RU2812627C2 - Conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxicosis - Google Patents

Conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxicosis Download PDF

Info

Publication number
RU2812627C2
RU2812627C2 RU2022102371A RU2022102371A RU2812627C2 RU 2812627 C2 RU2812627 C2 RU 2812627C2 RU 2022102371 A RU2022102371 A RU 2022102371A RU 2022102371 A RU2022102371 A RU 2022102371A RU 2812627 C2 RU2812627 C2 RU 2812627C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
don
conjugated
animal
animals
group
Prior art date
Application number
RU2022102371A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2022102371A (en
Inventor
Ситске КОЭЙМАН
Рюид Филип Антон Мария СЕГЕРС
Матеуш ВАЛЬЧАК
Гудрун КОХ
Мартен Хендрик ВИТВЛИТ
Original Assignee
Интервет Интернэшнл Б.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Интервет Интернэшнл Б.В. filed Critical Интервет Интернэшнл Б.В.
Publication of RU2022102371A publication Critical patent/RU2022102371A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2812627C2 publication Critical patent/RU2812627C2/en

Links

Abstract

FIELD: veterinary.
SUBSTANCE: invention relates to the use of conjugated deoxynivalenol (DON) in a method of protecting an animal from DON-induced mycotoxicosis, in particular to protect against decreased average daily weight gain, liver damage, gastric ulcers and/or kidney damage caused by ingestion of DON.
EFFECT: obtaining conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxicosis.
14 cl, 7 tbl, 4 ex

Description

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ, К КОТОРОЙ ОТНОСИТСЯ ИЗОБРЕТЕНИЕFIELD OF TECHNOLOGY TO WHICH THE INVENTION RELATES

Настоящее изобретение в целом относится к защите от микотоксикоза, вызванного микотоксином дезоксиниваленолом (DON), также известным, как вомитоксин. DON является трихотеценом типа B, который содержится в основном в зернах, таких растений, как пшеница, ячмень, овес, рожь и кукуруза, а также рис, сорго и тритикале. Наличие дезоксиниваленола в основном связано с Fusarium graminearum (Gibberella zeae) и Fusarium culmorum, которые оба являются важными патогенами растений, которые вызывают фузариоз колоса пшеницы и gibberella или фузариозную гниль кукурузы. Установлена непосредственная связь между распространенностью фузариоза колоса и загрязнением пшеницы дезоксиниваленолом. Распространенность фузариоза колоса тесно связана с влажностью во время цветения и наиболее критическим фактором является время выпадения дождя, а не его количество. Кроме того, на содержание DON значительно влияет восприимчивость сортов к штаммам Fusarium, предшествующая культура, практика обработки почвы и применение фунгицида. Fusarium graminearum оптимально размножается при температуре, равной 25°C, а Fusarium culmorum оптимально размножается при 21°C. Поэтому Fusarium graminearum является самым распространенным штаммом в теплом климате.The present invention generally relates to protection against mycotoxicosis caused by the mycotoxin deoxynivalenol (DON), also known as vomitoxin. DON is a type B trichothecene found primarily in grains such as wheat, barley, oats, rye and corn, as well as rice, sorghum and triticale. The presence of deoxynivalenol is mainly associated with Fusarium graminearum (Gibberella zeae) and Fusarium culmorum, which are both important plant pathogens that cause Fusarium head blight in wheat and gibberella or Fusarium head rot in corn. A direct connection has been established between the prevalence of fusarium head blight and wheat contamination with deoxynivalenol. The incidence of Fusarium head blight is closely related to humidity at flowering and the most critical factor is the timing of rainfall rather than the amount of rainfall. In addition, DON content is significantly influenced by cultivar susceptibility to Fusarium strains, previous cropping, soil management practices, and fungicide application. Fusarium graminearum grows optimally at a temperature of 25°C, while Fusarium culmorum grows optimally at 21°C. Therefore, Fusarium graminearum is the most common strain in warm climates.

DON участвует в случаях микотоксикозов у людей и сельскохозяйственных животных. Этот токсин относится к классу трихотеценов, которые являются эффективными ингибиторами синтеза белка. Воздействие DON приводит к тому, что в головном мозге снижается потребление аминокислоты триптофана и, в свою очередь синтез серотонина. Предполагается, что уменьшение содержания серотонина приводит к анорексическому воздействию DON. Раздражение желудочно-кишечного тракта также может играть роль в уменьшении потребления корма и также может частично объяснить широкую распространенность парапищеводных язв желудка, наблюдающихся у свиней при отказе от корма.DON is involved in cases of mycotoxicosis in humans and farm animals. This toxin belongs to the class of trichothecenes, which are effective inhibitors of protein synthesis. Exposure to DON reduces the consumption of the amino acid tryptophan in the brain and, in turn, the synthesis of serotonin. It is hypothesized that decreased serotonin levels lead to the anorectic effects of DON. Gastrointestinal irritation may also play a role in reducing feed intake and may also partly explain the high prevalence of paraesophageal gastric ulcers observed in feed-withdrawal pigs.

Профилактическое лечение вызванного DON микотоксикоза в настоящее время ограничено надлежащей сельскохозяйственной практикой для снижения выработки микотоксинов культурами и программами контроля продовольственных и кормовых товаров для обеспечения содержания микотоксинов ниже некоторых предельно допустимых значений.Preventive treatment of DON-induced mycotoxicosis is currently limited to good agricultural practices to reduce mycotoxin production by crops and food and feed control programs to ensure mycotoxin levels are below certain limit values.

