SA111320572B1 - A PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique and DNA incomplete shearing strategy - Google Patents
A PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique and DNA incomplete shearing strategy Download PDFInfo
- Publication number
- SA111320572B1 SA111320572B1 SA111320572A SA111320572A SA111320572B1 SA 111320572 B1 SA111320572 B1 SA 111320572B1 SA 111320572 A SA111320572 A SA 111320572A SA 111320572 A SA111320572 A SA 111320572A SA 111320572 B1 SA111320572 B1 SA 111320572B1
- Authority
- SA
- Saudi Arabia
- Prior art keywords
- pcr
- primer
- pairs
- dna
- hla
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 103
- 238000010008 shearing Methods 0.000 title claims abstract description 33
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 title claims abstract description 23
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 claims abstract description 75
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 claims abstract description 6
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims description 49
- 102100028972 HLA class I histocompatibility antigen, A alpha chain Human genes 0.000 claims description 33
- 108010075704 HLA-A Antigens Proteins 0.000 claims description 33
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 19
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 13
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 claims description 11
- 239000002243 precursor Substances 0.000 claims description 11
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 10
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 claims description 10
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 10
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 9
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 9
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 9
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 8
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 claims description 7
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 claims description 7
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 7
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 6
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 6
- 238000001712 DNA sequencing Methods 0.000 claims description 5
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 4
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 2
- 102100040485 HLA class II histocompatibility antigen, DRB1 beta chain Human genes 0.000 claims description 2
- 108010039343 HLA-DRB1 Chains Proteins 0.000 claims description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 2
- 230000000712 assembly Effects 0.000 claims 1
- 238000000429 assembly Methods 0.000 claims 1
- 230000003412 degenerative effect Effects 0.000 claims 1
- 230000000246 remedial effect Effects 0.000 claims 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 abstract description 4
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 abstract description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 59
- 101001100327 Homo sapiens RNA-binding protein 45 Proteins 0.000 description 21
- 102100038823 RNA-binding protein 45 Human genes 0.000 description 21
- 230000008569 process Effects 0.000 description 18
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 13
- 230000008707 rearrangement Effects 0.000 description 12
- 239000003999 initiator Substances 0.000 description 8
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 7
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 7
- 108700024394 Exon Proteins 0.000 description 6
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 5
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 5
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 4
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 4
- 239000003147 molecular marker Substances 0.000 description 4
- 102100028976 HLA class I histocompatibility antigen, B alpha chain Human genes 0.000 description 3
- 108010058607 HLA-B Antigens Proteins 0.000 description 3
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 3
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 108700028369 Alleles Proteins 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 2
- 238000007259 addition reaction Methods 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 2
- 238000013461 design Methods 0.000 description 2
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 2
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 2
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 2
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 1
- 241001504639 Alcedo atthis Species 0.000 description 1
- 101150019028 Antp gene Proteins 0.000 description 1
- 102000012410 DNA Ligases Human genes 0.000 description 1
- 108010061982 DNA Ligases Proteins 0.000 description 1
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 1
- 102210048119 DRB1*12:01 Human genes 0.000 description 1
- 102210012675 DRB1*15 Human genes 0.000 description 1
- 102210047362 DRB1*15:01 Human genes 0.000 description 1
- 206010059866 Drug resistance Diseases 0.000 description 1
- 102000020897 Formins Human genes 0.000 description 1
- 108091022623 Formins Proteins 0.000 description 1
- 206010064571 Gene mutation Diseases 0.000 description 1
- 101150118346 HLA-A gene Proteins 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 241000283986 Lepus Species 0.000 description 1
- 102000029749 Microtubule Human genes 0.000 description 1
- 108091022875 Microtubule Proteins 0.000 description 1
- 108091000080 Phosphotransferase Proteins 0.000 description 1
- 101000972349 Phytolacca americana Lectin-A Proteins 0.000 description 1
- 238000011529 RT qPCR Methods 0.000 description 1
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 1
- 230000003044 adaptive effect Effects 0.000 description 1
- 239000003463 adsorbent Substances 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 238000012937 correction Methods 0.000 description 1
- SUYVUBYJARFZHO-RRKCRQDMSA-N dATP Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@H]1C[C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)O1 SUYVUBYJARFZHO-RRKCRQDMSA-N 0.000 description 1
- SUYVUBYJARFZHO-UHFFFAOYSA-N dATP Natural products C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1C1CC(O)C(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)O1 SUYVUBYJARFZHO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 230000009977 dual effect Effects 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 239000012149 elution buffer Substances 0.000 description 1
- 238000001976 enzyme digestion Methods 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000007937 lozenge Substances 0.000 description 1
- 238000007886 magnetic bead extraction Methods 0.000 description 1
- 238000002844 melting Methods 0.000 description 1
- 230000008018 melting Effects 0.000 description 1
- 230000029052 metamorphosis Effects 0.000 description 1
- 210000004688 microtubule Anatomy 0.000 description 1
- 230000001343 mnemonic effect Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 238000007481 next generation sequencing Methods 0.000 description 1
- 102000020233 phosphotransferase Human genes 0.000 description 1
- 239000006187 pill Substances 0.000 description 1
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 1
- 238000011176 pooling Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000012175 pyrosequencing Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 210000001562 sternum Anatomy 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 101150003509 tag gene Proteins 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000010200 validation analysis Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6869—Methods for sequencing
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
الملخص: يوفر الاختراع الحالي طريقة لتحديد ترتيب PCR (PCR sequencing method)، يتم فيها استخدام إستراتيجية مؤشر المادة البادئة (primer index) + إستراتيجية قص غير كامل لأجل DNA (deoxyribonucleic acid) (DNA incomplete shearing strategy) + تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني (second sequencing technique) (تقنية تحديد ترتيبات مزدوجة الأطراف (Pair-End sequencing technique)) كما أنها تتميز بارتفاع إنتاجيتها وقلة تكلفتها فيما يخص محدد ترتيبات الجيل الثاني (second generation sequencer)، مما يجعل الطول الذي يمكن تحديد ترتيبه لمنتج PCR الذي تم الحصول عليه أكبر من طول ترتيب (sequencing length) محدد الترتيب (sequencer)، وهذا يمكن من توسيع مجال تطبيقه. كما يوفر الاختراع الحالي أيضا مؤشرات مادة بادئة (primer indexes) لطريقة تحديد ترتيب PCR (PCR sequencing method) الواردة أعلاه، واستخدام هذه الطريقة في تحديد النوع الجيني (genotyping)، تحديدا تحليل HLA.Abstract: The present invention provides a PCR sequencing method, in which a primer index strategy + a deoxyribonucleic acid (DNA incomplete shearing strategy) strategy + a second generation sequence determination technique ( second sequencing technique (Pair-End sequencing technique) is a high throughput and low cost second generation sequencer, making the sequenceable length of the obtained PCR product It is greater than the sequencing length of the sequencer, which can expand its application range. The present invention also provides primer indexes for the PCR sequencing method described above, and the use of this method for genotyping, namely HLA analysis.
Description
v وإستراتيجية DNA معتمدة على تقنية الوسم الجزيئي لحمض PCR طريقة تحديد ترتيبv And a DNA strategy based on the molecular marker technique of PCR acid, an order determination method
DNA قص غير كامل لحمضDNA is an incomplete cut of an acid
A PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique andA PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique and
DNA incomplete shearing strategy الوصف الكامل خلفية الاختراع «(nucleic acid sequencing) يتعلق الاختراع الحالي بمجال تحديد ترتيب حمض توري على جانب (PCR sequencing) PCR بصفة خاصة المجال التقني لتحديد ترتيبDNA incomplete shearing strategy Full description Background of the invention “(nucleic acid sequencing) The present invention relates to the field of determining the sequence of Tory acid on the side of PCR (PCR sequencing) in particular the technical field of determining the sequence of
PCR آخر؛ يتعلق الاختراع الحالي أيضا بالمجال التقني لتحديد مؤشر/ شفرة أعمدة تعد طرق الاختراع مناسبة بصفة خاصة في تقنية تحديد .(PCR-index/barcode) © خصوصا تقنية تحديد «(second generation sequencing) ترتيبات الجيل الثاني في تقنيات تحديد ترتيبات الجيل (Pair-end sequencing) لأطراف ١ مزدوجة clangother PCR; The present invention also relates to the technical field of defining a barcode/index. The methods of the invention are particularly suitable in the identification technique of “PCR-index/barcode” ©, in particular the technique of determining “(second generation sequencing) arrangements in second generation Pair-end sequencing techniques for paired ends 1 clang
HLA وأيضا في تحديد النوع الجيني «(second generation sequencing) الثاني ضلل). genotyping)HLA and also in determining the genetic type “(second generation sequencing) misleading.” genotyping)
DNA هي تقنية تجرى كما يلي: الحصول على جز PCR إن طريقة تحديد ترتيب ٠ واستخدامه في الكشف عن PCR للجين ذي الأهمية بواسطة طريقة (deoxyribonucleic acid) وذلك للحصول على معلومات عن ترتيب الجينء يتسم بالقوة والدقة ويستخدم DNA ترتيب على نطاق كبير منذ زمن طويل في مجال الكشف عن طفرات الجين وتحديد النوع الجيني. إن تقنية مؤشر/ شفرة أعمدة PCR يمكن فيها إدخال ترتيب مؤشر لمادة بادئة نوعي في ١ كل عينة أثناء عملية PCR بإضافة ترتيب مؤشر لمادة بادئة عند الطرف 5 من المادة البادئة «(Patent Cooperation Treaty) PCT وذلك لمعالجة عينات متعددة في نفس الوقت عند مراحل بخلاف مرحلة PCR في عملية الكشف في تقنية تحديد ترتيب DNA للجيل الثاني ْ المتمثلة في محددات ترتيب ABI Solid «Roche 454 «Illumina GA ومحددات ترتيب أخرى كبيرة النطاق وعالية الإنتاجية وفردية الجزيئات؛ وفي النهاية يمكن الحصول على نتيجة الكشف لكل عينة بواسطة مؤشر المادة البادئة النوعي لكل عينة؛ وتتميز هذه التقنية بقلة تكاليفها وارتفاع إنتاجيتها وقيامها بالكشف المتزامن لأماكن جين متعددة لعدد كبير من العينات.DNA is a technique that takes place as follows: Obtaining a PCR fragment The method of determining the order of 0 and using it in the detection of the PCR of the gene of interest by the method (deoxyribonucleic acid) in order to obtain information about the order of the gene is characterized by strength and accuracy and is used DNA sequencing has long been widely used in the field of gene mutation detection and genotype determination. The PCR barcode/index technique is in which an indicator sequence of a specific starting material can be inserted into 1 of each sample during the PCR process By adding an indicator arrangement of a starting material at the 5th end of the starting material “(Patent Cooperation Treaty) PCT in order to process multiple samples at the same time at stages other than the PCR stage in the detection process in the technology of determining the second generation DNA arrangement represented by in ABI Solid “Roche 454” Illumina GA determinants and other large-scale, high-yield, single-molecule determinants; Finally, the detection result for each sample can be obtained by the qualitative starting material indicator for each sample; This technique is characterized by its low costs, high productivity, and its simultaneous detection of multiple gene locations for a large number of samples.
. إن تقنية تحديد ترتيب DNA للجيل الثاني يمكن تأديتها على gia قصير نسبيا في عملية تحديد a fll المستمرة مقارنة بتقنية تحديد ترتيب DNA للجيل الأول (طريقة (Sanger بالنسبة إلى «(Genome Analyzer from Illumina Corporation) lumina GA يكون أطول امتداد لترتيب GA معنصتن]11 الحالي هو ٠00 إمرار نطاقي. عندما يكون طول منتج PCR ٠ أكثر من Yoo إمرار نطاقي؛ لا يستطيع GA 1110001208 عن طريق تحديد ترتيب PCR مباشرة؛ أن يحدد ترتيب منتج PCR المكتمل الكلي؛ للحصول على معلومات عن ترتيب DNA SH لمنتج PCR الذي تم الكشف عنه. لهذاء إن قصر طول الترتيب يحد من تطبيق تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني. هناك غالبا حاجة لطريقة جديدة للتغلب على القصور الموجودة في محدد ترتيب DNA للجيل الثاني الذي له ترتيب بطول غير كاف في مجال تحديد ترتيب 208.٠ بغض النظر عن الحاجة لتحسين تقنية تحديد الترتييات للحصول على ترتيب قراءة فعلي أطول. الوصف العام للاختراع عند استخدام تفنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني لأداء تحليل الترتيب تزامنيا على ترتيبات خاصة لجين نوعي في عدد كبير من العينات؛ تطبق عموماً إستراتيجية تحديد ترتيب PCR Ye مباشرةٍ باستخدام اتحاد من تقنيات مؤشر المادة البادئة + تقنيات تحديد ترتيبات الجيل الثاني. عندما يقوم طول الترتيب لمحدد الترتيب بتغطية الطول الكامل لمنتج (PCR قد تلبى الاحتياجات بتطبيق التقنية الواردة أعلاه. وعلى خلاف هذاء عندما لا يقوم طول الترتيب لمحدد cas il بتغطية الطول الكامل لمنتج (PCR هناك dala لاستخدام محدد ترتيبات الجيل الثاني الآخر (مثلا (Roche 454 GS-FLX مع ترتيب أطول ليحل محل ¢lllumina GA وبعد هذا إذا ٠ لم يلبي أيضا طول الترتيب الاحتياجات المذكورة؛ فهناك حاجة لاستخدام محدد ترتيب للجيل الأول مع فقد ميزة التوفير في التكلفة والإنتاجية. في الواقع؛ يكون لدى Illumina GA إنتاجية تحديد ترتيب Alle بصورة فائقة. لكن يكون طول ترتيبه ٠١ إمرار نطاقي؛ ويكون Roche 454 68-713 (sad طول ترتيب يصل إلى إمرار نطاقي» لكن تكون تكلفة تحديد ترتيبه أعلى وتكون إنتاجية تحديد ترتيبه أقل؛ إن YO محدد ترتيبات الجيل الأول له طول ترتيب يصل إلى ما يزيد عن ٠٠٠١ إمرار نطاقي؛ لكن تكون تكلفة تحديد ترتيبه وانتاجية تحديد ترتيبه متماثلتين فيما يخص محدد ترتيبات الجيل الثاني .. The second generation DNA sequencing technique can be performed on a relatively short gia in a continuous a fll sequencing process compared to the first generation DNA sequencing technique (Sanger method for Genome Analyzer from Illumina). Corporation) lumina GA The longest extension of the current 11-pass GA sequence is 000 domain pass When the length of the PCR product is 0 more than Yoo domain pass; GA 1110001208 cannot by specifying The PCR sequence directly determines the sequence of the overall completed PCR product to obtain information on the DNA SH sequence of the detected PCR product.Therefore, the short length of the sequence limits the application of the second generation sequence identification technique There is often a need for a new method to overcome the shortcomings of the second generation DNA sequence selector having an insufficient sequence length in the 208.0 sequence determination field apart from the need to improve the sequence determination technique to obtain a longer actual read sequence. Of the invention when a second-generation rearrangement determination technique is used to simultaneously perform sequence analysis on specific sequences of a specific gene in a large number of samples; the direct PCR Yee rearrangement determination strategy is generally applied using a combination of primer indicator techniques + second-generation rearrangement identification techniques. When the sequence length of the sequence specifier covers the full length of the PCR product the needs may be met by applying the above technique. Contrary to this when the sequence length of the cas il determinant does not cover the full length of the PCR product there is dala to use the sequence selector Other 2nd generation (eg Roche 454 GS-FLX) with a longer arrangement to replace ¢lllumina GA and then 0 if the arrangement length also does not meet the stated needs, there is a need to use a 1st generation arrangement limiter with the cost saving advantage lost and throughput.In fact, Illumina GA has the throughput of SuperAlle. but its order-length is 01 bandpass; Roche 454 68-713 (sad) is the order-length of up to bandwidth" but the cost Higher disaggregation and lower disaggregation throughput; YO the first generation disaggregator has a disposition length of more than 1001 zonal pass; but the disaggregation cost and disaggregation throughput are the same as for the second generation disaggregator.
