SU1453896A1 - Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer - Google Patents
Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer Download PDFInfo
- Publication number
- SU1453896A1 SU1453896A1 SU874249217A SU4249217A SU1453896A1 SU 1453896 A1 SU1453896 A1 SU 1453896A1 SU 874249217 A SU874249217 A SU 874249217A SU 4249217 A SU4249217 A SU 4249217A SU 1453896 A1 SU1453896 A1 SU 1453896A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- dna
- plasmid
- methylase
- eco
- rii
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к микробиологии , в частности к технологии ре- комбинантных ДНК, и позвол ет получить рёстриктазу и метилазу Есо RII ферментов, используемых в научно-исследовательской практике. Целью изобретени вл етс повыпение содержани рестриктазы и метипазы Есо RII в клетках бактерий, С этой целью ; сконструирована рекомбинантна ДНК pVK I, содержа1ца фрагмент ДНК с полными генами рестриктазы и метипазы Есо RII и левый промотор фага л мбда, обеспечивающий эффективную экспрессию генов Есо RII. pVKlI трансформирована в клетки Escherichia Есо RII не менее 50000 ед. каждого фермента на I г сырой биомассы клеток. 3 с.п. ф-лы. (ЛThe invention relates to microbiology, in particular, to the technology of recombinant DNA, and makes it possible to obtain restriction enzyme and Eco RII methylase enzymes used in scientific research practice. The aim of the invention is to increase the content of restrictase and Etio RII methipase in bacterial cells, To this end; recombinant pVK I DNA was constructed, containing a DNA fragment with full restriction enzyme genes and Eco RII metipases and the left promoter of phage lambda, ensuring efficient expression of Eco RII genes. pVKlI transformed into Escherichia Eco RII cells of at least 50,000 units. each enzyme per I g of raw cell biomass. 3 sec. f-ly. (L
Description
I .I.
Изобретение относитс к биотехно-. логин, в частности к генетической инженерии , и представл ет собой pejcoM- бинантную плазмидную ДНК, обуславлит вающую синтез рестриктазы и метилазы Есо RII, спрсрб конструировани данной рекомбинатной плазмидной ДНК и . штамм, содержащий эту рекомбинантную плазмиду - продуцент рестриктазы иThe invention relates to biotechnology. login, in particular to genetic engineering, and is a pejcoM-binant plasmid DNA, which causes the synthesis of restrictase and methylase Eco RII, the content of this recombinant plasmid DNA and. the strain containing this recombinant plasmid producing restrictase and
метилазы Есо RII...methylase eso rii ...
1 . , one . ,
Рестрикциониа эНдонуклеаза (рест- риктаза) Есо RII и ДНК-метиптрансфе-. раза (метилаза) Есо RII широко используютс в научно-исследовательской практике (генетическа инженери , cтpyктypнo-JlгyнкциoнaльньIй анализ ДНКRestriction of eDonuclease (restrictase) of Eco RII and DNA metiptransfe-. times (methylase) Eco RII is widely used in research and development (genetic engineering, tactical JNA functional analysis of DNA
изучение белок-нукЛеинового взаимодействи и др.).study of protein-nucleLein interaction, etc.).
Цель изобретени вл етс увеличение содержани рестриктазы и метилазы Есо RII в клетках бактерий.The purpose of the invention is to increase the content of restriction enzyme and EcoLAII methylase in bacterial cells.
1. Получена рекомбинантна плазми- да pVKll, обеспечивающа повышенный синтез рестриктазы и метилазы Есо RI1. 2. Разработан способ конструировани рекомбинантной плазмиды pVKI1, в которой гены рестриктазы и метнла- зЫ Есо RII наход тс под левым промотором фага л мбда (Р) то обеспечивает эффективную экспрессию генов рестриктазы и метилазы Есо RII.1. A recombinant plasmid pVKll was obtained, providing an increased synthesis of restrictase and Eco RI1 methylase. 2. A method has been developed for constructing a recombinant plasmid pVKI1, in which the restriction enzyme and methlase genes of EcoRII are under the left promoter of phage lmbda (P), this ensures the efficient expression of the restriction enzyme and methylase of EcoRII.
3. Получен штамм Escherichig coli ВКМ CR-288D, имеющий более высокий.3. The obtained Escherichig coli strain VKM CR-288D, which has a higher one.
4ib СЛ4ib SL
О9 00 05O9 00 05
;, .1453896 ;, .1453896
уровень синтеза рестриктаэы и мети- .лазы Есо RII по сравнению с нзвестны- штаммами про дуцентами ферментов Есо RII.,the level of synthesis of restrictae and methylase Eco RII compared with the known strains of the producers of enzymes Eco RII.,
, А, Плазмида pVKII, крднрующа ре- . стриктазу и метипазу Есо RII состоит из ДИК pLC 2833 (размер которого 2,8 ТПО), содержащего левый проКлетки ,пр мые, палочковидной фор мы (1,2-1,б)х(2,0-6,0) мкм, подвижные , с перитрихиальньми жгутиками, грамотрицате ьные, неспороносные., A, Plasmid pVKII, the core of re-. strictase and metipase Eco RII consists of a DIC pLC 2833 (the size of which is 2.8 TPO) containing the left proCellus, straight, rod-shaped (1.2-1, b) x (2.0-6.0) µm, motile, with peritrichialni flagella, gram-negative, nesporonosnye.