УРОВЕНЬ ТЕХНИКИBACKGROUND OF THE ART

Грибы вызывают самые различные болезни животных, включая паразитизм органов и тканей, а также проявления аллергии. Однако кроме отравления при приеме внутрь несъедобных грибов, грибы могут вырабатывать микотоксины и органические химикаты, которые приводят к разным токсическим эффектам, называющимся микотоксикозом. Эта болезнь вызвана воздействием микотоксинов, фармакологически активных соединений, вырабатываемых мицелиальными грибами, загрязняющими пищевые продукты или корма для животных. Микотоксины являются вторичными метаболитами, некритичными для физиологии грибов, которые в минимальных концентрацияхFungi cause a wide variety of animal diseases, including parasitism of organs and tissues, as well as allergies. However, in addition to poisoning when inedible mushrooms are ingested, mushrooms can produce mycotoxins and organic chemicals that lead to various toxic effects called mycotoxicosis. This disease is caused by exposure to mycotoxins, pharmacologically active compounds produced by filamentous fungi that contaminate food or animal feed. Mycotoxins are secondary metabolites, non-critical for fungal physiology, which in minimal concentrations

чрезвычайно токсичны для позвоночных при попадании внутрь, вдыхании или соприкосновении с кожей. В настоящее время известны примерно 400 микотоксинов, разделенных на семейства химически родственных молекул со сходными биологическими и структурными характеристиками. Из их числа примерно 12 групп постоянно привлекают внимание, как угрозы для здоровья животных. Примеры микотоксинов, обладающих наибольшим общественным интересом и агроэкономическим значением, включают афлатоксины (AF), охратоксины (OT), трихотецены (T; включая DON), зеараленон (ZEN), фумонизины (F), треморгенные токсины и алкалоиды спорыньи. Микотоксины были связаны с острыми и хронические заболеваниями с биологическими эффектами, которые могут меняться в основном в связи с различиями их химической структуры, но и в связи с биологическими, питательными и экологическими факторами. Патофизиология микотоксикозов является следствием взаимодействий микотоксинов с функциональными молекулами и органеллами клеток животных, что может привести к канцерогенности, генотоксичности, ингибированию синтеза белка, иммуносупрессии, раздражению кожи и другим метаболическим нарушениям. У чувствительных видов животных микотоксины могут привести к сложным и перекрывающимся токсическим эффектам. Микотоксикозы не являются заразными и не приводят к значительному стимулированию иммунной системы. Лечение лекарственными средствами или антибиотиками оказывает слабое влияние или не влияет на течение болезни. В настоящее время для человека или животных нет вакцин, предназначенных для борьбы с микотоксикозами.extremely toxic to vertebrates if ingested, inhaled or in contact with skin. Currently, approximately 400 mycotoxins are known, divided into families of chemically related molecules with similar biological and structural characteristics. Of these, approximately 12 groups have consistently attracted attention as threats to animal health. Examples of mycotoxins of greatest public interest and agroeconomic importance include aflatoxins (AF), ochratoxins (OT), trichothecenes (T; including DON), zearalenone (ZEN), fumonisins (F), tremorgenic toxins, and ergot alkaloids. Mycotoxins have been associated with acute and chronic diseases with biological effects that may vary mainly due to differences in their chemical structure, but also due to biological, nutritional and environmental factors. The pathophysiology of mycotoxicoses results from the interactions of mycotoxins with functional molecules and organelles of animal cells, which can lead to carcinogenicity, genotoxicity, inhibition of protein synthesis, immunosuppression, skin irritation and other metabolic disorders. In sensitive animal species, mycotoxins can lead to complex and overlapping toxic effects. Mycotoxicoses are not contagious and do not lead to significant stimulation of the immune system. Treatment with drugs or antibiotics has little or no effect on the course of the disease. There are currently no vaccines available for use in humans or animals to combat mycotoxicoses.

В настоящее время все большее количество исследований посвящено разработке вакцин и/или иммунотерапии, эффективных по отношению к широким классам грибов, в качестве мощного средства борьбы с микозами, т. е. инфицированием самими грибами, а не токсинами, для предупреждения специфических грибковых болезней. В отличие от микозов, для микотоксикозов не требуется участие вырабатывающих токсин грибов и они считаются абиотическими опасностями, хотя и биотического происхождения. В этом смысле микотоксикозы считались примерами отравления природными средствами и стратегии защиты в основном были направлены на предупреждение воздействия. Воздействие на людей и животных происходит в основном вследствие приема внутрь микотоксинов с пищей растительной природы. Метаболизм попавших внутрь микотоксинов может привести к накоплению в разных органах или тканях; таким образом микотоксины могут попадать в пищевую цепь с мясом животных, молоком или яйцами (перенос). Поскольку токсикогенные грибы заражают разные типы культур, потребляемых людьми и животными, микотоксины могут содержаться во всех типах необработанных сельскохозяйственных материалов, продуктов и напитков. По оценкам Организации по продовольствию и сельскому хозяйству (FAO) в мире 25% продовольственных культур значительно заражены микотоксинами. В настоящее время наилучшие стратегии предупреждения микотоксикозов включают надлежащую сельскохозяйственную практику для снижения выработки микотоксинов культурами и программы контроля продовольственных и кормовых товаров для обеспечения содержания микотоксинов ниже некоторых предельно допустимых значений. Эти стратегии могут ограничить проблему заражения товаров некоторыми группами микотоксинов при больших затратах и переменной эффективности. За исключением поддерживающей терапии (например, диета, гидратация), почти нет средств лечения воздействия микотоксинов и антидоты для микотоксинов обычно отсутствуют, хотя для индивидуумов, на которых воздействовали AF, некоторые обнадеживающие результаты были получены при использовании ряда защитных средств, таких как хлорофиллин, полифенолы зеленого чая и дитиолтионы (олтипраз).Currently, an increasing amount of research is devoted to the development of vaccines and/or immunotherapies effective against broad classes of fungi, as a powerful means of combating mycoses, i.e. infection by the fungi themselves, rather than toxins, to prevent specific fungal diseases. Unlike mycoses, mycotoxicoses do not require the participation of toxin-producing fungi and are considered abiotic hazards, albeit of biotic origin. In this sense, mycotoxicoses were considered examples of natural poisoning, and protective strategies were mainly aimed at preventing exposure. Exposure to humans and animals occurs mainly due to ingestion of mycotoxins from plant foods. Metabolism of ingested mycotoxins can lead to accumulation in various organs or tissues; thus, mycotoxins can enter the food chain through animal meat, milk or eggs (transfer). Because toxigenic fungi infect different types of crops consumed by humans and animals, mycotoxins can be found in all types of unprocessed agricultural materials, foods, and beverages. The Food and Agriculture Organization (FAO) estimates that 25% of food crops worldwide are significantly contaminated with mycotoxins. Currently, the best strategies for preventing mycotoxicoses include good agricultural practices to reduce mycotoxin production by crops and food and feed control programs to ensure mycotoxin levels are below certain limit values. These strategies can limit the problem of product contamination with certain groups of mycotoxins at high cost and variable effectiveness. With the exception of supportive care (eg, diet, hydration), there are few treatments for mycotoxin exposure, and antidotes for mycotoxins are generally not available, although for individuals exposed to AF, some encouraging results have been obtained using a number of protective agents such as chlorophyllin, polyphenols green tea and dithiolthione (oltipraz).

