SU1486516A1 - Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction - Google Patents
Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction Download PDFInfo
- Publication number
- SU1486516A1 SU1486516A1 SU874322855A SU4322855A SU1486516A1 SU 1486516 A1 SU1486516 A1 SU 1486516A1 SU 874322855 A SU874322855 A SU 874322855A SU 4322855 A SU4322855 A SU 4322855A SU 1486516 A1 SU1486516 A1 SU 1486516A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- strain
- biomass
- enzyme
- restriction
- producer
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
Изобретение относится к биотехнологии. Цель изобретения - получе- | ние непатогенного штамма,' продуцирующего рестриктазу заданной специфичности с высоким выходом. Рестриктаза Вше 12 I является изошизомером реет* риктазы За и 3ΑΙ, Вте 12 I расщеплягт последовательность 5' -САТС - 3 в составе двуцепочечной ДНК. Биомассу выращивают при аэрации в питательной среде, содержащей гидролизат кильки и дрожжей, экстракт, до замедленной фазы роста. Клетки разрушают ' ультразвуком и выделяют рестриктазу хроматографией на фосфоцеллюлозе и гепаринсефарозе. Выход фермента 2400 ед/г биомассы.The invention relates to biotechnology. The purpose of the invention - to obtain | non-pathogenic strain, producing a restriction enzyme of a given specificity in high yield. Restrictase VIII 12 I is the isoschizomer of the rete * zyxtaz Za and 3те, Bte 12 I cleaves the sequence of 5 '-CATS-3 as part of double-stranded DNA. Biomass is grown with aeration in a nutrient medium containing sprat and yeast hydrolyzate extract, to a delayed growth phase. The cells are disrupted by ultrasound and are isolated by restriction chromatography on phosphocellulose and heparinsepharose. The output of the enzyme 2400 u / g biomass.
Изобретение относится к биотехно-, логии и представляет собой штамм, который можно использовать для получения эндонуклеазы рестрикции (рестриктазы), узнающей и расщепляющей последовательность нуклеотидов 5 -САТС ~ 3', в составе двуцепочечной молекулы ДНК.The invention relates to biotechnology, logic, and is a strain that can be used to obtain a restriction enzyme (restrictase) that recognizes and cleaves the nucleotide sequence 5 -CATS ~ 3 ', as part of a double-stranded DNA molecule.
Цель изобретения - получение непатогенного штамма, продуцирующего ре— стриктазу заданной специфичности с высоким выходом.The purpose of the invention is to obtain a non-pathogenic strain that produces a re- strictase of a given specificity with a high yield.
Штамм ВасШиз ше^асегьищ ВКПМ В-3677 (12) выделен в результате поиска при исследовании почвенных образцов. После отбора штамма проводится клональный анализ с целью отбора высокопродуктивного и стабильного штамма.The Vaschiz strain over aseparate of VKPM B-3677 (12) was isolated as a result of a search in the study of soil samples. After the selection of the strain, clonal analysis is performed in order to select a highly productive and stable strain.
4^4 ^
0000
ОABOUT
сдsd
Штамм обладает следующими признаками.The strain has the following features.
Морфологические признаки. Крупные подвижные палочковидные бациллы размером 0,8-1,5*2,0-7,0 мк. Клетки располагаются одиночно,, парами, образуют длинные цепочки. Жгутики перитрихиальные. Образует эндоспоры. Расположение эндоспор преимущественно центральное, форма спор эллиптичес-Morphological signs. Large mobile rod-shaped bacilli of 0.8-1.5 * 2.0-7.0 microns in size. The cells are arranged singly, in pairs, form long chains. Peritrichous flagellates. Forms endospores. The location of the endospores is predominantly central, the shape of the spores is elliptical.
33
1 А 865 161 A 865 16
4four
кая. Видимой раздутости спорангия не наблюдается.kaya. Visible bloating sporangia is not observed.
Клетки грамположительные, по мере старения проявляют грамвариабельность.Gram-positive cells show gramvariability as they age.
