpaKta. рН экстракта довод т до рН 7,5 с помощью 1 М раствбра NaOH. К экстракту по порци м добавл ют сульфат аммони до D,6V насыщени j п6ддер)кива рН 7,5 Перемешивают 30 мин. -Выпайшуюбелкойую фракцию отдел ют центрифугированием при
6000 об/мин в течение tO мин и 3° С, суспендируют в ЗбО мл 0,05 И трис-ttCl буфера и подвергают диализу против 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,5 до отсутстви сульфата аммони . Осадрк, выпавший во врем диализа, отдел ют центрифугированием в течение 30 мин при 6000 об /мин и | С и отбрасывают. Центрифугат используют дл дальнейшей очистки.V .- ;
;.;/.,.. -, . .--
Хроматографи проводитс при С. На колонку размером .6x25 см, заполненную ДЭА;Э-целлюлозой, уравйовещеннрй 0,005 М трис-HGl буфером с рН 7,$ /: нанос т 40,0 мл раствора белка, полученного на стадии III со скоростью; течени мл/ч. Через колонку пропускдюг 5л 0,005 М трис-HGl буфернрг .6 раствора с рН 7,5 дл удалени нёадсорбированных бел кс)в. КПА элюируют линейным градиентом концентрации : в одном сосуде 1 л О,005 М ТРИС-НС1 буфера с рН;,5, в другом 1 л 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-rHGl буфере с рН 7,5. Объедин ют фракции с удельной активностью КПЛ Ие менее 12 ед/мг белка. К об-ьединеннЫм фракци м с активностью КПА-добав- .Л ют сульфат аммоний; до О,б насыще- ни и перемешивают 30 мин.; Осадок от- дел ют центрифугированием в течение 1 .4 при 6QOO обУмин И и раствор ют в мл 0,05 И трис-НС1 буфера С рН 7,5 Осадок, выпавший во врем диализа, отдел ют центрифугированием и выбрасывают. Центрифугат в количестве 50 мл нанос т на колонку размером 2, 9x25 см, за пол неннук) ДЭАЭ - целлюлозой , уравновешенной 0,005 М трис- НС буфером с рН 7,5. Скорость течени через колонку мл/ч. Через колонку пропускают 1 л 0,005 М трмс- НС1 буфера с рН 7,5 дл удалени побочных продуктов. Карбоксипептидазу А элюируют линейным градиентом концентрации: в одном сосуде 1л 0,005 М
трис-ИС1 буфера С рН 7,5, а в другом 1л 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,5. Объедин ют фракции с удельной активностью- КПА не менее 16 ед/мг белка.
К элюату медленно по порци м добавл ют сульфат аммони до 0,6 насыщени и перемешивают 30 мин. Осадок
отдел ют центрифугированием при 6000 об /мин в течение 50 мин при С, раствор ют в 20 мл 0,05 М трисНС буфера с рН 7,5 и диализуют против 0,005 И трис-НС буфера с рН 7,5.
Осадок отдел ют Центрифугированием и выбрасывают.
ПОлу енный раствор КПА в 0,005 М тр ис-НС буфере с рН 7,5 диализу19т против воды дл кристаллизации КПА. Выпавшие Кристаллы промывают Два раза водой, а:$атем раствор ют при рН 6,8 (рН доводитс гидроокисью натри ) и отдел ют нёрастворившиес примеси центрифугированием Лри 150000 об /мин В течение 3 мин. Полученный раствор КПА дйализуюТ: против воды пере кристаллизации КПА В образовавшуюс суспензию кристаллов добавл ют толу0ла(0т объема суспензии).
:, Уде льна активность 29,7 ,вд./мг белка; выход по активности 32.
П-р И М ер 2. Приготовление ацетонового порошка аналогично примеру 1.
