SU1539205A1 - Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii - Google Patents
Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii Download PDFInfo
- Publication number
- SU1539205A1 SU1539205A1 SU884394464A SU4394464A SU1539205A1 SU 1539205 A1 SU1539205 A1 SU 1539205A1 SU 884394464 A SU884394464 A SU 884394464A SU 4394464 A SU4394464 A SU 4394464A SU 1539205 A1 SU1539205 A1 SU 1539205A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- restrictase
- methylase
- ssoii
- dna
- plasmid
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии, в частности к генетической инженерии, и представл ет собой рекомбинантную плазмидную ДНК, обуславливающую синтез рестриктазы и метилазы SSOII и штамм, содержащий эту рекомбинантную ДНК - продуцент рестриктазы и метилазы SSOII. Цель изобретени - увеличение уровн синтеза рестриктазы и метилазы SSII. Изобретение позвол ет получить штамм с продукцией рестриктазы и метилазы SSOII - 350000 и 400000 ед. на 1 г сырой биомассы соответственно. 1 табл.The invention relates to biotechnology, in particular to genetic engineering, and is a recombinant plasmid DNA that causes the synthesis of restrictase and methylase SSOII and the strain containing this recombinant DNA producing restrictase and methylase SSOII. The purpose of the invention is to increase the level of synthesis of restrictase and methylase SSII. The invention allows to obtain a strain with the production of restriction enzyme and methylase SSOII - 350000 and 400000 units. per 1 g of raw biomass, respectively. 1 tab.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии , в частности к генетической инженерии , и представл ет собой реком- бинатную плазмидную ДНК, обуславливающую синтез рестриктазы и метила- зы SsoII и штамм, содержащий эту ре- комбинантную ДНК - продуцент рестриктазы и метилазы SsoII.The invention relates to biotechnology, in particular to genetic engineering, and is a recombinant plasmid DNA that causes the synthesis of restrictase and methylase SsoII and a strain containing this recombinant DNA producing restrictase and methylase SsoII.
Рестриктаза и метилаза SsoII узнает 5-членную вырожденную последовательность CCNGG, гидролизует ДНК с. образованием 5-членньтх липких концов, обеспечива высокую эффективность при лигировании, и метилирует центральный цитозин в последовательности узнавани CCNGG, образу модифицированное основание 5-метилцитозин.SsoII restriction enzyme and methylase recognize 5-membered degenerate CCNGG sequence, hydrolyze DNA from. forming 5-membered sticky ends, providing high ligation efficiency, and central cytosine is methylated in the CCNGG recognition sequence, forming the modified base 5-methylcytosine.
Целью изобретени вл етс увеличение синтеза рестриктазы и метилазы SsoII.The aim of the invention is to increase the synthesis of restrictase and SsoII methylase.
Поставленна цель достигаетс плазмидой d 24 и штаммом E.coli В834, содержащим эту плазмиду.The goal is achieved by plasmid d 24 and E. coli B834 strain containing this plasmid.
Плазмида d 24, кодирующа рестриктазу и метилазу SsoII. состоит из следующих элементов:Plasmid d 24 restricting enzyme and methylase coding SsoII. consists of the following elements:
плазмидна ДНК вектора pUC19 размером 2,69 тпо;the plasmid DNA of the pUC19 vector with a size of 2.69 tpo;
плазмидна ДНК Р4 из S.sormei47-, кодирующа рестриктазу и метилазу SsoII, размер которой 4,4 тпо.P4 plasmid DNA from S. sormei47-, encoding restrictase and SsoII methylase, which is 4.4 tpo.
Штамм - продуцент рестриктазы и метилазы SsoII получен трансформацией клеток E.coli B834 плазмидой d24.Strain producing restrictase and methylase SsoII obtained by transformation of E. coli B834 cells with plasmid d24.
елate
0000
соwith
юYu
LnLn
Содержание рестриктазы SsoII в сконструированном штамме равно 350000 ед./ биомассы клеток, метилазы 400000 ед.The content of SsoII restrictase in the designed strain is 350000 units / cell biomass, methylase 400000 units.