Для предупреждения микотоксикоза у домашнего скота и заражения микотоксинами важных пищевых продуктов животного происхождения была предложена вакцинация для борьбы с конкретными микотоксинами, эта стратегия основана на выработке антител, которые могут блокировать начальное всасывание или биоактивацию микотоксинов, их токсичность и/или выработку в животных продуктах (таких как молоко) с помощью иммуноконтрацепции.To prevent mycotoxicosis in livestock and mycotoxin contamination of important food products of animal origin, vaccination to control specific mycotoxins has been proposed, this strategy is based on the production of antibodies that can block the initial absorption or bioactivation of mycotoxins, their toxicity and/or production in animal products (such like milk) using immunocontraception.

Однако производство вакцин для защиты от микотоксикозов весьма затруднительно, в основном связано с широким диапазоном структур, химических характеристик и токсичностью, связанной с микотоксинами. Микотоксины являются обладающими низкой молекулярной массой небелковыми молекулами, которые обычно неиммуногенны (гаптены), но могут вызвать иммунный ответ при соединении с молекулой-носителем, такой как белок. Широко исследовали методики конъюгирования микотоксинов с белковым или полипептидным носителем и оптимизацию условий для иммунизации животных с целью выработки моноклональных или поликлональных антител разной специфичности для использования в иммунологическом анализе для скрининга микотоксинов в продуктах, предназначенных для потребления людьми и животными. Связывающие белки, использованные в этих исследованиях, включают, в частности, бычий сывороточный альбумин (BSA), гемоцианин лимфы улитки (KLH), тиреоглобулин (TG) и полилизин. В последние десятилетия проведены многочисленные исследования по разработке производных микотоксинов, которые могут связываться с белками при сохранении в достаточной степени исходной структуры, так чтобы выработанные антитела смогли распознавать нативный токсин. По этим методикам получены антитела ко многим микотоксинам и это показало, что конъюгирование с белками может быть эффективным средством для иммунизации. Таким образом, применение этой стратегии для вакцинации людей и животных, обеспечивающее защиту при безопасности для реципиента, до сих пор не было успешным вследствие токсичности молекул, которые могли высвободиться in vivo. Например, показано, что конъюгирование токсинов, таких как T-2, с белками-носителями привело к нестабильным комплексам с возможным высвобождением свободного токсина в его активной форме (Chanh et al, Monoclonal anti-idiotype induces protection against the cytotoxicity of the trichothecene mycotoxin T-2, in J Immunol. 1990, 144: 4721-4728). По аналогии с токсоидом вакцины, которые могут обеспечить защиту от патологических эффектов бактериальных токсинов, что является разумным подходом для разработки вакцин от микотоксинов, могут быть основаны на конъюгированных "микотоксоидах", определенных, как модифицированная форма микотоксинов, лишенных токсичности, но сохранивших антигенность (Giovati L et al, Anaflatoxin B1 as the paradigm of a new class of vaccines based on "Mycotoxoids", in Ann Vaccines Immunization 2(1): 1010, 2015). С учетом небелковой природы микотоксинов методика превращения в микотоксоиды должна основываться на химическом получении производных. Введение специфических групп в стратегические положения родственного исходного микотоксина может привести к образованию молекул, обладающих другими физико-химическими характеристиками, но все же способных индуцировать антитела с достаточной перекрестной реакционной способностью с нативным токсином. Таким образом, разумное объяснение вакцинации для микотоксинов основано на выработке к микотоксоидам антител, обладающих лучшей способностью связывать нативный микотоксин, чем клеточные мишени, нейтрализовывать токсин и предупреждать развитие болезни в случае воздействия. Возможное применение этой стратегии было продемонстрировать в случае микотоксинов, относящихся к группе AF (Giovati et al, 2015), но не для любых других микотоксинов. Кроме того, защитный эффект от микотоксикоза для самих вакцинированных животных не был продемонстрирован, но обнаружен только для переноса в молоко молочных коров, что защищало от микотоксикоза людей, потребляющих молоко или изготовленные из него продукты.However, the production of vaccines to protect against mycotoxicoses is very challenging, mainly due to the wide range of structures, chemical characteristics and toxicity associated with mycotoxins. Mycotoxins are low molecular weight non-protein molecules that are usually non-immunogenic (haptens) but can trigger an immune response when combined with a carrier molecule such as a protein. Techniques for conjugating mycotoxins to a protein or polypeptide carrier and optimizing conditions for animal immunization to produce monoclonal or polyclonal antibodies of varying specificity for use in immunoassays to screen for mycotoxins in products intended for human and animal consumption have been widely studied. Binding proteins used in these studies include, but are not limited to, bovine serum albumin (BSA), keyhole limpet hemocyanin (KLH), thyroglobulin (TG), and polylysine. In recent decades, much research has been carried out to develop mycotoxin derivatives that can bind to proteins while retaining enough of the original structure so that the resulting antibodies can recognize the native toxin. These techniques have produced antibodies to many mycotoxins and have shown that protein conjugation can be an effective means for immunization. Thus, the application of this strategy to vaccinate humans and animals while providing protection while being safe for the recipient has so far not been successful due to the toxicity of the molecules that may be released in vivo. For example, conjugation of toxins such as T-2 to carrier proteins has been shown to result in unstable complexes with the possible release of free toxin in its active form (Chanh et al, Monoclonal anti-idiotype induces protection against the cytotoxicity of the trichothecene mycotoxin T -2, in J Immunol 1990, 144: 4721-4728). By analogy with the toxoid, vaccines that may provide protection against the pathological effects of bacterial toxins, which is a reasonable approach for the development of mycotoxin vaccines, may be based on conjugated “mycotoxoids,” defined as a modified form of mycotoxins that lack toxicity but retain antigenicity (Giovati L et al, Anaflatoxin B1 as the paradigm of a new class of vaccines based on "Mycotoxoids", in Ann Vaccines Immunization 2(1): 1010, 2015). Given the non-protein nature of mycotoxins, the method of transformation into mycotoxoids should be based on chemical derivatization. The introduction of specific groups at strategic positions in a related parent mycotoxin can result in molecules that have different physicochemical characteristics but are still capable of inducing antibodies with sufficient cross-reactivity with the native toxin. Thus, a reasonable explanation for vaccination for mycotoxins is based on the production of antibodies to mycotoxoids that have a better ability to bind the native mycotoxin than cellular targets, neutralize the toxin, and prevent the development of disease if exposed. The potential application of this strategy has been demonstrated for AF mycotoxins (Giovati et al, 2015), but not for any other mycotoxins. In addition, a protective effect against mycotoxicosis was not demonstrated in vaccinated animals themselves, but was only found to be transferred into the milk of dairy cows, which protected against mycotoxicosis in humans consuming milk or products made from it.