¢ هل توجد أي تقنية تهتم بكل من التكلفة والإنتاجية وتزيد طول الترتيب لمحدد الترتيب على منتج SPCR يمكن الاستفادة على أمثل نمو من الإنتاجية العالية لاتحاد مؤشر المادة البادئة + إستراتيجية قص غير كامل DNA + تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني في الاختراع الحالي؛ وكذلك أيضا قلة تكلفة محدد ترتيبات الجيل الثاني؛ مع جعل الطول الذي له ترتيب قابل 0 للتحديد من محدد الترتيب على منتج PCT يصل إلى ما يزيد عن طول الترتيب ذاته؛ وذلك لتوسيع نطاق تطبيقه. علاوة على هذاء إن تقنيات تحديد ترتيبات الجيل الثاني المستخدمة في الاختراع الحالي تتضمن تقنية تحديد ترتيبات مزدوجة الأطراف في تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني؛ ويكون لتقنية تحديد ترتيب PCR ترتيب مرجعي من DNA للقالب PCR يوفر الاختراع الحالي طريقة لتحديد ترتيب 7018 والتي بواسطتها يتم تقليل القيود الناجمة ٠ عن قصر طول الترتيب لتقنية تحديد ترتيب DNA من الجيل الثاني؛ ely لتوسيع استخدامه في مجال تطبيقات تحديد ترتيب PCR يعتمد تصميم مؤشر المادة البادئة على القاعدة التجريبية. Lad يخص سمات قاعدة ترتيب GA م#صل«الاء؛ فإن تصميم مؤشر المادة البادئة للاختراع الحالي يهتم بالعوامل التالية: .١ تجنب الترتيب الذي يتضمن أكثر من * (Tl) متكررات قاعدة فردية في ترتيب مؤشر ١ المادة البادئة؛ . تراوح المحتوى الإجمالي من القاعدة A والقاعدة © على نفس المكان في كل مؤشرات المادة البادئة بين 77١ و7070 من محتوى كل القواعدء 3. تراوح محتوى GC لمؤشر المادة البادئة ذاته بين ELE Teg Ee بين مؤشرات المادة البادئة يزيد عن 4 قواعد؛ . تجنب ترتيب مماثل للغاية مع المادة البادثة لترتيب GA 8صن0ن111 في مؤشرات المادة البادئة؛ .١ قلة حدوث قمط حاد ودايمر (dimmer) في المواد البادئة PCR بعد إضافة مؤشر Ye المادة البادثة إلى المواد البادئة PCR يقدم الاختراع الحالي مؤشر مادة بادئة إلى طرفين من منتج PCR من ناحية تفاعل PCR (قد تكون مؤشرات المادة البادئة متماثلة أو مختلفة)؛ بحيث يستطيع مؤشر المادة البادئة على أي طرف في منتج PCR أن يميز معلومات العينة لمنتج PCR تمييزا خاصا. يخضع منتج PCR لعملية قص غير ALIS يشير القص غير الكامل المستخدم هنا إلى المنتج الذي تم © الحصول عليه بالقص والذي يتضمن كل من منتج PCR كامل لم يتم قصه ومنتج PCR تم قصه جزئيا. تتضمن طريقة القص؛ بدون تحديد؛ طريقة قص كيميائي (مثلا هضم إنزيم (enzyme) وطريقة al فيزيائي؛ تشتمل طريقة القص الفيزيائي المذكورة على طريقة القص¢ Is there any technology that takes care of both cost and throughput and increases the sequence length of the sequence determinant on a SPCR product that can be optimized for growth from the high throughput of the primer indicator combination + incomplete DNA cutting strategy + second generation sequence determination technique in the present invention; Likewise, the low cost of the second generation arrangement selector; making the length of order 0 selectable from the order specifier on the PCT product reach greater than the length of the order itself; in order to expand its scope of application. In addition to this, the second generation arrangement identification techniques used in the present invention include a double-ended arrangement identification technique in the second generation arrangement identification technique; The PCR sequence determination technique has a reference sequence of template DNA PCR The present invention provides a method for sequence determination 7018 by which the limitations arising from the short sequence length of the second generation DNA sequence determination technique are reduced; ely to expand its use in the field of PCR sequence determination applications The design of the starting material indicator is based on the empirical rule. Lad pertains to the attributes of the GA-ranking rule m#sl«Alaa; The design of the primer index of the present invention is concerned with the following factors: .1 avoiding an arrangement that includes more than * (Tl) single base repeats in the 1 primer index arrangement; . The total content of base A and base © at the same place in all the starting material indices ranged between 771 and 7070 of the content of all 3 bases. The GC content of the same starting material indicator ranged between ELE Teg Ee among the starting material indices more than 4 bases; . Avoid an arrangement very similar with the starting material to that of GA 8Sn0N111 in the starting material indicators; 1. The lack of occurrence of sharp clamping and dimmer in the PCR primers after adding the indicator “Ye” to the PCR primers. The present invention introduces a primer indicator to two ends of the PCR product on the one hand PCR reaction (indicators of the starting material may be the same or different); So that the indicator of the starting material on any end of the PCR product can distinguish the sample information of the PCR product in a special way. PCR product undergoes a non-ALIS shearing process. Incomplete shearing used herein refers to product obtained by shearing which includes both a complete uncut PCR product and a partially trimmed PCR product. The cutting method includes; without limitation chemical shearing method (eg enzyme digestion) and physical al method; said physical shearing method includes the shearing method
بالموجات فوق الصوتية أو طريقة القص الميكانيكي؛ ضمن غيرها من الطرق. يخضع DNA الذي تم قصه إلى ارتحال كهربي بهلام oY agarose تنقى وتستخلص كل نطاقات DNA التي تتواجد أطوالها بين طول القراءة لمحدد الترتيب وطول DNA الأكثر ملاءمة لمحدد الترتيب (يكون Illumina GA Mie له طول 008 أكثر ملاءمة ٠٠١0 إمرار نطاقي؛ وهو طول ٠ .0318 الأصلي بدون طول المادة المهايئة للمكتبة). تتضمن طريقة التنقية؛ بدون تحديد؛ الاستخلاص بالارتحال الكهربي والاستخلاص بخرزات مغناطيسية؛ وطرق أخرى. تستخدم أجزاء DNA المستخلصة لإنشاء مكتبة الترتيب من خلال عملية إنشاء مكتبة الترتيب بواسطة محدد ترتيبات الجيل الثاني؛ وكذلك لتحديد الترتيب بعد ذلك؛ يفصل بواسطة عملية إنشاء مكتبة الترتيب PCR-FREE لأجل إنشاء مكتبة الترتيب ويفضل تحديد ترتيبها بواسطة طريقة ٠ الطرف المزدوج (08-200. تشير عملية إنشاء مكتبة ترتيب PCR-FREE إلى طرق معروفة جيدا للماهرين في الفن. في بيانات الترتيب الإجمالية؛ يمكن التحقق من المعلومات الخاصة بالترتيب لكل العينات المختبرة بواسطة ترتيب مؤشر للمادة البادئة؛ وتوضع كل الأجزاء المحدد ترتيبها بواسطة BWT من أجل الترتيب المرجعي DNA المقابل لمنتج (PCR ثم يجمع الترتيب الكامل لمنتج PCR من خلال علاقة الوصلة والتداخل بين الأجزاء المحدد ترتيبها (شكل .)١ Ye تل الوصلة المستخدمة هنا على علاقة وصلة مزدوجة الأطراف تحدد من خلال سمات عملية تحديد الترتيب مزدوج الأطراف. يشير mila ae تقنية مؤشر "'مادة "(adapter) Atlee أو 'مادة مهايئة لمكتبة (library adapter) إلى تقنية مؤشر مكتبة تضيف مادة مهايئة لمكتبة مختلفة (تتكون المادة المهايئة للمكتية المختلفة من ترتيبات مختلفة؛ ويحدد الجزء المختلف من الترتيب كمؤشر للمادة ٠ المهايئة)؛ لإنشاء مكتبة ترتيب المؤشر؛ للحصول على ترتيب مختلط على مكتبة ترتيب متعددة لها مؤشرات مختلفة؛ وبهذا في النهاية يمكن تمييز نتائج عملية تحديد الترتيب لكل مكتبة ترتيب مؤشر عن بعضهم البعض. إن استخدام طريقة تحديد ترتيب PCR المعتمدة على تقنية المؤشر الجزيئي DNA واستراتيجية القص غير الكامل يمكنه أن يزيد كثيرا عدد العينات التي لها علامة منفردة؛ دون Yo زيادة عدد مؤشر المادة البادئة. تدل طريقة إنشاء مكتبة PCR-FREE متحدة مع تقنية مؤشر المادة المهايئة للمكتبة على أن المادة المهايئة للمكتبة متصلة بطرفين من جزء DNA في مكتبة الترتيب. وعندما لا يتدخلultrasonic or mechanical shear method; among other ways. The trimmed DNA is subjected to oY agarose gel electrophoresis. All DNA bands whose lengths lie between the read length of the sequence marker and the length of the most suitable sequence marker read (Illumina GA Mie of length 008) are purified and extracted. More appropriate is 0.010 zonal pass; which is the length of the original 0.0318 without the length of the library adapter.) The purification method includes; without limitation electrophoresis extraction and magnetic bead extraction; And other ways. The extracted DNA fragments are used to construct the sequence library through the sequence library construction by the second-generation sequence selector; And also to determine the order after that; It is separated by the PCR-FREE sequence library construct process for sequence library construct and preferably determined by the double-ended 0 method (08-200). The PCR-FREE sequence library construct refers to methods well known to those skilled in the art. In Data The overall order; the order information of all samples tested can be verified by the order of the starting material indicator; all fragments specified by the BWT are placed for the corresponding DNA reference order of the PCR product (PCR product) and the full order of the PCR product is collected by Link relationship and overlap between rearranged parts (Fig. 1.) Ye The linker used here is based on a double-ended joint relationship determined by the characteristics of the double-ended ordering process. Atlee or 'library adapter' to a library pointer technology that adds an adapter to a different library (the adapter for different library consists of different arrangements; the different part of the collation is specified as a pointer to the adapter 0); to create a pointer order library To get mixed collation on a multiple collation library having different indices; Thus, in the end, the results of the ranking determination process for each index library can be distinguished from each other. Using the DNA molecular marker technology-based PCR sequence determination method and an incomplete cut strategy can greatly increase the number of samples with a single marker; Without Yo, increase the number of the starting material index. The combined PCR-FREE library construction method with library adapter indicator technology indicates that the library adapter is attached to two ends of a DNA segment in the sequence library. And when it does not interfere
PCR في عملية إدخال المادة المهايئة المكتبة؛ يطلق على هذه الطريقة مصطلح إنشاء مكتبة .PCR-FREE إن طريقة الاتصال يمكنها استعمال .DNA ligase وعندما لا يتدخل PCR في العملية بأكملها الخاصة بإنشاء المكتبة؛ يمكن تجنب عدم دقة النتائج النهائية الناجمة عن أخطاء يسببها PCR أثناء إنشاء مكتبة التجميع من منتجات POR متماثلة الترتيب للغاية. > في الاختراع الحالي؛ بإضافة مؤشر المادة البادئة إلى المواد البادئة PCR المقدمة والخافية في طرق متحدة لإستراتيجية القص غير الكامل؛ فيكون لتقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني طول منتج PCR له ترتيب قابل للتحديد على أطول ترتيب لمحدد الترتيب عند استخدامه في مجال تحديد ترتيب PCR في أحد جواتب الاختراع؛ تتوفر مجموعة من مؤشرات المادة البادئة والتي تتضمن على ٠ الأقل ٠١ أزواج من مؤشرات المادة البادئة ذات 90 Lag) في جدول ١؛ أو على الأقل Yo زوجاء أو على الأقل Ye زوجاء؛ أو على الأقل 560 زوجاء أو على الأقل 5٠ زوجاء أو على الأقل ٠١ زوجاء أو على الأقل Ve زوجاء أو على الأقل Ar زوجاء أو على الأقل 90 dag) أو 90 زوجا (أو قد تتكون المجموعة المذكورة من مؤشرات المادة البادئة من 49-٠1١ زوجا في مؤشرات المادة البادئة ذات 55 زوجا في جدول ١ (مثلا 38-٠١ زوجاء 55-7١ زوجاء Ye 40-7400 زوجاء 5-46 زوجاء .82-8 زوجاء (lag) 58-176 (lag) 39-7١8 15-86 10-4٠ day) زوجا أو 58 زوجا))؛ إلخ. يفضل أن نتضمن المجموعة المذكورة لمؤشرات المادة البادئة على الأقل من 01-1 إلى PL 0 من مؤشرات المادة البادئة ذات 15 زوجا في جدول ١؛ أو من 21-11 إلى 01-20 أو من 211 إلى 1-30 أو من 21-31 إلى 01-40 أو من 21-41 إلى 1-50©؛ أو من PLIST إلى ٠ 1-60 أو من 01-61 إلى <PI-70 أو من 01-71 إلى 1-80©؛ أو من 1-81 إلى 0190 أو من 2191 إلى 01-95 أو اتحاد من أي نطاقين أو أكثر مما ذكر. ad لجائب Sal من الاختراع؛ يوفر الاختراع استخدام مؤشرات المادة البادئة لطريقة تحديد ترتيب (PCR حيث يتحد تحديدا كل زوج من مؤشر المادة البادئة مع زوج من المادة البادئة PCR لتكبير ترتيب الاختبار كزوج من المادة البادئة للمؤشرء والذي فيه الأطراف *5 Yo لكل من المواد البادئة PCR المقدمة والخلفية على التوالي تمتلك ترتيباء أو تكون متصلة به اختياريا من خلال ترتيب رابط» مع مؤشر المادة البادئة المقدمة ومؤشر المادة البادئة الخلفية.PCR in the process of introducing the library adapter; This method is called PCR-FREE library creation. The liaison method can use .DNA ligase and when PCR is not involved in the entire library creation process; Inaccuracies in final results caused by PCR-induced errors during assembly library generation from highly ordered POR products can be avoided. > in the present invention; By adding a primer indicator to the presented PCR primers and the coverts in combined methods of the incomplete shearing strategy; So the second-generation sequence determination technique has a sequence-determinable PCR product length over the longest sequence determinant arrangement when used in the field of PCR sequence determination in one of the patents; A set of primer indices including at least 0 01 pairs of primer indices of 90 Lag) is provided in Table 1; or at least two Yo pairs or at least two Ye pairs; or at least 560 pairs or at least 50 pairs or at least 01 pairs or at least Ve pairs or at least Ar pairs or at least 90 dag) or 90 pairs (or the group may consist The mentioned starting material indicators from 49-011 pairs in the starting material indicators with 55 pairs in Table 1 (for example, 38-01 pairs, 55-71 pairs, Ye 40-7400 pairs, 5-46 pairs. 82-8 pairs (lag) 58-176 (lag) 39-718 15-86 (10-40 day) pairs or 58 pairs)); etc. It is preferable to include the said set of starting material indices at least from 01-1 to PL 0 of the 15-pair starting material indices in Table 1; or from 11-21 to 20-01 or from 211 to 1-30 or from 21-31 to 01-40 or 21-41 to 1-50©; or PLIST to 0 1-60 or 01-61 to <PI-70 or 01-71 to 1-80©; Or from 1-81 to 0190 or from 2191 to 01-95 or a combination of any two or more ranges mentioned. ad for Sal's pocket of the invention; The invention provides the use of primer indicators for the PCR sequence determination method whereby each primer indicator pair is specifically combined with a pair of PCR primer to amplify the test order as a primer pair for the indicator in which the ends are *5 Yo for each of the primers The foreground and background PCRs respectively possess or are optionally connected by a linker arrangement” with a foreground primer indicator and a background primer indicator.