Культуральные признаки.Cultural features.
Кпеткн хорошо,растут на простых питательных средах..,Kpetkn well grow on simple nutrient media ..,
При росте на м со-пептоином ага15With growth on m with peptoin aga15
2020
2525
30thirty
Мотор фага л мбда (Рь); Pet I - фраг- ю Ре, питательном агаре Дифкр коло- мента ДНК плазмиды pVK 33, содержащего гены рестриктазы н метилазы Есо RII Хрзэ| 1ер котррохп 5 ТПО), и имеет . уникальные участки рестрикции дл зн- . донуклеаз Есо RI, Sal I, Xba I, расположенные на рассто нии 0,1 ТПО от промотора Р/,; селективные маркеры Ар 1шп J хоз ин Escherichia coli.Motor of phage lmbda (Pb); Pet I - fragment of Fe, nutrient agar Difcr of DNA DNA of plasmid pVK 33 containing the restriction enzyme genes of the Eco RII methylase Xrze | 1р Kotrrohp 5 TPO), and has. unique restriction sites for char. the Eco nucleotide RI, Sal I, Xba I, located at a distance of 0.1 TPO from the P / promoter; selective markers Ar 1shp J host in Escherichia coli.
Б. Дл достижени ,цели используют способ конструировани плаэмидной ШК кодирующей рестриктазу и ,мети- лазу Есо RII, заключающийс в том, что плазмидаую ДНК pLG 2833 и ДНК pVK ЗЭ подвергают совместному гидролизу эндонуклеазой рест рикции Pst I. Образовавшиес фрагменты соедин ют ДНК лигазой, затем по,лученной смесью - |рекомбинантных молекул трансформируют клетки Е. coli СбОО (Л). ТрансФорман ть высевают на среду с -ампи циллином и выросшие колонии провер ют на способность рестрикзгировать и модифицировать фаг л мбда in vivo. Из отобранных трансформантов вьщел ют плаз- мидную ДНК, обозначенную как pVK М.B. To achieve this, the objectives use a method for constructing a plasmid barcode that encodes a restriction enzyme, and Eco RII methylase, consisting in that plasmid DNA pLG 2833 and DNA pVK Ze are subject to joint hydrolysis with an endonuclease of Pst I restriction. The resulting fragments combine DNA digase, then, a mixture of - | recombinant molecules is transformed by E. coli cells (L) with a recombinant molecule. Transformance was plated on α-cympillin medium and the grown colonies were tested for their ability to restrict and modify lambda phage in vivo. Plasmid DNA designated as pVK M was selected from the selected transformants.
В. -Дл достижени цели получен также штамм бактерий Echerichia coli ВКМ CR-288D - продуцент рестриктазы И метипазы Eeo.EII. Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции микроор- анизмов при ИБФМ АН СССР под номером В1да CR-288D,B. - To achieve the goal, Echerichia coli bacterial strain VKM CR-288D was also produced, which produces restrictase and Eeo.EII metipase. The strain was deposited in the All-Union Collection of Microorisms in the Institute of Biomedical Physics, USSR Academy of Sciences under the number V1da CR-288D,
Штагф - продуцент рестриктазы-и йетИлазы Е-СО RII получен трансформацией клеток Е. coli В834/рС1857 ппазмидной ДНК pVK 11. Выбор штамма Е, coli В834(). обусловлен тем, , )что штамм не содержит инте1х11ерирую- (цих с ферментами Есо RII примесей и |со;5 Р плазмид;у с геном термочувствительного репрессора сI фага л йбда. Содержание рестриктазы и метилазы Есо RII в сконструированном штамме равно 500000 ед. калздЬго фермента на 1 г сырой биомассы клеток. Stagf - producer of restriction enzyme and yeast E – CO RII was obtained by transforming E. coli B834 / pC1857 cells with pVK 11 pazmid DNA. Selection of strain E, coli B834 (). due to the fact that) the strain does not contain enterichera-tion (impurities with Eco RII enzymes and | co; 5 P plasmids; with the heat-sensitive repressor cI gene of the phage anyway. The restriction enzyme and methylase Eco RII content in the designed strain is 500,000 units. enzyme per 1 g of raw biomass of cells.
Штамм Escherlchia coli ВКМ CR - 288D характеризуетс следующими признакамиi The Escherlchia coli strain VKM CR - 288D is characterized by the following features:
1&)рфологические признаки.1 &) rheologic features.