ЗАДАЧА ИЗОБРЕТЕНИЯOBJECTIVE OF THE INVENTION

Задачей настоящего изобретения является разработка способа защиты животного от микотоксикоза вызванного дезоксиниваленолом, одним из самых распространенных микотоксинов в кормах для животных.The objective of the present invention is to develop a method for protecting an animal from mycotoxicosis caused by deoxynivalenol, one of the most common mycotoxins in animal feed.

СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯSUMMARY OF THE INVENTION

Для решения задачи настоящего изобретения было установлено, что конъюгированный дезоксиниваленол (DON) пригоден для применения в способе защиты животного от вызванного DON микотоксикоза. Было установлено, что не требуется превращать DON в токсоид, конъюгированный токсин, видимо, безопасен для подвергнутого лечению животного-хозяина. Кроме того, неожиданно было установлено, что индуцированный иммунный ответ был достаточно сильным, чтобы защитить самого животного от микотоксикоза после приема внутрь DON после лечения. Такая реальная защита путем индуцирования иммунного ответа на сам микотоксин не была продемонстрирована в данной области техники для любого микотоксина, не считая широко распространенного и чрезвычайно токсичного соединения дезоксиниваленола.To achieve the object of the present invention, it has been found that conjugated deoxynivalenol (DON) is suitable for use in a method of protecting an animal from DON-induced mycotoxicosis. It has been found that DON does not need to be converted to a toxoid, and the conjugated toxin appears to be safe in the treated animal host. In addition, it was unexpectedly found that the induced immune response was strong enough to protect the animal itself from mycotoxicosis after ingestion of DON after treatment. Such actual protection by inducing an immune response to the mycotoxin itself has not been demonstrated in the art for any mycotoxin other than the widespread and extremely toxic compound deoxynivalenol.

ОПРЕДЕЛЕНИЕDEFINITION

Микотоксикоз является болезнью, обусловленной воздействием микотоксина. Клинические признаки, пораженные органы и результат зависят от собственных токсических характеристик микотоксина и степени и продолжительности воздействия, а также состояния здоровья подвергнутого воздействию животного.Mycotoxicosis is a disease caused by exposure to a mycotoxin. Clinical signs, organs affected, and outcome depend on the intrinsic toxicity characteristics of the mycotoxin and the degree and duration of exposure, as well as the health status of the exposed animal.

Защита от микотоксикоза означает предупреждение или ослабление одного или большего количества негативных физиологических воздействий микотоксина на животное , таких как снижение среднего суточного привеса.Protection against mycotoxicosis means preventing or reducing one or more of the negative physiological effects of a mycotoxin on an animal, such as a decrease in average daily weight gain.

Дезоксиниваленол (также известный, как вомитоксин или VOM) является микотоксином, продуцируемым грибами Fusarium graminearum, который вызывает фузариоз колоса (FHB), или паршу мелких зерен. DON может вызвать отказ от корма и рвоту. Молекулярная формула исходного соединения имеет вид C15H20O6.Deoxynivalenol (also known as vomitoxin or VOM) is a mycotoxin produced by the fungus Fusarium graminearum that causes Fusarium head blight (FHB), or small grain scab. DON may cause food refusal and vomiting. The molecular formula of the original compound is C 15 H 20 O 6 .