T tO г. измельченного ацетонового порошка размешивают с 1400 мл 0,005 М
трис-НСГ/буфера с рН 7,5. Осадок отдел ют центрифугированием. Получают 1350 мл экстракта. рН экстракта довод т до 7,55 1 М раствором NaOH. К экстракту на холоду при 40°С
добавл )ют сульфат аммони до 0,65 насыщени при рН до 57,55. После центрифугировани выпавшую белковую фракцию суспендируют в 0,05 Н трис-НС буфере с рН 7,55 и подвергают диализу против 0,005 М трис-ИС1 буфера с рН 7,55 flo Отсутстви сульфата аммони . Диализат от стадии III нанос т на Колонку 6x20 см, заполненную ДЭАЭ-цел- люлозой, уравновешенной 0,005 М трисНС буфером 7,55 После отмывки колонки тем же буфером от неадсорбированных белк;ов КПА элюируют линейным градиентом концентрации: в одном сосуде 1 л 0,005 Н трис-HGl буфера с рН7,55,
а в другом 1 л 0,3 М натри хлористого в 0,005 И трис-НС буфере с рН 7,55. Объедин ют фракцию с активностью КПА не менее 13 ед./мг белка. КПА из элю
эта осаждают сульфатом аммони при 0,60 насыщении и рН 7,55, осадок отдел ют центрифугированием, суспендируют в 0,05 М трис-НС буфере с рН 7,55 и освобождают от солей диализом против 0,005 Н трис-НС1 буфера с рН 7,55. Получают мл диализата. Дл дальнейшей очистки диализат нанос т на колонку 2,9x20 см, заполненную ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-НС буфером с рН 7,55. После промывки колонки этим же буфером КПД элюируют линейным градиентом концентрации: в одном сосуде 1 л 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,55, а в другом 1л 0,3 М натри хлорис- тог.о в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,55. Объедин ют фракции, имеющие
активность карбоксипептидазы А не ме- 20 нанос т на колонку 2,9x25 см с ДЭАЭ- нее 1б ед./мг белка. Из объединенной целлюлозой, уравновешенной 0,005 М
фракции сульфатом аммони при насыщении 0,65 Н и рН 7,55 осаждают КПА. Осадок суспендируют в 20 мл 0,05 М трис-НС буфера с рН 7,55 и освобождают от сульфата аммони диализом против 0,005 Н трис-НС буфера.
Полученный раствор КПА в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,55 диализуют против, воды дл кристаллизации КПА. Выпавшие в процессе диаЛиза кристаллы промывают два раза водой, а затем раствор ют при рН 0,8 (рН доводитс гидроокисью натри ) и отдел ют нера- створившиес примеси центрифугирова- . нием. Полученный раствор КПА диализуют против воды дл перекристаллизации КПА. В образовавшуюс суспензию кристаллов добавл ют 4,5 % толуола.
Удельна активность 32,5 ед./мг белка; выход по активности 31,5.
ПримерЗ. Ацетоновый порошок из поджелудочной железы свиньи приготавливают аналогично примеру 1.
г измельченного ацетонового порошка экстрагируют 1400 мл 0,005 i трис-НС буфера 7,6, После центрифугировани получают 140) мл экстракта.
К экстракту при добавл ют сульфат аммони до 0,05 насьцденного при рН 7,6. После центрифугировани выпавшую белковую фракцию суспендируют а 0,05 М трис-НС буфере с рН 7,6 и подвергают диализу против 0,005 И трис-НС буфера с рН 7,6 до отсутстви аммони .
Диализат от стадии III нанос т на колонку 6x25 см с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-НС1 бу25
30
35
40
45
50
55
трис-НС1 буфером с рН 7,6. Колонку промывают тем же буфером, а элюирова- ние КПА провод т градиентом концентрацией 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,6. Объедин ютс фракции с удельной активностью КПА не менее 16 ед./мг белка . Из объединенной фракции сульфат аммони при насыщении 0,66 и рН 7,6 осаждают КПА. Осадок суспендируют в 20 мл 0,05 М трис-НС буфера рН 7,6, диализуют против 0,005 М трис- НС буфера с рН 7,6 до отсутстви сульфата аммони .