في أحد تجسيدات الاختراع؛ تستخدم المواد البادئة POR لتكبير الجينات الخاصة من ¢HLA يفضل استخدامها لتكبير 2 exon 4 exon 3 cexon من HLA-A/B و2 exon من (HLA-DRBI يفضل أكثر أن تكون المواد البادئة PCR كالموضحة في جدول ؟.In one embodiment of the invention; POR primers are used to amplify specific genes from ¢HLA Preferably used to amplify 2 exon 4 exon 3 cexon of HLA-A/B and 2 exon of HLA-DRBI (most preferably PCR as shown in the table.
في جانب آخر من الاختراع؛ تتوفر مجموعة من المواد البادئة لمؤشر باتحاد المجموعةIn another aspect of the invention; A range of index primers are available in the consortium group
© المذكورة من مؤشرات المادة البادئة والمواد البادئة PCR لتكبير ترتيب الاختبارء والذي يكون© mentioned from the PCR primer and primer indicators to amplify the assay order which is
فيه كل زوج من مؤشرات المادة البادئة متحدا مع زوج من المادة البادنة PCR كزوج للمادة البادشة لمؤشر؛ ويكون فيه الأطراف "5 لكل من المواد البادئة POR المقدمة والخلفية على التوالي تمتلك ترتيباء أو تكون متصلة به اختياريا من خلال ترتيب رابط؛ مع مؤشر المادة البادئة المقدمة ومؤشر المادة البادئة الخلفية.in which each primer-indicator pair is combined with a primer pair (PCR) as a primer-indicator pair; and wherein the 5" terminals of both the foreground and background POR primers respectively possess or are optionally connected to an arrangement by means of a linkage arrangement; with a foreground primer pointer and a rear primer pointer.
Ve في أحد تجسيدات الاختراع؛ تستخدم المواد البادئة PCR في المواد البادئة للمؤشر المذكورة لتكبير الجينات الخاصة من (HLA يفضل استخدامها exon 4 «exon 3 «exon 2 Jal من exon 25 HLA-A/B من 0821 -1.2ت؛ ويفضل أكثر أن تكون المواد البادئة PCR كالموضحة في جدول .١ في تجسيد آخر من الاختراع؛ تستخدم المواد البادئة للمؤشر في طريقة تحديد ترتيب PCRVe in one embodiment of the invention; PCR primers are used in the mentioned indicator primers to amplify HLA-specific genes (preferably exon 4 “exon 3” exon 2 Jal from exon 25 HLA-A/B from 0821 -1.2t; more preferred The PCR primers are as shown in Table 1. In another embodiment of the invention, the indicator primers are used in the method for determining the PCR order
(nucleotide acid) لاختراع؛ تتوفر طريقة لتحديد ترتيب حمض نيكلوتيد ١ في أحد جواتب Vo من حمض نووي المستهدف في العينات؛ وتتضمن الطريقة:(nucleotide acid) to invent; A method is available to determine the order of a 1-nucleotide acid in one of the Vo primers of a target nucleic acid in samples; The method includes:
)١ توفير عدد (n) من العينات؛ حيث يكون « عددا صحيحا > ١٠ حيث يفضل أن يكون مصدر العينات المذكورة الكائنات الثديية؛» يفضل أكثر الآدميين» وبصفة أكثر تحديدا تكون عبارة عن عينات دم أدمي؛ ويقسم اختياريا عدد (n) العينات المعدة للتحليل إلى عدد (m) من1) Providing a number (n) of samples; where it is « an integer > 10, where it is preferable that the source of the mentioned samples be mammals; Humans are more preferred.” More specifically, they are human blood samples; The number of (n) samples prepared for analysis is optionally divided into a number of (m).
؛١ > 01 <n عددا صحيحا ويحقق المعادلة m المجموعات؛ حيث يكون Yo1 > 01 <n is an integer and satisfies the equation m groups; where Yo
؟) التكبير: يستخدم زوج من المواد البادئة للمؤشر لكل عينة؛ يجرى تكبير PCR تحت ظروف مناسبة لتكبير حمض نووي المستهدف في وجود قالب من عينة؛ وحيث يتكون كل زوج من المواد البادئة للمؤشر من مادة بادئة للمؤشر مقدمة ومادة بادئة للمؤشر خلفية (قد تكونا مواد بادثة مُتردية [متراص ذراتها]ً) متضمنة مؤشر Bale بادنة؛ حيث تضم مؤشرات المادة?) magnification: a pair of indicator primers is used for each sample; PCR amplification is performed under appropriate conditions for target nucleic acid amplification in the presence of a template from a sample; Whereas each pair of indicator initiators consists of a leading indicator initiator and a background indicator initiator (these may be degraded [atomically packed] starters) including an indented Bale indicator; It includes article indicators
YO البادئة مادة بادئة للمؤشر مقدمة ومادة بادئة للمؤشر خلفية مختلفتين أو متماثلتين؛ كما يجب أن تكون مؤشرات المادة البادئة في زوج من المادة البادئة للمؤشر في العينات المختلفة عبارة عن مؤشرات مختلفة؛YO Prefix A foreground cursor prefix and a different or the same background cursor prefix; Also, the starting material indicators in a pair of indicator starting material in different samples must be different indicators;
AA
(T القص: تخضع مكتبة منتج POR التي تم الحصول عليها لعملية قص غير كامل؛ ؛) تحديد الترتيب: يحدد ترتيب خليط DNA المستخلص بواسطة تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاتي» يفضل تقنية الطرف المزدرج GA Sia) ممتصتللاء 2000 «(Illumina Hiseq للحصول على ترتيب DNA بعد القص؛ ° ©) التجميع: تتطابق نتائج عملية تحديد الترتيب واحدة على الأخرى مع العينات على أساس مؤشر المادة البادئة النوعي لكل عينة؛ ويوضع كل ترتيب تم تحديده على الترتيب المرجعي DNA المقابل من منتج PCR باستخدام برنامج محاذاة (مثلا برنامج «(BWA «Blast ثم يمكن تجميع nucleic acid الكامل المستهدف بواسطة علاقة تراكب الترتيب والوصلة من ترتيبات DNA بعد القص. Ye في أحد جوانب الاختراع؛ تتوفر طريقة لتحديد ترتيب nucleotide acid من nucleic acid المستهدف في العيناتء وتتضمن الطريقة: )١ توفير عدد («) من العينات؛ حيث يكون « عددا صحيحا > )6 حيث يقضل أن يكون مصدر العينات المذكورة الكائنات الثديية؛ وبصفة أكثر تحديدا تكون ple عن عينات دم آدمي؛ ويقسم اختياريا عدد («) العينات المعدة للتحليل إلى عدد (m) من المجموعات؛ حيث - $Y > دم <n صحيحا ويحقق المعادلة lem يكون Ye ") التكبير: يستخدم زوج من المواد البادئة للمؤشر لكل عينة؛ يجرى تكبير PCR تحت ظروف مناسبة Sal الحمض النووي المستهدف في وجود قالب من عينة؛ وحيث يتكون كل زوج من المواد البادثة للمؤشر من مادة بادئة للمؤشر مقدمة ومادة بادئة للمؤشر خلفية (قد تكونا مواد بادثة مُتردية [متراص ذراتها]) متضمنة مؤشر مادة بادئة. حيث تضم مؤشرات المادة ٠ البادئة مادة بادئة للمؤشر مقدمة ومادة بادثة للمؤشر خلفية مختلفتين أو متماتلتين؛ كما يجب أن تكون مؤشرات المادة البادئة في زوج من المادة البادئة للمؤشر في العينات المختلفة عبارة عن مؤشرات مختلفة؛ ") الخلط: تخلط معا منتجات تكبير PCR من كل عينة؛ للحصول على مكتبة منتج PCR التي تم الحصول عليها لعملية قص غير كامل؛ PCR ؛) القص: تخضع مكتبة منتج Ye ©( إنشاء المكتبة: تستخدم مكتبة منتج PCR التي تم قصها من أجل إنشاء مكتبة ترتيب 0-7 وتستخلص كل نطاقات DNA بين أطول طول للقراءة لمحدد الترتيب المستخدم(T shearing: the obtained POR product library undergoes an incomplete shearing process; ;) Arrangement determination: Determination of the sequence of the extracted DNA mixture is determined by the second-generation rearrangement determination technique (GA Sia is preferred). Connected 2000 “(Illumina Hiseq for Post-Cut DNA Sequencing; °©) Clustering: the results of the sequencing process are matched one-on-one with samples based on the specific primer index of each sample; Each identified sequence is superimposed on the corresponding DNA reference sequence from the PCR product using an alignment program (e.g. “BWA” Blast program). Then the complete target nucleic acid can be assembled by the sequence overlap relationship and linkage of the DNA sequences after Shear. Preferably, the source of the samples mentioned should be mammals; More specifically, ple is about human blood samples; The number (‘) of samples prepared for analysis is optionally divided into (m) groups; where - $Y > blood < n is true and satisfies the equation lem is Ye"). Amplification: A pair of indicator primers is used for each sample; PCR amplification is performed under suitable conditions. Sal target DNA in The presence of a template from a sample, and where each pair of indicator initiators consists of a precursor indicator primer and a background indicator primer (they may be degraded [atomically packed]) incorporating an indicator initiator Where the 0 precursor indicators include a precursor indicator primer and two different or identical background indicator primers; the primers in a pair of indicator primers in different samples must also be different indicators; For a PCR product library obtained with an incomplete shearing process; PCR ;) shearing: subject to Ye product library ©) Library creation: the sheared PCR product library is used to generate a collation 0 library 7- All DNA bands are extracted from among the longest read length of the sequence determinant used
وأطول طول من DNA مناسب لمحدد الترتيب المستخدم؛ ويمكن إضافة المادة المهايئة للمكتبةthe longest length of DNA suitable for the sequence determinant used; The adaptive material can be added to the library
المختلفة إلى المكتبات لتمييز مكتيات cad pill المختلفة ¢PCR-FREE )١ تحديد fell يحدد تريب خليط DNA المستخلص بواسطة تقنية تحديد ترتيبات الجيل الثاني؛ يفضل تقنية الطرف المزدوج (مثاذ «(Illumina Hiseq 2000 «Illumina GAdifferent cad libraries into libraries to distinguish different cad pill libraries ¢PCR-FREE 1) Fell Select identifies the sequence of the DNA mixture extracted by the second generation rearrangement identification technique; Dual tip technology is preferred (eg Illumina Hiseq 2000 “Illumina GA”).