Конъюгированная молекула является молекулой, с которой иммуногенное соединение связано ковалентной связью. Обычно иммуногенное соединение является крупным белком, таким как KLH, BSA или OVA.A conjugated molecule is a molecule to which an immunogenic compound is linked by a covalent bond. Typically the immunogenic compound is a large protein such as KLH, BSA or OVA.

Адъювантом является неспецифическое иммуностимулирующее средство. В принципе, каждое соединение, которое способно благоприятствовать или усиливать конкретный процесс в каскаде иммунологических событий, в конечном счете приводящее к лучшему иммунологическому ответу (т. е. объединенному ответу организма на антиген, в частности, опосредуемому лимфоцитами и обычно включающему распознавание антигенов специфическими антителами или предварительно сенсибилизированными лимфоцитами), можно определить, как адъювант. Адъювант обычно не требуется для протекания указанного конкретного процесса, а просто благоприятствует указанному процессу или усиливает его.An adjuvant is a nonspecific immunostimulating agent. In principle, each compound that is capable of promoting or enhancing a specific process in the cascade of immunological events ultimately leading to a better immunological response (i.e., the body's integrated response to an antigen, particularly mediated by lymphocytes and typically involving recognition of antigens by specific antibodies or pre-sensitized lymphocytes) can be defined as an adjuvant. The adjuvant is usually not required for said specific process to occur, but merely promotes or enhances said process.

ДРУГИЕ ВАРИАНТЫ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯOTHER OPTIONS FOR IMPLEMENTING THE INVENTION

В другом варианте осуществления настоящего изобретения конъюгированный DON вводят животному системно. Хотя известно, что локальное введение, например, через слизистую оболочку в желудочно-кишечный тракт (перорально или через анальное отверстие) или в глаза (например, при иммунизации цыплят) является эффективным путем индуцирования иммунного ответа у разных животных, было установлено, что системное введение приводит к иммунному ответу, необходимому для защиты животных от вызванного DON микотоксикоза. В частности, было установлено, что эффективную иммунизацию можно обеспечить после внутримышечного, перорального и/или внутрикожного введения.In another embodiment of the present invention, the conjugated DON is administered systemically to the animal. Although local administration, for example through the mucous membrane into the gastrointestinal tract (orally or anally) or into the eye (for example, in chicken immunization) is known to be effective in inducing an immune response in a variety of animals, it has been found that systemic administration leads to the immune response necessary to protect animals from DON-induced mycotoxicosis. In particular, it has been found that effective immunization can be achieved after intramuscular, oral and/or intradermal administration.

Возраст для введения не является критически важным, хотя предпочтительно проводить введение до того, когда животное может проглотить корм, зараженный значительными количествами DON. Поэтому предпочтительный возраст в момент введения составляет 6 недель или менее. Более предпочтительный возраст составляет 4 недели или менее, такой как, например, возраст, равный 1-3 неделям.The age of administration is not critical, although it is preferable to administer before the animal can ingest feed contaminated with significant amounts of DON. Therefore, the preferred age at the time of administration is 6 weeks or less. A more preferred age is 4 weeks or less, such as 1-3 weeks of age.

В еще одном варианте осуществления настоящего изобретения конъюгированный DON вводят животному по меньшей мере дважды. Хотя многие животные (в частности, свиньи, цыплята, жвачные животные) обычно восприимчивы к иммунизации при одном введении иммуногенной композиции, предполагается, что для экономически надежной защиты от DON предпочтительны два введения. Это обусловлено тем, что на практике иммунная система животных не начинает вырабатывать антитела к DON при воздействии природного DON, просто поскольку природный DON не является иммуногенным. Таким образом, иммунная система животных полностью зависит от введения конъюгированного DON. Промежуток времени между этими двумя введениями конъюгированного DON может быть любым в диапазоне от 1 недели до 1-2 лет. Предполагается, что для молодых животных достаточен режим первичной иммунизации, например, в возрасте 1-3 недель с последующим бустерным введением через 1-4 недели, обычно через 1-3 недели, например, через 2 недели. Для более старых животных может потребоваться бустерное введение через каждые несколько месяцев (например, через 4, 5, 6 месяцев после последнего введения) или ежегодно, или через каждые два года, как это известно для других промышленно использующихся режимов иммунизации животных.In yet another embodiment of the present invention, the conjugated DON is administered to the animal at least twice. Although many animals (eg pigs, chickens, ruminants) are generally susceptible to immunization with a single administration of the immunogenic composition, it is believed that two administrations are preferred for cost-effective protection against DON. This is because, in practice, animals' immune systems do not produce antibodies to DON when exposed to natural DON, simply because natural DON is not immunogenic. Thus, the immune system of animals is completely dependent on the administration of conjugated DON. The time interval between these two administrations of conjugated DON can be anything ranging from 1 week to 1-2 years. For young animals, it is suggested that a primary immunization regimen, eg at 1-3 weeks of age, followed by a booster at 1-4 weeks, usually 1-3 weeks, eg 2 weeks, is sufficient. For older animals, booster doses may be required every few months (eg, 4, 5, 6 months after the last dose) or annually, or every two years, as is known for other commercially used animal immunization regimens.