НИИ гладкие, круглые, прижатые, блест щие , серые, с ровными крайми. При росте в жидких средах - м со-пеп тонном бульоне, питательном бульоне Дифко образует ровную интенсивную муть. .IThe scientific research institutes are smooth, round, pressed, shiny, gray, with even edges. With the growth in liquid media - mi-pep ton broth, Difco's nutrient broth forms a smooth intense slime. .I
Физиолого-биохимические признаки.Physiological and biochemical signs.
Клетки растут в пределах А - при оптимуме рН 6,8-7,5. В качестве источника углерода используют многие углеводы, спирты, органические кислоты, в частности d-глюкозу, d-фруктозу, арабинозу, лактозу тре- галозу. Не усваивает ацетат, аданит, галактозу. В качестве источника азота используют как минеральные соли в аммонийной и нитратной формах, так и в органической в виде пептона, аминокислот . Нитраты восстанавливают до нитритов. Желатину не разжижают. Индол не образуют. Уреазна активг ность не обнаруживаетс .Cells grow within A - at an optimum pH of 6.8-7.5. Many carbohydrates, alcohols, organic acids, in particular d-glucose, d-fructose, arabinose, and lactose, trehalose, are used as carbon sources. Does not absorb acetate, adanite, galactose. As a source of nitrogen, mineral salts are used in ammonium and nitrate forms, and in organic form as peptone, amino acids. Nitrates are reduced to nitrites. Gelatin is not diluted. Indole do not form. Urease activity is not detected.
Устойнивость к антибиотикам.Antibiotic resistance.
Про вл ют устойчивость к ампицил- лину, обусловпенную наличием плазми,- ды pVK П, а также к канамицину, обусловленную наличием плазмиды рС 1857.They show resistance to ampicillin due to the presence of plasmas, such as pVK P, as well as to kanamycin, due to the presence of the pC 1857 plasmid.
1Йтамм Е. coli ВКМ CR-288D про вл ет иммунитет к фагу л мбда. Продуктивность штамма составл ет 500000 ед. каждого фермента на 1 г сырой биомассы.The Y. coli VKM CR-288D strain is immune to the lambda phage. The productivity of the strain is 500,000 units. each enzyme per 1 g of raw biomass.
Изобретение иллюстрируетс следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.
Пример..Example..
Клетки бактерий Е. coli, содержащие плазмидную ДНК, выращивают в бульоне Дифко до титра 2x10 кл/мл Клетки -собирают центрифугированием и из них вьщел ют ДНК. Полученные препараты ДНК плазмиды pLC 2833 и плаз- миды pVK 33 используют дл конструировани плазмиды pVK 11. 2 мкг ДНК плазмиды pLC 2833 инкубируют с эндог нуклеазой рестрикции Pst I (0,5 е). Реакцию провод т при 1 ч. 3 мкг ДНК плазмвды pVK 33 расщепл ю,т эндонуклеазой рестрикции Pst I (5 е).The E. coli bacteria cells containing plasmid DNA are grown in Difco broth to a titer of 2x10 cells / ml. The cells are collected by centrifugation and DNA is extracted from them. The obtained DNA preparations of the plasmid pLC 2833 and the plasmid pVK 33 are used to construct the plasmid pVK 11. 2 μg of the DNA of the plasmid pLC 2833 are incubated with the Pst I restriction enzyme (0.5 e). The reaction was carried out at 1 h. 3 µg of plasma DNA pVK 33 was cleaved with the restriction endonuclease Pst I (5 e).
4040
4545
5050
5555
Клетки,пр мые, палочковидной фор мы (1,2-1,б)х(2,0-6,0) мкм, подвижные , с перитрихиальньми жгутиками, грамотрицате ьные, неспороносные.Cells, straight, rod-shaped (1.2–1, b) x (2.0–6.0) µm, motile, with peritrichous flagella, gram-negative, non-spore-bearing.
Культуральные признаки.Cultural features.
Кпеткн хорошо,растут на простых питательных средах..,Kpetkn well grow on simple nutrient media ..,
При росте на м со-пептоином агаРе , питательном агаре Дифкр коло- With growth on m-with-peptoin agar, nourishing agar
5five
00
5five
00
Ре, питательном агаре Дифкр коло- Re, nutrient agar difkr colo
НИИ гладкие, круглые, прижатые, блест щие , серые, с ровными крайми. При росте в жидких средах - м со-пеп- тонном бульоне, питательном бульоне Дифко образует ровную интенсивную муть. .IThe scientific research institutes are smooth, round, pressed, shiny, gray, with even edges. When grown in liquid media — m-co-peptone broth, Difco's nutrient broth forms a smooth intense slime. .I
Физиолого-биохимические признаки.Physiological and biochemical signs.
