RU2814548C1 - Тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени - Google Patents

Тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени Download PDF

Info

Publication number
RU2814548C1
RU2814548C1 RU2023115232A RU2023115232A RU2814548C1 RU 2814548 C1 RU2814548 C1 RU 2814548C1 RU 2023115232 A RU2023115232 A RU 2023115232A RU 2023115232 A RU2023115232 A RU 2023115232A RU 2814548 C1 RU2814548 C1 RU 2814548C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
causative agent
dna
mannheimia haemolytica
control sample
genome
Prior art date
Application number
RU2023115232A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Юрьевич Черных
Роман Анатольевич Кривонос
Александр Алексеевич Шевченко
Людмила Васильевна Шевченко
Андрей Георгиевич Кощаев
Алина Юрьевна Манакова
Павел Павлович Яковенко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина"
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина"
Application granted granted Critical
Publication of RU2814548C1 publication Critical patent/RU2814548C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии. Описана тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Тест-система включает буфер для проведения полимеразной цепной реакции, смесь для ее проведения, состоящую из дезоксинуклеозидтрифосфатов, олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентных зондов, специфичных для участка генома животного и для внутреннего контрольного образца; смесь ферментов из ДНК полимеразы с антителами, ингибирующих активность фермента, TAQ POLYMERASE, внутренний контрольный образец в виде суспензии бактериофага Т4 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл, отрицательный контрольный образец, представляющий собой смесь рекомбинантных плазмидных ДНК, содержащих фрагмент генома животного и фрагмент генома бактериофага Т4 с нуклеотидной последовательностью:
взятых в объемном соотношении 1:1. При этом для положительного контрольного образца использован фрагмент генома возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) со следующей нуклеотидной последовательностью:
а для ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) использован флуоресцентный краситель - ROX/Orange. Изобретение расширяет функциональные возможности и повышает точность при выявлении возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica). 4 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, в частности к лабораторной диагностике возбудителей инфекционных заболеваний, а именно к средствам диагностики инфекции у животных с помощью полимеразной цепной реакции.
Известно выявление ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannhcimia haemolytica) в биологическом материале животных с помощью полимеразной цепной реакции, которую осуществляли в реакционной смеси следующего состава: 3 мкл кДНК, по 10 пмоль праймеров, 2 мМ MgCl2, 200 мкМ каждого dNTP, 1,25 ед. Taq ДНК-полимеразы, 2,5 мкл 10х буфера для Taq-полимеразы и деионизированная вода до объема 25 мкл. (М.А. Шибаев Разработка метода выявления mannheimia haemolytica с помощью полимеразпой цепной реакции и нуклеотидного секвеиирования (Журнал Ветеринарная патология. №4. 2007, стр. 95-99, https://vetpat.ru/wp-content/uploads/2014/03/vet_patologija_04_07.pdf).
Однако известное техническое решение недостаточно точное из-за использования метода электрофореза в 2% агарозном геле с добавлением бромистого этидия.
Наиболее близким по технической сущности является изобретение по патенту RU №2726242, кл. C12Q 1/68, 2020 г., включающее буфер для проведения полимеразной цепной реакции, смесь для ее проведения, состоящая из дезоксинуклеозидтрифосфатов, олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентных зондов, специфичных для участка генома животного и для внутреннего контрольного образца; смесь ферментов из ДНК полимеразы с антителами, ингибирующих активность фермента, TAQ POLYMERASE, внутренний контрольный образец в виде суспензии бактериофага Т4 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл, отрицательный контрольный образец, представляющий собой смесь рекомбинантных плазмидных ДНК, содержащих фрагмент генома животного и фрагмент генома бактериофага Т4 с нуклеотидиой последовательностью:
- прямой праймер
- обратный праймер - зонд, взятых в объемном соотношении 1:1.
Недостатком известного технического решения является отсутствие возможности выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале (кровь, сыворотка крови, фрагменты и суспензии паренхиматозных органов (легкие, селезенка и др.), лимфоузлы, молоко из пораженных долей вымени, смывы со слизистой оболочки носа) и кормах, а также в культурах микроорганизмов, смывах с поверхностей методом амплификации ДНК с флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени».