Полученный раствор КПА в 0,005 М трис-НС1 буфере с рН 7,6 диализуют против воды дл кристаллизации КПА. Выпавшие кристаллы промывают два раза водой и затем раствор ют при рН 6,8 (рН доводитс гидроокисью натри ) и отдел ют нерастворившиес примеси центрифугированием. Полученный раствор КПА диализуют против воды дл перекристаллизации КПА. Б полученную суспензию кристаллов добавл ют 5 толуола .
Удельна активность КПА 30,2 ед./мг белка; выход по активности 31,8.
П р и М е р 4. Приготовление ацетонового порошка аналогично примеру 1
140 г измельченного ацетонового порошка экстрагируют l400 мл 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,4. После центрифугировани получают 1300 мл экстракта .
К экстракту при 4 С добавл ют; суль фат аммони до 0,63 насьаиени при рН 7,4, После центрифугировани выпавшую
фером с рН 7,6. После отмывки колонки тем же буфером КПД элюируют линейным градиентом концентраций: в одном сосуде 1 л 0,005 И трис-НС буфера с
рН 7,6, а в другом 1 л 0,3 М ПаС1 в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,5, объедин ютс фракции с удельной активностью КПД неменее 12 ед./мг. Из
Q полученной фракции КПА, освобожденную от основной массы побочных белков, осаждают сульфатом аммони при 0,66 насьпцении и рН 7,6. Выпавший осадок КПД отдел ют центрифугированием, пендируют в 0,05 М трис-НС буфере с рН 7,6 и освобождают от солей диализом против 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,6. Получают 50 мл диализата. Дл дальнейшей очистки диализат
5
0
5
0
5
0
5
трис-НС1 буфером с рН 7,6. Колонку промывают тем же буфером, а элюирова- ние КПА провод т градиентом концентрацией 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,6. Объедин ютс фракции с удельной активностью КПА не менее 16 ед./мг белка . Из объединенной фракции сульфат аммони при насыщении 0,66 и рН 7,6 осаждают КПА. Осадок суспендируют в 20 мл 0,05 М трис-НС буфера рН 7,6, диализуют против 0,005 М трис- НС буфера с рН 7,6 до отсутстви сульфата аммони .
Полученный раствор КПА в 0,005 М трис-НС1 буфере с рН 7,6 диализуют против воды дл кристаллизации КПА. Выпавшие кристаллы промывают два раза водой и затем раствор ют при рН 6,8 (рН доводитс гидроокисью натри ) и отдел ют нерастворившиес примеси центрифугированием. Полученный раствор КПА диализуют против воды дл перекристаллизации КПА. Б полученную суспензию кристаллов добавл ют 5 то . луола.
Удельна активность КПА 30,2 ед./мг белка; выход по активности 31,8.
П р и М е р 4. Приготовление ацетонового порошка аналогично примеру 1.
140 г измельченного ацетонового порошка экстрагируют l400 мл 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,4. После центрифугировани получают 1300 мл экстракта .
К экстракту при 4 С добавл ют; сульфат аммони до 0,63 насьаиени при рН 7,4, После центрифугировани выпавшую
белковую фракцию суспендируют в 0,05 М трис-НС буфере с рН Т, и подвергают диализу против 0,005 М трис-НС1 буфера с рН 7, до отсутстви сульфата аммони .