В еще одном варианте осуществления конъюгированный DON используют в композиции, содержащей адъювант в дополнение к конъюгированному DON. Адъювант можно использовать, если сам конъюгат неспособен вызвать иммунный ответ с обеспечением заданной степени защиты. Хотя известны молекулы конъюгата, которые способны в достаточной степени стимулировать иммунную систему без дополнительного адъюванта, такого как KLH или BSA, использование дополнительного адъюванта может быть полезным. Это может исключить необходимость бустерного введения или увеличение интервала для его введения. Все зависит от степени защиты, необходимой для конкретного случая. Типом адъюванта, для которого показано, что он способен вызвать хороший иммунный ответ на DON при использовании конъюгированного DON в качестве иммуногена, является эмульсия воды и масла, такая как, например, эмульсия вода-в-масле или эмульсия масло-в-воде. Первую обычно используют для домашней птицы, а вторую обычно используют для животных, которые более подвержены вызванным адъювантом побочным реакциям, таких как свиньи и жвачные животные.In yet another embodiment, the conjugated DON is used in a composition containing an adjuvant in addition to the conjugated DON. An adjuvant may be used if the conjugate itself is unable to elicit an immune response to provide the desired degree of protection. Although conjugate molecules are known that are capable of sufficiently stimulating the immune system without an additional adjuvant such as KLH or BSA, the use of an additional adjuvant may be beneficial. This may eliminate the need for a booster or increase the interval for its administration. It all depends on the degree of protection required for a particular case. The type of adjuvant that has been shown to be able to elicit a good immune response to DON when using conjugated DON as the immunogen is a water-oil emulsion, such as, for example, a water-in-oil emulsion or an oil-in-water emulsion. The former is typically used for poultry, and the latter is typically used for animals that are more susceptible to adjuvant-induced adverse reactions, such as pigs and ruminants.

В еще одном другом варианте осуществления конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с белком, обладающим молекулярной массой, равной более 10000 Да. Установлено, что такие белки, в частности, гемоцианин лимфы улитки (KLH) и овальбумин (OVA), могут вызвать достаточный иммунный ответ у животных, в частности, у свиней и цыплят. Практическое верхнее предельное значение для белка может составлять 100 МДа.In yet another embodiment, the conjugated DON includes DON conjugated to a protein having a molecular weight of greater than 10,000 Daltons. It has been established that such proteins, in particular keyhole limpet hemocyanin (KLH) and ovalbumin (OVA), can induce a sufficient immune response in animals, particularly pigs and chickens. A practical upper limit for the protein may be 100 MDa.

Для защиты от микотоксикоза, в частности, было установлено, что при использовании настоящего изобретения животные защищаются от снижения среднего суточного привеса, поражения печени, язв желудка и/или поражения почек, т. е. одного или большего количества этих признаков микотоксикоза.For protection against mycotoxicosis, in particular, it has been found that by using the present invention, animals are protected from decreased average daily weight gain, liver damage, gastric ulcers and/or kidney damage, i.e., one or more of these signs of mycotoxicosis.

Ниже настоящее изобретение дополнительно разъяснено с помощью следующих примеров.Below, the present invention is further explained using the following examples.

ПРИМЕРЫ ИЗОБРЕТЕНИЯEXAMPLES OF THE INVENTION

Пример 1: Эксперимент по иммунизации с заражением с использованием конъюгированного DONExample 1: Challenge Immunization Experiment Using Conjugated DON

ЗадачаTask

Задачей этого исследования была оценка эффективности конъюгированного дезоксиниваленола для защиты животного от микотоксикоза вследствие приема DON внутрь. Для этого исследования свиней иммунизировали дважды с помощью DON-KLH до заражения токсичным DON. Для исследования влияния пути введения использовали разные пути иммунизации.The objective of this study was to evaluate the effectiveness of conjugated deoxynivalenol in protecting animals from mycotoxicosis due to oral DON ingestion. For this study, pigs were immunized twice with DON-KLH prior to challenge with toxic DON. To study the influence of the route of administration, different immunization routes were used.

Схема исследованияStudy design

В исследовании использовали сорок 1-недельных поросят, полученных от 8 свиноматок, разделенных на 5 групп. 24 поросят групп 1-3 иммунизировали дважды в возрасте 1 и 3 недель. Поросят группы 1 иммунизировали внутримышечно (IM) в обоих возрастах. Поросята группы 2 получали IM инъекцию в возрасте одной недели и пероральную бустерную дозу в возрасте 3 недель. Поросят группы 3 дважды иммунизировали внутрикожно (ID). От возраста 5½ недель поросят группы 1-3 в течение 4 недель заражали с помощью DON, вводимым перорально в виде жидкости. Поросят группы 4 не иммунизировали, а только заражали с помощью DON, как описано для групп 1-3. Поросята группы 5 выступали в качестве контроля и им давали только контрольную жидкость от возраста 5,5 недель в течение 4 недель.Forty 1-week-old piglets from 8 sows divided into 5 groups were used in the study. 24 piglets of groups 1-3 were immunized twice at the age of 1 and 3 weeks. Group 1 piglets were immunized intramuscularly (IM) at both ages. Group 2 piglets received an IM injection at one week of age and an oral booster dose at 3 weeks of age. Group 3 piglets were immunized intradermally (ID) twice. From 5½ weeks of age, piglets in groups 1-3 were challenged for 4 weeks with DON administered orally as a liquid. Group 4 piglets were not immunized but only challenged with DON as described for groups 1-3. Group 5 piglets acted as a control and were given only control fluid from 5.5 weeks of age for 4 weeks.