Техническим результатом является расширение функциональных возможностей и повышение точности при выявлении возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica).
Технический результат достигается тем, что в тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени, включающее буфер для проведения полимеразной ценной реакции, смесь для ее проведения, состоящая из дезоксинуклеозидтрифосфатов, олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентных зондов, специфичных для участка генома животного и для внутреннего контрольного образца; смесь ферментов из ДНК полимеразы с антителами, ингибирующих активность фермента, TAQ POLYMERASE, внутренний контрольный образец в виде суспензии бактериофага Т4 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл, отрицательный контрольный образец, представляющий собой смесь рекомбинантных плазмидных ДНК, содержащих фрагмент генома животного и фрагмент генома бактериофага Т4 с нуклеотидной последовательностью:
- прямой праймер
- обратный праймер - зонд, взятых в
объемном соотношении 1:1, согласно изобретению для положительного контрольного образца использован фрагмент генома возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) со следующей нуклеотидной последовательностью:
, при этом для ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) использован флуоресцентный краситель - ROX/Orange.
Новизна заявляемой тест-системы для состоит в идентификации ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени с использованием специфичных для участка генома олигонуклеотидных праймеров флуоресцентно-меченного зонда. Такая постановка HI IP в реальном времени сокращает и упрощает процедуру анализа, снижает риск контаминации. Кроме того, флуоресцентная детекция продуктов амплификации осуществляется с использованием принципа выщепления флуоресцентной метки на 5' конце олигонуклеотидного зонда.
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, направлены на достижение технического результата и не выявлены при изучении данной и смежной областей науки и техники и, следовательно, соответствуют критерию «изобретательский уровень».
Заявляемая тест-система рекомендована для использования в специализированных ветеринарных, санитарно-эпидемиологических, животноводческих, сельскохозяйственных предприятиях, что соответствует критерию «промышленная применимость».
Тест система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени реализуют следующим образом.
Предварительно выделяют ДНК из биологического материала животного сорбционным методом. В качестве биологического материала по выбору может быть использованы: кровь, сыворотка крови, фрагменты и суспензии паренхиматозных органов (легкие, селезенка и др.), лимфоузлы, молоко из пораженных долей вымени, смывы со слизистой оболочки носа) и корма, а также культуры микроорганизмов, смывы с поверхностей.
Проводят полимеразную цепную реакцию с флуоресцентной детекцией с проведением 40 циклов амплификации в реальном времени с использованием специфичных для участка генома ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) олигонуклеотидных праймеров, зондов, флуоресцентных красителей: для специфического сигнала для ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) используют флуоресцентный краситель - ROX/Orange и для внутреннего контрольного образца бактериофаг Т4 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл - FAM/Grcen. Для положительного контрольного образца используют смесь, содержащую в одинаковом объемном соотношении фрагменты геномов возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) и бактериофага Т4 со следующими нуклеотидными последовательностями:
- праймер прямой
праймер обратный
- зонд
- Праймер прямой
- Праймер обратный
- зонд.
Затем измеряют накопления флуоресцентных сигналов по каналам соответствующих флуоресцентных красителей, проводят интерпретацию результатов на основании наличия или отсутствия пересечения кривой флуоресценции с пороговой линией, если кривые накопления флуоресцентного сигнала выходят до 35 цикла, то результат реакции считается положительным, а если кривые не пересекают пороговую линию или пересекают ее после 35 цикла, то результат реакции - отрицательный.
Для повышения точности идентификации возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) для внутреннего контрольного образца используют бактериофаг Т4 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл, если концентрация фаговых частиц отклоняется в большую или меньшую сторону, то наблюдаются повторности сомнительных образцов.
При конструировании праймеров и зонда основными требованиями были: степень гомологии (комилементарность) с выбранным участком гена; отсутствие самокоплементарных участков внутри олигонуклеотидов и комплементарности друг другу, чтобы не допускать возникновения устойчивых вторичных структур (димеров); близость значений температуры отжига праймеров.