Клетки растут в пределах А - при оптимуме рН 6,8-7,5. В качестве источника углерода используют многие углеводы, спирты, органические кислоты, в частности d-глюкозу, d-фруктозу, арабинозу, лактозу тре- галозу. Не усваивает ацетат, аданит, галактозу. В качестве источника азота используют как минеральные соли в аммонийной и нитратной формах, так и в органической в виде пептона, аминокислот . Нитраты восстанавливают до нитритов. Желатину не разжижают. . Индол не образуют. Уреазна активг ность не обнаруживаетс .Cells grow within A - at an optimum pH of 6.8-7.5. Many carbohydrates, alcohols, organic acids, in particular d-glucose, d-fructose, arabinose, and lactose, trehalose, are used as carbon sources. Does not absorb acetate, adanite, galactose. As a source of nitrogen, mineral salts are used in ammonium and nitrate forms, and in organic form as peptone, amino acids. Nitrates are reduced to nitrites. Gelatin is not diluted. . Indole do not form. Urease activity is not detected.
Устойнивость к антибиотикам.Antibiotic resistance.
Про вл ют устойчивость к ампицил- лину, обусловпенную наличием плазми,- ды pVK П, а также к канамицину, обусловленную наличием плазмиды рС 1857.They show resistance to ampicillin due to the presence of plasmas, such as pVK P, as well as to kanamycin, due to the presence of the pC 1857 plasmid.
1Йтамм Е. coli ВКМ CR-288D про вл ет иммунитет к фагу л мбда. Продуктивность штамма составл ет 500000 ед. каждого фермента на 1 г . сырой биомассы.The Y. coli VKM CR-288D strain is immune to the lambda phage. The productivity of the strain is 500,000 units. each enzyme per 1 g. raw biomass.
Изобретение иллюстрируетс следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.
Пример..Example..
Клетки бактерий Е. coli, содержащие плазмидную ДНК, выращивают в бульоне Дифко до титра 2x10 кл/мл. Клетки -собирают центрифугированием и из них вьщел ют ДНК. Полученные препараты ДНК плазмиды pLC 2833 и плаз- миды pVK 33 используют дл конструировани плазмиды pVK 11. 2 мкг ДНК плазмиды pLC 2833 инкубируют с эндог нуклеазой рестрикции Pst I (0,5 е). Реакцию провод т при 1 ч. 3 мкг ДНК плазмвды pVK 33 расщепл ю,т эндонуклеазой рестрикции Pst I (5 е).Cells of E. coli bacteria containing plasmid DNA are grown in Difco broth to a titer of 2x10 cells / ml. Cells are collected by centrifugation and DNA is extracted from them. The obtained DNA preparations of the plasmid pLC 2833 and the plasmid pVK 33 are used to construct the plasmid pVK 11. 2 μg of the DNA of the plasmid pLC 2833 are incubated with the Pst I restriction enzyme (0.5 e). The reaction was carried out at 1 h. 3 µg of plasma DNA pVK 33 was cleaved with the restriction endonuclease Pst I (5 e).
00
5five
00
5five
514538966514538966
Пробы после инкубации Прогревают при ную как pVK Пи содержащу о в своемSamples after incubation Warm up the priyuyu as pVK Pi containing about in its
1515
65 С 10 мии. Продукты гидролиза анализируют электрофорезом в l - HOM ага- роэиом геле.65 With 10 missions. Hydrolysis products are analyzed by electrophoresis in l - HOM agaroe gel.
Соединение фрагментов ДНК плазмид провод т в буфере дл рестрикции с добавлением АТФ и дитиотраитола до конечной концеитрацииМ и 5 мМ соответственно и дак-лигйзы (10 е).The connection of plasmid DNA fragments is carried out in a restriction buffer with the addition of ATP and dithiotraitol to the final end of M and 5 mM, respectively, and dac lysis (10 e).
Реакцию провод т 10-12 ч при IA - , Полученную смесь плазмид используют дл трансформации клеток Е, coli С600 (Л). Клетки Е. coli С600 () внос т в 10 мл питательного бульона и выращивают до титра 1х х10 клТмл. Клетки собирают центрифугированием (5000 g, 10 мин, ), суспендируют в 10 мл 0,2 М р-ра СаС и вьздерживают 1 ч при 0°С. Клетки повторно собирают центриЛугированием, ресуспендируют в 0,3 мл 0,08 М СаС1г () и используют дл трансформации.The reaction is carried out for 10-12 hours at IA -. The resulting mixture of plasmids is used to transform E, coli C600 (L) cells. E. coli C600 cells () are added to 10 ml of nutrient broth and grown to a titer of 1x x 10 clTml. The cells are harvested by centrifugation (5000 g, 10 min), suspended in 10 ml of 0.2 M CaC solution and held for 1 hour at 0 ° C. The cells are re-harvested by centrifugation, resuspended in 0.3 ml of 0.08 M CaCl2 () and used for transformation.
Смесь лигированньк фрагментов ДНК инкубируют с кле.тками Е. coli В83А/рС1857, обработанными раствором CaCl, 1 ч при и 10 мин при комнатной температуре (18-20 С). После .дес тикратного разбавлени суспензии питательным бульоном трансфорКирован- 30 ныв клетки подращивают 2 ч при 28°С и высевают на агаризованную среду с ампициллином (50 мкг/мл). Клетки,The mixture of ligated DNA fragments was incubated with E. coli B83A / pC1857 cells treated with CaCl solution for 1 hour at room temperature (18–20 ° C) for 10 minutes. After ten-fold dilution of the suspension with transforming nutrient broth, 30 cells are grown for 2 h at 28 ° C and plated on agar medium with ampicillin (50 µg / ml). Cells
составе три фрагмента, кото.рые обра- ауютс при гидролизе гшазмидной ДНК эиДонуклеазой рестрикции Pet I.The composition consists of three fragments that are formed by hydrolysis of gchasmid DNA with the restriction enzyme Pet I.