Пример 1. Плазмидную ДНК из штамма Е. coli XS13, содержащего две плазмиды; Р4 и Р9, выдел ют щелочным методом. Отделение ДНК плазмиды Р4 от высокомолекул рной ДНК Р9 провод т методом колоночной хроматографии на ДЕАЕ-целлюлозе.Example 1. Plasmid DNA from E. coli XS13 strain containing two plasmids; P4 and P9 are isolated by an alkaline method. The separation of the plasmid P4 DNA from the high molecular weight DNA P9 was carried out by DEAE-cellulose column chromatography.
Полученный препарат плазмиды Р4 и препарат вектора pUC19 используют дл конструировани плазмидыd24, которое провод т следующим образом. The resulting preparation of plasmid P4 and the preparation of vector pUC19 are used to construct plasmid d24, which is carried out as follows.
0,5 мкг ДНК вектора pUC19 инкубируют с эндонуклеазой рестрикции SalGl (5 ед.) в буфере, А (100 мМ NaCl, 50 мМ трис-HCl, рН 7,5; 10 мМ MgCl2, 1 мМ дитиотрейтол). 5 мкг плазмиды Р4 инкубируют с рестрикта- зой SalGl (10 ед.) в буфере А.Реакции провод т при 37°С 1 ч. После инкубации пробы прогревают при 65°С 15 мин. Анализ полноты гидролиза про- вод т с помощью электрофореза.0.5 μg of pUC19 vector DNA is incubated with the restriction enzyme SalGl (5 units) in buffer, A (100 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH 7.5; 10 mM MgCl2, 1 mM dithiothreitol). 5 μg of plasmid P4 are incubated with SalGl restriction enzyme (10 units) in buffer A. Reactions are carried out at 37 ° C for 1 hour. After incubation, the samples are heated at 65 ° C for 15 minutes. Analysis of the completeness of hydrolysis was carried out by electrophoresis.
Соединение ДНК плазмиды и вектора провод т в буфере: 0,05 М трис-HCl, рН 7,4, 0,01 М 1 мМ дитиотрейтол , О,1 мМ АТФ с добавлением ДНК- лигазы Фага Т4 (1000 ед/мл) из расчета 0,5 мкл фермента на 5 мкг ДНК в течение 12 ч при 10°С.The plasmid and vector DNA were combined in a buffer: 0.05 M Tris-HCl, pH 7.4, 0.01 M 1 mM dithiothreitol, O, 1 mM ATP with the addition of Phage T4 DNA ligase (1000 U / ml) from calculating 0.5 μl of enzyme per 5 μg of DNA for 12 hours at 10 ° C.
. Полученную смесь соединенных фрагI ментов используют при трансформации клеток E.coli PS200. Трансформацию провод т следующим образом. 50 мкл суспензии клеток E.coli PS200 внос т в 20 мкл жидкой питательной среды LB и выращивают при 37°С до титра кл/мл. Клетки охлаждают во льду 10 мин и центрифугируют при 5000g в течение 10-15 мин при 4°С, затем тща- тельно сливают супернатант. осадок суспендируют в 0,5 мл 0,1 М СаС1. Клетки выдерживают во льду 10-12 ч, после чего используют дл трансформации .. The resulting mixture of combined frag ments is used in the transformation of E. coli PS200 cells. The transformation is carried out as follows. 50 µl of the E. coli PS200 cell suspension is added to 20 µl of liquid nutrient medium LB and grown at 37 ° C to a cell / ml titer. The cells are cooled in ice for 10 minutes and centrifuged at 5000g for 10-15 minutes at 4 ° C, then the supernatant is carefully discarded. the precipitate is suspended in 0.5 ml of 0.1 M CaCl1. The cells were kept in ice for 10-12 hours, after which they were used for transformation.