Конструирование специфических праймеров и зонда осуществляли с помощью компьютерных программ на основании анализа нуклеотидных последовательностей референтных штаммов и изолятов, опубликованных на ресурсе GenBank и подбора условий для проведения ПЦР в реальном времени с применением разработанных праймеров и зонда, несущего флуорофор и тушитель, и комплементарного части амплифицируемого со специфическими праймерами фрагмента.
Праймеры, специфичные для генома Mannheimia haemolytica, были отобраны на основе нуклеотидной последовательности гена супероксиддис-мутаза (SOD, superoxide dismutase, CDS 765102..765743, product='superoxide dismutase", CP004752 2657957 bp DNA circular BCT 24-APR-2020 DEFINI-TION Mannheimia haemolytica USDA-ARS-USMARC-183 chromosome, complete genome).
Праймеры были спроектированы с использованием Primer Express Software v3.0 (Applied Biosystems) и исследованы с использованием BLAST, чтобы подтвердить их специфичность. Для детекции продуктов амплификации был подобран олигонуклеотидный флуоресцентно-меченный зонд Mh-P (комплементарный участку нуклеотидной последовательности, ограниченной позициями отжига праймеров Mh-F и Mh-R). На 5'-конце олигонуклеотидного зонда помещен флуоресцентный краситель Карбокси-Х-родамин (ROX).
В качестве внутреннего контроля использовался бактериофаг Т4, имеющий геномную ДНК порядка 169-170 тысяч пар нуклеотидов (Enterobacteria phage Т4Т, complete genome GenBank: HM137666.1). В результате анализа был выбран участок между 400 и 500 нуклеотидами, содержащий уникальные нуклеотидные последовательности, рассчитаны первичные структуры олигонуклеотидных праймеров, фланкирующих выбранный участок генома. Праймеры были спроектированы с использованием Primer Express Software v3.0 (Applied Biosystems) и исследованы с использованием BLAST, чтобы подтвердить их специфичность. Для детекции продуктов амплификации подобран олигонуклеотидный зонд Т4-Р, помеченный флуоресцентным красителем карбоксифлуоресцеин (FAM).
Используя программу "Oligo 6.0" описаны основные свойства рассчитанных олигонуклеотидов, определившие возможность их использования в ПЦР в качестве праймеров и зонда. Ни одна из выбранных последовательностей не обнаружена в геномах других представителей кокцидий из группы простейших, а также в геномах любых видов животных и человека.
Пример конкретного использования тест-системы для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР РВ)
Пример включает следующие этапы:
1. Отбор материала для исследования
Для исследования используют следующий материал:
• Мазки и соскобы слизистых оболочек носа. Снимают с помощью стерильного зонда, зонд помещают в пластиковую микропробирку объемом 1,5 мл с 0,5 мл стерильного физиологического раствора;
• Фрагменты паренхиматозных органов (фрагменты печени, легких, селезенки, а также миндалины, лимфоузлы и др.). Отбирают в стерильный контейнер.
• Цельная кровь. Кровь забирается в пробирку с 6% ЭДТА из расчета 50 мкл раствора ЭДТА на 1 мл крови, закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают.
• Молоко, отбирают в объеме 10-30 мл в стерильную посуду.
• Отбор исследуемых образцов кормов/сырья проводят по национальным стандартам, устанавливающим порядок отбора проб для однородных групп сырья, пищевых продуктов и кормов.
2. Подготовка исследуемого материала
Мазки и соскобы со слизистых конъюнктивы в физиологическом растворе исследуют без предварительной подготовки.
Пробы тканей и органов, а также пробы продуктов животного происхождения гомогенизируют с использованием стерильных фарфоровых ступок и пестиков, затем обычно готовят 10% суспензию на стерильном физиологическом растворе или фосфатном буфере. Суспензию переносят в пробирку объемом 1,5 мл и центрифугируют при 10-12 тыс. об/мин в течение 2 минут. Надосадочную жидкость используют для экстракции ПК. В некоторых случаях образовавшуюся суспензию не центрифугируют, а отстаивают при комнатной температуре в течение 5 мин, затем верхнюю фазу по 0,4-0,5 мл переносят пастеровской пипеткой (или наконечником с аэрозольным барьером) в пробирки на 1,5 мл, и в количестве 0,1 мл используют для выделения нуклеиновой кислоты (ПК).
