RU2818462C1 - Method for creating orthotopic model of human soft tissue sarcoma growing into bone in immunodeficient mice of balb/c nude line - Google Patents
Method for creating orthotopic model of human soft tissue sarcoma growing into bone in immunodeficient mice of balb/c nude line Download PDFInfo
- Publication number
- RU2818462C1 RU2818462C1 RU2023129484A RU2023129484A RU2818462C1 RU 2818462 C1 RU2818462 C1 RU 2818462C1 RU 2023129484 A RU2023129484 A RU 2023129484A RU 2023129484 A RU2023129484 A RU 2023129484A RU 2818462 C1 RU2818462 C1 RU 2818462C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bone
- incision
- soft tissue
- tissue sarcoma
- muscle
- Prior art date
Links
- 206010039491 Sarcoma Diseases 0.000 title claims abstract description 22
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 22
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 18
- 208000021712 Soft tissue sarcoma Diseases 0.000 title claims abstract description 12
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 title claims description 9
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 claims abstract description 38
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 claims abstract description 21
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 claims abstract description 11
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 claims abstract description 8
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 claims abstract description 6
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 claims abstract description 6
- 230000007547 defect Effects 0.000 claims abstract description 6
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 claims abstract description 6
- 208000006735 Periostitis Diseases 0.000 claims abstract description 5
- 210000000109 fascia lata Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 210000001981 hip bone Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 210000003460 periosteum Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 claims abstract description 5
- 210000000529 third trochanter Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 21
- 210000000501 femur body Anatomy 0.000 claims description 6
- 238000011729 BALB/c nude mouse Methods 0.000 abstract description 14
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 6
- 210000000954 sacrococcygeal region Anatomy 0.000 abstract description 3
- 208000005623 Carcinogenesis Diseases 0.000 abstract description 2
- 230000036952 cancer formation Effects 0.000 abstract description 2
- 231100000504 carcinogenesis Toxicity 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 abstract description 2
- 210000002414 leg Anatomy 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 13
- 201000008968 osteosarcoma Diseases 0.000 description 9
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 6
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 6
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 description 5
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 4
- 208000002847 Surgical Wound Diseases 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N Doxorubicin Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(=O)CO)[C@H]1C[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O1 AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N 0.000 description 2
- XXPXYPLPSDPERN-UHFFFAOYSA-N Ecteinascidin 743 Natural products COc1cc2C(NCCc2cc1O)C(=O)OCC3N4C(O)C5Cc6cc(C)c(OC)c(O)c6C(C4C(S)c7c(OC(=O)C)c(C)c8OCOc8c37)N5C XXPXYPLPSDPERN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000006168 Ewing Sarcoma Diseases 0.000 description 2
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 206010006007 bone sarcoma Diseases 0.000 description 2
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 description 2
- 238000009101 premedication Methods 0.000 description 2
- 238000002271 resection Methods 0.000 description 2
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- PKVRCIRHQMSYJX-AIFWHQITSA-N trabectedin Chemical compound C([C@@]1(C(OC2)=O)NCCC3=C1C=C(C(=C3)O)OC)S[C@@H]1C3=C(OC(C)=O)C(C)=C4OCOC4=C3[C@H]2N2[C@@H](O)[C@H](CC=3C4=C(O)C(OC)=C(C)C=3)N(C)[C@H]4[C@@H]21 PKVRCIRHQMSYJX-AIFWHQITSA-N 0.000 description 2
- 229960000977 trabectedin Drugs 0.000 description 2
- BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N xylazine Chemical compound CC1=CC=CC(C)=C1NC1=NCCCS1 BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960001600 xylazine Drugs 0.000 description 2
- 238000011725 BALB/c mouse Methods 0.000 description 1
- 208000018084 Bone neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 101000661600 Homo sapiens Steryl-sulfatase Proteins 0.000 description 1
- PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N Isoflurane Chemical compound FC(F)OC(Cl)C(F)(F)F PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000018142 Leiomyosarcoma Diseases 0.000 description 1
- 206010027476 Metastases Diseases 0.000 description 1
- 241001529936 Murinae Species 0.000 description 1
- 206010029098 Neoplasm skin Diseases 0.000 description 1
- 208000000453 Skin Neoplasms Diseases 0.000 description 1
- 206010068771 Soft tissue neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 208000015778 Undifferentiated pleomorphic sarcoma Diseases 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 230000004097 bone metabolism Effects 0.000 description 1