Выделенную ДНК pVK 11 трансформируют в штамм Е. coli В83А/рС1857« Трансформанты отбирают на среде, содержащей ампициллин (50 ) -и 10 канамицин (25 мкг/мл). ПлазмидаThe isolated pVK 11 DNA is transformed into E. coli B83A / pC1857 “Transformants are selected on medium containing ampicillin (50) -and 10 kanamycin (25 μg / ml). Plasmid
рС1857 несет термочувствительную мутацию в гене репрессора CI, Таким об разом можно увеличить транскрипцию, за счет температурных условий культи |вировани .pC1857 carries a thermo-sensitive mutation in the CI repressor gene. Thus, transcription can be increased due to temperature conditions of cultivation.
Клетки Е. coli В834/рС1857/р ГКП выращивают при 28 С до плотности 2- 4-10 кл/мл, резко повьппают темпера туру до и провод т инкубацию в течение 4 ч. Клетки собирают центрифугированием , ресуспендируют в буфере 0,01 М калий-фосфат (рН 7,0), 1 мК ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптозтанал; 0,4 мМ Had, разрушают ультразвуком. После разрушени центрифугируют (100000 Е. 1 ч, ). Бесклеточньй зкстракт используют дл определени ферментативной активности. Акти вност метилазы определ ют в реакционтгой смеси общим объемам 150 мкл, содержащей 40 мМ калий-фосфат (рН 7,8), 1 мМ ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптоэтанола, 20 мкг ДИК К. coli В834, 4 мМ S-аде- нозила (метил- Н) метионина и 50 мклE. coli B834 / pC1857 / p cells are grown at 28 ° C to a density of 2-4-10 cells / ml, the temperature is dramatically increased and incubated for 4 hours. Cells are harvested by centrifugation, resuspended in a buffer of 0.01 M potassium phosphate (pH 7.0), 1 mK EDTA, 7 mM 2-mercaptoztanal; 0.4 mM Had, sonicate. After the destruction centrifuged (100,000 E. 1 h,). Cell-free extract is used to determine enzyme activity. Methylase activation was determined in a reaction mixture of total volumes of 150 µl containing 40 mM potassium phosphate (pH 7.8), 1 mM EDTA, 7 mM 2-mercaptoethanol, 20 µg DIC K. coli B834, 4 mM S-ada nosyl (methyl- N) methionine and 50 μl
2020
2525
Клетки Е. coli В834/рС1857/р ГКП выращивают при 28 С до плотности 2- 4-10 кл/мл, резко повьппают температуру до и провод т инкубацию в течение 4 ч. Клетки собирают центрифугированием , ресуспендируют в буфере 0,01 М калий-фосфат (рН 7,0), 1 мК ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптозтанал; 0,4 мМ Had, разрушают ультразвуком. После разрушени центрифугируют (100000 Е. 1 ч, ). Бесклеточньй зкстракт используют дл определени ферментативной активности. Акти вность метилазы определ ют в реакционтгой смеси общим объемам 150 мкл, содержащей 40 мМ калий-фосфат (рН 7,8), 1 мМ ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптоэтанола, 20 мкг ДИК К. coli В834, 4 мМ S-аде- нозила (метил- Н) метионина и 50 мклE. coli B834 / pC1857 / p cells are grown at 28 ° C to a density of 2-4-10 cells / ml, the temperature is sharply increased and incubation is carried out for 4 hours. Cells are harvested by centrifugation, resuspended in a buffer of 0.01 M potassium phosphate (pH 7.0), 1 mK EDTA, 7 mM 2-mercaptoztanal; 0.4 mM Had, sonicate. After the destruction centrifuged (100,000 E. 1 h,). Cell-free extract is used to determine enzyme activity. Methylase reactivity is determined in a reaction mixture of total volumes of 150 µl containing 40 mM potassium phosphate (pH 7.8), 1 mM EDTA, 7 mM 2-mercaptoethanol, 20 µg DIK K. coli B834, 4 mM S-ada nosyl (methyl- N) methionine and 50 μl
выросшие на среде с йнтибиотиками,grown up on a medium with antibiotics,
провер ют на рестрикцию и модификацию gфермента в различных разведени х.checked for restriction and modification of the enzyme at various dilutions.