Диализат на стадии III нанос т на колонку 6x25 см, заполненную ДЭАЭ- целлюлозой, уравно1вешенной 0,005 М трис-НС1 буфером с рН 7,. После от- Q мывки колонки тем же буфером КПД элюируют линейным градиентом концентрации натри хлористого 0,3 М в . 0,005 М трис-НС буфере с рН 7, 4. Объедин ют фракции с удельной актив- J5 ноетью КПД не менее 12 ед./мг белка. Из полученной объединенной фракции КПД осаждают сульфатом аммони при 0,3 насыщении и рН 7,. Выпавший осадок КПД отдел ют центрифугированием, 20 после чего .суспендируют в 0,05 М трис-НС1 буфере с рН 7,6 и освобождают от солей диализом против 0,005 М трис НС буфера с рН 7,. Получают 5 мл диализата.25
Полученный диализат нанос т на колонку 2,9x25 см с ДЭДЭ-целлюлозой уравновешенной 0,005 И трис-НС1 буфером с рН 7,. Колонку промывают тем же буфером, а элюйрование КПД зО провод т градиентом концентрации 0,3 М.натри хлористого в 0,005 М трис-НС1 буфере с рН 7Л Объедин ютс фракции с удельной активностью КПД не менее 1б ед./мг белка.
Из объединенной фракции сульфатом аммони при насыщении 0,63 и рН 7, осаждают КПД. Осадок суспендируют в 20 мл 0,05 М трис-НС буфера с рН 7,, диализуют против 0,005 М трис- дд НС буфера с рН 7, до отсутстви сульфата аммони . ,
Полученный раствор КПД в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7, диализуют против воды дл кристаллизации КПД. д Выпавшие кристаллы промывают два раза водой и затем раствор ют при рН 6,8 и отдел ют нерастворйвшиес примеси центрифугированием. Раствор КПД диализуют против воды дл перекристалли- зации КПД. В полученную суспензию кристаллов добавл ют 3 толуола.
Удельна активность КПД 20 ед./мг белка, выход 25.
П р и М е р 5. Приготовление ацетонового порошка аналогично примеру 1,
г измельченного ацетонов;ого порошка экстрагируют мл 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,7. После цент-
35
0 5
О
д
5
рифугировани получают 1350 мл экстракта .
К экстракту при °С добавл ют сульфат аммони до О , 67 насыщени при рН 7,7 После центрифугировани выпавшую белковую фракцию суспендируют в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,7 и подвергают диализу против 0,005 М трис-НС буфера с рН 7,7 до отсутстви сульфата аммони .
Диализат от стадии III нанос т на колонку 6x25 см с ДЭДЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-НС буфером с рН 7,7. После отмывки колонки тем же буфером КПА элюируют линейным градиентом концентрацией 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-НС буфера рН 7,7. Объедин ютс фракции с удельной активностью КПД не менее 12 ёд./мг белка.
Из полученной фракции КПД осаждают сульфатом аммони при 0,67 насыщении и рН 7,7. Выпавший осадок КПД отдел ют центрифугированием, суспендируют в 0,05 М трис-НС буфере с рН 7,7 и освобождают от солей диализом против 0,005 Н трис-НС буфера с рН 7,7. Получают 52 мл диализата.
Дл дальнейшей очистки диализат нанос т На колонку 2,9x25 см с ДЭАЭ- целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-НС буфером с рН 7,7. Колонку промывают тем же буфером, а элюйрование КПД провод т линейным градиентом концентрацией 0,3 М натри хлористого в 0,005 М трис-НС буфере с рН 7,7. Объедин ют фракции с удельной активностью КПД не менее 1б ед./мг белка.
Из объединенной фракции сульфатом аммони при насыщении О,б7 и рН 7,7 осаждают КПД. Осадок суспендируют в 20 мл 0,005 Н трис-НС буфера с рН 7,7 и диализуют против 0,005 М трис- НС буфера с рН 7,7 до отсутстви сульфата аммони .
Полученный раствор КПД в 0,005 М трис-буфере с рН 7,7 диализуют против ВОДЫ кристаллизацией КПД. Выпавшие кристаллы промывают два раза водой и затем раствор ют при рН 6,8 и отде - л ют нерастворившиес примеси центрифугированием . Полученный раствор КПД диализуют против воды дл перекристаллизации . 8 полученную суспензию кристаллов КПД добавл ют 6% толуола.