- 208000023913 breast extraskeletal osteosarcoma Diseases 0.000 description 1
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 description 1
- 229960004679 doxorubicin Drugs 0.000 description 1
- 238000005553 drilling Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 description 1
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 1
- 102000054458 human STS Human genes 0.000 description 1
- 230000035992 intercellular communication Effects 0.000 description 1
- 229960002725 isoflurane Drugs 0.000 description 1
- 210000000629 knee joint Anatomy 0.000 description 1
- 206010024627 liposarcoma Diseases 0.000 description 1
- 230000036210 malignancy Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000009401 metastasis Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 1
- 230000008506 pathogenesis Effects 0.000 description 1
- 230000002685 pulmonary effect Effects 0.000 description 1
- 210000003314 quadriceps muscle Anatomy 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 210000002027 skeletal muscle Anatomy 0.000 description 1
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 1
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 1
- 238000013520 translational research Methods 0.000 description 1
- 210000004881 tumor cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000004614 tumor growth Effects 0.000 description 1
- 238000013414 tumor xenograft model Methods 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и может быть использовано для создания ортотопической модели саркомы мягких тканей человека, прорастающей в кость, на иммунодифицитных мышах линии Balb/с Nude.The invention relates to medicine, namely to experimental oncology, and can be used to create an orthotopic model of human soft tissue sarcoma growing into bone in immunodeficient mice of the Balb/c Nude line.
Саркома – это злокачественное новообразование, которое образуется из различных типов соединительной ткани. Их делят на 2 большие группы - это саркомы мягких тканей и саркомы костей. Саркомы мягких тканей (СМТ) являются относительно редкими злокачественными новообразованиями, составляя 1% опухолей у взрослых и 7–15% у детей. Это гетерогенная группа опухолей мезенхимального происхождения, которые могут возникать в любом месте тела, при этом конечности организма являются наиболее распространенной первичной локализацией, на их долю приходится 60% (см. Феденко А.А., Тарарыкова А.А. Роль трабектедина в лечении сарком мягких тканей: обзор современных данных. Саркомы костей, мягких тканей и опухоли кожи. 2021;13(3):16-26. https://doi.org/10.17650/2782-3687-2021-13-3-16-27). Согласно текущей классификации ВОЗ, в настоящее время существует более 50 различных подтипов СМТ, и наиболее распространенными агрессивными опухолями являются липосаркома, лейомиосаркома и недифференцированная плеоморфная саркома (см. Poon E., Quek R. Soft tissue sarcoma in Asia //Chin Clin Oncol. – 2018. – Т. 7. – №. 4. – С. 46). Наиболее распространёнными саркомами костей являются саркомы Юинга или остеосаркомы (ОС). Общей чертой этих видов рака является чрезвычайно низкая выживаемость пациентов с метастатическими заболеваниями или рецидивами (см. Cillo AR, Mukherjee E, Bailey NG, Onkar S, Daley J, Salgado C, Li X, Liu D, Ranganathan S, Burgess M, Sembrat J, Weiss K, Watters R, Bruno TC, Vignali DAA, Bailey KM. Ewing Sarcoma and Osteosarcoma Have Distinct Immune Signatures and Intercellular Communication Networks. Clin Cancer Res. 2022 Nov 14;28(22):4968-4982. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-22-1471. PMID: 36074145; PMCID: PMC9669190). Sarcoma is a malignant neoplasm that is formed from various types of connective tissue. They are divided into 2 large groups - soft tissue sarcomas and bone sarcomas. Soft tissue sarcomas (STS) are relatively rare malignancies, accounting for 1% of tumors in adults and 7–15% in children. This is a heterogeneous group of tumors of mesenchymal origin that can occur anywhere in the body, with the extremities of the body being the most common primary location, accounting for 60% (see Fedenko A.A., Tararykova A.A. The role of trabectedin in the treatment of sarcomas soft tissue: a review of current evidence. Sarcomas of bone, soft tissue and skin tumors 2021;13(3):16-26. ). According to the current WHO classification, there are currently more than 50 different subtypes of STS, and the most common aggressive tumors are liposarcoma, leiomyosarcoma and undifferentiated pleomorphic sarcoma (see Poon E., Quek R. Soft tissue sarcoma in Asia //Chin Clin Oncol. – 2018. – T. 7. – No. 4. – P. 46). The most common bone sarcomas are Ewing sarcomas or osteosarcomas (OS). A common feature of these cancers is the extremely poor survival of patients with metastatic disease or relapse (see Cillo AR, Mukherjee E, Bailey NG, Onkar S, Daley J, Salgado C, Li X, Liu D, Ranganathan S, Burgess M, Sembrat J , Weiss K, Watters R, Bruno TC, Vignali DAA, Bailey KM. Ewing Sarcoma and Osteosarcoma Have Distinct Immune Signatures and Intercellular Communication Networks. Clin Cancer Res. 2022 Nov 14;28(22):4968-4982. 1078-0432.CCR-22-1471. PMID: 36074145; PMCID: PMC9669190).