На 200 мкл суспендированных клеток E.coli PS200 берут менее 20 мкл соединенных фрагментов ДНК и инкуби - руют 40 мин во льду, затем в течение 90 с при 42°С и оп ть 2 мин во льду, добавл ют 1,8 мл бульона LB и инкубируют 1 ч при 37°С. Затем 2 мл суспензии трансформированных клеток центрифугируют в течение Зев центFor 200 µl of suspended E. coli PS200 cells, take less than 20 µl of the connected DNA fragments and incubate for 40 min in ice, then for 90 s at 42 ° C and again for 2 min in ice, add 1.8 ml of LB broth and incubated for 1 h at 37 ° C. Then 2 ml of the suspension of transformed cells are centrifuged for 3 rpm
5 five
о about
00
5five
рифуге Эппендорф при комнатной температуре и ресуспендируют в 100 мкл LB с 0,01 М MgS04. В пробу добавл ют 100 мкл суспензии фага b 221 с титром 2, и инкубируют в течение 20 мин при 37°С. Затем клетки высевают на чашки с ампициллином в концентрации 50 мкг /мл .Eppendorf reef at room temperature and resuspended in 100 μl LB with 0.01 M MgSO4. A 100 µl suspension of phage b 221 titer 2 is added to the sample and incubated for 20 minutes at 37 ° C. The cells are then plated on ampicillin plates at a concentration of 50 μg / ml.
Из клеток клонов, выросших на чашках с ампициллином, выдел ют плаз- мидную ДНК, обозначенную d 24 и содержащую в своем составе вектор pUCl 9, несущий ген ВГа, определ ющий устойчивость к ампициллину, и плазмидную ДНК Р4, несущую гены рестриктазы и метилазы SsoII. Выделенную плазмидную ДНК d 24 подвергают рестрикцион- ному анализу.Plasmid DNA, designated d 24 and containing the vector pUCl 9, carrying the VG gene, determining the resistance to ampicillin, and plasmid DNA P4, carrying the genome of the restrictase and methylase SsoII, are isolated from the cells of clones grown on ampicillin plates. . The isolated plasmid DNA d 24 is subjected to restriction analysis.
Пример 2. Определение присутстви рестриктазы и метилазы SsoII в штамме E.coli PS200, содержащем плазмиду d 24.Example 2. Determining the presence of restrictase and methylase SsoII in E. coli strain PS200 containing plasmid d 24.
0,1 г биомассы E.coli PS200, содержащей плазмиду d 24, суспендируют в 170 мкл 0,01 мМ MJNCli, инкубируют при покачивании 2 ч при 4°С, центрифугируют при 10000 g 15 мин, затем 10 мкл супернатанта добавл ют в пробу, содержащую 1 мкг бактериофага Л в 30 мкл буфера А. Пробу инкубируют 1 ч при 37°С, после чего анализируют электрофорезом в 1,2%- ном агарозном геле. Картина рестрикции в случае штамма-Е. coli PS200, несущего плазмиду d 24, характерна цл рестриктазы SsoII.0.1 g of E. coli PS200 biomass containing plasmid d 24 is suspended in 170 µl of 0.01 mm MJNCli, incubated with shaking for 2 hours at 4 ° C, centrifuged at 10,000 g for 15 min, then 10 µl of the supernatant is added to the sample containing 1 µg of bacteriophage L in 30 µl of buffer A. The sample is incubated for 1 h at 37 ° C, and then analyzed by electrophoresis in 1.2% n-agarose gel. Restriction pattern in the case of strain-E. coli PS200 carrying plasmid d 24 is characterized by the restriction enzyme SsoII cl.
1 мкг плазмидной ДНК d 24, выделенной из штамма E.coli PS200, обрабатывают 10 ед. реетриктирующей эн- донуклеазы SSoII в буфере А в течение 2 ч при 37°С. Электрофорез показывает , что ДНК плазмидыd 24 при такой обработке не фрагментируетс , в то врем как плазмида pUC19 дает картину гидролиза, типичную дл плазмиды pUC19, обработанной рестрикта- зой SsoII. Эти данные свидетельствуют о защите мест узнавани рестриктазы SsoII в d 24 метилированием.1 μg of plasmid DNA d 24, isolated from E. coli strain PS200, is treated with 10 units. retryptically endonuclease SSoII in buffer A for 2 hours at 37 ° C. Electrophoresis shows that plasmid DNA 24 is not fragmented during such processing, while plasmid pUC19 gives a picture of hydrolysis typical of plasmid pUC19 treated with restriction enzyme SsoII. These data indicate the protection of recognition sites for SsoII restriction enzymes in d 24 by methylation.