фага Л системой Eco.RII.Реакцию провод т 1 ч при 37°С,,добавСтепень рестрикции фага Д vir, вы-л ют равный объем 0,75 N натриевойphage L by the Eco.RII system. The reaction was carried out for 1 h at 37 ° С, and the restriction phase of phage D vir was added, and an equal volume of 0.75 N sodium was obtained
ращенного на штамме Е. coli СбОО, оп-щелочи, инкубируют 30 мин при 60 С.grown on E. coli strain SbOO, op-alkali, incubated for 30 min at 60 C.
щелочи.alkali.
редел ют сравнением титра фага при посеве его на штаммы Е. coli СбОО (А) и Е. coli C600/pVK33 и клоны, содержащие рекомбинантные плазмиды. При высеве фага на клоны, содержащие рекомбинантные плазмиды, несущие гены рестриктазы и метилазы Есо RII, они ограничивают сост фага по сравнению со штаммом , СбОО (А ) на два пор дка , как и на штамме C600/pVK33. Фа- |ги, выросшие на зтих клонах, содержащих рекомбинантные ДНК, высевают на штам- мы СбОО () и СбОО/рУКЗЗ. Фаги, выросшие на клонах, содержащих рекомби- нантные плазмиды, aecymjie гены Есо RII, дают одинаковый титр как на штамме СбОО (Д), так и на штамме C600/PVK33.It is determined by comparing the phage titer when it is sown on E. coli CABOO (A) and E. coli C600 / pVK33 strains and clones containing recombinant plasmids. When phage are plated onto clones containing recombinant plasmids carrying the restriction enzyme genes and Eco RII methylases, they limit the status of the phage compared to the strain CABOO (A) by two orders of magnitude, as on the C600 / pVK33 strain. Feigures grown on these clones containing recombinant DNA are sown on the COOS () and COOP / PPCR strains. Phages grown on clones containing recombinant plasmids, aecymjie genes of Eco RII, give the same titer on both SbOO (D) and C600 / PVK33 strains.
Из клеток клонов, обеспечивающих рестрикцию и модификацию фага Лvir, вьщел ют плазмидную ДНК, обозначен Of the clones that provide for the restriction and modification of the phage Lvir, plasmid DNA is isolated,
5five
0 0
составе три фрагмента, кото.рые обра- ауютс при гидролизе гшазмидной ДНК эиДонуклеазой рестрикции Pet I.The composition consists of three fragments that are formed by hydrolysis of gchasmid DNA with the restriction enzyme Pet I.
Выделенную ДНК pVK 11 трансформируют в штамм Е. coli В83А/рС1857« Трансформанты отбирают на среде, со- держащей ампициллин (50 ) -и канамицин (25 мкг/мл). ПлазмидаThe isolated pVK 11 DNA is transformed into E. coli B83A / pC1857 “Transformants are selected on medium containing ampicillin (50) -and kanamycin (25 μg / ml). Plasmid
рС1857 несет термочувствительную мутацию в гене репрессора CI, Таким образом можно увеличить транскрипцию, за счет температурных условий культи- |вировани .pC1857 carries a thermo-sensitive mutation in the CI repressor gene. In this way, transcription can be increased due to temperature conditions of cultivation.
Клетки Е. coli В834/рС1857/р ГКП выращивают при 28 С до плотности 2- 4-10 кл/мл, резко повьппают температуру до и провод т инкубацию в течение 4 ч. Клетки собирают центрифугированием , ресуспендируют в буфере 0,01 М калий-фосфат (рН 7,0), 1 мК ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптозтанал; 0,4 мМ Had, разрушают ультразвуком. После разрушени центрифугируют (100000 Е. 1 ч, ). Бесклеточньй зкстракт используют дл определени ферментативной активности. Акти вность метилазы определ ют в реакционтгой смеси общим объемам 150 мкл, содержащей 40 мМ калий-фосфат (рН 7,8), 1 мМ ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптоэтанола, 20 мкг ДИК К. coli В834, 4 мМ S-аде- нозила (метил- Н) метионина и 50 мклE. coli B834 / pC1857 / p cells are grown at 28 ° C to a density of 2-4-10 cells / ml, the temperature is sharply increased and incubation is carried out for 4 hours. Cells are harvested by centrifugation, resuspended in a buffer of 0.01 M potassium phosphate (pH 7.0), 1 mK EDTA, 7 mM 2-mercaptoztanal; 0.4 mM Had, sonicate. After the destruction centrifuged (100,000 E. 1 h,). Cell-free extract is used to determine enzyme activity. Methylase reactivity is determined in a reaction mixture of total volumes of 150 µl containing 40 mM potassium phosphate (pH 7.8), 1 mM EDTA, 7 mM 2-mercaptoethanol, 20 µg DIK K. coli B834, 4 mM S-ada nosyl (methyl- N) methionine and 50 μl
00
5five
щелочи, инкубируют 30 мин при 60 С.alkali, incubated for 30 min at 60 C.
щелочи.alkali.