Таким образом, существует необходимость в изучении особенностей сарком для лучшего понимания течения заболевания. Для изучения биологии данного заболевания используют животные модели, что является важной частью фундаментальных и трансляционных исследований в онкопатологии. Основной задачей таких моделей является воспроизведение течения заболеваний человека. В настоящие время саркомы до конца не изучены, поэтому остается необходимость создания экспериментальных моделей отражающих более точную картину развития заболевания. Thus, there is a need to study the characteristics of sarcomas to better understand the course of the disease. Animal models are used to study the biology of this disease, which is an important part of fundamental and translational research in oncology. The main task of such models is to reproduce the course of human diseases. At present, sarcomas have not been fully studied, so there remains a need to create experimental models that reflect a more accurate picture of the development of the disease.
Известен способ создания модели СМТ у мышей линии BALB/c путем подкожной инъекции клеток саркомы мягких тканей мыши CCRF S-180II в спину мышам в количестве 2-4×105 клеток в объеме 0,2 мл питательной среды (см. Kasama F, Tsuchie H, Nagasawa H, Hongo M, Kasukawa Y, Nozaka K, Kudo D, Shoji R, Igarashi S, Harata S, Okamoto K, Oya K, Miyakoshi N. Effects of Soft Tissue Sarcoma and Doxorubicin on Bone Metabolism in Mice. In Vivo. 2023 Jul-Aug;37(4):1532-1539. doi: 10.21873/invivo.13238. PMID: 37369484; PMCID: PMC10347941). Преимуществом данного способа является получение большого количества животных-опухоленосителей. Недостатком метода является сайт трансплантации и опухолевые клетки, которые являются мышиными, а не человеческими, что может нести не информативную характеристику опухоли для дальнейших клинических исследований. There is a known method for creating a model of SMT in BALB/c mice by subcutaneous injection of mouse soft tissue sarcoma cells CCRF S-180II into the back of mice in the amount of 2-4×105 cells in a volume of 0.2 ml of nutrient medium (see Kasama F, Tsuchie H , Nagasawa H, Hongo M, Kasukawa Y, Nozaka K, Kudo D, Shoji R, Igarashi S, Harata S, Okamoto K, Oya K, Miyakoshi N. Effects of Soft Tissue Sarcoma and Doxorubicin on Bone Metabolism in Vivo. 2023 Jul-Aug;37(4):1532-1539. doi: 10.21873/invivo.13238. PMID: 37369484; The advantage of this method is the production of a large number of tumor-carrying animals. The disadvantage of the method is the transplantation site and tumor cells, which are murine and not human, which may not provide an informative characteristic of the tumor for further clinical studies.
Известен способ подкожной трансплантации фрагмента опухоли остеосаркомы человека мышам линии Balb/c Nude (см. Wu N. F. et al. The first mouse model of primary osteosarcoma of the breast //in vivo. – 2021. – Т. 35. – №. 4. – С. 1979-1983). Операционный образец размером приблизительно 2 мм3 трансплантировали по методу Hozumi, а именно на спинной стороне тела мыши делали разрез кожи длиной 1 см и создавали карман путем отделения кожи от дермы, далее был помещен фрагмент первичной опухоли вместе с окружающей нормальной тканью, после чего рана была ушита. Преимуществом данного способа является высокий процент приживляемой опухоли, который составил 90,2%, то есть из 51 у 46 мышей наблюдался рост опухолевого узла. Однако недостатком метода является неестественный сайт имплантации опухолевого материала, предполагающий влияние на опухоль чужеродного микроокружения.There is a known method for subcutaneous transplantation of a human osteosarcoma tumor fragment into Balb/c Nude mice (see Wu N. F. et al. The first mouse model of primary osteosarcoma of the breast //in vivo. – 2021. – T. 35. – No. 4. – S. 1979-1983). A surgical specimen measuring approximately 2 mm3 was transplanted using the Hozumi method, namely, a 1 cm long skin incision was made on the dorsal side of the mouse body and a pocket was created by separating the skin from the dermis, then a fragment of the primary tumor was placed along with surrounding normal tissue, after which the wound was sutured . The advantage of this method is the high percentage of engrafted tumor, which was 90.2%, that is, out of 51 mice, growth of the tumor node was observed in 46 mice. However, the disadvantage of the method is the unnatural site of implantation of the tumor material, suggesting the influence of a foreign microenvironment on the tumor.