Определение эффективности посева бактериофага Л b 221 на клетках штаммов , синтезирующих рестриктазу и метилазу SsoII, провод т следующим образом.,The determination of the efficiency of seeding bacteriophage L b 221 on cells of strains synthesizing restrictase and methylase SsoII is carried out as follows.,
Штамм E.coli PS200, несущий плазмиду d24, определ ющую синтез рестриктазы и метилазы SsoII, снижает эффективность посева бактериофагаThe strain E. coli PS200 carrying plasmid d24, determining the synthesis of restrictase and methylase SsoII, reduces the efficiency of seeding bacteriophage
на 5 пор дков по сравнению с эффективностью посева на нетрансформированном штамме E.coli PS200. После пассажа на клетках штамма E.coli PS200, трансформированных плазмидой d 24, фаг b 221 высевали на клетках штамма E.coli PS200, несущие плазмиду d 24 и штамма E.coli XS13, синтезирующих рестриктазу и метилазу SsoII. Снижени эффективности посева при этом не происходило, что свидетельствует о модификации ДНК фага ЛЬ 221, происход щей в клетках E.coli PS200, трансформированных плазмидой d24. by 5 orders of magnitude compared with the efficiency of seeding on the untransformed E. coli PS200 strain. After passage on E. coli PS200 strain cells transformed with plasmid d 24, phage b 221 was seeded on E. coli PS200 strain cells carrying plasmid d 24 and E. coli XS13 strain synthesizing SsoII methylase. At the same time, there was no decrease in the seeding efficiency, which indicates that DNA of phage LI 221 was modified in E. coli PS200 cells transformed with plasmid d24.
Пример 3. Плазмиду d 24 т трансформируют в штамме E.coli B834 по методу, описанному в примере 1, иExample 3. The plasmid d 24 t transform in the strain E. coli B834 according to the method described in example 1, and
Активность рестриктазы SsoII определ ют в серийных дес тикратных разведени х супернатанта, 1 мкг ДНК фа- ,га А в 30 мкл буфера А (см.пример 1) инкубируют с 2 мкл каждого разведени . Уровень активности рестриктазы SsoII составл ет 350000 ед.на 1 г биомассы.SsoII restrictase activity was determined in serial ten-fold dilutions of the supernatant, 1 µg of fa-a DNA, ha A in 30 µl of buffer A (see Example 1) was incubated with 2 µl of each dilution. The activity level of SsoII restrictase is 350000 units per 1 g of biomass.
Ю Активность метилаэы определ ют в реакционной смеси с общим объемом 100 мкл, содержащей 1 мкг акцепторной ДНК, 0,5 МкКи 3H-S-аденозилме- тионина и 5 мкл каждого из дес тикрат15 ных разведений сулернатанта. Инкубацию провод т в течение различных временных промежутков от J до 24 ч при 37°С. Пробы нанос т на фильтрыThe activity of methylae is determined in a reaction mixture with a total volume of 100 µl containing 1 µg of acceptor DNA, 0.5 μCi of 3H-S-adenosyl-methionine and 5 µl of each of the tenfold dilutions of the sulernatant. Incubation is carried out for various time periods from J to 24 hours at 37 ° C. Samples are applied to filters.