Молоко в объеме до 10 мл обеззараживают и центрифугируют при 3 тыс об/мин в течение 10-15 мин. Надосадочную жидкость осторожно отбирают, оставив над осадком примерно 0,2 мл жидкости. Осадок ресуспендируют в оставшейся надосадочной жидкости и 0,1 мл суспензии используют для выделения ДНК.
От кормов/сырья плотной консистенции отбирают на исследование общую пробу весом 10-50 г. Гранулированные или консервированные корма/сырье перед исследованием (10-20 г) растирают в ступке до гомогенного состояния. Отбирают лабораторные пробы (20-40 мг) в одноразовые микропробирки вместимостью 1,5 мл и направляют на выделение НК. 3. Проведение анализа Исследование проводили с помощью набора реагентов «ПЦР-МАНХЕЙМИО3-ФАКТОР» для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica). Набор состоит из комплекта реагентов для проведения мультиплексной ПЦР (Таблица 1, комплект №1) и комплекта контрольных образцов (Таблица 2, комплект №2). Набор выпускается в двух вариантах: 1) Для анализа 55 образцов (включая контрольные образцы) 2) Для анализа 110 образцов (включая контрольные образцы).
Наборы используют в соответствии с инструкцией по применению набора реагентов «ПЦР-МАНХЕЙМИО3-ФАКТОР» для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале и кормах методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени с использованием принципа выщепления флуоресцентной метки на 5' конце олигонуклеотидного зонда. Для диагностики in vitro, http://www.vetfaktor.ru/.
Исследование с помощью набора реагентов «ПЦР-МАНХЕЙМИО3-ФАКТОР» состоит из трех циклов:
• экстракция ДНК;
• проведение ПЦР РВ;
• учет результатов анализа.
4. Экстракция (выделение) НК из клинического материала
Отбирают необходимое количество одноразовых пробирок объемом 1,5 мл, включая отрицательный контроль выделения. Вносят во все пробирки с исследуемыми образцами, включая пробирку для ОКО, по 10 мкл ВКО Т2.
Вносят исследуемые пробы в объеме согласно инструкции к набору для выделения ДНК, в пробирку отрицательного контроля выделения вместо исследуемой пробы внести ОКО (пробирку обозначить как ВК-).
Выделяют ДНК из анализируемых и контрольных образцов согласно протоколу инструкции производителя набора для выделения ДНК. Выделенную ДНК можно хранить в течение одной недели при температуре от 2°С до 8°С или в течение года при температуре не выше минус 16°С.
5. Подготовка образцов к проведению ПЦР
Общий объем реакционной смеси - 25 мкл, объем ДНК-пробы - 10 мкл.
Успешное прохождение реакции контролируют использованием НКО MANNHEIMIA, ВКО Т2 и ДНК буфера.
В отдельной пробирке смешивают компоненты набора из расчета па каждую реакцию ПЦР:
• 5 мкл ПЦР СМЕСЬ MANNHEIMIA
• 10 мкл ПЦР БУФЕР MANNHEIMIA
• 0,5 мкл I AQ POLYMERASE
Перемешивают смесь па вортексе и сбрасывают капли кратковременным центрифугированием.
Отбирают необходимое количество пробирок для амплификации ДНК исследуемых и контрольных проб. Вносят по 15 мкл приготовленной реакционной смеси.
Используя наконечники с фильтром в подготовленные пробирки вносят:
а) в пробирку отрицательного контроля ПЦР (К-) 10 мкл ДНК буфера;
б) в ряд пробирок для исследуемых проб - в каждую вносят по 10 мкл ДНК соответствующей пробы, полученной но п. 7.1 (включая пробу ВК-);
в) в пробирку положительный контроль ПЦР (К+) 10 мкл ПКО MANNHEIMIA.
6. Проведение реакции ПЦР РВ с флуоресцентной детекцией
Помещают подготовленные для проведения ПЦР пробирки в ячейки прибора «Rotor-Genc Q». Параметры температурно-временного режима амплификации на приборе «Rotor-Gene Q» указаны таблице 3.