Известен способ создания ортотопической трансплантации остеосаркомы человека в большеберцовую кость мышам линии Balb/c Nude (см. Inoue M. et al. Trabectedin suppresses osteosarcoma pulmonary metastasis in a mouse tumor xenograft model //Journal of Orthopaedic Research®. – 2022. – Т. 40. – №. 4. – С. 945-953). Для достижения поставленной цели мышам либо на правом, либо на левом бедре делали разрез кожи размер 8 мм, далее лапу сгибали в коленном суставе, для того чтобы обнажить четырехглавую мышцу и икроножную мышцу через разрез. Мышцы также были рассечены. Затем лезвием диаметром 5 мм прокалывали проксимальный отдел большеберцовой кости. После того как был сделан прокол вводили лезвие в кость на 2,5 мм, вращали в несколько оборотов для создания отверстия в кости. Таким образом, образовывалось отверстие диаметром 1 мм и далее помещали фрагмент опухоли, размером соответствующему образованному отверстию. Последним этапом проводили послойное ушитие операционной раны. Преимуществом способа является отражение более точной клинической картины модели опухоли, имитируя заболевание человека с ОС. Однако недостатками является трудоёмкий процесс трансплантации, небольшой объем опухолевого фрагмента, что может снизить процент его приживления, а вследствие этого и роста опухолевого узла, сложность определения объемов роста опухоли. There is a known method for creating orthotopic transplantation of human osteosarcoma into the tibia of Balb/c Nude mice (see Inoue M. et al. Trabectedin suppresses osteosarcoma pulmonary metastasis in a mouse tumor xenograft model //Journal of Orthopedic Research®. - 2022. - Vol. 40. – No. 4. – P. 945-953). To achieve this goal, an 8 mm skin incision was made on either the right or left thigh of the mice, then the paw was flexed at the knee joint in order to expose the quadriceps and gastrocnemius muscles through the incision. The muscles were also cut. A 5 mm blade was then used to puncture the proximal tibia. After the puncture was made, the blade was inserted 2.5 mm into the bone and rotated several times to create a hole in the bone. Thus, a hole with a diameter of 1 mm was formed and then a tumor fragment of the size corresponding to the formed hole was placed. The last stage was layer-by-layer suturing of the surgical wound. The advantage of the method is that it reflects a more accurate clinical picture of the tumor model, simulating the disease of a person with OS. However, the disadvantages are the labor-intensive transplantation process, the small volume of the tumor fragment, which can reduce the percentage of its engraftment and, as a result, the growth of the tumor node, and the difficulty of determining the volume of tumor growth.