© للحصول على ترتيب DNA بعد القص؛© to get the cut-down DNA arrangement;
(VY التجميع: تتطابق نتائج عملية تحديد الترتيب واحدة على الأخرى مع العينات علي أساس ترتيبات المادة المهايئة للمكتبة المختلفة لكل مكتبة ومؤشر المادة البادئة النوعي لكل عينة؛ ويوضع كل ترتيب تم تحديده على الترتيب المرجعي DNA المقابل من منتج PCR باستخدام برنامج محاذاة (مثلا برنامج «(BWA Blast ثم يمكن تجميع الحمض التنووي الكامل(VY) pooling: the results of the collocation process are matched one-on-one with the samples based on the different library adsorbent rearrangements of each library and the specific primer index of each sample; each sequence determined is superimposed on the corresponding DNA reference sequence from the PCR product Using an alignment program (eg BWA Blast) then the complete DNA can be assembled
٠ المستهدف بواسطة علاقة تراكب الترتيب والوصلة من ترتيبات DNA بعد القص.0 target by the overlay-order-linkage relationship of post-cut DNA arrangements.
في أحد تجسيدات الاختراع؛ في طريقة تحديد الترتيب الواردة أعلاه؛ يتحد كل زوج من مؤشرات المادة البادئة مع زوج من مادة بادثة PCR لتشكيل زوج من المواد البادئة للمؤشر؛ التي فيها الأطراف ”5 لكل من المادة البادئة PCR المقدمة والمادة البادئة PCR الخلفية تمتلك ترتيباء أو تكون متصلة به اختياريا من خلال ترتيب رابط» مع المادة البادئة المقدمة والمادةIn one embodiment of the invention; in the above order determination method; Each primer-indicator pair combines with a PCR primer-initiator pair to form a primer-indicator pair; in which the parties “5 of both the presented PCR primer and the background PCR primer possess an arrangement or are optionally connected to it through a linker arrangement” with the provided primer and the
ve البادئة الخلفية.ve back prefix.
في أحد التجسيدات؛ في طريقة تحديد الترتيب الواردة أعلاه؛ تستخدم المادة البادئة PCR لتكبير الجينات الخاصة من (HLA يفضل استخدامها لتكبير 2 دمي تدعت 4 exon من HLA-A/B و2 exon من <HLA-DRB1 يفضل أكثر أن تكون المواد البادئة PCR كالموضحة في جدول ؟.in one embodiment; in the above order determination method; Primer PCR is used to amplify HLA-specific genes (preferably used to amplify 2 bloods called 4 exon of HLA-A/B and 2 exon of <HLA-DRB1). PCR as shown in the table.
Y. في أحد التجسيدات؛ في طريقة تحديد الترتيب الواردة code تجهز مؤشرات المادة البادئة معتمدة على المادة البادئة (PCR يفضل أن تعتمد على المادة البادئة PCR المستخدمة في تكبير الجينات الخاصة من (HLA يفضل أكثر المستخدمة في تكبير 2 exon «exon 3 sexon 4 من HLA-A/B و2 exon من 1114-0831؛ ويفضل تحديدا أن تكون المواد البادئة PCR كالموضحة في جدول 7. تتضمن مؤشرات المادة البادئة المذكورة على الأقل ٠١ أزواج منY. in one embodiment; In the method of determining the order contained code, primer indicators are prepared based on the primer material (PCR) It is preferable to depend on the primer PCR used in amplifying HLA-specific genes (more preferably used in amplifying exon 2 “exon 3”). sexon 4 of HLA-A/B and exon 2 of 1114-0831; preferably, PCR primers such as those shown in Table 7. The listed primer indicators include at least 01 pairs of
© مؤشرات المادة البادئة ذات 40 زوجا في جدول ١؛ أو على الأقل ٠١ زوجا؛ أو على الأقل ٠؟ زوجاء؛ أو على الأقل 50 زوجاء أو على الأقل on زوجاء أو على الأقل 60 زوجاء أو على الأقل ve زوجاء أو على الأقل 860 زوجاء أو على الأقل 58 زوجاء أو 55 زوجا (أو قد© Starting material indicators with 40 pairs in Table 1; or at least 01 pairs; or at least 0? pairs; or at least 50 pairs or at least on pairs or at least 60 pairs or at least ve pairs or at least 860 pairs or at least 58 pairs or 55 pairs (or may
٠١ زوجا في مؤشرات المادة 509-٠١ تتكون المجموعة المذكورة من مؤشرات المادة البادثشة من زوجاء 99-7١0 زوجاء 55-7١ زوجاء 95-٠١ Sha) ١ في جدول Lag) 10 البإدئة ذات 45-460 زوجاء 55-76 زوجاء 52-50 زوجاء 48-1١ زوجاء .59-0 زوجاء 9-6 زوجا أو 58 زوجا))؛ إلخ.01 pairs in the indications of Article 509-01 The mentioned group of indicators of the bad-headed substance consists of Pairs 99-710 Pairs 55-71 Pairs 95-01 (Sha 1 in Table Lag) 10 Prefix Same 45-460 pairs 55-76 pairs 52-50 pairs 11-48 pairs 0-59 pairs 6-9 pairs or 58 pairs)); etc.,
8 يفضل أن تتضمن المجموعة المذكورة لمؤشرات المادة البادئة على الأقل من PI إلى PL 10 من مؤشرات sald) البادئة ذات 30 زوجا في جدول ١؛ أو من 21-11 إلى 01-20 أو من 211 إلى 01-30 أو من 01-31 إلى 0140 أو من 0141 إلى (PESO أو من 01-51 إلى 01-0 أو من 21-61 إلى 01-70؛ أو من 01-71 إلى 01-80؛ أو من 2181 إلى 01-90 أو من 01-91 إلى (POS أو اتحاد من أي نطاقين أو أكثر مما ذكر.8 Preferably the stated set of initiator indices from PI to PL includes at least 10 of the 30-pair sald indices in Table 1; or from 11-21 to 20-01 or from 211 to 01 -30 or 01-31 to 0140 or 0141 to PESO or 01-51 to 01-0 or 21-61 to 01-70; or 01-71 to 01-80; or 2181 to 01-90 or 01-91 to (POS) or a combination of any two or more ranges mentioned.
١ في أحد تجسيدات الاختراع» في طريقة تحديد الترتيب الواردة أعلاه» تتضمن طريقة قص DNA المذكورة طريقة قص كيميائي وطريقة قص فيزيائي؛ حيث تتضمن طريقة القص الكيميائي طريقة القص بواسطة إنزيم؛ وتتضمن طريقة القص الفيزيائي طريقة القص بالموجات فوق الصوتية أو طريقة القص الميكانيكي. بعد قص DNA تفصل الأجزاء الموجودة في OV ٠ إمرار نطاقي.1 In one embodiment of the invention “in the order determination method given above” said DNA shearing method includes a chemical shearing method and a physical shearing method; The chemical shearing method includes the enzyme shearing method; The physical shear method includes the ultrasonic shear method or the mechanical shear method. After DNA clipping the fragments in the OV 0 domain pass are separated.
Ve في جانب آخر من الاختراع؛ تتوفر طريقة تحديد النوع الجيني (HLA حيث تتضمن الطريقة: تحديد عينات (خصوصا عينات دم) من مرضى بواسطة طريقة تحديد الترتيب الواردة أعلاه» وتتطابق نتائج عملية تحديد الترتيب مع بيانات الترتيب القياسية من قاعدة بيانات HLA (مثلا قاعدة بيانات متخصصة (IMGT HLA يفضل مع بيانات الترتيب القياسية التي تخص exon 4 «exon 3 «exon 2 من HLA-A/B أو 2 2 منVe in another aspect of the invention; The method of determining the genotype (HLA) is available, as the method includes: identifying samples (especially blood samples) from patients by the method of determining the arrangement mentioned above, and the results of the determination of the arrangement match the standard arrangement data from the HLA database (for example, a specialized (IMGT HLA) preferably with standard sequence data for exon 4 “exon 3” exon 2 of HLA-A/B or 2 of 2
HLA-DRBL ٠ من قاعدة بيانات (HLA وتكون نتيجة محاذاة الترتيب التي أظهرت تطابقا نسبته 7٠٠١ هي النوع الجيني HLA من العينة المناظرة. شرح مختصر للرسوماتHLA-DRBL 0 from the HLA database and the result of the ranking alignment that showed a match of 7001 is the HLA genotype of the corresponding sample. Brief explanation of the graphics
شكل :١ هو تمثيل تخطيطي لتجميع الترتيب بعد وضع علامة مؤشر المادة البادئة. كما يدل على قص DNA وتحديد ترتيبه. يتم إدخال المواد البادئة للمؤشر المقدمة والخلفية منFigure 1: is a schematic representation of the assembly of the arrangement after the starting material indicator has been marked. It also indicates the cutting of DNA and determining its order. Leading materials for the foreground and background cursor are entered from
Index-N-F/R 8 في طرفي منتج PCR للعيتة N (١)؛ وتشتمل المنتجات بعد عمل القص الفيزيائي لمنتج PCR على: منتجات بها مؤشر مادة بادئة على أحد الطرفين» منتجات ليس بها مؤشر مادة بادثئة على الطرفين؛ منتجات لم يتم قصها تماماء وتستخلص كل نطاقات DNAIndex-N-F/R 8 at both ends of the PCR product of Sample N (1); Products after physical shearing of the PCR product include: Products with a “starter indicator on one end” Products without a “starter indicator” on both sides; Products that are not completely cut and all DNA strands extracted
نل بين أطول طول للقراءة لمحدد الترتيب المستخدم وأطول طول من DNA المناسب لمحدد الترتيب المستخدم وذلك من هلام الارتحال الكهربي (7)؛ ثم اكتشاف نتيجة عملية تحديد الترتيب التي تخص منتج PCR للعينة N من كل نتائج عمليات تحديد الترتيب بواسطة Index- 21-18 ويوضع كل ترتيب تم تحديده على المكان المرجعي المناظر باستخدام المعلومات ٠ المعروفة عن الترتيب المرجعي لمنتج (PCR ثم تجميع نتيجة عملية تحديد الترتيب كاملا لمنتج PCR بواسطة علاقة تراكب الترتيب والوصلة بين الأجزاء المحدد ترتيبها. شكل ؟: يوضح نتيجة الارتحال الكهربي لمنتج PCR من exons المقابلة في HHLA-A/B/DRBI للعينة .١ من مخطط للارتحال الكهربي؛ تكون منتجات PCR متسلسلة في النطاقات الفردية من a= F ee 00 إمرار نطاقي طولاء حيث تكون ASAD 14 هي العلامة ٠ الجزيئية (DL 2000, Takara Co.) وتكون الخانات 7-١ هي منتجات تكبير PCR من كل (A2, A3, A4, B2, 83, B4, DRBI-2) exon من ١ dell HLA-A/B/DRB1 ولا يكون للمثال المقارن السالب (N) أي نطاق تم تكبيره. وتكون نتائج العينات الأخرى متشابهة. شكل oF يوضح الارتحال الكهربي الذي قام به DNA بعد قص خليط HLA (قارن إزالة التطاقات)؛ والذي فيه النطاقات المستخلصة متراوحة في نطاق ٠ 5؛-0 75 إمرار نطاقي؛ وتكون الخانة M هي العلامة الجزيئية ((NEB-50bp DNA Ladder) وتعبر الخائة ١ عن الارتحال الكهربي قبل استخلاص خليط HLA والخانة ¥ تعبر عن الارتحال الكهربي بعد استخلاص خليط HLA شكل 4: يمثل لقطة تليفزيونية مأخوذة لبرنامج إنشاء تحديد التوافق للعينة ١ ويظهر الترتيب الكامل لمنتج PCR المجمع على أساس علاقة التداخل بين أجزاء DNA ومؤشر المادة All ve. التجسيدات توصف تجسيدات الاختراع في المحتويات التالية بمزيد من التفصيل بمصاحبة أمثلة؛ وعلى الرغم من هذا يدرك الماهرون في الفن أن الأمثلة التالية تستخدم فقط لتوضيح الاختراع YO بدون تقييد نطاقه. في أمثلة الاختراع؛ يستخدم اتحاد من مؤشرات المادة البادئة + إستراتيجية القص غير الكامل لحامض DNA + تقنية تحديد ترتيب طرف مزدوج (Pair-End) 100 بواسطة محدد yy (exon 4 exon 3 exon 2 لتحديد النوع الجيني الذي يخص 11101018 GA الترتيب بين PCR من 90 عينة؛ وتتراوح أطوال منتجات HLA-DRBI من exon 25 HLA-A/B عالية Lely إمرار نطاقي؛ ولقد أثبت الاستفادة من استخدام هذه الإستراتيجية 0 ٠ الإنتاجية وقليلة التكلفة فيما يخص محدد ترتيبات الجيل الثاني؛ ومع ذلك يمكنها أيضا تحديد النوع الجيني لأجزاء الجين التي لها طول أعلى من الطول الذي يمكن تحديد ترتيبه لمحدد © الترتيب. exon 2 من PCR الفكرة العامة: بالنسبة لعينات الاختبارء يتم إدخال طرفي منتج مع مؤشر المادة البادئة