RU2812627C2 - Конъюгированный дезоксиниваленол для защиты от микотоксикоза - Google Patents

Конъюгированный дезоксиниваленол для защиты от микотоксикоза Download PDF

Info

Publication number
RU2812627C2
RU2812627C2 RU2022102371A RU2022102371A RU2812627C2 RU 2812627 C2 RU2812627 C2 RU 2812627C2 RU 2022102371 A RU2022102371 A RU 2022102371A RU 2022102371 A RU2022102371 A RU 2022102371A RU 2812627 C2 RU2812627 C2 RU 2812627C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
don
conjugated
animal
animals
group
Prior art date
Application number
RU2022102371A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2022102371A (ru
Inventor
Ситске КОЭЙМАН
Рюид Филип Антон Мария СЕГЕРС
Матеуш ВАЛЬЧАК
Гудрун КОХ
Мартен Хендрик ВИТВЛИТ
Original Assignee
Интервет Интернэшнл Б.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Интервет Интернэшнл Б.В. filed Critical Интервет Интернэшнл Б.В.
Publication of RU2022102371A publication Critical patent/RU2022102371A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2812627C2 publication Critical patent/RU2812627C2/ru

Links

Abstract

Настоящее изобретение относится к применению конъюгированного дезоксиниваленола (DON) в способе защиты животного от вызванного DON микотоксикоза, в частности для защиты от снижения среднего суточного привеса, поражения печени, язв желудка и/или поражения почек, вызванного попаданием DON внутрь. 13 з.п. ф-лы, 7 табл., 4 пр.

Description

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ, К КОТОРОЙ ОТНОСИТСЯ ИЗОБРЕТЕНИЕ
Настоящее изобретение в целом относится к защите от микотоксикоза, вызванного микотоксином дезоксиниваленолом (DON), также известным, как вомитоксин. DON является трихотеценом типа B, который содержится в основном в зернах, таких растений, как пшеница, ячмень, овес, рожь и кукуруза, а также рис, сорго и тритикале. Наличие дезоксиниваленола в основном связано с Fusarium graminearum (Gibberella zeae) и Fusarium culmorum, которые оба являются важными патогенами растений, которые вызывают фузариоз колоса пшеницы и gibberella или фузариозную гниль кукурузы. Установлена непосредственная связь между распространенностью фузариоза колоса и загрязнением пшеницы дезоксиниваленолом. Распространенность фузариоза колоса тесно связана с влажностью во время цветения и наиболее критическим фактором является время выпадения дождя, а не его количество. Кроме того, на содержание DON значительно влияет восприимчивость сортов к штаммам Fusarium, предшествующая культура, практика обработки почвы и применение фунгицида. Fusarium graminearum оптимально размножается при температуре, равной 25°C, а Fusarium culmorum оптимально размножается при 21°C. Поэтому Fusarium graminearum является самым распространенным штаммом в теплом климате.
DON участвует в случаях микотоксикозов у людей и сельскохозяйственных животных. Этот токсин относится к классу трихотеценов, которые являются эффективными ингибиторами синтеза белка. Воздействие DON приводит к тому, что в головном мозге снижается потребление аминокислоты триптофана и, в свою очередь синтез серотонина. Предполагается, что уменьшение содержания серотонина приводит к анорексическому воздействию DON. Раздражение желудочно-кишечного тракта также может играть роль в уменьшении потребления корма и также может частично объяснить широкую распространенность парапищеводных язв желудка, наблюдающихся у свиней при отказе от корма.
Профилактическое лечение вызванного DON микотоксикоза в настоящее время ограничено надлежащей сельскохозяйственной практикой для снижения выработки микотоксинов культурами и программами контроля продовольственных и кормовых товаров для обеспечения содержания микотоксинов ниже некоторых предельно допустимых значений.
УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ
Грибы вызывают самые различные болезни животных, включая паразитизм органов и тканей, а также проявления аллергии. Однако кроме отравления при приеме внутрь несъедобных грибов, грибы могут вырабатывать микотоксины и органические химикаты, которые приводят к разным токсическим эффектам, называющимся микотоксикозом. Эта болезнь вызвана воздействием микотоксинов, фармакологически активных соединений, вырабатываемых мицелиальными грибами, загрязняющими пищевые продукты или корма для животных. Микотоксины являются вторичными метаболитами, некритичными для физиологии грибов, которые в минимальных концентрациях
чрезвычайно токсичны для позвоночных при попадании внутрь, вдыхании или соприкосновении с кожей. В настоящее время известны примерно 400 микотоксинов, разделенных на семейства химически родственных молекул со сходными биологическими и структурными характеристиками. Из их числа примерно 12 групп постоянно привлекают внимание, как угрозы для здоровья животных. Примеры микотоксинов, обладающих наибольшим общественным интересом и агроэкономическим значением, включают афлатоксины (AF), охратоксины (OT), трихотецены (T; включая DON), зеараленон (ZEN), фумонизины (F), треморгенные токсины и алкалоиды спорыньи. Микотоксины были связаны с острыми и хронические заболеваниями с биологическими эффектами, которые могут меняться в основном в связи с различиями их химической структуры, но и в связи с биологическими, питательными и экологическими факторами. Патофизиология микотоксикозов является следствием взаимодействий микотоксинов с функциональными молекулами и органеллами клеток животных, что может привести к канцерогенности, генотоксичности, ингибированию синтеза белка, иммуносупрессии, раздражению кожи и другим метаболическим нарушениям. У чувствительных видов животных микотоксины могут привести к сложным и перекрывающимся токсическим эффектам. Микотоксикозы не являются заразными и не приводят к значительному стимулированию иммунной системы. Лечение лекарственными средствами или антибиотиками оказывает слабое влияние или не влияет на течение болезни. В настоящее время для человека или животных нет вакцин, предназначенных для борьбы с микотоксикозами.
В настоящее время все большее количество исследований посвящено разработке вакцин и/или иммунотерапии, эффективных по отношению к широким классам грибов, в качестве мощного средства борьбы с микозами, т. е. инфицированием самими грибами, а не токсинами, для предупреждения специфических грибковых болезней. В отличие от микозов, для микотоксикозов не требуется участие вырабатывающих токсин грибов и они считаются абиотическими опасностями, хотя и биотического происхождения. В этом смысле микотоксикозы считались примерами отравления природными средствами и стратегии защиты в основном были направлены на предупреждение воздействия. Воздействие на людей и животных происходит в основном вследствие приема внутрь микотоксинов с пищей растительной природы. Метаболизм попавших внутрь микотоксинов может привести к накоплению в разных органах или тканях; таким образом микотоксины могут попадать в пищевую цепь с мясом животных, молоком или яйцами (перенос). Поскольку токсикогенные грибы заражают разные типы культур, потребляемых людьми и животными, микотоксины могут содержаться во всех типах необработанных сельскохозяйственных материалов, продуктов и напитков. По оценкам Организации по продовольствию и сельскому хозяйству (FAO) в мире 25% продовольственных культур значительно заражены микотоксинами. В настоящее время наилучшие стратегии предупреждения микотоксикозов включают надлежащую сельскохозяйственную практику для снижения выработки микотоксинов культурами и программы контроля продовольственных и кормовых товаров для обеспечения содержания микотоксинов ниже некоторых предельно допустимых значений. Эти стратегии могут ограничить проблему заражения товаров некоторыми группами микотоксинов при больших затратах и переменной эффективности. За исключением поддерживающей терапии (например, диета, гидратация), почти нет средств лечения воздействия микотоксинов и антидоты для микотоксинов обычно отсутствуют, хотя для индивидуумов, на которых воздействовали AF, некоторые обнадеживающие результаты были получены при использовании ряда защитных средств, таких как хлорофиллин, полифенолы зеленого чая и дитиолтионы (олтипраз).
Для предупреждения микотоксикоза у домашнего скота и заражения микотоксинами важных пищевых продуктов животного происхождения была предложена вакцинация для борьбы с конкретными микотоксинами, эта стратегия основана на выработке антител, которые могут блокировать начальное всасывание или биоактивацию микотоксинов, их токсичность и/или выработку в животных продуктах (таких как молоко) с помощью иммуноконтрацепции.