Затем к пробам добавл ют 2 мл воды и 2 мл 10% трихлоруксусной кислоты. Осажденную ДНК нанос т на стеклово- локнистые фильтры, прбмьшают 0,01 М НС1 и спиртом. После просушки фильтров считают радиаактивность. За еди-; ницу активности метилазы Есо RII . - принимают то количество фермента, которое в указанных услови х включает 1 пкМ CHj - групп в ДНК за 1 ч при . Активность рестриктазы Есо RII определ ют в смеси 20 мМ трис-НС1 (рН 7,5), 10 мМ MgCli, 50 мМ NaCl, 1 мкг ДНК плазмеды pBR 322 (из Е. coli B834/pBR322) и различные развёде- НИЛ фермента. Реакцию ведут 15 мин . при 37°С. Продукты гидролиза ДНК анализируют в 1% агаровом геле. За еди- ницу активности принимают то количество фермента рестриктазы Есо RII, которое необхддимо дл полного расThen 2 ml of water and 2 ml of 10% trichloroacetic acid are added to the samples. The precipitated DNA is applied to glass fiber filters, pressed with 0.01 M HC1 and alcohol. After drying the filters consider the radioactivity. For one; Reduced activity of Eco methylase RII. - take the amount of enzyme, which in these conditions includes 1 pcM CHj - groups in DNA for 1 h at. The Eco RII restrictase activity is determined in a mixture of 20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10 mM MgCli, 50 mM NaCl, 1 µg of plasmid DNA pBR 322 (from E. coli B834 / pBR322) and various dilutions of the enzyme NIL. The reaction is 15 minutes. at 37 ° C. The products of DNA hydrolysis are analyzed on a 1% agar gel. For a unit of activity, take the amount of the enzyme restrictase Eco RII, which is necessary for the full
, 7 U53896. , 8, 7 U53896. , eight
цеплени . I мкг ДНК pBR 322 за 15 мни ог1 репликации плазмиды pBR 3221 се ,-- .. А «« .1- .. - l clinging. I μg of pBR 322 DNA for 15 minutes of replication of plasmid pBR 3221 ce, - .. A «« .1- .. - l
при . . Изобретение, no9Bcuuet получить шташ - продуцент pectpuRTadbi и ме- , типазы Есо. RII с уровнем синтеаа в этих е{ментов не менее 500000 ед. каждого на 1 г сырой биомассы клетбк,) что в 10 раз выпю уровни синтеза этих ферментов в сравйеннн с лучшими из fo .известных штаммов tat. . Invention, no9Bcuuet get stash - producing pectpuRTadbi and me-, Tipaz Eco. RII with synthea level in these e {cops is not less than 500000 units. each per 1 g of raw biomass cell), that 10 times I will drink levels of synthesis of these enzymes in comparison with the best of fo. known strains t
Лектичные Маркеры; itran ; хоз ин - Escherichia eelI.Lectic Markers; itran; host in - Escherichia eelI.
2, Способ конструировани плазмид- ной ДНК pVK 11, кодирующей ре стрикта- зу и метилазу Есо RII, заключающийс в том, что ДНК плазмиды pLC 2833 и/ ДНК плазмиды pVK 33 подвергают гидролизу эндонуклеазой рестрикции Pst 1, - полученйые Фрагменты смешивают и со- -. един ют ДНК-лигазой, затем смесью ре- комбинантных мблекул трансформируют2, The method for constructing plasmid DNA pVK 11 that encodes a restriction enzyme and Eco RII methylase, consisting in the DNA of the plasmid pLC 2833 and the DNA of the plasmid pVK 33, is subjected to hydrolysis with the restriction endonuclease Pst 1, the resulting Fragments are mixed and co- -. are combined with DNA ligase, then a mixture of recombinant cells is transformed
Ф о р мул а N и 3 о. б р е т ё ни Ф о р му а N and 3 о. b th e
1,Ч екомбинантна плазмидна ДНК (ук II, кодирующа рестриктазу и ме- тилазу Есо RII, размером 7,8 т,п.о, содержаща. ДНК вектора pLC 2833, размером 2,8 т.п.о, с левым промотором1, the H-recombinant plasmid DNA (BC II, encoding restriction enzyme and Eco RII methylase, 7.8 tons in size, b.p., containing the DNA of the pLC 2833 vector, 2.8 kb in size, with the left promoter
.фаги л мбда (Р) Pst Г - фрагмент ДНК плазмиды pVK 33 с геном рестрик- taзы и метнлазы Есо RII размером 5,0 т,п.о.{уникальные участки рестрикции дл эндрнуклеаз Есо RI, ХЬа I, Sal 1, расп6Ь: женные на рдсlambda (P) Pst G phages - DNA fragment of plasmid pVK 33 with restriction gene and Eco RII metlases 5.0 t, p. {unique restriction sites for Eco RI endnucleases, XBa I, Sal 1, section 6b : married on RDS
.сто нии О,.4 т,п.о от промотчзра Гц;.standards O, .4 t, p.o from promoter Hz;
ог1 репликации плазмиды pBR 3221 се 1- .. - l og1 plasmid replication pBR 3221 ce 1- .. - l
Лектичные Маркеры; itran ; хоз ин - Escherichia eelI.Lectic Markers; itran; host in - Escherichia eelI.