Физиолого-биохимические признаки. Клетки каталазоположительные, гидролизуют крахмал и казеин, разжижают •желатину. Ацетилметилкарбинола не образуют. В качестве источников уг лерода и азота используют широкий спектр органических веществ. Клетки растут в диапазоне температур от 4 до 42 С. Оптимальная температура роста 37°С. Оптимальный рН среды 7,2-' .Physiological and biochemical signs. Catalase-positive cells hydrolyze starch and casein, dilute gelatin. Acetylmethylcarbinol does not form. A wide range of organic substances is used as sources of carbon and nitrogen. Cells grow in the temperature range from 4 to 42 C. The optimal growth temperature is 37 ° C. The optimum pH of the medium is 7.2- '.
7,4. Культура хранится в лиофильно высушенном виде. Штамм В. те^аСегхит 12 содержит эндонуклеазу Вше 12 I, изошизомер 5аи 3ΑΙ,7.4. The culture is stored in a lyophilized form. Strain B. te ^ aSehhit 12 contains endonuclease VIII 12 I, isoshizomer 5ai and 3ΑΙ,
Культуральные признаки. На твердой питательной среде форма колоний округлая. Размеры колоний 2-5 мм, колония матовая, не флюоресцирует, пигмент в среде не выделяет. Поверхность гладкая, профиль выпуклый, край колонии ровный. Структура однородная, консистенция маслянистая. Хорошо растет на обычных питательных средах, например на 3,5^-ном СПА или 2-4^-ном гидролизате кильки. В жидких питательных средах дает обильный рост при интенсивной аэрации.Cultural features. On solid nutrient medium, the shape of the colonies is round. The size of the colonies is 2-5 mm, the colony is opaque, does not fluoresce, does not emit pigment in the medium. The surface is smooth, the profile is convex, the edge of the colony is smooth. The structure is homogeneous, oily consistency. It grows well on ordinary nutrient media, for example, on a 3.5 ^ ^ spa or 2-4 ^ hydrolyzate sprat. In liquid nutrient media gives abundant growth with intensive aeration.
Хранение штамма осуществляют под вазелиновым маслом или в глицерине при -70°С. Штамм сохраняет свои свойства более 4 лет.Storage of the strain is carried out under liquid paraffin or in glycerin at -70 ° C. Strain retains its properties for more than 4 years.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.
Пример 1. Выращивание биомассы и выделение рестриктазы Вше 12 I Для выращивания биомассы используют рыбный гидролизат и дрожжевой экстракт отечественного производства.Example 1. Cultivation of biomass and release of restrictase above 12 I For the cultivation of biomass use fish hydrolyzate and yeast extract of domestic production.
Посевной материал готовят на среде следующего.состава, г/л: рыбный гидролизат 40, дрожжевой экстракт 2. Среду стерилизуют при 1,2 атм,30мин. Инокулят выращивают в литровых колбах на качалке при 200 об/мин. Ферментацию проводят в ферментере с рабочим объемом 4 л. 400 мл инокулята вносят’в ферментационную среду такого же состава, как и для инокулята.The seed material is prepared on the medium of the following composition, g / l: fish hydrolyzate 40, yeast extract 2. The medium is sterilized at 1.2 atm, 30 min. The inoculum is grown in one-liter flasks on a rocking chair at 200 rpm. Fermentation is carried out in a fermenter with a working volume of 4 liters. 400 ml of inoculum is introduced in the fermentation medium of the same composition as for the inoculum.
. Культивирование осуществляют периодическим способом при следующих условиях: температура выращивания 37 С,скорость перемешивания 200 об/мин, аэрация 1 о&ьем.мин"·* . Выращивание прово10. Cultivation is carried out in a periodic manner under the following conditions: growing temperature 37 ° C, stirring speed 200 rpm, aeration 1 ° & min.min "* *. Growing wire 10
1515
2020
2525
30thirty
3535
4040
4545
5050
5555
дят до достижения оптической плотности Д?50 4 ,6 опт.ед./мл (фаза замедления роста). Клетки собирают центрифугированием и хранят при -20°С. Выход биомассы 4 г/л культуральной жидкости.to achieve an optical density of D ? 50 4, 6 opt./ml (growth retardation phase). Cells are harvested by centrifugation and stored at -20 ° C. Biomass yield 4 g / l of culture fluid.