Однако производство вакцин для защиты от микотоксикозов весьма затруднительно, в основном связано с широким диапазоном структур, химических характеристик и токсичностью, связанной с микотоксинами. Микотоксины являются обладающими низкой молекулярной массой небелковыми молекулами, которые обычно неиммуногенны (гаптены), но могут вызвать иммунный ответ при соединении с молекулой-носителем, такой как белок. Широко исследовали методики конъюгирования микотоксинов с белковым или полипептидным носителем и оптимизацию условий для иммунизации животных с целью выработки моноклональных или поликлональных антител разной специфичности для использования в иммунологическом анализе для скрининга микотоксинов в продуктах, предназначенных для потребления людьми и животными. Связывающие белки, использованные в этих исследованиях, включают, в частности, бычий сывороточный альбумин (BSA), гемоцианин лимфы улитки (KLH), тиреоглобулин (TG) и полилизин. В последние десятилетия проведены многочисленные исследования по разработке производных микотоксинов, которые могут связываться с белками при сохранении в достаточной степени исходной структуры, так чтобы выработанные антитела смогли распознавать нативный токсин. По этим методикам получены антитела ко многим микотоксинам и это показало, что конъюгирование с белками может быть эффективным средством для иммунизации. Таким образом, применение этой стратегии для вакцинации людей и животных, обеспечивающее защиту при безопасности для реципиента, до сих пор не было успешным вследствие токсичности молекул, которые могли высвободиться in vivo. Например, показано, что конъюгирование токсинов, таких как T-2, с белками-носителями привело к нестабильным комплексам с возможным высвобождением свободного токсина в его активной форме (Chanh et al, Monoclonal anti-idiotype induces protection against the cytotoxicity of the trichothecene mycotoxin T-2, in J Immunol. 1990, 144: 4721-4728). По аналогии с токсоидом вакцины, которые могут обеспечить защиту от патологических эффектов бактериальных токсинов, что является разумным подходом для разработки вакцин от микотоксинов, могут быть основаны на конъюгированных "микотоксоидах", определенных, как модифицированная форма микотоксинов, лишенных токсичности, но сохранивших антигенность (Giovati L et al, Anaflatoxin B1 as the paradigm of a new class of vaccines based on "Mycotoxoids", in Ann Vaccines Immunization 2(1): 1010, 2015). С учетом небелковой природы микотоксинов методика превращения в микотоксоиды должна основываться на химическом получении производных. Введение специфических групп в стратегические положения родственного исходного микотоксина может привести к образованию молекул, обладающих другими физико-химическими характеристиками, но все же способных индуцировать антитела с достаточной перекрестной реакционной способностью с нативным токсином. Таким образом, разумное объяснение вакцинации для микотоксинов основано на выработке к микотоксоидам антител, обладающих лучшей способностью связывать нативный микотоксин, чем клеточные мишени, нейтрализовывать токсин и предупреждать развитие болезни в случае воздействия. Возможное применение этой стратегии было продемонстрировать в случае микотоксинов, относящихся к группе AF (Giovati et al, 2015), но не для любых других микотоксинов. Кроме того, защитный эффект от микотоксикоза для самих вакцинированных животных не был продемонстрирован, но обнаружен только для переноса в молоко молочных коров, что защищало от микотоксикоза людей, потребляющих молоко или изготовленные из него продукты.
ЗАДАЧА ИЗОБРЕТЕНИЯ
Задачей настоящего изобретения является разработка способа защиты животного от микотоксикоза вызванного дезоксиниваленолом, одним из самых распространенных микотоксинов в кормах для животных.
СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Для решения задачи настоящего изобретения было установлено, что конъюгированный дезоксиниваленол (DON) пригоден для применения в способе защиты животного от вызванного DON микотоксикоза. Было установлено, что не требуется превращать DON в токсоид, конъюгированный токсин, видимо, безопасен для подвергнутого лечению животного-хозяина. Кроме того, неожиданно было установлено, что индуцированный иммунный ответ был достаточно сильным, чтобы защитить самого животного от микотоксикоза после приема внутрь DON после лечения. Такая реальная защита путем индуцирования иммунного ответа на сам микотоксин не была продемонстрирована в данной области техники для любого микотоксина, не считая широко распространенного и чрезвычайно токсичного соединения дезоксиниваленола.
ОПРЕДЕЛЕНИЕ
Микотоксикоз является болезнью, обусловленной воздействием микотоксина. Клинические признаки, пораженные органы и результат зависят от собственных токсических характеристик микотоксина и степени и продолжительности воздействия, а также состояния здоровья подвергнутого воздействию животного.
Защита от микотоксикоза означает предупреждение или ослабление одного или большего количества негативных физиологических воздействий микотоксина на животное , таких как снижение среднего суточного привеса.
Дезоксиниваленол (также известный, как вомитоксин или VOM) является микотоксином, продуцируемым грибами Fusarium graminearum, который вызывает фузариоз колоса (FHB), или паршу мелких зерен. DON может вызвать отказ от корма и рвоту. Молекулярная формула исходного соединения имеет вид C15H20O6.