2, Способ конструировани плазмид- ной ДНК pVK 11, кодирующей ре стрикта- зу и метилазу Есо RII, заключающийс в том, что ДНК плазмиды pLC 2833 и/ ДНК плазмиды pVK 33 подвергают гидролизу эндонуклеазой рестрикции Pst 1, полученйые Фрагменты смешивают и со- един ют ДНК-лигазой, затем смесью ре- комбинантных мблекул трансформируют2, A method for constructing plasmid DNA pVK 11 that encodes a restriction enzyme and Eco RII methylase, consisting in the DNA of the plasmid pLC 2833 and the DNA of the plasmid pVK 33 are subjected to hydrolysis with the restriction endonuclease Pst 1, the resulting Fragments are mixed and combined DNA-ligase, then a mixture of recombinant cells is transformed
1 летки Е. coll СбОО (Л), трансформанты высевают На среду с амйицшши- ном и выросшие клоны провер ют на способность рестриктировать и модифицировать фаг л мбда из Клонов, которые рестриктировали и модифицировали фаг л мбда со специфичностью системы Есо RII, вьщел ют плазмидную ДНК pVK 11. ,1 year E. coli COOL (L), transformants plated On Wednesday with amyitzshina and the grown clones are tested for their ability to restrict and modify lambda phage from Clones, which have restricted and modified lambda phage with specificity of the Eco RII system, plasmid DNA pVK 11.,
3i Штамм бактерий Escherichia со11 ВКМ CR-288D -- продуцент рестрикта- зы.и метилазы Есо Rli,3i The strain of the bacteria Escherichia so11 VKM CR-288D - producing restrictase and methylase Eco Rli,
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874249217A SU1453896A1 (en) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874249217A SU1453896A1 (en) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1453896A1 true SU1453896A1 (en) | 1990-09-30 |
Family
ID=21305925
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874249217A SU1453896A1 (en) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1453896A1 (en) |
-
1987
- 1987-05-27 SU SU874249217A patent/SU1453896A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельстро СССР № 1026407, кл. С 12(N 15/00, опублик. 1983. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Sashihara et al. | Molecular cloning and expression of cellulase genes of alkalophilic Bacillus sp. strain N-4 in Escherichia coli | |
AT408660B (en) | NUCLEIC ACID MOLECULE CODING FOR CEPHALOSPORINE ACETYLESTERASE | |
KR20000060322A (en) | Gene Derived from Pseudomonas fluorescens Which Promotes the Secretion of Foreign Protein in Microorganism | |
EP0155189A2 (en) | Expression of cell wall degrading proteins and host cells harboring dna encoding such protein | |
JPH07508169A (en) | D-N-carbamoyl-amino acid amide hydrolase and hydantoinase | |
SU1431681A3 (en) | Method of producing alpha-galactosidase and strain of escherichia coli bacteria - producer of alpha-galactosidase | |
GB1588572A (en) | Process for the production of filamentous hybrid phages | |
KR100244066B1 (en) | Process for producing d-n-carbamoyl-alpha-amino acid | |
SU1453896A1 (en) | Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer | |
CN113637653B (en) | Esterase mutant Est8-XL with improved activity and application thereof | |
JPH10309192A (en) | Thermostable diaphorase gene | |
SU1539205A1 (en) | Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii | |
JPH07222587A (en) | New cephalosporin c acylase and its production | |
JP3489604B2 (en) | 5-aminolevulinic acid synthase gene | |
US5585260A (en) | PSM112 plasmid vector for expression in bacillus subtilis | |
RU2054037C1 (en) | Recombinant plasmid dna peco 29ki encoding synthesis of restriction endonuclease eco 29ki and strain escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 29ki | |
SU1294824A1 (en) | Prism recombination plasmida and method for constructing same and e. coli c 600 p5 rm strain - producer of site-specific endonuclease p5 and ii | |
SU1761805A1 (en) | Recombinant plasmid dna pil-2/21, encoding human interleukine-2, method of its construction and strain of bacteria esherichia coli - producer of human interleukine-2 | |
RU2070925C1 (en) | Strain of bacterium escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 71 ki | |
RU2038382C1 (en) | Strain of bacterium escherichia coli - a producer of endonuclease restriction cfrbi | |
JPH0731480A (en) | Dna fragment coding l-glutamyl-trna reductase | |
SU1751206A1 (en) | Recombinant plasmid dna pek8, encoding fibrinolysin in yersinia pestis, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli- a producer of yersinia pestis fibrinolysin | |
CN111500564A (en) | Penicillin G acylase mutant and application thereof in enzymatic synthesis of cefamandole | |
SU908793A1 (en) | Strain escherichia coli b834 (r , m ) carrying rsf plasmide 2124-test-substrate for restrictive endonuclease ecor11 | |
RU2054042C1 (en) | Recombinant plasmid dna eco 1831ri encoding synthesis of restriction endonuclease eco 1831ri, strain of bacterium escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 1831ri |