Известен способ создания ортотопической трансплантации остеосаркомы человека мышам линии Balb/c Nude (см. Blattmann C. et al. Establishment of a patient-derived orthotopic osteosarcoma mouse model //Journal of translational medicine. – 2015. – Т. 13. – С. 1-10.). Операцию проводили под общей анестезией ингаляционно изофлюраном. Образцы опухоли, взятые от пациента, разделяли на кусочки размером 1×1×1 мм3. Затем проводили разрез в правой большеберцовой кости мыши в медиальной части, далее путем сверления бормашиной диаметром 0,5 мм создавали дефект костной ткани и закладывали фрагмент опухоли, который контактировал с костным мозгом. После этого операционная рана была ушита. Преимуществом служит процент успеха, который составил 92%, а также сайт имплантации является естественным для опухолевого материала. Но способ обладает существенным недостатком. Опухолевый фрагмент не был зафиксирован, что может в процессе ушивания операционной раны изменить местоположение опухолевого фрагмента, также размер кусочков опухоли малы и, таким образом, может оказать существенное влияние на приживление материала. There is a known method for creating orthotopic transplantation of human osteosarcoma into Balb/c Nude mice (see Blattmann C. et al. Establishment of a patient-derived orthotopic osteosarcoma mouse model //Journal of translational medicine. – 2015. – T. 13. – P. 1-10.). The operation was performed under general anesthesia using isoflurane inhalation. Tumor samples taken from the patient were divided into pieces measuring 1×1×1 mm 3 . Then an incision was made in the right tibia of the mouse in the medial part, then by drilling with a drill with a diameter of 0.5 mm, a bone tissue defect was created and a tumor fragment was inserted, which was in contact with the bone marrow. After this, the surgical wound was sutured. The advantage is the success rate, which was 92%, and the implantation site is natural for the tumor material. But the method has a significant drawback. The tumor fragment was not fixed, which may change the location of the tumor fragment during suturing of the surgical wound; also, the size of the tumor pieces is small and, thus, can have a significant impact on the engraftment of the material.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является разработка способа, позволяющего создать ортотопическую модель саркомы мягких тканей человека, прорастающей в кость, у мышей линии Balb/c Nude. The technical result of the present invention is the development of a method that makes it possible to create an orthotopic model of human soft tissue sarcoma growing into bone in Balb/c Nude mice.
Технический результат достигается тем, что осуществляют разрез кожи и мышц бедра послойно параллельно тазобедренной кости на протяжении 15 мм, начало разреза проводят на 20 мм ниже крестцовой области спины, заканчивая на неподвижной области лапы, так чтобы разрез был на всей бедренной области лапы мыши, далее делают разрез мышцы, напрягающей широкую фасцию на том же расстоянии, отодвигая хирургическим пинцетом подкожную мышцу большеберцовой кости и при помощи хирургического шаровидного бора диаметром 2 мм ниже на 1 мм от третьего вертела и на 5 мм выше от подколенной поверхности проводят повреждение надкостницы и верхнего слоя костной ткани длиной 1,5 мм и глубиной 1 мм на теле бедренной кости, поверх дефекта помещают фрагмент опухоли саркомы мягкой ткани человека размером 4×1×1 мм3, закрепляют одним узлом лигатуры в центре, сшивают двуглавую мышцу бедра, ушивают послеоперационную рану непрерывным обвивным швом.The technical result is achieved by making an incision in the skin and muscles of the thigh layer by layer parallel to the hip bone over a length of 15 mm, the beginning of the incision is made 20 mm below the sacral area of the back, ending on the stationary area of the paw , so that the incision is on the entire femoral area of the mouse's paw, then an incision is made in the tensor fascia lata muscle at the same distance, moving the subcutaneous muscle of the tibia with surgical tweezers, and using a surgical spherical bur with a diameter of 2 mm below 1 mm from the third trochanter and 5 mm above from the popliteal surface, the periosteum and the upper layer of the bone are damaged tissue 1.5 mm long and 1 mm deep on the body of the femur, a fragment of a human soft tissue sarcoma tumor measuring 4 × 1 × 1 mm 3 is placed on top of the defect, secured with a single ligature in the center, the biceps femoris muscle is sutured, the postoperative wound is sutured with a continuous twist seam
Способ осуществляется следующим образом.The method is carried out as follows.
Эксперимент проводился на мышах линии Balb/c Nude.После иссечения опухоли ее фрагмент помещают в среду Хенкса. Перед трансплантацией вырезают фрагмент размером 25 мм3 и разделяют на равные кусочки для трансплантации каждому животному. Время от момента резекции опухолевого материала у человека до имплантации в тело бедренной кости мыши не должно превышать 15 минут. Для проведения хирургической манипуляции животных вводят в наркоз. Для премедикации используют препарат ксилазин концентрацией 20 мг/кг. Наркотизируют мышей золетилом в концентрации 50 мг/кг (см. Патент на изобретение RU № 2712916, опубл. 03.02.2020, Бюл. №4 ). The experiment was carried out on Balb/c Nude mice. After excision of the tumor, its fragment is placed in Hanks' medium. Before transplantation, a fragment measuring 25 mm 3 is cut out and divided into equal pieces for transplantation into each animal. The time from the moment of resection of tumor material in humans to implantation into the body of the femur of a mouse should not exceed 15 minutes. To perform the surgical procedure, animals are put under anesthesia. For premedication, the drug xylazine is used at a concentration of 20 mg/kg. Mice are anesthetized with zoletil at a concentration of 50 mg/kg (see Patent for invention RU No. 2712916, published 02/03/2020, Bulletin No. 4).