Конъюгированная молекула является молекулой, с которой иммуногенное соединение связано ковалентной связью. Обычно иммуногенное соединение является крупным белком, таким как KLH, BSA или OVA.
Адъювантом является неспецифическое иммуностимулирующее средство. В принципе, каждое соединение, которое способно благоприятствовать или усиливать конкретный процесс в каскаде иммунологических событий, в конечном счете приводящее к лучшему иммунологическому ответу (т. е. объединенному ответу организма на антиген, в частности, опосредуемому лимфоцитами и обычно включающему распознавание антигенов специфическими антителами или предварительно сенсибилизированными лимфоцитами), можно определить, как адъювант. Адъювант обычно не требуется для протекания указанного конкретного процесса, а просто благоприятствует указанному процессу или усиливает его.
ДРУГИЕ ВАРИАНТЫ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
В другом варианте осуществления настоящего изобретения конъюгированный DON вводят животному системно. Хотя известно, что локальное введение, например, через слизистую оболочку в желудочно-кишечный тракт (перорально или через анальное отверстие) или в глаза (например, при иммунизации цыплят) является эффективным путем индуцирования иммунного ответа у разных животных, было установлено, что системное введение приводит к иммунному ответу, необходимому для защиты животных от вызванного DON микотоксикоза. В частности, было установлено, что эффективную иммунизацию можно обеспечить после внутримышечного, перорального и/или внутрикожного введения.
Возраст для введения не является критически важным, хотя предпочтительно проводить введение до того, когда животное может проглотить корм, зараженный значительными количествами DON. Поэтому предпочтительный возраст в момент введения составляет 6 недель или менее. Более предпочтительный возраст составляет 4 недели или менее, такой как, например, возраст, равный 1-3 неделям.
В еще одном варианте осуществления настоящего изобретения конъюгированный DON вводят животному по меньшей мере дважды. Хотя многие животные (в частности, свиньи, цыплята, жвачные животные) обычно восприимчивы к иммунизации при одном введении иммуногенной композиции, предполагается, что для экономически надежной защиты от DON предпочтительны два введения. Это обусловлено тем, что на практике иммунная система животных не начинает вырабатывать антитела к DON при воздействии природного DON, просто поскольку природный DON не является иммуногенным. Таким образом, иммунная система животных полностью зависит от введения конъюгированного DON. Промежуток времени между этими двумя введениями конъюгированного DON может быть любым в диапазоне от 1 недели до 1-2 лет. Предполагается, что для молодых животных достаточен режим первичной иммунизации, например, в возрасте 1-3 недель с последующим бустерным введением через 1-4 недели, обычно через 1-3 недели, например, через 2 недели. Для более старых животных может потребоваться бустерное введение через каждые несколько месяцев (например, через 4, 5, 6 месяцев после последнего введения) или ежегодно, или через каждые два года, как это известно для других промышленно использующихся режимов иммунизации животных.
В еще одном варианте осуществления конъюгированный DON используют в композиции, содержащей адъювант в дополнение к конъюгированному DON. Адъювант можно использовать, если сам конъюгат неспособен вызвать иммунный ответ с обеспечением заданной степени защиты. Хотя известны молекулы конъюгата, которые способны в достаточной степени стимулировать иммунную систему без дополнительного адъюванта, такого как KLH или BSA, использование дополнительного адъюванта может быть полезным. Это может исключить необходимость бустерного введения или увеличение интервала для его введения. Все зависит от степени защиты, необходимой для конкретного случая. Типом адъюванта, для которого показано, что он способен вызвать хороший иммунный ответ на DON при использовании конъюгированного DON в качестве иммуногена, является эмульсия воды и масла, такая как, например, эмульсия вода-в-масле или эмульсия масло-в-воде. Первую обычно используют для домашней птицы, а вторую обычно используют для животных, которые более подвержены вызванным адъювантом побочным реакциям, таких как свиньи и жвачные животные.
В еще одном другом варианте осуществления конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с белком, обладающим молекулярной массой, равной более 10000 Да. Установлено, что такие белки, в частности, гемоцианин лимфы улитки (KLH) и овальбумин (OVA), могут вызвать достаточный иммунный ответ у животных, в частности, у свиней и цыплят. Практическое верхнее предельное значение для белка может составлять 100 МДа.
Для защиты от микотоксикоза, в частности, было установлено, что при использовании настоящего изобретения животные защищаются от снижения среднего суточного привеса, поражения печени, язв желудка и/или поражения почек, т. е. одного или большего количества этих признаков микотоксикоза.