بواسطة HLA-DRBI من exon و2 HLA-A/B من exon 4 ؛ 3 تخلط PCR خصوصا لتمييز المعلومات الخاصة بعينة من منتج «PCR تفاعل الأماكن من عينات DE HLA-A/B/DRBI التي تم تكبيرها من PCR معا منتجات ٠ التي PCR وتخضع مكتبة منتج (PCR من كل مجموعة وذلك للحصول على مكتبة منتج تم الحصول عليها إلى عملية قص غير كامل بالموجات فوق الصوتية من أجل إنشاءObtain the longest read length of the used sequencer and the longest length of DNA suitable for the used sequencer from an electrophoresis gel (7); Then the sequence determination result of the PCR product for sample N of all sequence determination results is detected by Index- 21-18 and each sequence determined is placed on the corresponding reference locus using information 0 known about the product reference sequence (PCR) and then compile the result of the entire sequence determination of the PCR product by the sequence overlap relationship and the link between the sequenced segments. Figure ?: Shows the result of electrophoresis of the PCR product from the corresponding exons in HHLA-A/B/DRBI of sample .1 from an electrophoresis diagram; PCR products are sequenced at individual bands of a= F ee 00 bandpasses in length where ASAD 14 is the molecular marker 0 (DL 2000, Takara Co. Blocks 1-7 are PCR amplification products from each (A2, A3, A4, B2, 83, B4, DRBI-2) exon of 1 dell HLA-A/B/DRB1 The negative comparative example (N) has no bands amplified. Results for other samples are similar. The oF figure shows the electrophoresis carried out by DNA after clipping of the HLA mixture (compare removing the bands); in which the extracted bands ranged in the range of 0 5;-0 75 bandpass; the M block is the molecular marker (NEB-50bp DNA Ladder), slot 1 represents electrophoresis before HLA mixture extraction, and slot ¥ stands for Electrophoresis after HLA mixture extraction FIGURE 4: Represents a TV snapshot taken of the compatibility determination generation program for sample 1 showing the complete sequencing of the assembled PCR product based on the overlap relationship between the DNA segments and the All ve material indicator. The embodiments of the invention are in the following contents in more detail with accompanying examples; Notwithstanding this those skilled in the art realize that the following examples are used solely to illustrate Invention YO without limiting its scope. In the examples of the invention; A combination of primer markers + DNA incomplete shearing strategy + 100 pair-end sequencing technique by yy selector (exon 4 exon 3 exon 2) is used to determine the genotype of 11101018 GA collation Among PCR from 90 samples; HLA-DRBI products range in length from exon 25 to HLA-A/B high Lely domain passability; the benefit of using this strategy has been demonstrated to be 0 0 throughput and cost effective. pertains to the determinant of the second generation rearrangement; however, it can also genotype those parts of a gene that have a length greater than the length that can be rearranged for the determinant © rearrangement. exon 2 of PCR General idea: For test samples inserted two ends of a product with a primer indicator by HLA-DRBI from exon 2 and HLA-A/B from exon 4; 3 PCR mixes specifically for distinguishing information about a sample of the “PCR” product Loci of DE HLA-A/B/DRBI amplified PCR samples were interacted with 0 PCR products and a PCR product library (PCR product library) from each batch to obtain an amplified product library. Obtaining them to an ultrasonic incomplete cut process in order to establish
LY agarose وتخضع مكتبة الترتيب إلى ارتحال كهربي بهلام (PCR-FREE مكتبة ترتيب مع DNA إمرار نطاقي؛ حيث تضاف أجزاء YOu 5 800 بين DNA وتستخلص كل نطاقات بحيث يكون طول PCR-FREE المادة المهايئة للمكتبة عند الطرفين أثناء إنشاء مكتبة ترتيب oe إمرار You هذه أطول من طولها الأصسلي بحوالي DNA نطاقات إمرار نطاقي تقابل أجزاء 0158 ذات ٠٠0-48٠ نطاقي»؛ ويهذا فإن الأجزاء المستخلصة ذات المستخلص لعملية تحديد ترتيب DNA إمرار نطاقي بطولها الأصلي. يخضع 00-٠ call يمكن اكتشاف معلومات عن الترتيب بواسطة مؤشر المادة .11100(012 GA PE-100 بواسطة المعلومات المرجعية عن PCR ويمكن تجميع الترتيب الكامل لمنتج ٠ ثم يجمع الترتيب DNA المعروف وعلاقة الوصلة والتداخل بين أجزاء DNA الترتيب لجزء المناظرة في exons الأصلي بنتائج التطابق مع قاعدة بيانات قياسية من POR الكامل لمنتج بحيسث يتم التمكن من تحديد التوع الجيني من (HLA-A/B/DRBI .HLA-A/B/DRBILY agarose and the sequence library is subjected to gel electrophoresis (PCR-FREE) A sequence library with band-passing DNA where YOu 5 800 segments are added between DNA and each bands extracted so that the length of the PCR- FREE library adapter material at both ends during the creation of the oe sequence library You pass this is longer than its original length by about DNA pass-through domains correspond to 0158 fragments with 000-480 domains; thus, the extracted fragments are with The extract is subject to a domain passaging DNA sequence determination process by its original length. It undergoes 0-0 call. Information about the sequence can be detected by the substance indicator 11100(012 GA PE-100). 0 Then, the known DNA arrangement, linkage relationship, and overlap between DNA parts, the arrangement of the corresponding part in the original exons, are combined with the results of matching with a standard database of the complete POR of a product, so that the genetic diversity of the product can be determined. (HLA-A/B/DRBI .HLA-A/B/DRBI
Vd ve استخلاص العينةVd ve sample extraction
VYVY
(من HLA-SBT من 40 عينة دم معروفة التوع الجيني DNA يستخلص (CDMP من Lad المعروف «China Hematopoietic Stem Cell Donors Data Bank تتبع الخطوات الأساسية: (Thermo CO. USA) KingFisher بواسطة جهاز استخلاص آلي تستخدم + أطباق لها عيون عميقة وطبق واحد بعيون مسطحة من جهاز الاستخلاص الآلي طبقا للدليل المضاف مع كمية من عوامل معينة والشائع الاستخدام. توضع كل KingFisher © “Bioeasy 200ul Blood الأطباق مع العوامل في المواقع المطلوبة المقابلة؛ يستخدم (النجمة) لاستخلاص الحمض النووي. بعد “star” ويعمل بالضغط على DNA _KF.msz”DNA extracted from HLA-SBT from 40 blood samples with known genetic diversity (CDMP) from the well-known “China Hematopoietic Stem Cell Donors Data Bank” (Thermo CO. USA) KingFisher by Autoextractor Use + 1 deep-well dishes and 1 flat-eye dish by Autoextractor according to the evidence added with the amount of specific and commonly used agents. The corresponding required; (asterisk) is used to extract the DNA after “star” and it works by clicking on “DNA_KF.msz”
DNA Jie Elution ميكرولتر منتج الصرف في الطبق ٠٠١ انتهاء البرنامج؛ يجمع حوالي مستخلص. مثل ؟ ٠DNA Jie Elution 001 µL of product exchange in plate Program end; Collect about an extract, such as ?0
PCR تكبير مع مؤشرات PCR مختلف بتخليق مواد بادئة PCR يتم الحصول على مواد بادئة بمؤشر مختلف POR مادة أولية مختلفة عند الطرف 57؛ بحيث يمكن استخدام مواد بادئة بمؤشر «HLA-A/B (exon 4 من أجل PCR لعينات مختلفة؛ حيث تكون المواد البادئةPCR amplification with different PCR indices By synthesizing PCR primers starting materials with different index POR are obtained different starting material at tip 57; So that starting materials with the indicator “HLA-A/B (exon 4) can be used for PCR of different samples, where the starting materials are
PCR وعندئذ تدخل مؤشرات المادة البادئة إلى طرفين المنتج .HLA-DRBI و2 «ه»» من ٠ من عينات مختلفة. PCR بالتحديد لتعليم منتجات PCR بواسطة تفاعل حيث تتكون (DNA لتكبير 30 عينة PCR تستخدم مجموعة من 10 مواد بادثة لمؤشرThen the starting material indicators are entered into the two ends of the product HLA-DRBI and 2 “e” from 0 different samples. PCR specifically to mark the PCR products by means of a reaction where DNA is formed (to magnification 30). A PCR sample using a set of 10 indicator primers
PCR ومواد أولية )١ من زوج من مؤشرات المادة البادئة (جدول PCR كل مادة بادئة بمؤشر ويرتبط الطرف oY (جدول HLA-DRBI من exon و2 HLA-A/B لتكبير 4 تمع من مقدمة مع مؤشر مادة بادئة مقدم لزوج من مؤشرات المادة البادئة؛ PCR لكل مادة بادشة 557 - ٠ معكوسة مع مؤشر مادة بادئة معكوسة لزوج من PCR ويرتبط الطرف 57 لكل مادة بادنئة مباشرة PCR مؤشرات المادة البادئة. يضاف مؤشر المادة البادئة إلى الطرف 5 للمادة البادئة عند التخليق. ناتجين من خطوات استخلاص العينة في DNA 55 إلى 95-١ يعطى ترقيم تتابعي من في أطباق لها 17 عين بإجمالي 7 أطباق؛ وتكون أرقام PCR ويجرى تفاعل of المثال ©PCR primers and primers 1) from a pair of primer indices (Table PCR) each primer with an index and the oY end binds (HLA-DRBI table from exon and 2 HLA-A/B to enlarge 4 pools of primer with primer indicator provided for a pair of primer indicators; PCR for each primer 557 - 0 reversed with primer indicator reversed for a pair of PCR terminal 57 of each primer directly bound PCR Starter material indicators. The primer indicator is added to the 5th end of the starting material when synthesizing. Two outputs from the sample extraction steps in DNA 55 to 95-1 given sequential numbering from in plates having 17 samples with a total of 7 Plates; PCR numbers are formed and the reaction of the example is carried out ©
HLA-P-B3 HLA-P-B2 (HLA-P-A4 (HLA-P-A3 (HLA-P-A2 الأطباق تتابعيا مواقع التكبير). 10121-2 «B2/B3/B4 <A2/3/4 (تمثل HLA-P-DRB1-2 4-طضما1ل وHLA-P-B3 HLA-P-B2 (HLA-P-A4 (HLA-P-A3) (HLA-P-A2) dishes sequentially amplification sites). 10121-2 “B2/B3/B4 <A2/ 3/4 (representing HLA-P-DRB1-2 4-TDMA1L and