Для обеспечения трансплантации фрагмента опухоли СМТ человека в диафизарную область кости, делают разрез кожи и мышц бедра послойно параллельно тазобедренной кости на протяжении 15 мм. Начало разреза проводят на 20 мм ниже крестцовой области спины, и продолжают так, чтобы разрез был на всей бедренной области лапы мыши. Далее делают разрез мышцы, напрягающую широкую фасцию на том же расстоянии. Отодвигая хирургическим пинцетом подкожную мышцу большеберцовой кости и при помощи хирургического шаровидного бора диаметром 2 мм ниже на 1 мм от третьего вертела и на 5 мм выше от подколенной поверхности проводят повреждение надкостницы и верхнего слоя костной ткани длиной 5 мм и глубиной 1 мм на теле бедренной кости, поверх дефекта помещают фрагмент опухоли СМТ человека размером 4 мм на 1 мм на 1 мм, закрепляют одним узлом лигатуры в центре, сшивают двуглавую мышцу бедра, ушивают послеоперационную рану непрерывным обвивным швом. To ensure transplantation of a fragment of a human SMT tumor into the diaphyseal region of the bone, an incision is made in the skin and muscles of the thigh in layers parallel to the hip bone over a length of 15 mm. The incision begins 20 mm below the sacral region of the back, and continues so that the incision is across the entire femoral region of the mouse's paw. Next, an incision is made into the muscle that strains the fascia lata at the same distance. By moving the subcutaneous muscle of the tibia with surgical tweezers and using a surgical spherical bur with a diameter of 2 mm below 1 mm from the third trochanter and 5 mm above from the popliteal surface, damage is carried out to the periosteum and the upper layer of bone tissue 5 mm long and 1 mm deep on the body of the femur , a fragment of a human SMT tumor measuring 4 mm by 1 mm by 1 mm is placed on top of the defect, secured with one ligature in the center, the biceps femoris muscle is sutured, and the postoperative wound is sutured with a continuous encircling suture.
Изобретение иллюстрируется фигурами (1-5). The invention is illustrated by figures (1-5).
На Фиг.1 изображен доступ к бедренной кости мыши линии Balb/c Nude.Figure 1 shows access to the femur of a Balb/c Nude mouse.
На Фиг. 2 изображено повреждение верхнего слоя костной ткани на теле бедренной кости мыши линии Balb/c Nude при помощи хирургического бура.In FIG. Figure 2 shows damage to the upper layer of bone tissue on the body of the femur of a Balb/c Nude mouse using a surgical drill.
На Фиг. 3 изображена трансплантация опухолевого фрагмента СМТ человека на поврежденную бедренную кость мыши линии Balb/c Nude. In FIG. Figure 3 shows the transplantation of a human SMT tumor fragment onto the damaged femur of a Balb/c Nude mouse.
На Фиг. 4 изображена фиксация опухолевого фрагмента СМТ человека на поврежденной бедренной кости мыши линии Balb/c Nude. In FIG. Figure 4 shows the fixation of a human SMT tumor fragment on the damaged femur of a Balb/c Nude mouse.
На Фиг. 5 изображен окончательный вид зафиксированного фрагмента СМТ человека на поврежденную бедренную кость мыши линии Balb/c Nude.In FIG. Figure 5 shows the final view of a fixed human SMT fragment on the damaged femur of a Balb/c Nude mouse.
Данным способом была проведена трансплантации фрагмента опухоли СМТ человека на бедренной кости 18 мышам линии Balb/c Nude. Using this method, a fragment of a human SMT tumor was transplanted onto the femur into 18 Balb/c Nude mice.
Пример применения способа.Example of application of the method.
Проведение трансплантация самцу мыши линии Balb/c Nude весом 26 г., возраст 10 недель. Transplantation was performed into a male Balb/c Nude mouse weighing 26 g, 10 weeks old.