Ниже настоящее изобретение дополнительно разъяснено с помощью следующих примеров.
ПРИМЕРЫ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Пример 1: Эксперимент по иммунизации с заражением с использованием конъюгированного DON
Задача
Задачей этого исследования была оценка эффективности конъюгированного дезоксиниваленола для защиты животного от микотоксикоза вследствие приема DON внутрь. Для этого исследования свиней иммунизировали дважды с помощью DON-KLH до заражения токсичным DON. Для исследования влияния пути введения использовали разные пути иммунизации.
Схема исследования
В исследовании использовали сорок 1-недельных поросят, полученных от 8 свиноматок, разделенных на 5 групп. 24 поросят групп 1-3 иммунизировали дважды в возрасте 1 и 3 недель. Поросят группы 1 иммунизировали внутримышечно (IM) в обоих возрастах. Поросята группы 2 получали IM инъекцию в возрасте одной недели и пероральную бустерную дозу в возрасте 3 недель. Поросят группы 3 дважды иммунизировали внутрикожно (ID). От возраста 5½ недель поросят группы 1-3 в течение 4 недель заражали с помощью DON, вводимым перорально в виде жидкости. Поросят группы 4 не иммунизировали, а только заражали с помощью DON, как описано для групп 1-3. Поросята группы 5 выступали в качестве контроля и им давали только контрольную жидкость от возраста 5,5 недель в течение 4 недель.
Концентрация DON в жидком препарате соответствовала 5,4 мг/кг корма. Это соответствует среднему количеству, равному 2,5 мг DON в сутки. После 4 недель заражения всех животных исследовали после умерщвления, обращая особое внимание на печень, почки и желудок. Кроме того, в дни исследования 0, 34, 41, 49, 55, 64 (после умерщвления) брали пробы крови за исключением животных группы 5, у которых пробы крови брали только в дни 0, 34, 49 и сразу после умерщвления.
Исследуемые образцы
Готовили три разные иммуногенные композиции, а именно, исследуемый образец 1, содержащий DON-KLH в концентрации 50 мкг/мл в эмульсии масло-в-воде для инъекции (X-solve 50, MSD AH, Boxmeer), который использовали для IM иммунизации; исследуемый образец 2, содержащий DON-KLH в концентрации 50 мкг/мл в эмульсии вода-в-масле (GNE, MSD AH, Boxmeer), который использовали для пероральной иммунизации, и исследуемый образец 3, содержащий DON-KLH в концентрации 500 мкг/мл в эмульсии масло-в-воде для инъекции (X-solve 50) для ID иммунизации.
Использующийся для заражения дезоксиниваленол (получен у фирмы Fermentek, Israel) разводили в 100% метаноле до конечной концентрации, равной 100 мг/мл, и хранили при температуре ниже -15°C. Перед использованием DON дополнительно разводили и включали в средство для введения.
Критерии включения
Использовали только здоровых животных. Для исключения нездоровых животных перед началом исследования у всех животных проверяли физикальные характеристики и убеждались в отсутствии клинических аномалий и болезни. В группе использовали поросят от разных свиноматок. При обычной практике всех животных иммунизируют даже если на них предварительно воздействовал DON путем приема внутрь зараженного с помощью DON корма. Поскольку сам DON не приводит к иммунному ответу, предполагается, что нет принципиальных различий между животными, которые предварительно были заражены с помощью DON, и животными, которые не получали DON.
Результаты
Ни у одного из животных не наблюдались неблагоприятные эффекты, связанные с иммунизацией с помощью DON-KLH. Таким образом, композиция представлялась безопасной.
В начале эксперимента все поросята были серологически негативными по титрам по отношению к DON. При заражении у животных групп, иммунизированных внутримышечно (группа 1) и внутрикожно (группа 3), развивался иммунный ответ к DON, определенный с помощью ELISA с нативным DON-BSA в качестве нанесенного антигена. В таблице 1 приведены средние значения IgG для 4 моментов времени во время исследования и их SD значения. И внутримышечная иммунизация, и внутрикожная иммунизация приводили к значительным титрам по отношению к DON.
Таблица 1. Титры IgG
Группа 1 Группа 2 Группа 3 Группа 4 Группа 5
T=0 <4,3 <4,3 <4,3 <4,3 <4,3
T=35 11,2 4,86 9,99 4,3 4,19
T=49 9,56 4,64 8,81 4,71 3,97
T=64 8,48 4,3 7,56 4,3 3,31
Как показано в таблице 2, для всех иммунизированных животных, включая животных группы 2, у которых не обнаруживается значительное увеличение титра по отношению к DON IgG, за первые 15 дней обнаруживается намного более значительный привес, чем у зараженных животных. По сравнению с зараженными животными в течение исследования у всех животных обнаруживается более значительный вес.