GF/C, осаждают 5%-ной трихлоруксус- получают штамм - продуцент рестриктазы20 ной кислотой, отмывают 70%-ным эта- и метилазы SsoII.нолом, высушивают и просчитывают раШтамм Escherichiai. coli B834, не- диоактивность в толуоловом сцинтил- сущий плазмиду d 24 - продуцент реет- л торе. За единицу ферментативной риктазы и метилазы SsoII, характери- активности принимают количество фер- зуетс следующими признаками. 25 мента, обеспечивающего полную модиКультурально-морфологические . Клет- фикацию 1 мкг акцепторной ДНК за ки пр мые, палочковидные, неподвижные, 24 ч.GF / C, precipitated with 5% trichloroacetus, a strain is obtained - producing restrictase with 20% acid, washed with 70% eta- and methylase SsoIInol, dried and calculated using Escherichiai. coli B834, a non-radioactivity in toluene scintille plasmid d 24 - producing retreator. For the unit of enzymatic rictase and methylase SsoII, the characteristic activity is taken by the amount fermented by the following traits. 25 cops, providing a complete modicultural morphological. The cell line is 1 µg of acceptor DNA, direct, rod-shaped, immobile, 24 h.
грамотрицательные, лактозопозитивные. Уровень активности метилазы, опре- При рассеве на чашки с 1,3%-ным МПА деленный в штамме E.coli B834, несу- рост в виде отдельных колоний, иног- 30 щим плазмиду d24, соответствуетgram-negative, lactose-positive. The level of activity of methylase, defined when seeding on plates with 1.3% MPA divided in E. coli strain B834, the lack of growth in the form of individual colonies, which contributes to plasmid d24, corresponds to
400000 ед. на 1 г биомассы.400,000 units per 1 g of biomass.
В таблице приведены значени уров- ней синтеза рестриктазы и метилазы SsoII в штаммах E.coli, полученных 35 трансформацией плазмиды d 24.The table shows the levels of synthesis of restrictase and SsoII methylase in E. coli strains obtained by transformation of plasmid 35 d 35.
Изобретение позвол ет получить урода в R-форме с неровными кра ми. Хо- jpomo растет на плотных и жидких питательных средах (МПА, МПБ, LB-буль- он и LB-arap).The invention makes it possible to obtain a freak in R-form with jagged edges. Ho-jpomo grows on solid and liquid nutrient media (MPA, BCH, LB-bulon and LB-arap).
Физиолого-биохимические. Клетки растут в пределах 4-45 С при оптимуме рН 6,8-7,5. Штамм разлагает глюкозу , лактозу, маннит с образованием кислоты, не разлагает сахарозу, сбраживает мальтозу, ксилозу, сорбит, дульцит, рамнозу, образует индол и сероводород, про вл ет устойчивость к ампициллину (до 100 мкг/мл), обусловленную наличием плазмиды d 24.Physiological and biochemical. Cells grow in the range of 4-45 C at an optimum pH of 6.8-7.5. The strain decomposes glucose, lactose, mannitol with the formation of acid, does not decompose sucrose, ferments maltose, xylose, sorbitol, dulcite, rhamnose, forms indole and hydrogen sulfide, exhibits resistance to ampicillin (up to 100 µg / ml), due to the presence of plasmid d 24 .
Пример 4. Культуру клеток E.coli B834, несущих ппазмидуd 2Ь, выращивают в 1 л среды LB с 50 мкг/мл ампициллина при 37°С до титра 4 10 кл/мл. Клетки осаждают центрифугированием (5000 g, 15 мин).Example 4. The culture of E. coli B834 cells bearing pazmidd 2b is grown in 1 l of LB medium with 50 μg / ml ampicillin at 37 ° C to a titer of 4 10 cells / ml. Cells are pelleted by centrifugation (5000 g, 15 min).
1 г сырой биомассы суспендируют в 5 мл буфера, содержащего 50 мМ трис- НС1, рН 7,6; 0,1 М NaCl-, 7 мМ 2-мер- каптоэтанола, 100 мкг/мл лизоцима и выдерживают при 0°С 10 мин. Клетки разрушают ультразвуком. Экстракт получают центрифугированием при 2 С (48000) в течение 1 ч.1 g of raw biomass is suspended in 5 ml of buffer containing 50 mM Tris-HCl, pH 7.6; 0.1 M NaCl-, 7 mM 2-mercaptoethanol, 100 μg / ml lysozyme and incubated at 0 ° C for 10 minutes. The cells are destroyed by ultrasound. The extract is obtained by centrifugation at 2 ° C. (48,000) for 1 hour.