يوضع مثال مقارن سلبي بدون قالب في كل Bada حيث تكون المواد البادئة نفسها مع المواد البادئة المقابلة في القالب .١ تسجل معلومات رقم العينة المقابلة لكل مؤشر مادة بادئة. جدول :١ المعلومات المقابلة عن مؤشرات المادة البادئة ات مادة نائثة ات Lie ؛ المواقع المقابلة lal) المقابل قم Sa خغشرات مادة بادئنة ةشرات مادة بادئة رقم مؤشر | hase : مؤشرا : في طبق له ١57 (المجموعة المادة البادئة مقدمة معكوسة 7 عين 0 ACGTGICTATCA |TACATGCIGAGC| PI6 | | ها ا A8 | ATCTCGIGACAG |ACAGATGCACGC| PL8 | | 8 ACTAGTACACGC | TAGATCGTACAT | 119 | | قم | قد B6 | CTAGTATCGCAG | ACGCATCTATAC| PL-18 | | 18 BY | TCTAGCTCATGA |CATCTGCTATAG| PL-21 | | 21[ P1-29 29 yo 4 | D6 [TCGTGACAGATC | TGTATGCTCGIC | 0142 44 | 08 | CTGATAGTATCA |AGACTCTGAGTC| Pl-44 45 ا D9 [ATCGCGAGTGAC | CTCATAGACTAC| PI-45 60 [E12 [TGCTATCACTGA |ACTCGTCTGACG| 0160 66 | F6 | TGACGCTCATCT | TACACTCGTGCT| 0166 68 | F8 | CACTGTGCTCAT | TGTATGATCTCG | PI-68 69 [ F9 | ACTGCATGATCG | CAGTACACTCTA | 01-69 75 G3 | CGATCATATGAG | ATCGACTATGCT | 5 80 | G8 [CGCTGCATAGCG | TACTGCTATCIC | PL§0A negative comparative example without a template is placed in each Bada where the same starting materials are with the corresponding starting materials in the template 1. Record the corresponding sample number information for each starting material indicator. Table 1: Corresponding information on the starting material indicators Lie; Corresponding locations (lal) Corresponding Qom Sa rattles Prefix signs Prefix index number | hase : indicative : in dish has 157 (group prefix prefix reversed 7 eye 0 ACGTGICTATCA |TACATGCIGAGC| PI6 | | HA A8 | ATCTCGIGACAG |ACAGATGCACGC| PL8 | | 8 ACTAGTACACGC | TAGATCGTACAT | 119 | | QUICK | DRIVE B6 | CTAGTATCGCAG | ACGCATCTATAC | PL-18 | | 18 BY | TCTAGCTCATGA |CATCTGCTATAG | PL-21 | 21 [ P1-29 29 yo 4 | D6 [TCGTGACAGATC | TGTATGCTCGIC | 0142 44 | 08 | CTGATAGTATCCA |AGACTCTGAGTC| Pl-44 45 A D9 [ATCGCGAGTGAC | CTCATAGACTAC| PI-45 60 [E12 [TGCTATCACTGA |ACTCGTCTGACG| 0160 66 | F6 | TGACGCTCATCT | TACACTCGTGCT| 0166 68 | F8 | CACTGTGCTCAT |TGTATGATCTCG | PI-68 69 [ F9 | ACTGCATGATCG | CAGTACACTCTA | 01-69 75 G3 | CGATCATATGAG | ATCGACTATGCT | 5 80 | G8 [CGCTGCATAGCG | TACTGCTATCIC | PL§0
١ 1461416006161 PI-831 1461416006161 PI-83
TACTCGTAGCGC | TAGATGACGCTC| PI-84TACTCGTAGCGC | TAGATGACGCTC| PI-84
ATCTACTGACGT | TCGCGTGACATC| 1-5 8 | H2 | ACAGTAGCGCAC | ACACGCTCTACT | PI-86ATCTACTGACGT | TCGCGTGACATC| 1-5 8 | H2 | ACAGTAGCGCAC | ACACGCTCTACT | PI-86
CTAGTATCATGA | TACATAGTCTCGCTAGTATCATGA | TACATAGTCTCG
TCGATCATGCAG | TGAGTAGCACGC| PI-88 8 | H5 | TACATGCACTCA | TAGATGCTATAC| PI-89 9% | 116 | CAGCTCGACTAC | ATCGATGTCACG| PI-90TCGATCATGCAG | TGAGTAGCACGC| PI-88 8 | H5 | TACATGCACTCA | TAGATGCTATAC| PI-89 9% | 116 | CAGCTCGACTAC | ATCGATGTCACG| PI-90
CTCTACAGTCAC [| ATCATATGTAGC| PIO]CTCTACAGTCAC [| ATCATATGTAGC| PIO]
AGATAGCACATC | TAGCATCGATAT | PI-92AGATAGCACATC | TAGCATCGATAT | PI-92
CTAGATATCGTC | TGATCGACGCTC | 1-53CTAGATATCGTC | TGATCGACGCTC | 1-53
TACAGACTGCAC | TGCAGCTCATAG]| PI-94TACAGACTGCAC | TGCAGCTCATAG]| PI-94
CAGTAGCACTAC | CGACGTAGAGTC| PI-95 قبل إضافة مؤشرات المادة HLA-A/B/DRBI1 exons لتكبير PCR جدول »: المواد البادئة البادثة استخدام المادة طول المنتج Lal رقم المادة ترتيبات المادة البادئة البادئة .| CCTCTGYGGGGAGAAGCAA ba! 80 | HLA-A تكبير od كك عق A TCTCGGACCCGGAGACTG AR2 نطاقى exon 2 -١ CGGGGCCAGGTTCICACAC إمرا £34 | HLA-A تكبير حل 8606 إمرار GGYGATATTCTAGTGITGGICC | به نطاقى exon 3 CAA إمرار 470 | HLA-A gene تكبير GTGTCCCATGACAGATGCAAA نطاقى exon 4 GGCCCTGACCCTGCTAAAGG .| AGGAGCGAGGGGACCGCA إمرا £++ | HLA-B تكبير مرر gene بير CGGGCCGGGGTCACTCAC BR2 نطاقى exon 2 .| CGGGGCCAGGGTCTCACA إمرا 7٠٠ ١ HLA-B تكبير إمرار gene oe GAGGCCATCCCCGGCGAC B-R3 نطاقي exon 3 . | GCTGGTCACATGGGTGGTCCTACAGTAGCACTAC | CGACGTAGAGTC| PI-95 Before adding HLA-A/B/DRBI1 exons to enlarge PCR Table »: Starters Precursor Substance Usage Product Length Lal No. Article Primer Arrangement Prefix .| CCTCTGYGGGGAGAAGCAA ba! 80 | HLA-A enlargement OD A TCTCGGACCCGGAGACTG AR2 domain exon 2 -1 CGGGGCCAGGTTCICACAC EMRA £34 | HLA-A Magnification Resolution 8606 passes GGYGATATTCTAGTGITGGICC | It has two domains, exon 3 CAA, passing 470 | HLA-A gene amplification GTGTCCCATGACAGATGCAAA domain exon 4 GGCCCTGACCCTGCTAAAGG .| AGGAGCGAGGGGACCGCA Emra £++ | HLA-B enlarged pass gene per CGGGCCGGGGTCACTCAC BR2 domain exon 2 .| CGGGGCCAGGGTCTCACA EMRA 700 1 HLA-B amplification Pass gene oe GAGGCCATCCCCGGCGAC B-R3 domain exon 3 . | GCTGGTCACATGGGTGGTCCTA
Il 850 | HLA-B al 8606 SC CTTACCCCATCTCAGGGTG | BR نطاقى exon 4Il 850 | HLA-B al 8606 SC CTTACCCCATCTCAGGGTG | BR my domain is exon 4
CACGTTTCTTGGAGTACICTA | D2-FiCACGTTTCTTGGAGTACICTA | D2-Fi
GTTTCTTGTGGCAgCTTAALTT | D2-F2 fel ٠٠ . | CCTGTGGCAGGGTAAGTATA D2-F3 2% JHLA-DRBI تكبير | GTC TTGAAGCAGGATAAGTT | 4 تطاقي gene 2 GCACGTTTCTTGGAGGAGG D2-F5GTTTCTTGTGGCAgCTTAALTT | D2-F2 fel 00 . | CCTGTGGCAGGGTAAGTATA D2-F3 2% JHLA-DRBI Enlarge | GTC TTGAAGCAGGATAAGTT | 4 tag gene 2 GCACGTTTCTTGGAGGAGG D2-F5
TTTCCTGTGGCAGCCTAAGA D2-F6TTTCCTGTGGCAGCCTAAGA D2-F6
GTTTCTTGGAGCAGGTTAAACGTTTCTTGGAGCAGGTTAAAC
بإ تكون 02-11 02-12 «D2-F6 02-25 «D2-F4 «D2-F3 02-27 هي مواد Ahab مقدمة لتكبير 2 من 1-0151آت؛ 5 D2-R هو المادة البادئة المعكوسة لتكبير 2 exon من .HLA-DRBI1 يكون برنامج PCR لتكبير HLA-A/B/DRBI كالتالي: 0 45تمثوية دقيقتين 8منوية Fo ثائية -> 10”مئوية To ثائية -> 77"مئوية Yo ثانية -> TY) دورة) ٠"مثوية 0 يكون نظام PCR Jeli من أجل HLA-A/B كالتالي؛ تنتج كل العوامل من .Promega Co : een ¥ ميكرولتر ميكرواتر) ١ ميكرولتر ميكرولتر) ١ ميكرولتر ميكرولتر) ٠١ يكون نظام تفاعل PCR من أجل HLA-DRBI كالتالي: خليط 0077 (كل *, مللي جزيئي جرامي/ | ؟ ميكرولتر ميكرولتر) ميكرولتر)B being 02-11 02-12 “D2-F6 02-25” D2-F4 “D2-F3 02-27 is Ahab material provided for magnification 2 of 0151-1 at; 5 D2-R is the reverse primer for exon 2 amplification of HLA-DRBI1. The PCR program for the HLA-A/B/DRBI amplification is as follows: 0 45 mnemonic 8sperm Fo sec - > 10”Celsius To sec -> 77”Celsius Yo sec -> TY) Cycle 0”Cross 0 The PCR Jeli System for HLA-A/B is as follows; All agents produced by Promega Co.: een ¥ ¥ µl µl) 1 µl µl) 1 µl µl) 01 The PCR reaction system for HLA-DRBI is as follows: Mixture 0077 (each *, milligrams/|? µl µl) µl)
YAYa
Tee ميكرولتر) ميكرولتر) ميكرولتر) ميكرولتر) ميكرولتر) يمثل يورو 12/02-17/ل4م,71 المادة البادثة F من أجل HLA-A/B/DRB1 بالعدد « لترتيب مؤشر مادة بادئة مقدم (الجدول )١ عند الطرف 57 ead يمثل بورويببوري PL A/B/D2-R المادة البادئة R من أجل HLA-A/B/DRB1 بالعدد N لترتيب مؤشر مادة بادئة مقدم (جدول )١ عند الطرف 57 eal وهنا « > 40( والمواد البادئة الأخرى © بالمثل. وتقابل كل عينة مجموعة معينة من المواد البادئة PCR (جو يورو 3/102-7الضممال ورورية-02/تالف]آ). يجرى تفاعل PCR على جهاز تكبير PTC-200 PCR من Corporation 510-880. بعد (PCR يتعرض ؟ ميكرولتر من منتجات PCR إلى 7١ ارتحال كهربي هلام 88817088. يوضع الشكل ؟ الارتحال الكهربي لمنتجات PCR مع HLA-A/B/DRBI exons ممقابلة من العينة ٠ رقم ١ء؛ حيث تكون مادة تعليم جزئية DNA هي 112000 ¢(Takara Corporation) حيث تشير سلسلة من النطاقات المفردة بين Ves إمرار نطاقي و0٠85 إمرارTee µL) µL) µL) µL) µL represents EUR 12/02-17/L4M,71 Primer F for HLA-A/B/DRB1 by the number « of the primer index order presented (Table) 1 at tip 57 ead PowerPuri PL A/B/D2-R represents primer R for HLA-A/B/DRB1 with the N number of primer indicator order provided (Table 1) At tip 57 eal and here “ > 40) and other primers © similarly. Each sample corresponds to a specific set of PCR primers (Joe Euro 3/102-7 dam-02/damaged]a). A PCR reaction is performed on a PTC-200 PCR amplifier from Corporation 510-880. After (PCR) ? µl of PCR products are exposed to 71 gel electrophoresis 88817088. Figure ? Electrophoresis of PCR products is labeled with Corresponding HLA-A/B/DRBI exons of sample 0 #1a; where DNA partial marker is 112000 ¢ (Takara Corporation) where a sequence of single domains between Ves domain pass-through and 0085 pass
YqYq
HLA-A/B/DRBI من exon لكل PCR نطاقي في الهلام إلى نجاح تكبير ولا يكون للمثال المقارن السلبي oY من العينة رقم (A2, A3, A4, B2, 83, 84, DRBI-2) تطاق تكبير. تكون النتائج من المواد البادئة الأخرى متماثظة. (N) 3 مثال PCR خلط وتنقية منتجات © 47 له HLA-P-A2 من كل متخلف في الطبق PCR ميكرولتر من منتجات ٠١ يزال HLA-A2- عين عدا من المثال المقارن السلبي ويخلط في أنبوب سعة ؟ ملليلتر؛ يعلم مثلHLA-A/B/DRBI from exon of each domain PCR in gel to amplification success The negative comparator example does not have oY from sample no. (A2, A3, A4, B2, 83, 84, DRBI -2) Zoom range. Results from other starting materials are identical. (N) 3 Example PCR Mixing and purification of © 47 HLA-P-A2 products from each residue in the PCR plate 01 μl of products removed HLA-A2- sample except from negative comparative example and mixed in a capacitance tube? milliliters teach like
HLA- (HLA-A3-Mix Jie وتجرى 7 أطباق أخرى لها 47 عين نفس العملية و تعلم MixHLA- (HLA-A3-Mix Jie) and 7 other dishes with 47 eyes perform the same process and learn Mix
Ja 1335 ¢HLA-D2-Mix s HLA-B4-Mix (HLA-B3-Mix (HLA-B2-Mix ¢A4-MixJa 1335 ¢HLA-D2-Mix s HLA-B4-Mix (HLA-B3-Mix (HLA-B2-Mix ¢A4-Mix)
HLA- (HLA-A2-Mix ميكرولتر خليط من كل أنبوب من 7٠٠ كل الأثابيب بالصدم. يزال ٠HLA- (HLA-A2-Mix) Mixture from each tube of 700 µl all apertures. Removed 0
HLA- 3 HLA-B4-Mix (HLA-B3-Mix «HLA-B2-Mix (HLA-A4-Mix «نتدتفى A ives (HLA-Mix في أنبوب 10# سعة ؟ ملايلقر ويعلم مثل D2-Mix وينقى على عمود بواسطة عُدة HLA-Mix من DNA ميكرولتر من خليط ٠٠0٠ يزال Yoo تبعا للدليل. يتحدد (QIAGEN Corporation) Qiagen DNA PurificationHLA- 3 HLA-B4-Mix (HLA-B3-Mix) “HLA-B2-Mix (HLA-A4-Mix) We find A ives (HLA-Mix) in a tube of 10 # capacity ? ml and know like D2- Mix and purify on a column with an HLA-Mix kit of DNA 000 microliters of the mixture still Yoo according to the guide.
Nanodrop 8000 (Thermo Fisher Scientific ناتج بالتنقية بواسطة DNA ميكرولتر Ve نانوجم/ ميكرولتر. $A مثل HLA-Mix DNA’ 355% من Corporation) 4 مثال lumina GA PCR-Free وانشاء مكتبة ترتيب PCR قص منتجاتNanodrop 8000 (Thermo Fisher Scientific DNA purification μl Ve ng/μl.$A as HLA-Mix DNA' 355% from Corporation) 4 Example lumina GA PCR-Free And the creation of a library of ordering PCR shearing products
DNA قص ١ نقي ويتعرض لقص على جهاز قص HLA-Mix من DNA إجمالي © ميكروجم Ja Y مع ألياف Covaris باستخدام أنابيب دقيقة (Covaris Corporation) Covaris 52 DNA تكون شروط القص كالتالي: . Snap-Cap 5 AFA مسح التردد الأ اااDNA 1 cut pure and subjected to shearing on a HLA-Mix trimmer from Total © μg Ja Y DNA with Covaris fibers using Covaris 52 DNA microtubules (Covaris Corporation) The conditions for shearing are as follows: . Snap-Cap 5 AFA Frequency scanning AAA