Удельна активность КПД 22,6 ед./мг белка; выход 28,1%.
Таким образом, технико-экономический эффект предлагаемого способа заключаетс в улучшении качества ферментного препарата карбоксипептидазы А, примен емой в белковой химии дл структурных исследований, а также в упрощении технологического процесса за смет сокращени числа стадий.
Claims (1)
- Формула изобретениСпособ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи, включашчий экстракцию ацетонового порошка трис-НС1 буфером, осаждениефермента сульфатом аммони , двукратную ионообменную хроматографию на ДЭАЭ-целлюлозе в 0,005 М трис-НС1 буфере с градиентной элюцией хлористым натрием и последующей кристаллизацией из воды, о т л и ч а ю щ.и и - с тем, что, с целью повышени активности целевого продукта и упрощени процесса, экстракцию, осаждение фермента и хроматографию ведут в 0,005 М трис-НС буфере рН 7,5-7,6, осаждение провод т при насыщении сульфата аммони 0,64-0,66, а элюцию с ДЭАЭ-целлюлозы ведут градиентом хлористого натри 0-0,30 М.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874344215A SU1523570A1 (ru) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874344215A SU1523570A1 (ru) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1523570A1 true SU1523570A1 (ru) | 1989-11-23 |
Family
ID=21342564
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874344215A SU1523570A1 (ru) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1523570A1 (ru) |
-
1987
- 1987-12-15 SU SU874344215A patent/SU1523570A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Biochemistry, 19б5, v.4, № 9, р.1750-1757., -.,. J. of Bid. chem., 19бЗ, v. 238, (f 12, p. 3384-3894. (§4) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КАРБОКСИПЕПТИДАЗЫ А ИЗ ПОДМЕЛУДОЧНОЙ «ЕЛЕЗЫ СВИНЬИ * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Matsuzawa et al. | Crystallization of ornithine transaminase and its properties | |
US3389133A (en) | Process for isolating and purifying soluble ribonucleic acid | |
EP0578825B1 (en) | Process for producing n-acetylneuraminic acid | |
Elson | Preparation and properties of a ribonucleoprotein isolated from Escherichia coli | |
SU1523570A1 (ru) | Способ получени карбоксипептидазы А из поджелудочной железы свиньи | |
US4071410A (en) | Process for preparation of pancreatic elastase | |
Hatanaka et al. | L-ascorbic acid sulfate esters with special reference to enzymatic hydrolysis | |
SU511862A3 (ru) | Способ получени 7-аминодезацетоксицефалоспорановой кислоты | |
US5521308A (en) | Process for the preparation of crystalline TACA | |
CS225117B2 (en) | The purification of insulin | |
US2881162A (en) | Recovery process | |
Weser et al. | Reactivity of some transition metals on nuclear protein biosynthesis in rat liver | |
US2009868A (en) | Method of preparing leucine | |
US4315923A (en) | Process for the production of organ extracts with high herparin content | |
US2567378A (en) | Preparation of pepsinogen and pepsin | |
US3875138A (en) | Process for recovering glucagon | |
US3904479A (en) | Process for preparing pancreatic elastase | |
KR880001120B1 (ko) | 엘라스타제의 정제 방법(Elastase의 精製方法) | |
SU1551742A1 (ru) | Способ получени карбоксипептидазы А и карбоксипептидазы В из поджелудочной железы свиньи | |
SU1723123A1 (ru) | Способ получени пепсина | |
RU2016899C1 (ru) | Способ получения щелочной фосфатазы | |
JPH034532B2 (ru) | ||
JPS5941302A (ja) | 多糖の製造方法 | |
SU890248A1 (ru) | Способ выделени аутопротромбина с | |
US3741872A (en) | Process for purifying enzymes of the asparaginase-type |