Таблица 2. Анализ веса
ADG11 ADG2 Начальный вес Конечный вес Средний дополнительный привес по сравнению с зараженными животными (г)
Группа 1 0,67 0,80 11,63 32,29 + 1060
Группа 2 0,64 0,79 12,31 32,13 +760
Группа 3 0,58 0,82 12,88 32,25 +310
Группа 4 0,54 0,81 12,69 31,75 0
Группа 5 0,57 0,80 11,63 31,08 +390
1 средний суточный привес за первые 15 дней после заражения
2 средний суточный привес за последние 13 дней после заражения
Также следили за состоянием тонкого кишечника (по отношению ворсинки/крипты в тощей кишке). В таблице 3 приведено отношение ворсинки/крипты. Можно видеть, что у животных группы 3 среднее значение отношения ворсинки/крипты сопоставимо с данными для здоровых контрольных животных (группа 5), тогда как у неиммунизированных зараженных животных (группа 4) наблюдалось намного меньшее (статистически значимо) отношение ворсинки/крипты. Кроме того, у животных группы 1 и группы 2 наблюдалось отношение ворсинки/крипты, которое было значительно лучше (т. е. больше), чем у неиммунизированных зараженных животных контрольной группы. Это показывает, что иммунизация защищает от повреждения тонкого кишечника, вызванного DON.
Таблица 3. Отношение ворсинки/крипты
Группа 1 Группа 2 Группа 3 Группа 4 Группа 5
Среднее значение 1,57 1,41 1,78 1,09 1,71
STD 0,24 0,22 0,12 0,10 0,23
Также следили за общим состоянием других органов, точнее, печени, почек и желудка. Обнаружено, что состояние здоровья животных всех трех исследуемых групп (группы 1-3) было лучше, чем неиммунизированных зараженных животных контрольной группы (группа 4). В таблице 4 приведена сводка данных об общем состоянии здоровья. Степень изъязвления желудка указана в диапазоне от - (нет данных об образовании язвы желудка) до ++ (множественные язвы). Степень воспаления желудка указана в диапазоне от - (нет данных о воспалении) до ++/- (начало воспаления желудка).
Таблица 4. Данные об общем состоянии здоровья
Цвет печени Язва желудка Воспаление желудка Почки
Группа 1 Нормальный-желтый - - Пастельный
Группа 2 Нормальный +/-- - Нормальный
Группа 3 Нормальный +/- +/-- Нормальный
Группа 4 Пастельный ++ ++/- Пастельный
Группа 5 Нормальный + ++/- Нормальный
Пример 2: Влияние иммунизации на содержание DON
Задача
Задачей этого исследования была оценка влияния иммунизации конъюгатом DON на токсикокинетику при попадании DON внутрь. Для этого исследования свиней дважды иммунизировали с помощью DON-KLH и затем им давали токсичный DON.
Схема исследования
В исследовании использовали десятерых 3-недельных поросят, разделенных на 2 группы по 5 поросят в каждой. Поросят группы 1 иммунизировали IM дважды в возрасте 3 и 6 недель с помощью DON-KLH (исследуемый образец 1; пример 1). Поросята группы 2 выступали в качестве контроля и им давали только контрольную жидкость. В возрасте 11 недель всем животным вводили DON (Fermentek, Israel) с помощью болюса в дозе 0,05 мг/кг, которая (в пересчете на суточное потребление корма) соответствовало степени заражения, равной 1 мг/кг корма. Пробы крови брали у поросят непосредственно перед введением DON и через 0,25, 0,5, 0,75, 1, 1,5, 2, 3, 4, 6, 8, и 12 ч после введения DON.
Критерии включения
Использовали только здоровых животных.
Определение DON в плазме
Определение несвязанного DON в плазме проводили по аттестованной методике LC-MS/MS с помощью системы Acquity® UPLC, соединенной с прибором Xevo® TQ-S MS (Waters, Zellik, Belgium). Нижнее предельное значение количественного определения DON в плазме свиней по этой методике равнялось 0,1 нг/мл.