Y. الثنقية بعد القص ."Y. The cleft after sternum.
QIAquick PCR Purification باستخدام غدة HLA-Mix كل منتجات القص من AT . (QIAGEN ممنساط Buffer) EB ميكرولتر YV,0 وتذاب تتابعيا في ؟. تفاعل إصلاح الطرف ويكون نظام التفاعل كالتالي «DNA نقي إلى تفاعل إصلاح طرف HLA-Mix يتعرض ° :(Enzymatics Corporation (يتم الحصول على كل العوامل من ل me ene ا " ميكرولتر ٠ كيناز عديد * ٠١ مثبت أس هيدروجيني (B904) نيكلوتيد مللي جزيئي ؟؛ ميكرولتر ٠١( ANTP مجموعة محلول جرامي لكل واحدة) am لاعت مقر ا rt كنز عند (Eppendorf Corporation) Thermomixer يجرى التفاعل في حمام ماء على دقيقة. Vo لمدة ةيوثم“٠ وتذاب في ؛ ؟ QlAquick PCR Purification sag تنقى منتجات التفاعل باستخدام . (QIAGEN Elution Buffer) EB ميكرولتر ٠ عند الطرف”3 “A” ؛. تفاعل إضافة عند الطرف 37 ويكون A مسترجع في الخطوة السابقة يتعرض لتفاعل إضافة DNA إن :(Enzymatics Corporation نظام التفاعل كالتالي (يتم الحصول على كل العوامل من ميكرولتر ٠ GE «aba مللي جزيني ١( dATP (CorporationQIAquick PCR Purification Using HLA-Mix All Cut Products from AT. (QIAGEN Homogenetic Buffer) EB YV,0 μl and sequentially dissolved in ?. Tip repair reaction The reaction system is as follows: “Pure DNA to HLA-Mix tip repair reaction exposed °: (Enzymatics Corporation) (all factors are obtained from L me ene a” microliter 0 poly kinase * 01 pH stabilizer (B904) mMN nucleotide ?; 01 μL (ANTP 1 gram solution group each) am located at rt treasure At (Eppendorf Corporation) Thermomixer, the reaction is carried out in a water bath for 10 minutes. ) EB 0 μl at tip “3” A “; an addition reaction at tip 37 and A recovered in the previous step is subjected to a DNA addition reaction (Enzymatics Corporation): The reaction system is as follows (All factors obtained from 0 μL GE “aba mMJ dATP (Corporation) 1)
ل يجرى التفاعل في ples ماء على (Eppendorf Corporation) Thermomixer عند set لمدة Te دقيقة. تنقى منتجات التفاعل باستخدام QIAquick PCR Purification Bac وتذاب في ١١ ميكرولتر (QIAGEN Elution Buffer) EB . © © . وصلة مهايئة مكتبة [Humina GA PCR-Free إن المصطلح "وصلة مهايئة مكتبة "(PCR-Free library adapter) PCR-Free المستخدم هنا يشير إلى eda من قواعد مصممة؛ وظيفتها الأساسية هي مساعدة تثبيت جزيئات DNA على رقائق ترتيب وتوفر مواقع ارتباط لمواد بادئة للترتيب عالمية. يمكن وصل مهايئة مكتبة PCR-Free إلى طرفين أجزاء DNA في مكتبة الترتيب؛ حيث لا تتضمن عملية مهاينة ٠ المكتبة lid (PCR تسمى المهايثة متل مهايئة مكتية .PCR-Free بعد إضافة ”م“ يتصل المنتج مع مهايئة مكتبة Illumina GA PCR-Free ويكون نظام التفاعل كالتالي (يتم الحصول على كل العوامل من :(Enzymatics Corporation جزيئي جرامي) يجرى التفاعل في حمام ماء على (Eppendorf Corporation) Thermomixer عند ٠“مثوية لمدة ١5 دقيقة. Vo تتقى منتجات التفاعل باستخدام (Beckman Coulter Genomics) Ampure Beads وتذاب في ٠ ميكرولتر ele مزال التأين؛ وعندئذ تتحد بواسطة PCR حصة fluorescence (QPCR) من تركيز DNA كالتالي:The reaction is carried out in ples water on an (Eppendorf Corporation) Thermomixer at set Te for min. Reaction products were purified using QIAquick PCR Purification Bac and dissolved in 11 μl (QIAGEN Elution Buffer) EB. © © . [Humina GA PCR-Free Library Adapter Adapter] The term “PCR-Free library adapter) PCR-Free used herein refers to eda from designed bases; Their primary function is to help anchor DNA molecules to sequence chips and to provide binding sites for universal sequence initiators. The PCR-Free Library Adapter can be attached to both ends of the DNA segments in the sequence library; As the library 0 degradation process does not include a library lid (PCR), it is called a metamorphosis like the PCR-Free library adapter. After adding “m”, the product communicates with the Illumina GA PCR-Free library adapter and the reaction system is as follows (obtained On all factors (Enzymatics Corporation Grammolecular) the reaction was carried out in a water bath over an (Eppendorf Corporation) Thermomixer at 0” incubator for 15 minutes. Vo reaction products were quantified using Beckman Coulter Genomics. Ampure Beads were dissolved in 0 μl deionized ele, then combined by PCR the fluorescence quota (qPCR) of the DNA concentration was as follows:
نص LY الإزالة من الهلام والاسترجاع يسترجع "٠ ميكرولتر HLA-Mix على AY هلام agarose منخفضة نقطة الانصهار. إن شروط الارتحال الكهربي هي ٠٠١ فولط؛ء ٠٠١ دقيقة. إن مادة تعليم DNA هي ٠ ٠ إمرار نطاقي من مادة تعليم DAN من NEB Corporation تزال أجزاء DNA في مدى الطول 0 5.0؛-.20 إمرار نطاقي من الهلام (انظر الشكل 3). تتقى أجزاء DNA المزالة باستخدام YY Jie (QIAGEN Corporation) QIAquick PCR Purification se ميكرولتر في الحجم بعد التنقية؛ ويكون تركيز ٠١٠6 DNA نانوجزيئي جرامي يتحدد بواسطة 11110165660626 quota PCR (QPCR) مثال 5 lumina GA 5) ٠ للترتيب DNA بيكوجزيئي جرامي ٠١ يستخدم «QPCR طبقا إلى نتيجة وتشير عملية التفصيلة الى دليل «Illumina GA PE-100 بواسطة برنامج Jdllumina GA manual (Illumina GA II x) 6 مثال تحليل النتائج ١ وتنشاً (DNA تكون سلسلة من ترتيبات 111070108 GA إن نتائج الترتيب المنتجة بواسطة من كل PCR قاعدة البيانات لكل مؤشر مادة بادئة مقابل لنتيجة ترتيب منتج من كل عينة بإيجاد ترتيبات مؤشر المادة البادئة المقدم والمعكوسة HLA-A/B/DRBI exon على الترتيب المرجعي exon وترتيبات المادة البادئة في نتائج الترتيب. تقع نتيجة الترتيب لكلLY text Removal from gel and retrieval retrieval “0 μl HLA-Mix on AY low melting point agarose gel. Electrophoresis conditions are 100 volts; 100 min. DNA is 0 0 bandpass from NEB Corporation DAN Marker DNA fragments are removed in a length range of 0 5.0 ;-.20 bandpass from the gel (see Figure 3). eluted with YY Jie (QIAGEN Corporation) QIAquick PCR Purification se μl in volume after purification; 0106 nanogram DNA concentration determined by 11110165660626 quota PCR (QPCR) ex 5 lumina GA 5) 0 in order Grammar picomolecular DNA 01 using “QPCR according to the result” and the detailed process refers to the “Illumina GA PE-100” manual using the program “Jdllumina GA manual (Illumina GA II x) 6 example results analysis 1 (DNA is a sequence of sequences) 111070108 GA The sequence results produced by GA 111070108 originate from each PCR database for each primer indicator against a product sequence result from each sample by finding the primer indicator rearrangements presented and reversed HLA-A/B/DRBI exon on the reference exon order and the starting material arrangements in the order results. The ranking result falls for each
BWA بواسطة (hitp://www.ebi.ac.uk/imgt/hla/ (من Jolie exon بالنسبة إلى © الترتيب الإجماعي لكل قاعدة Lan +ع1ع80171015-117116). عند نفس الوقت؛ Aligner) في قاعدة البيانات وتتعرض لتصحيح خطأً الترتيب. DNA بيانات؛ وعندئذ تنتقى ترتيبات بواسطة تداخل HLA-A/B/DRBI من exon المصححة لكل DNA يمكن تجميع ترتيبات ناتجة مع قاعدة DNA وعلاقة الوصلة (وصلة مزدوجة الأطراف). تصطف ترتيبات capil في قاعدة البيانات الاحترافية HLA-A/B/DRBI مقابلة من exons بيانات الترتيب من Yo (genotyping) تطابق لنتائج الاصطفاف هو تحديد نوع جيني 7٠٠١ ويكون IMGT HLABWA via http://www.ebi.ac.uk/imgt/hla/ (from Jolie exon to © consensus ranking per rule Lan +p1p80171015-117116) at the same time; Aligner) in the database and is subject to an order error correction. DNA data; Rearrangements are then selected by HLA-A/B/DRBI overlap from the corrected exon of each DNA. The resulting rearrangements can be assembled with the DNA base and linkage relationship (double-ended linkage). Capil rearrangements lined up in HLA-A/B/DRBI profiling database Matched exons Arrangement data from Yo (genotyping) Match to lineup results is genotype 7001 identified and is IMGT HLA
Yy للعينة المقابلة. يوضح الشكل ؛ لقطة تصويرية لبرنامج إنشاء الإجمالي HLA-A/B/DRBI .١ من العينة HLA-A من 6002 على موقع من 97 عينة تتحاشى مع نتائج تحديد النوع (genotyping) إن نتائج تحديد نوع جيني هي كالتالي: 7-١ حيث تكون النتائج السليمة للعينة ٠ الجيني المعروفة أساسيا 0081 07:01 | 1ط 03:01 8:13:02 | B¥08:01 | A*30:01 | 01:01*م 2 1ر0 14:54 | DRBI#10.01 437:01 | B*I5:11 | A¥03:02 | 01:011كم 6Yy for the corresponding sample. Figure shows; Graphical snapshot of HLA-A/B/DRBI generative software 1. From sample HLA-A from 6002 at a site of 97 samples evading the results of genotyping The results of genotyping are As follows: 7-1 where the sound results of the sample are 0 the known essential genetic 0081 07:01 | 1st 3:01 8:13:02 | B¥08:01 | A*30:01 | 01:01*2pm 01r 14:54 | DRBI#10.01 437:01 | B*I5:11 | ¥03:02 | 01:011 km 6
DRBI*15:01 | DRBI*11:01 838101 | B¥35:03 | A*02:01 | A001] 3 - ١ 081 713:02 | DRBI#03:01 | 8:40:02 | B*27:07 | A*31:01 02:06كم | 9 "DRBI712:02 | DRBIF10:01 | B*40:02 | B¥37:01 | AF1L:01 [A101] 16DRBI*15:01 | DRBI*11:01 838101 | B¥35:03 | A*02:01 | A001] 3 - 1 081 713:02 | DRBI#03:01 | 8:40:02 | B*27:07 | A*31:01 02:06 km | 9 "DRBI712:02 | DRBIF10:01 | B*40:02 | B¥37:01 | AF1L:01 [A101] 16
DRB1*15:01 | DRB1*12:01 | B*41:02 | B*40:40 | A*66:01 | A*26:01 29 oDRB1*15:01 | DRB1*12:01 | B*41:02 | B*40:40 | A*66:01 | A*26:01 29 o
Yi لل A UT ل Fd a قن ا 1 1 2 1 1 1 2 ns | oo Te 1 2 1 1 1 1 3 ou do ld 1 4 1 1 1 8 4 esto مسا whe ااا اص 1 5 2 1 2 1 5 ا ا we |, 4 1 1 I 2 1 stor wT wb bole, 1 4 8 2 1 1 7 oi dd PO 1 1 1 3 1 1 esta si be wh RTE], 2 1 2 7 1 6 blll ad dP 2 1 1 1 1 I 10 dl 2 1 | 1 1 1 ] 11 لا ا ا ا 1 6 5 1 1 1 12 i ال ال قد ذا اانا 1 1 2 2 2 1 13 stn war we ا ا ا 2 2 I 1 ] 1 14 blll ol 1 1 1 7 5 1 15 at sw Ti , 2 1 2 1 1 1 16 te م تا ع ساك مساق 1 1 5 1 7 17 اسلا 2 2 1 1 2 1 18 1 5 2 2 1 1 19Yi for A UT for Fd a channel 1 1 2 1 1 1 2 ns | oo Te 1 2 1 1 1 1 3 ou do ld 1 4 1 1 1 1 8 4 esto msa whe aas 1 5 2 1 2 1 5 a a we |, 4 1 1 I 2 1 stor wT wb bole, 1 4 8 2 1 1 7 oi dd PO 1 1 1 3 1 1 esta si be wh RTE], 2 1 2 7 1 6 blll ad dP 2 1 1 1 1 I 10 dl 2 1 | 1 1 1 ] 11 no aa aa 1 6 5 1 1 1 12 i no aa aa aa 1 1 2 2 2 1 13 stn war we a aa 2 2 I 1 ] 1 14 blll ol 1 1 1 7 5 1 15 at sw Ti , 2 1 2 1 1 1 16 te M Taa Sak course 1 1 5 1 7 17 2 2 1 1 2 1 18 1 5 2 2 1 1 19
DRB1*15:0 | DRB1*11:0 { B*40:0 | B*40:0 | A*24:0 | 1 1 1 1 1 6 1 21 1 5 1 5 I 1 22 1 3 1 1 7 1 23 1 1 2 2 1 5 24 yoDRB1*15:0 | DRB1*11:0 { B*40:0 | B*40:0 | A*24:0 | 1 1 1 1 1 6 1 21 1 5 1 5 I 1 22 1 3 1 1 7 1 23 1 1 2 2 1 5 24 yo
DRB1#14:0 | DRB1*12:0 | B*51:0 | B*07:0 | A*31:0 | A*11:0 2 1 6 1 1 25DRB1#14:0 | DRB1*12:0 | B*51:0 | B*07:0 | A*31:0 | A*11:0 2 1 6 1 1 25
DRB1*08:0 | 0151*07:0 | 3*57:0 | B*46:0 | A*11:0 | 00 3 1 1 1 1 1 26DRB1*08:0 | 0151*07:0 | 3*57:0 | B*46:0 | A*11:0 | 00 3 1 1 1 1 1 26
DRB1*¥15:0 | DRB1*04:0 | B*37:0 | B*15:1 | A*02:0 | A*01:0 1 1 1 8 1 1 27DRB1*¥15:0 | DRB1*04:0 | B*37:0 | B*15:1 | A*02:0 | A*01:0 1 1 1 8 1 1 27
DRB1*¥10:0 | DRB1*09:0 | B*46:0 | B*37:0 | A*24:0 * 00 1 i 1 1 2 1 28DRB1*¥10:0 | DRB1*09:0 | B*46:0 | B*37:0 | A*24:0 * 00 1 i 1 1 2 1 28
DRBI1*15:0 | DRB1*¥12:0 | B*41:0 | B*40:4 | A*66:0 | A*26:0 1 1 2 0 1 1 29DRBI1*15:0 | DRB1*¥12:0 | B*41:0 | B*40:4 | A*66:0 | A*26:0 1 1 2 0 1 1 29
DRB1#12:0 | DRB1#03:0 | B*45:0 ١ B*13:0 | A*29:0 | 0 2 1 1 2 2 1 30DRB1#12:0 | DRB1#03:0 | B*45:0 1 B*13:0 | A*29:0 | 0 2 1 1 2 2 1 30
DRB1#15:0 | DRB1*07:0 | B*57:0 | B*15:0 | A*11:0 | 0 1 1 1 1 3 1 31DRB1#15:0 | DRB1*07:0 | B*57:0 | B*15:0 | A*11:0 | 0 1 1 1 1 3 1 31
DRB1*14:0 | DRB1*11:0 | B*38:0 | B*35:0 | A*26:0 | A*11:0 4 3 1 3 1 1 32 احتمالية HLA-DRBI في DRB1#1201 ملحوظة: لا يستيعد النوع الجيني لأن «DRB1*1401 احتمالية DRBI*1454 لا يستيعد «<DRB1*1206/1210/1217 . تكون متماثلة تماما 1114-0811 exon 2 أعلاه على alleles ترتيبات على الرغم من وصف تجسيدات من الاختراع الحالي تفصيليا بالفعل» يمكن أن يدرك الماهر في الفن إمكانية عمل العديد من التعديل والاستبدال على تلك المعينات طبقا للدراسة 0 الموضحة هناء وتكون كل هذه التغيرات ضمن منظور حماية الاختراع الحالي. يتوفر كل متظور الاختراع الحالي بعناصر الحماية الملحقة وما إلى ذلك. المراجع [1]. http://www.ebi.ac.uk/imgt/hla/stats. htmlDRB1*14:0 | DRB1*11:0 | B*38:0 | B*35:0 | A*26:0 | A*11:0 4 3 1 3 1 1 32 HLA-DRBI Possibility in DRB1#1201 Note: The genotype does not return because “DRB1*1401 Possibility DRBI*1454 Does Not Return” <DRB1*1206/1210/1217 . be completely identical to 1114-0811 exon 2 above on the alleles arrangements Although embodiments of the present invention are already described in detail, a person skilled in the art may realize the possibility of making several modifications and substitutions to these lozenges according to the study. 0 described herein and all such changes are within the scope of the protection of the present invention. All prospects of the present invention are available with appended claims, etc. References [1]. http://www.ebi.ac.uk/imgt/hla/stats. html
[2]. Tiercy J M. Molecular basis of HLA polymorphism: implications in Ve clinical transplantation. [J]. Transpl Immunol, 2002, 9: 173-180.[2]. Tiercy J M. Molecular basis of HLA polymorphism: implications in Ve clinical transplantation. [J]. Transpl Immunol, 2002, 9: 173-180.