Концентрация DON в жидком препарате соответствовала 5,4 мг/кг корма. Это соответствует среднему количеству, равному 2,5 мг DON в сутки. После 4 недель заражения всех животных исследовали после умерщвления, обращая особое внимание на печень, почки и желудок. Кроме того, в дни исследования 0, 34, 41, 49, 55, 64 (после умерщвления) брали пробы крови за исключением животных группы 5, у которых пробы крови брали только в дни 0, 34, 49 и сразу после умерщвления.The DON concentration in the liquid preparation corresponded to 5.4 mg/kg of feed. This corresponds to an average amount of 2.5 mg DON per day. After 4 weeks of infection, all animals were examined after sacrifice, paying special attention to the liver, kidneys and stomach. In addition, blood samples were taken on study days 0, 34, 41, 49, 55, 64 (after sacrifice) with the exception of animals in group 5, from which blood samples were taken only on days 0, 34, 49 and immediately after sacrifice.

Исследуемые образцыSamples studied

Готовили три разные иммуногенные композиции, а именно, исследуемый образец 1, содержащий DON-KLH в концентрации 50 мкг/мл в эмульсии масло-в-воде для инъекции (X-solve 50, MSD AH, Boxmeer), который использовали для IM иммунизации; исследуемый образец 2, содержащий DON-KLH в концентрации 50 мкг/мл в эмульсии вода-в-масле (GNE, MSD AH, Boxmeer), который использовали для пероральной иммунизации, и исследуемый образец 3, содержащий DON-KLH в концентрации 500 мкг/мл в эмульсии масло-в-воде для инъекции (X-solve 50) для ID иммунизации.Three different immunogenic compositions were prepared, namely, test sample 1 containing DON-KLH at a concentration of 50 μg/ml in an oil-in-water emulsion for injection (X-solve 50, MSD AH, Boxmeer), which was used for IM immunization; test sample 2 containing DON-KLH at a concentration of 50 μg/ml in a water-in-oil emulsion (GNE, MSD AH, Boxmeer), which was used for oral immunization, and test sample 3 containing DON-KLH at a concentration of 500 μg/ml ml in oil-in-water emulsion for injection (X-solve 50) for ID immunization.

Использующийся для заражения дезоксиниваленол (получен у фирмы Fermentek, Israel) разводили в 100% метаноле до конечной концентрации, равной 100 мг/мл, и хранили при температуре ниже -15°C. Перед использованием DON дополнительно разводили и включали в средство для введения.Deoxynivalenol used for infection (obtained from Fermentek, Israel) was diluted in 100% methanol to a final concentration of 100 mg/ml and stored at a temperature below -15°C. Prior to use, DON was further diluted and included in the administration agent.

Критерии включенияInclusion criteria

Использовали только здоровых животных. Для исключения нездоровых животных перед началом исследования у всех животных проверяли физикальные характеристики и убеждались в отсутствии клинических аномалий и болезни. В группе использовали поросят от разных свиноматок. При обычной практике всех животных иммунизируют даже если на них предварительно воздействовал DON путем приема внутрь зараженного с помощью DON корма. Поскольку сам DON не приводит к иммунному ответу, предполагается, что нет принципиальных различий между животными, которые предварительно были заражены с помощью DON, и животными, которые не получали DON.Only healthy animals were used. To exclude unhealthy animals, all animals were checked for physical characteristics before the start of the study to ensure the absence of clinical abnormalities and disease. The group used piglets from different sows. In normal practice, all animals are immunized even if they have been previously exposed to DON by ingesting DON-contaminated feed. Since DON itself does not lead to an immune response, it is assumed that there are no fundamental differences between animals that have been prechallenged with DON and animals that have not received DON.

Результатыresults

Ни у одного из животных не наблюдались неблагоприятные эффекты, связанные с иммунизацией с помощью DON-KLH. Таким образом, композиция представлялась безопасной.No adverse effects associated with immunization with DON-KLH were observed in any of the animals. Thus, the composition seemed safe.

В начале эксперимента все поросята были серологически негативными по титрам по отношению к DON. При заражении у животных групп, иммунизированных внутримышечно (группа 1) и внутрикожно (группа 3), развивался иммунный ответ к DON, определенный с помощью ELISA с нативным DON-BSA в качестве нанесенного антигена. В таблице 1 приведены средние значения IgG для 4 моментов времени во время исследования и их SD значения. И внутримышечная иммунизация, и внутрикожная иммунизация приводили к значительным титрам по отношению к DON.At the beginning of the experiment, all piglets were serologically negative for DON titers. During infection, animals in the groups immunized intramuscularly (group 1) and intradermally (group 3) developed an immune response to DON, determined by ELISA with native DON-BSA as the applied antigen. Table 1 shows the mean IgG values for the 4 time points during the study and their SD values. Both intramuscular immunization and intradermal immunization resulted in significant titers to DON.

Таблица 1. Титры IgGTable 1. IgG titers

Группа 1 Group 1 Группа 2 Group 2 Группа 3Group 3 Группа 4 Group 4 Группа 5 Group 5 T=0 T=0 <4,3 <4.3 <4,3<4.3 <4,3<4.3 <4,3<4.3 <4,3<4.3 T=35T=35 11,2 11.2 4,86 4.86 9,999.99 4,34.3 4,194.19 T=49T=49 9,56 9.56 4,644.64 8,818.81 4,714.71 3,973.97 T=64T=64 8,48 8.48 4,34.3 7,567.56 4,34.3 3,313.31

Как показано в таблице 2, для всех иммунизированных животных, включая животных группы 2, у которых не обнаруживается значительное увеличение титра по отношению к DON IgG, за первые 15 дней обнаруживается намного более значительный привес, чем у зараженных животных. По сравнению с зараженными животными в течение исследования у всех животных обнаруживается более значительный вес.As shown in Table 2, all immunized animals, including Group 2 animals that did not show a significant increase in DON IgG titer, exhibited much greater weight gain over the first 15 days than challenged animals. Compared to infected animals, all animals showed increased weight during the study.