вень синтеза рестриктазы и метилазы SsoII в штамме, содержащем плазмиду d24, не менее 350000 и 400000 ед. на 4Q 1 г биомассы соответственно.The number of synthesis of restrictase and methylase SsoII in the strain containing plasmid d24 is at least 350000 and 400000 units. on 4Q 1 g of biomass, respectively.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884394464A SU1539205A1 (en) | 1988-03-18 | 1988-03-18 | Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884394464A SU1539205A1 (en) | 1988-03-18 | 1988-03-18 | Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1539205A1 true SU1539205A1 (en) | 1990-01-30 |
Family
ID=21362152
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884394464A SU1539205A1 (en) | 1988-03-18 | 1988-03-18 | Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1539205A1 (en) |
-
1988
- 1988-03-18 SU SU884394464A patent/SU1539205A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Молекул рна генетика, микробиологи и вирусологи , 1987. т.12, с.26-29. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US9771607B2 (en) | Method of constructing a recombinant Bacillus subtilis that can produce specific-molecular-weight hyaluronic acids | |
TW201839140A (en) | A composition for producing tagatose and methods for producing tagatose using the same | |
Hall | Experimental evolution of a new enzymatic function. Kinetic analysis of the ancestral (ebgo) and evolved (ebg+) enzymes | |
WO2023184822A1 (en) | Enzyme co-expression system and use thereof in synthesis of sialic acid | |
JPH07508169A (en) | D-N-carbamoyl-amino acid amide hydrolase and hydantoinase | |
US5418156A (en) | Agarase enzyme system from alteromonas strain 2-40 | |
KR20200134333A (en) | Biosynthetic pathway engineered for histamine production by fermentation | |
Sako et al. | Coordinate expression of Escherichia coli dnaA and dnaN genes | |
CN111117942B (en) | Genetic engineering bacterium for producing lincomycin and construction method and application thereof | |
CN117511889B (en) | Enzyme and application thereof in preparation of unnatural amino acid dipeptide | |
SU1539205A1 (en) | Recombinant plasmide dna d24 coding synthesis of restrictase and methylase, and strain of escherichia coli bacteria as producer of restrictase and methylase sso ii | |
US4788148A (en) | Plasmid with stabilized inheritance | |
KR100387302B1 (en) | Recombinant enzyme converts maltose to trehalose | |
US5395927A (en) | DNA-fragment having the cyclodextrin glycosyltranferase gene | |
CA2179439A1 (en) | Sucrose metabolism mutants | |
CN116710471A (en) | Mutant host cells with reduced cell motility | |
CN114736884A (en) | Cytidine monophosphate kinase mutant and gene and application thereof | |
US5308765A (en) | Esterase genes, esterase, recombinant plasmids and transformants containing the recombinant plasmid and methods of producing optically acitve carboxylic acids and their enantiomeric esters using said transformants | |
Friehs et al. | Cloning and expression of the levanase gene in Alcaligenes eutrophus H16 enables the strain to hydrolyze sucrose | |
JP3563432B2 (en) | Method for propagating a vector using an E. coli host | |
RU2813511C2 (en) | Recombinant strain based on escherichia coli and method of its construction and use | |
RU2177998C2 (en) | Method of preparing recombinant uridine phosphorylase, recombinant plasmid dna perurph01 and strain of escherichia coli bl 21(dez)/perurph01 for its realization | |
SU1453896A1 (en) | Recombinant plasmide dna puk11 coding restrictase and methylase ecor 11, and strain of escerichia coli bacteria as their producer | |
JP2763213B2 (en) | Process for producing optically active carboxylic acid and its enantiomer ester | |
SU1532585A1 (en) | Recombinant plasmide dna encoding methylase sso ii, and strain of escherichia coli bakteria as producer of methylase sso ii |