7. Интерпретация результатов анализа
Полученные данные - кривые накопления флуоресцентного сигнала анализируются с помощью программного обеспечения используемого прибора для проведения ПЦР в режиме «реального времени» в соответствии с инструкцией производителя к прибору и в соответствии с Приложениями 1, 2 и 3 к Инструкции.
Учет результатов ПЦР-анализа проводится по наличию или отсутствию пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией (что соответствует наличию или отсутствию значения порогового цикла «Ct» для исследуемого образца).
Результат считается достоверным в случае корректного прохождения положительных и отрицательных контролей амплификации и экстракции ДНК в соответствии с таблицей 4.
Появление любого значения Ct в таблице результатов для отрицательного контроля этапа экстракции ВК- (на канале ROX/Orange Mannheimia haemolytica) и для отрицательного контроля этапа ПЦР К- (на любом из каналов) свидетельствует о наличии контаминации реактивов или образцов. В этом случае результаты анализа для всех проб считаются недействительными. Требуется повторить анализ всех проб, а также предпринять меры по выявлению и ликвидации источника контаминации.
Образцы, для которых по каналу FAM/Green значение Ct отсутствует или превышает 35 цикл (и при этом но каналу ROX/Orange отсутствует значение Ct) требуют повторного проведения исследования с этапа ПЦР. Задержка в значениях пороговых циклов для исследуемых образцов на канале FAM/Green указывает на присутствие ингибиторов в пробе(ах) или па ошибки при экстракции ДНК или при постановке реакции. Требуется провести исследование, начиная с этапа экстракции ДНК.
Образец считается положительным (ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) присутствует) если наблюдается экспоненциальный рост сигнала на канале ROX/Orange, при этом значения Ct контрольных образцов находятся в пределах нормы (табл.4). Если для исследуемого образца по каналу ROX/Orange значение Ct определяется позднее 35 цикла при корректном прохождении положительных и отрицательных контролей - он считается спорным и исследуется повторно с этапа выделения ДНК. Если при повторной постановке наблюдается схожий результат (Ct на канале ROX/Orange более 35), требуется повторное взятие материала от того же животного для проведения ПЦР-исследования и (или) использование альтернативных методов диагностики. В случае получения значения Ct па канале ROX/Orange менее 35 при исследовании повторно взятого от животного материала - образец считать положительным.
Образец считается отрицательным (ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica), отсутствует) если не наблюдается рост сигнала флуоресценции на канале ROX/Orange, при этом значения Ct контрольных образцов находятся в пределах нормы (см. Табл. 4).

Claims (9)

  1. Тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени, тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени, включающая буфер для проведения полимеразной цепной реакции, смесь для ее проведения, состоящую из дезоксинуклеозидтрифосфатов, олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентных зондов, специфичных для участка генома животного и для внутреннего контрольного образца; смесь ферментов из ДНК полимеразы с антителами, ингибирующих активность фермента, TAQ POLYMERASE, внутренний контрольный образец в виде суспензии бактериофага 14 с концентрацией 5×103 фаговых частиц на 1 мкл, отрицательный контрольный образец, представляющий собой смесь рекомбинантных плазмидных ДНК, содержащих фрагмент генома животного и фрагмент генома бактериофага Т4 с нуклеотидной последовательностью:
  2. - прямой праймер
  3. - обратный праймер
  4. - зонд,
  5. взятых в объемном соотношении 1:1, отличающаяся тем, что для положительного контрольного образца использован фрагмент генома возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) со следующей нуклеотидной последовательностью:
  6. при этом для ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) использован флуоресцентный краситель - ROX/Orange.