[3]. C.Antoine, S.Miiller, A.Cant, et al. Long-term survival and transplantation of haemopoietic stem cells for immunodeficiencies: report of the European experience. 1968-99. [J]. The Lancet, 2003,9357:553-560.[3]. C.Antoine, S.Miiller, A.Cant, et al. Long-term survival and transplantation of haemopoietic stem cells for immunodeficiencies: report of the European experience. 1968-99. [J]. The Lancet, 2003, 9357:553-560.
[4]. 11. A. Erlich, ©. Opelz, J. Hansen, et al. HLA DNA Typing and Yo[4]. 11. A. Erlich, ©. Opelz, J. Hansen, et al. HLA DNA Typing and Yo
Transplantation.[J].Immunity, 2001,14:347-356.Transplantation. [J]. Immunity, 2001, 14:347-356.
[5]. Lillo R, Balas A, Vicario JL, etal. Two new HLA class allele,[5]. Lillo R, Balas A, Vicario JL, et al. two new HLA class alleles,
DPB1%02014,by sequence-based typing. [J]. Tissue Antigens, 2002, 59: 47-48.DPB1%02014, by sequence-based typing. [J]. Tissue Antigens, 2002, 59: 47-48.
[6]. A. Dormoy , N. Froelich . Leisenbach, et al. Mono-allelic amplification of exons 2-4 using allele group-specific primers for sequence- based typing (SBT) of the HLA-A, -B and -C genes: Preparation and validation of ready-to-use pre-SBT mini-kits. [J]. Tissue Antigens, 2003, 62: 201-216.[6]. A. Dormoy, N. Froelich. Leisenbach, et al. Mono-allelic amplification of exons 2-4 using allele group-specific primers for sequence-based typing (SBT) of the HLA-A, -B and -C genes: preparation and validation of ready-to-use pre-SBT mini- kits. [J]. Tissue Antigens, 2003, 62: 201-216.
[7]. Elaine R. Mardis. The impact of next-generation sequencing e technology on genetics. [J]. Trends in Genetics.2008,24: 133-141.[7]. Elaine R. Mardis. The impact of next-generation sequencing e technology on genetics. [J]. Trends in Genetics.2008,24:133-141.
[8]. Christian Hoffmann1, Nana Minkahl, Jeremy Leipzig. DNA barcoding and pyrosequencing to identify rare HIV drug resistance mutations. [J]. Nucleic Acids Research,2007,1-8.[8]. Christian Hoffmann1, Nana Minkahl, Jeremy Leipzig. DNA barcoding and pyrosequencing to identify rare HIV drug resistance mutations. [J]. Nucleic Acids Research, 2007, 1-8.
[9]. Shannon J.Odelberg, Robert B. Weiss, Akira Hata, Template- ye switching during DNA synthesis by Thermus aquaticus DNA polymerase 1. [J].[9]. Shannon J.Odelberg, Robert B. Weiss, Akira Hata, Template- ye switching during DNA synthesis by Thermus aquaticus DNA polymerase 1. [J].
Nucleic Acids Research.1995, 23:2049-2057.Nucleic Acids Research.1995, 23:2049-2057.
[10]. Sayer D, Whidborne R, Brestovac B. HLA-DRB1 DNA sequencing based typing: an approach suitable for high throughput typing including unrelated bone marrow registry donors. [J]. Tissue Antigens. 2001, 57(1):.46- Yo 54.[10]. Sayer D, Whidborne R, Brestovac B. HLA-DRB1 DNA sequencing based typing: an approach suitable for high throughput typing including unrelated bone marrow registry donors. [J]. Tissue antigens. 2001, 57(1): .46- Yo 54.
[11]. Iwanka Kozarewa, Zemin Ning, Michael A Quail. Amplification-free[11]. Iwanka Kozarewa, Zemin Ning, Michael A Quail. Amplification-free
Hlumina sequencing-library preparation facilitates improved mapping and assembly of (G+C)-biased genomes. [J]. Nature Methods. 2009, 6:291 —- 295.Hlumina sequencing-library preparation facilitated improved mapping and assembly of (G+C)-biased genomes. [J]. Nature Methods. 2009, 6:291 —- 295.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201010213717.6A CN101921840B (en) | 2010-06-30 | 2010-06-30 | DNA molecular label technology and DNA incomplete interrupt policy-based PCR sequencing method |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SA111320572B1 true SA111320572B1 (en) | 2015-04-29 |
Family
ID=43337055
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SA111320572A SA111320572B1 (en) | 2010-06-30 | 2011-07-02 | A PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique and DNA incomplete shearing strategy |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101921840B (en) |
SA (1) | SA111320572B1 (en) |
WO (1) | WO2012000152A1 (en) |
Families Citing this family (27)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2008027558A2 (en) | 2006-08-31 | 2008-03-06 | Codon Devices, Inc. | Iterative nucleic acid assembly using activation of vector-encoded traits |
CN101921841B (en) * | 2010-06-30 | 2014-03-12 | 深圳华大基因科技有限公司 | HLA (Human Leukocyte Antigen) gene high-resolution genotyping method based on Illumina GA sequencing technology |
SG186876A1 (en) | 2010-06-30 | 2013-02-28 | Bgi Shenzhen Co Ltd | New pcr sequencing method and use thereof in hla genotyping |
WO2012083506A1 (en) * | 2010-12-24 | 2012-06-28 | 深圳华大基因科技有限公司 | Method for hla-dqb1 genotyping and related primers thereof |
EP4039363A1 (en) | 2010-11-12 | 2022-08-10 | Gen9, Inc. | Protein arrays and methods of using and making the same |
EP2638157B1 (en) | 2010-11-12 | 2015-07-22 | Gen9, Inc. | Methods and devices for nucleic acids synthesis |
CN103261438B (en) * | 2010-12-24 | 2015-09-16 | 深圳华大基因医学有限公司 | The method of HLA-C gene type and relevant primer thereof |
CN102653784B (en) * | 2011-03-03 | 2015-01-21 | 深圳华大基因科技服务有限公司 | Tag used for multiple nucleic acid sequencing and application method thereof |
CN102690809B (en) * | 2011-03-24 | 2013-12-04 | 深圳华大基因科技服务有限公司 | DNA index and application thereof in construction and sequencing of mate-paired indexed library |
EP3594340B1 (en) | 2011-08-26 | 2021-06-30 | Gen9, Inc. | Compositions and methods for high fidelity assembly of nucleic acids |
US9150853B2 (en) | 2012-03-21 | 2015-10-06 | Gen9, Inc. | Methods for screening proteins using DNA encoded chemical libraries as templates for enzyme catalysis |
EP3543350B1 (en) * | 2012-04-24 | 2021-11-10 | Gen9, Inc. | Methods for sorting nucleic acids and multiplexed preparative in vitro cloning |
WO2014004393A1 (en) | 2012-06-25 | 2014-01-03 | Gen9, Inc. | Methods for nucleic acid assembly and high throughput sequencing |
CN102758026B (en) * | 2012-06-29 | 2014-05-07 | 深圳华大基因科技有限公司 | HiSeq sequencing technology-based method for detecting hepatitis B virus type and drug resistance gene |
CN103045591B (en) * | 2013-01-05 | 2014-03-12 | 上海荻硕贝肯生物科技有限公司 | HLA gene specific PCR amplification primer, HLA typing method and kit |
WO2015047220A2 (en) * | 2013-09-24 | 2015-04-02 | Georgetown University | Compositions and methods for single g-level hla typing |
CN103617375B (en) * | 2013-12-02 | 2017-08-25 | 深圳华大基因健康科技有限公司 | The method and system of PCR product sequencing and typing |
CN111748606A (en) * | 2014-06-24 | 2020-10-09 | 北京贝瑞和康医学检验实验室有限公司 | Method and kit for quickly constructing plasma DNA sequencing library |
CN104232631B (en) * | 2014-08-26 | 2017-12-15 | 深圳华大基因股份有限公司 | Label, Tag primer, kit and application thereof |
CN104293941B (en) * | 2014-09-30 | 2017-01-11 | 天津华大基因科技有限公司 | Method for constructing sequencing library and application of sequencing library |
CN104561294B (en) * | 2014-12-26 | 2018-03-30 | 北京诺禾致源科技股份有限公司 | The construction method and sequence measurement of Genotyping sequencing library |
CN107858408A (en) * | 2016-09-19 | 2018-03-30 | 深圳华大基因科技服务有限公司 | A kind of generation sequence assemble method of genome two and system |
CN106754904B (en) * | 2016-12-21 | 2019-03-15 | 南京诺唯赞生物科技有限公司 | The specific molecular label of cDNA a kind of and its application |
CN108728903A (en) * | 2017-04-21 | 2018-11-02 | 深圳市乐土精准医疗科技有限公司 | The banking process of thalassemia large sample screening is used for based on high-flux sequence |
CN109801679B (en) * | 2019-01-15 | 2021-02-02 | 广州柿宝生物科技有限公司 | Mathematical sequence reconstruction method for long-chain molecules |
CN113564228A (en) * | 2021-09-26 | 2021-10-29 | 天津诺禾致源生物信息科技有限公司 | Automatic sample processing method and device and automatic sample processing system |
CN117437978A (en) * | 2023-12-12 | 2024-01-23 | 北京旌准医疗科技有限公司 | Low-frequency gene mutation analysis method and device for second-generation sequencing data and application of low-frequency gene mutation analysis method and device |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB0400584D0 (en) * | 2004-01-12 | 2004-02-11 | Solexa Ltd | Nucleic acid chacterisation |
CA2623539C (en) * | 2005-09-29 | 2015-12-15 | Keygene N.V. | High throughput screening of mutagenized populations |
WO2008045575A2 (en) * | 2006-10-13 | 2008-04-17 | J. Craig Venter Institute, Inc. | Sequencing method |
WO2008093098A2 (en) * | 2007-02-02 | 2008-08-07 | Illumina Cambridge Limited | Methods for indexing samples and sequencing multiple nucleotide templates |
CN102124125A (en) * | 2007-10-16 | 2011-07-13 | 霍夫曼-拉罗奇有限公司 | High resolution, high throughput hla genotyping by clonal sequencing |
CN101434988B (en) * | 2007-11-16 | 2013-05-01 | 深圳华因康基因科技有限公司 | High throughput oligonucleotide sequencing method |
CN101654691B (en) * | 2009-09-23 | 2013-12-04 | 深圳华大基因健康科技有限公司 | Method for amplifying and typing HLA gene and relevant primer thereof |
-
2010
- 2010-06-30 CN CN201010213717.6A patent/CN101921840B/en active Active
- 2010-11-15 WO PCT/CN2010/001834 patent/WO2012000152A1/en active Application Filing
-
2011
- 2011-07-02 SA SA111320572A patent/SA111320572B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101921840B (en) | 2014-06-25 |
CN101921840A (en) | 2010-12-22 |
WO2012000152A1 (en) | 2012-01-05 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
SA111320572B1 (en) | A PCR sequencing method based on DNA molecular tag technique and DNA incomplete shearing strategy | |
JP5968879B2 (en) | PCR sequencing method based on DNA molecular tag technology and DNA incomplete fragmentation technology and HLA genotyping method using the same | |
US20210363570A1 (en) | Method for increasing throughput of single molecule sequencing by concatenating short dna fragments | |
WO2012037882A1 (en) | Dna tags and use thereof | |
CN110218781B (en) | Composite amplification system of 21 micro haplotype sites, next generation sequencing and typing kit and typing method | |
WO2012000150A1 (en) | Pcr primers for determining hla-a,b genotypes and methods for using the same | |
Yin et al. | Challenges in the application of NGS in the clinical laboratory | |
Liu et al. | Accurate typing of human leukocyte antigen class I genes by Oxford nanopore sequencing | |
WO2012037883A1 (en) | Nucleic acid tags and use thereof | |
WO2012000153A1 (en) | High resolution typing method of hla gene based on illumina ga sequencing technology | |
Grumbt et al. | Diagnostic applications of next generation sequencing in immunogenetics and molecular oncology | |
CN105039322B (en) | DNA sequence labels and sequencing library construction method and kit | |
US10889860B2 (en) | Compositions and methods for single G-level HLA typing | |
TW201300528A (en) | Method for hla-dqb1 genotyping and related primers thereof | |
CN112609006B (en) | Human leukocyte antigen one-step sequencing and typing method and application thereof | |
TWI542696B (en) | HLA - C genotyping and its related primers | |
CN105603052B (en) | Probe and use thereof | |
CN113544282A (en) | Method for constructing sequencing library based on DNA sample and application | |
WO2021050717A1 (en) | Immune cell sequencing methods | |
MURTHY et al. | Human Saliva and dried saliva spots as source of DNA for PCR based HLA typing using a combination of Taq DNA polymerase and accuprimetaq polymerase | |
WO2013100139A1 (en) | Method for determining hla-a*24 group | |
KR20210079309A (en) | Barcoding of Nucleic Acids | |
Doxiadis et al. | High resolution definition of HLA‐DRB haplotypes by a simplified microsatellite typing technique | |
Truong et al. | A novel multiplexed 11 locus PCR assay using next generation sequencing | |
CN116287284A (en) | SNP combination consisting of 244Y-SNPs, primer combination for detecting SNP combination and application |