Токсикокинетический анализ
Токсикокинетическое моделирование профилей концентрация DON - время в плазме проводили с помощью некомпартментального анализа (Phoenix, Pharsight Corporation, USA). Рассчитывали следующие параметры: площадь под кривой от нуля до бесконечности (AUC0→∞), максимальную концентрацию в плазме (Cmax) и время максимальной концентрации в плазме (tmax).
Результаты
Токсикокинетические данные приведены ниже в таблице 5. Можно видеть, что иммунизация с помощью DON-KLH приводит к уменьшению всех токсикокинетических параметров. Поскольку проявление токсических эффектов обеспечивает несвязанный DON, можно заключить, что иммунизация с помощью DON-KLH будет уменьшать вызванные DON токсические эффекты путем уменьшения количества несвязанного DON в крови животных.
Таблица 5. Токсикокинетические параметры для несвязанного DON
Токсикокинетический параметр DON-KLH Контроль
AUC0→∞ 77,3 ± 23,6 187 ± 33
Cmax 12,5 ± 2,7 30,8 ± 2,5
tmax 1,69 ± 1,03 2,19 ± 1,07
Пример 3: Серологический ответ на разные конъюгаты DON
Задача
Задачей этого исследования была оценка эффективности разных препаратов конъюгированного дезоксиниваленола.
Схема исследования
В исследовании использовали восемнадцать 3-недельных поросят, разделенных на 3 группы по 6 поросят в каждой. Поросят группы 1 дважды иммунизировали внутримышечно в возрасте 3 и 5 недель с помощью DON-KLH (с использованием исследуемого образца 1 примера 1). Поросят группы 2 иммунизировали с помощью DON-OVA. Поросята группы 3 выступали в качестве отрицательного контроля. Для всех животных проверяли ответ на IgG к DON в возрасте 3 недель, в возрасте 5 недель и в возрасте 8 недель.
Результаты
Серологические данные приведены ниже в таблице в виде титра антител log2.
Таблица 6. Ответ на IgG к DON
Исследуемый образец 3 недели 5 недель 8 недель
DON-KLH 3,5 6,6 8,3
DON-OVA 3,3 3,9 11,8
Контроль 4,8 3,3 3,3
Представляется, что оба конъюгата являются подходящими для усиления ответа на IgG к DON. Кроме того, представляется, что ответ проявляется только при одном введении.
Пример 4: Серологический ответ у цыплят
Задача
Задачей этого исследования была оценка серологического ответа на DON-KLH у цыплят.
Схема исследования
В этом исследовании использовали 30 четырехнедельных цыплят, разделенных на 3 группы по 10 цыплят в каждой. Цыплят иммунизировали внутримышечно с помощью DON-KLH. Цыплят группы 1 использовали в качестве контроля и им давали только PBS. Цыплятам группы 2 давали DON-KLH без какого-либо адъюванта и цыплятам группы 3 давали DON-KLH, приготовленный в адъюванте GNE (выпускает фирма MSD Animal Health, Boxmeer). Первичную иммунизацию проводили в день 0 с помощью 0,5 мл вакцины в правую лапу. В день 14 для цыплят проводили сопоставимую бустерную иммунизацию в левую лапу.
Пробы крови брали в дни 0 и 14, а также в дни 35, 56, 70 и 84. Выделяли сыворотку для определения IgY к DON. В дни 0 и 14 пробы крови брали непосредственно перед иммунизацией.
Результаты
Серологические данные приведены в таблице 7 в виде титра антител log2. Из данных вычитали фоновое значение PBS.
Таблица 7. Ответ на IgY к DON
Вакцина День 0 День 14 День 35 День 56 День 70 День 84
DON-KLH 0 0 0,6 1,2 1,1 1,2
DON-KLH в GNE 0 1,9 6,5 6,0 6,7 7,7
Можно видеть, что конъюгированный DON также приводит к титру к DON у цыплят. Адъювант GNE значительно увеличивает ответ, но не представляется существенным для получения суммарного ответа, как такового.

Claims (14)

1. Применение конъюгированного дезоксиниваленола (DON) для защиты животного от вызванного DON микотоксикоза.
2. Применение по п. 1, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному системно.
3. Применение по п. 2, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят внутримышечно, перорально и/или внутрикожно.
4. Применение по любому из пп. 1-3, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 6 недель или моложе.
5. Применение по п. 4, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 4 недель или моложе.
6. Применение по п. 5, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 1-3 недель.
7. Применение по любому из пп. 1-6, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному по меньшей мере дважды.