После иссечения опухоли ее фрагмент помещают в среду Хенкса. Перед трансплантацией вырезают фрагмент опухоли размером 25 мм3 и разделяют на равные кусочки для трансплантации каждому животному. Время от момента резекции опухолевого материала у человека до имплантации в тело бедренной кости мыши не должно превышать 15 минут.After excision of the tumor, its fragment is placed in Hanks' medium. Before transplantation, a tumor fragment measuring 25 mm 3 is cut out and divided into equal pieces for transplantation into each animal. The time from the moment of resection of tumor material in humans to implantation into the body of the femur of a mouse should not exceed 15 minutes.
Для проведения хирургической манипуляции животных вводят в наркоз. Для премедикации используют препарат ксилазин концентрацией 20 мг/мл. Наркотизируют мышей золетилом в концентрации 22,57 мг/кг.To perform the surgical procedure, animals are put under anesthesia. For premedication, the drug xylazine is used at a concentration of 20 mg/ml. Mice are anesthetized with zoletil at a concentration of 22.57 mg/kg.
Для обеспечения трансплантации фрагмента опухоли СМТ человека проводили в диафизарную область кости, делают разрез кожи и мышц бедра проводят послойно параллельно тазобедренной кости на протяжении 15 мм. Начало разреза проводят на 20 мм ниже крестцовой области спины, и продолжают так, чтобы разрез был на всей бедренной области лапы мыши Далее делают разрез мышцы, напрягающую широкую фасцию на том же расстоянии. Отодвигая хирургическим пинцетом подкожную мышцу большеберцовой кости и при помощи хирургического шаровидного бора диаметром 2 мм ниже на 1 мм от третьего вертела и на 5 мм выше от подколенной поверхности проводят повреждение надкостницы и верхнего слоя костной ткани длиной 1,5 мм и глубиной 1 мм на теле бедренной кости, поверх дефекта помещают фрагмент опухоли СМТ человека размером 4 мм на 1 мм на 1 мм, закрепляют одним узлом лигатуры в центре, сшивают двуглавую мышцу бедра, ушивают послеоперационную рану непрерывным обвивным швом.To ensure transplantation of a human tumor fragment, a human SMT was carried out into the diaphyseal region of the bone, an incision was made in the skin and the thigh muscles were carried out in layers parallel to the hip bone for 15 mm. The beginning of the incision is made 20 mm below the sacral region of the back, and continues so that the incision is on the entire femoral region of the mouse's paw. Next, an incision is made in the muscle that strains the fascia lata at the same distance. Using surgical tweezers, moving the subcutaneous muscle of the tibia and using a surgical spherical bur with a diameter of 2 mm below 1 mm from the third trochanter and 5 mm above from the popliteal surface, the periosteum and the upper layer of bone tissue 1.5 mm long and 1 mm deep are damaged on the body femur, a fragment of a human SMT tumor measuring 4 mm by 1 mm by 1 mm is placed on top of the defect, secured with one ligature in the center, the biceps femoris muscle is sutured, and the postoperative wound is sutured with a continuous enveloping suture.
Технико-экономическая эффективность данного способа заключается в возможности создания ортотопической пациентоподобной модели СМТ человека, прорастающей в кость, на мышах линии Balb/c Nude, для дальнейшего изучения патогенеза заболевания. Данная модель наиболее точно отражает особенности онкогенеза, и является необходимой тест-системой для доклинических исследований различных способов лечения СМТ.The technical and economic efficiency of this method lies in the possibility of creating an orthotopic patient-like model of human STS growing into the bone in Balb/c Nude mice for further study of the pathogenesis of the disease. This model most accurately reflects the features of oncogenesis, and is a necessary test system for preclinical studies of various methods of treating STS.