Биомассу суспендируют в 0,05 М трис-буфере и обрабатывают на ультразвуковом дезинтеграторе. Полученный 'клеточный экстракт подвергают гельфильтрации на биогеле А-05М. Фракции, содержащие фермент, объединяют и осаждают сульфатом аммония, затем центрифугируют. Осадок ресуспендируют в 0,02М калий фосфатом буфере рН 'The biomass is suspended in 0.05 M Tris buffer and treated with an ultrasonic disintegrator. The obtained 'cell extract is subjected to gel filtration on A-05M biogel. The fractions containing the enzyme are combined and precipitated with ammonium sulfate, then centrifuged. The pellet is resuspended in 0.02 M potassium phosphate buffer pH '
7,5, содержащем 0,0005М ЭДТА и Ο,ΟΟΙΜ 2-меркаптоэтанол (буфер А) и диализуют против этого же буфера в течение 2 ч. Отдиализованный раствор фермента наносят на колонку с фосфоцеллюлозой Р-11, уравновешенную буфером А. Фракции, содержащие фермент, собирают и подвергают дальнейшей очистке на колонке с гепарин-сефарозой. Фермент элюируют линейным градиентом от 0 до 1.М ПаС1 в буфере А. Содержащие фермент фракции объединя-ί ют и диализуют в течение 12 ч против 300 мл буфера А, содержащего 50^-ный глицерин.7.5, containing 0.0005M EDTA and Ο, ΟΟΙΜ 2-mercaptoethanol (buffer A) and dialyzed against the same buffer for 2 hours. The removed enzyme solution is applied on a P-11 phosphocellulose column, equilibrated with buffer A. Fractions containing the enzyme is collected and further purified on a column with heparin-sepharose. The enzyme is eluted with a linear gradient from 0 to 1.M PaCl in buffer A. The fractions containing the enzyme are combined and dialyzed for 12 hours against 300 ml of buffer A containing 50 ^ glycerol.
Эндонуклеазную активность определяют по расщеплению ДНК фага Ά С 1 857. Фермент инкубируют 1 ч при 37 С в 10 мкл смеси: 01 мкг ДНК фагаβ ,Endonuclease activity is determined by cleaving the DNA of phage C 1 857. The enzyme is incubated for 1 hour at 37 ° C in 10 µl of the mixture: 01 µg of phage β DNA,
01 М трис-НС! рН 8,0, 0,1 М ДаС1,01 M Tris-NA! pH 8.0, 0.1 M DaC1,
0,01 М МдСБ^. Затем проводят электрофорез гидролизата в геле 0,7^-ной агарозе. За единицу активности принимают количество фермента, достаточное для полного расщепления 1 мкг ДНК фага . Выход фермента 2400 ед/г ' биомассы.0.01 M mdsB ^. This is followed by electrophoresis of the hydrolyzate in the gel of 0.7 ^ agarose. Per unit of activity, they take an amount of enzyme sufficient to completely break down 1 μg of phage DNA. The output of the enzyme 2400 u / g 'biomass.
Пример 2. Питательную среду готовят следующего состава, г/л: дрожжевой экстракт фирмы "ϋχ£οο" 5, триптон фирмы ’'ϋΐ£οο'’ 10, ИаС! 5. Культивирование проводят, как в. примере 1, кроме того, биомассу собирают при оптической плотности Д 3^0 6,0 опт.ед./мл (стационарная фаза роста). Выход биомассы 5 г/л, выход фермента 1500 ед./г биомассы.Example 2. A nutrient medium is prepared of the following composition, g / l: yeast extract from "ϋχ £ οο" 5, tryptone from '' £ οο '' 10, IAS! 5. Cultivation is carried out as in. Example 1, in addition, the biomass is collected at an optical density of D 3 ^ 0 6.0 opt./ml (stationary growth phase). The biomass yield of 5 g / l, the yield of the enzyme 1500 units / g of biomass.
Пример 3. Культивирование проводят, как в примере 1, кроме того, что биомассу собирают при оптической плотности Д$5о -2,5. Выход биомассы 3 г/л, выход фермента 600 ед/г биомассы.Example 3. The cultivation is carried out as in example 1, except that the biomass is collected at an optical density of D $ 5 -2.5. The biomass yield of 3 g / l, the output of the enzyme 600 u / g biomass.