8. Применение по любому из пп. 1-7, отличающееся тем, что конъюгированный DON используют в композиции, содержащей адъювант в дополнение к конъюгированному DON.
9. Применение по п. 8, отличающееся тем, что адъювантом является эмульсия воды и масла.
10. Применение по п. 9, отличающееся тем, что адъювантом является эмульсия вода-в-масле или эмульсия масло-в-воде.
11. Применение по любому из пп. 1-10, отличающееся тем, что конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с белком, обладающим молекулярной массой, равной более 10000 Да.
12. Применение в способе по п. 11, отличающееся тем, что конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с гемоцианином лимфы улитки (KLH) или овальбумином (OVA).
13. Применение по любому из пп. 1-12, отличающееся тем, что животные защищаются от снижения среднего суточного привеса, поражения печени, язв желудка и/или поражения почек.
14. Применение по любому из пп. 1-13, отличающееся тем, что животным является свинья или курица.
RU2022102371A 2019-07-03 2020-07-02 Конъюгированный дезоксиниваленол для защиты от микотоксикоза RU2812627C2 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP19184132.9 2019-07-03

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2022102371A RU2022102371A (ru) 2023-08-03
RU2812627C2 true RU2812627C2 (ru) 2024-01-30

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007079893A1 (de) * 2005-12-23 2007-07-19 Bayer Technology Services Gmbh Vorrichtung und verfahren zum nachweis von mykotoxinen
CN101413954A (zh) * 2008-11-07 2009-04-22 无锡益达生物技术有限公司 呕吐毒素的酶联免疫吸附检测专用测试盒及制备及检测方法
KR20120024239A (ko) * 2010-09-06 2012-03-14 대한민국(관리부서 : 농림수산식품부 농림수산검역검사본부) 데옥시니발레놀과 특이적으로 결합하는 단클론 항체 및 이를 포함하는 데옥시니발레놀 검출용 킷트

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007079893A1 (de) * 2005-12-23 2007-07-19 Bayer Technology Services Gmbh Vorrichtung und verfahren zum nachweis von mykotoxinen
CN101413954A (zh) * 2008-11-07 2009-04-22 无锡益达生物技术有限公司 呕吐毒素的酶联免疫吸附检测专用测试盒及制备及检测方法
KR20120024239A (ko) * 2010-09-06 2012-03-14 대한민국(관리부서 : 농림수산식품부 농림수산검역검사본부) 데옥시니발레놀과 특이적으로 결합하는 단클론 항체 및 이를 포함하는 데옥시니발레놀 검출용 킷트

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ZHANG XIYA ET AL, One-Step Core/Multishell Quantum Dots-Based Fluoroimmunoassay for Screening of Deoxynivalenol in Maize, 03 April 2018 (2018-04-03), Vol. 11, No. 9, page 2570-2572, DOI: 10.1007/S12161-018-1198-X external link. Р. С. Овчинников и др., МИКОТОКСИНЫ И МИКОТОКСИКОЗЫ ЖИВОТНЫХ - АКТУАЛЬНАЯ ПРОБЛЕМА СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА, РЖ "Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии", 1 (25), 2018, 114-123. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gujral et al. Effect of anti-gliadin IgY antibody on epithelial intestinal integrity and inflammatory response induced by gliadin
BE1011033A6 (fr) Composition pharmaceutique et/ou alimentaire pour le traitement de pathologies liees a un rejet de greffe, une reaction allergique ou auto-immune ou du cancer.
RU2812627C2 (ru) Конъюгированный дезоксиниваленол для защиты от микотоксикоза
US20220233496A1 (en) Conjugated deoxynivalenol to protect against mycotoxicosis
KR102260009B1 (ko) 콜레스테롤 흡수 억제를 통한 비만 예방 또는 치료용 난황항체 제조방법
EP4267190A1 (en) Conjugated t-2 toxin to protect against mycotoxicosis
CN116940385A (zh) 防止真菌毒素中毒症的偶联的伏马毒素
CN116710144A (zh) 防止真菌毒素中毒症的偶联的玉米赤霉烯酮
US20240024446A1 (en) Conjugated aflatoxin b to protect against mycotoxicosis
CN116457004A (zh) 用于保护猪免于各种疾病的组合疫苗
Bižanov et al. Adjuvant effect of saponin on the immune responses to bovine serum albumin in hens
Bižanov et al. Experimental immunology Adjuvant effect of saponin on the immune responses to bovine serum albumin in hens
US20150250870A1 (en) Compositions for Immunotherapy