RU2023115232A 2023-06-08 Тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени RU2814548C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2814548C1 true RU2814548C1 (ru) 2024-03-01

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2430967C2 (ru) * 2001-10-26 2011-10-10 Бёрингер Ингельхайм Ветмедика С.А. Де С.В. Способ обнаружения бактерий pasteurella trehalosi и/или mannheimia haemolytica у домашней птицы (варианты)
RU2014104931A (ru) * 2014-02-11 2015-08-20 Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) СИНТЕТИЧЕСКИЕ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫЕ ПРАЙМЕРЫ И СПОСОБ ИДЕНТИФИКАЦИИ ШТАММОВ И ИЗОЛЯТОВ БАКТЕРИИ Mannheimia haemolytica С ПОМОЩЬЮ СИНТЕТИЧЕСКИХ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ В ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
US11365238B2 (en) * 2015-12-07 2022-06-21 Camas Incorporated Sequencing chicken antibody repertoires following hyperimmunization and the identification of antigen-specific monoclonal antibodies

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2430967C2 (ru) * 2001-10-26 2011-10-10 Бёрингер Ингельхайм Ветмедика С.А. Де С.В. Способ обнаружения бактерий pasteurella trehalosi и/или mannheimia haemolytica у домашней птицы (варианты)
RU2456343C2 (ru) * 2001-10-26 2012-07-20 Бёрингер Ингельхайм Ветмедика С.А. Де С.В. Новые бактерии, вызывающие заболевания домашней птицы, и полученная из них вакцина
RU2014104931A (ru) * 2014-02-11 2015-08-20 Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) СИНТЕТИЧЕСКИЕ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫЕ ПРАЙМЕРЫ И СПОСОБ ИДЕНТИФИКАЦИИ ШТАММОВ И ИЗОЛЯТОВ БАКТЕРИИ Mannheimia haemolytica С ПОМОЩЬЮ СИНТЕТИЧЕСКИХ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ В ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
US11365238B2 (en) * 2015-12-07 2022-06-21 Camas Incorporated Sequencing chicken antibody repertoires following hyperimmunization and the identification of antigen-specific monoclonal antibodies

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2680094C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя лептоспироза (Leptospira spp.) у сельскохозяйственных животных
EP1633884A1 (en) Identification of clonal cells by repeats in (eg.) t-cell receptor v/d/j genes
CN110607398B (zh) 一种荧光可视化快速检测猪流行性腹泻病毒的rt-lamp试剂盒
RU2703401C1 (ru) Тест-система для выявления и генотипирования РНК вируса репродуктивно-респираторного синдрома свиней
RU2814548C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя манхеймиоза (Mannheimia haemolytica) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2726242C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2814556C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя пастереллеза (Pasteurella multocida) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2785381C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя криптоспоридиоза (Cryptosporidiosis) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2819044C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя моракселлеза KPC (Moraxella bovis) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2782427C1 (ru) Способ выявления ДНК возбудителя криптоспоридиоза (Cryptosporidiosis) в биологическом материале животных и кормах с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2698662C1 (ru) Тест-система для выявления РНК возбудителя вируса артериита у лошадей
RU2694501C1 (ru) Тест-система для обнаружения генома возбудителя ротовируса типа А у сельскохозяйственных животных с помощью мультиплексной полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени
RU2689718C1 (ru) Способ выявления генома возбудителя ротовирусной инфекции у сельскохозяйственных животных
CN112063734A (zh) 一种采用实时荧光定量pcr技术定量检测人类血液中布鲁氏菌的引物、探针和方法
RU2726432C1 (ru) Тест-система для определения ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле
RU2728660C1 (ru) Способ определения ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле
CN111778343A (zh) 一种检测布鲁氏菌s2疫苗株的引物对、试剂盒及其应用
RU2719719C1 (ru) Способ выявления ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2700255C1 (ru) Тест-система для выявления генома возбудителя бруцеллезной инфекции (Brucella spp.) у сельскохозяйственных животных
RU2703400C1 (ru) Способ выявления генома возбудителя бруцеллезной инфекции (Brucella spp.) у сельскохозяйственных животных
RU2700254C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК вируса ринотрахеита (bovine herpes virus 1, BoHV-1) у крупного рогатого скота
RU2700448C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя орнитоза (Chlamydophila psittaci) у птиц
RU2725216C1 (ru) Тест-система для определения ДНК ткани дятла (Picidae) в сухих кормах и мясных полуфабрикатах
RU2782573C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК провируса лейкоза крупного рогатого скота (Bovine leukosis virus, BLV) в продуктах питания методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2694719C1 (ru) Тест-система для выявления РНК вируса болезни Шмалленберга у сельскохозяйственных животных