Claims (1)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2818462C1 true RU2818462C1 (en) | 2024-05-02 |
Family
ID=
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110150228A (en) * | 2019-06-04 | 2019-08-23 | 于涛 | A kind of construction method of diabetic mice colorectal carcinoma model |
RU2753144C1 (en) * | 2020-12-02 | 2021-08-12 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of transplantation of a fragment of a human colon tumor into the descending colon of immunodeficient mice |
RU2760084C1 (en) * | 2021-03-26 | 2021-11-22 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for obtaining an orthotopic pdx model of squamous cell carcinoma of the human esophagus for the study of radiation therapy in an experiment |
RU2761892C1 (en) * | 2021-03-25 | 2021-12-13 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for obtaining an orthotopic pdx model of human brain glioblastoma on immunodeficient mice for preclinical study of antitumor effects of cytostatic drugs |
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110150228A (en) * | 2019-06-04 | 2019-08-23 | 于涛 | A kind of construction method of diabetic mice colorectal carcinoma model |
RU2753144C1 (en) * | 2020-12-02 | 2021-08-12 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of transplantation of a fragment of a human colon tumor into the descending colon of immunodeficient mice |
RU2761892C1 (en) * | 2021-03-25 | 2021-12-13 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for obtaining an orthotopic pdx model of human brain glioblastoma on immunodeficient mice for preclinical study of antitumor effects of cytostatic drugs |
RU2760084C1 (en) * | 2021-03-26 | 2021-11-22 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for obtaining an orthotopic pdx model of squamous cell carcinoma of the human esophagus for the study of radiation therapy in an experiment |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
Blattmann C, Thiemann M, Stenzinger A, Roth EK, Dittmar A, Witt H, Lehner B, Renker E, Jugold M, Eichwald V, Weichert W, Huber PE, Kulozik AE. Establishment of a patient-derived orthotopic osteosarcoma mouse model. J Transl Med. 2015 Apr 30; 13: 136. * |
Wu H, He Z, Li X, Xu X, Zhong W, Bu J, Huang G. Efficient and Consistent Orthotopic Osteosarcoma Model by Cell Sheet Transplantation in the Nude Mice for Drug Testing. Front Bioeng Biotechnol. 2021 Sep 24; 9: 690409. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Zang et al. | Reconstruction of the hemipelvis with a modular prosthesis after resection of a primary malignant peri-acetabular tumour involving the sacroiliac joint | |
Wang et al. | Endoprosthetic reconstruction of the proximal humerus after tumour resection with polypropylene mesh | |
Kyutoku et al. | Experience with the rectus abdominis myocutaneous flap with vascularized hard tissue for immediate orbitofacial reconstruction | |
Simon et al. | Reconstruction of the mandible after ablative surgery for the treatment of aggressive, benign odontogenic tumours in Tanzania: a preliminary study | |
Giannini et al. | Bipolar fresh total osteochondral allograft in the ankle: Is it a successful long-term solution? | |
WATTS | Introduction to resection of musculoskeletal sarcomas. | |
RU2818462C1 (en) | Method for creating orthotopic model of human soft tissue sarcoma growing into bone in immunodeficient mice of balb/c nude line | |
Liptak et al. | Musculoskeletal tumors | |
Bouma et al. | The influence of intramedullary nailing upon the development of metastases in the treatment of an impending pathological fracture: an experimental study | |
Pepe et al. | Mesenchymal chondrosarcoma. A case report | |
Steinau et al. | Limb salvage and reconstructive procedures in soft tissue sarcomas of the extremities | |
Ozaki et al. | Limb salvage operation using intraoperative extracorporeal autogenous irradiated bone and tendon graft for myxoid liposarcoma on dorsum of foot | |
Jokinen | Tensile Strength of the Whole-thickness Skin Graft Used as Replacement of Tendon and Ligament Defects: An Experimental Study | |
CN102089008A (en) | Manufacturing method of collagen gel composition for bone regeneration | |
RU2638770C2 (en) | Method for para-acetabular resection with acetabulum endoprosthetics in patients with pelvic bones tumour | |
RU2395239C1 (en) | Method of hip joint prosthetics | |
Nishida et al. | Reconstruction of the proximal humerus after extensive extraarticular resection for osteosarcoma: a report of two cases with clavicula pro humero reconstruction | |
RU2470378C1 (en) | Method of modelling intra-articular injury in small laboratory animals | |
Kawashima et al. | Reconstruction of knee extensor with patellar tendon autograft following intraoperative radiotherapy | |
RU2780944C1 (en) | Logistics method for muscular plastic surgery of the soleus muscle in osteomyelitis of the tibia | |
Ozturk et al. | Wide Resection, Extracorporeal Radiotherapy, Ipsilateral Vascularized Fibula Transposition, and Internal Fixation in a Case of Tibia Diaphyseal Ewing's Sarcoma | |
RU2796765C2 (en) | Method of shoulder joint endoprosthetics for total shoulder defects | |
Siddharth et al. | A rare case report of GCT of distal end ulna | |
RU2743970C1 (en) | Method for reconstructing segmental defects of acetabular labrum | |
RU2303415C1 (en) | Method for substituting organic osteomyelitic defects of the lower tibial third with muscular flap upon proximal supporting pedicle |