5five
14865161486516
66
Пример 4. Культивирование проводят, как в примере 1, но до оптической плотности Д? 6,0. Выход биомассы 5 г/л, выход фермента 2000 ед./г биомассы.Example 4. The cultivation is carried out as in example 1, but before the optical density D ? 6.0. The biomass yield of 5 g / l, the output of the enzyme 2000 units / g of biomass.
Пример 5. Культивирование В.тезабегхит проводят, как в примере 1, но поддерживают температуру.Example 5. The cultivation of V. tezabehit carried out as in example 1, but maintain the temperature.
30°С. Выход биомассы - 4 г/л, выход фермента 300 ед./г биомассы.30 ° C. The biomass yield is 4 g / l, the enzyme yield is 300 units / g biomass.
Таким образом, в соответствии с данным изобретением получен и охарактеризован непатогенный эффективный штамм-продуцент рестриктазы, обеспечивающий повышенную продукциюThus, in accordance with the present invention, a non-pathogenic effective restriction enzyme producing strain was obtained and characterized, providing enhanced production
фермента при оптимизированных условиenzyme under optimized conditions
5five
ях культивирования.yah cultivation.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874322855A SU1486516A1 (en) | 1987-10-30 | 1987-10-30 | Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874322855A SU1486516A1 (en) | 1987-10-30 | 1987-10-30 | Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1486516A1 true SU1486516A1 (en) | 1989-06-15 |
Family
ID=21334198
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874322855A SU1486516A1 (en) | 1987-10-30 | 1987-10-30 | Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1486516A1 (en) |
-
1987
- 1987-10-30 SU SU874322855A patent/SU1486516A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU1838410C (en) | Method of obtaining alpha-amylase | |
US4284722A (en) | Heat and acid-stable alpha-amylase enzymes and processes for producing the same | |
US4323651A (en) | Thermostable lactase derived from bacillus | |
SU1486516A1 (en) | Strain of bacillus megaterium bacteria as producer of endonuclease of bme 12 restriction | |
RU2673971C1 (en) | Strain of bacteria paenibacillus species - a producer of xylanase | |
US3697378A (en) | Dextrinization of starch with alph-amylase from bacillus coaculans | |
US4179335A (en) | Thermostable lactase derived from Bacillus coagulans | |
Pich et al. | Purification and characterization of the DNA-dependent RNA polymerase from Clostridium acetobutylicum | |
SU764617A3 (en) | Method of preparing glucoisomerase | |
Abdul-Hadi et al. | Extraction, purification and characterization of extracellular pullulanase by klebsiella pneumoniae isolated from soil | |
RU2077577C1 (en) | Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing | |
SU1532584A1 (en) | Strain of brevibacterium immotum as producer of endonuclease of restriction bim i | |
SU1659480A1 (en) | Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 | |
SU1532583A1 (en) | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i | |
SU1095645A1 (en) | Method of producing restriction endonuclease | |
RU2001952C1 (en) | Strain of bacterium rhizobium leguminosarum - a producer of restriction endonuclease rle 691 | |
SU1514774A1 (en) | Strain of meoraxella species bacteria as producer of site-specific endonuclease | |
RU2044054C1 (en) | Strain of bacterium escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 110 ki | |
Anu et al. | Production and purification of cellulase enzyme by endophytic Bacillus sp. isolated from Rhizophora mucronata | |
SU1645300A1 (en) | Streptomyces fradiae strain: producer of restrictase sfr 1 | |
SU1645293A1 (en) | Strain bacteria streptococcus faecalis - is a producer of restrictase sfa n | |
SU1650697A1 (en) | The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I | |
EP0258038A2 (en) | Use of cellulase preparations in the cultivation and use of cellulose-producing micro-organisms | |
SU1440919A1 (en) | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease | |
NIHARIKA et al. | ANALYSING THE BIOCATALYTIC ASPECT OF AMYLASE FROM PLANT AND MICROBIAL SOURCES FOR INDUSTRIAL APPLICATION |