Таблица 2. Анализ весаTable 2. Weight analysis

ADG11 ADG1 1 ADG2 ADG 2 Начальный весStarting weight Конечный весFinal weight Средний дополнительный привес по сравнению с зараженными животными (г)Average additional weight gain compared to infected animals (g) Группа 1Group 1 0,67 0.67 0,800.80 11,6311.63 32,2932.29 + 1060+ 1060 Группа 2Group 2 0,640.64 0,790.79 12,3112.31 32,1332.13 +760+760 Группа 3Group 3 0,580.58 0,820.82 12,8812.88 32,2532.25 +310+310 Группа 4Group 4 0,540.54 0,810.81 12,6912.69 31,7531.75 00 Группа 5Group 5 0,570.57 0,800.80 11,6311.63 31,0831.08 +390+390

1 средний суточный привес за первые 15 дней после заражения 1 average daily gain in the first 15 days after infection

2 средний суточный привес за последние 13 дней после заражения 2 average daily gain over the last 13 days after infection

Также следили за состоянием тонкого кишечника (по отношению ворсинки/крипты в тощей кишке). В таблице 3 приведено отношение ворсинки/крипты. Можно видеть, что у животных группы 3 среднее значение отношения ворсинки/крипты сопоставимо с данными для здоровых контрольных животных (группа 5), тогда как у неиммунизированных зараженных животных (группа 4) наблюдалось намного меньшее (статистически значимо) отношение ворсинки/крипты. Кроме того, у животных группы 1 и группы 2 наблюдалось отношение ворсинки/крипты, которое было значительно лучше (т. е. больше), чем у неиммунизированных зараженных животных контрольной группы. Это показывает, что иммунизация защищает от повреждения тонкого кишечника, вызванного DON.The condition of the small intestine (villus/crypt ratio in the jejunum) was also monitored. Table 3 shows the villus/crypt ratio. It can be seen that group 3 animals had a mean villus/crypt ratio comparable to healthy control animals (group 5), whereas non-immunized challenged animals (group 4) had a much lower (statistically significant) villus/crypt ratio. In addition, Group 1 and Group 2 animals exhibited villus/crypt ratios that were significantly better (i.e., greater) than nonimmunized challenge control animals. This shows that immunization protects against DON-induced small intestinal damage.

Таблица 3. Отношение ворсинки/криптыTable 3. Villi/crypt ratio

Группа 1 Group 1 Группа 2Group 2 Группа 3 Group 3 Группа 4Group 4 Группа 5 Group 5 Среднее значениеAverage value 1,571.57 1,411.41 1,781.78 1,091.09 1,711.71 STDSTD 0,240.24 0,220.22 0,120.12 0,100.10 0,230.23

Также следили за общим состоянием других органов, точнее, печени, почек и желудка. Обнаружено, что состояние здоровья животных всех трех исследуемых групп (группы 1-3) было лучше, чем неиммунизированных зараженных животных контрольной группы (группа 4). В таблице 4 приведена сводка данных об общем состоянии здоровья. Степень изъязвления желудка указана в диапазоне от - (нет данных об образовании язвы желудка) до ++ (множественные язвы). Степень воспаления желудка указана в диапазоне от - (нет данных о воспалении) до ++/- (начало воспаления желудка).They also monitored the general condition of other organs, more precisely, the liver, kidneys and stomach. It was found that the health of animals in all three study groups (groups 1-3) was better than that of non-immunized infected animals in the control group (group 4). Table 4 provides a summary of general health data. The degree of gastric ulceration is indicated in the range from - (no evidence of gastric ulceration) to ++ (multiple ulcers). The degree of inflammation of the stomach is indicated in the range from - (no evidence of inflammation) to ++/- (beginning of inflammation of the stomach).

Таблица 4. Данные об общем состоянии здоровьяTable 4. Data on general health status

Цвет печениLiver color Язва желудкаStomach ulcer Воспаление желудкаInflammation of the stomach ПочкиKidneys Группа 1Group 1 Нормальный-желтыйNormal - yellow -- -- ПастельныйPastel Группа 2Group 2 НормальныйNormal +/--+/-- -- НормальныйNormal Группа 3Group 3 НормальныйNormal +/-+/- +/--+/-- НормальныйNormal Группа 4Group 4 ПастельныйPastel ++++ ++/-+/- ПастельныйPastel Группа 5Group 5 НормальныйNormal ++ ++/-+/- НормальныйNormal

Пример 2: Влияние иммунизации на содержание DONExample 2: Effect of immunization on DON content

ЗадачаTask

Задачей этого исследования была оценка влияния иммунизации конъюгатом DON на токсикокинетику при попадании DON внутрь. Для этого исследования свиней дважды иммунизировали с помощью DON-KLH и затем им давали токсичный DON.The objective of this study was to evaluate the effect of DON conjugate immunization on the toxicokinetics of ingested DON. For this study, pigs were immunized twice with DON-KLH and then given toxic DON.

Схема исследованияStudy design

В исследовании использовали десятерых 3-недельных поросят, разделенных на 2 группы по 5 поросят в каждой. Поросят группы 1 иммунизировали IM дважды в возрасте 3 и 6 недель с помощью DON-KLH (исследуемый образец 1; пример 1). Поросята группы 2 выступали в качестве контроля и им давали только контрольную жидкость. В возрасте 11 недель всем животным вводили DON (Fermentek, Israel) с помощью болюса в дозе 0,05 мг/кг, которая (в пересчете на суточное потребление корма) соответствовало степени заражения, равной 1 мг/кг корма. Пробы крови брали у поросят непосредственно перед введением DON и через 0,25, 0,5, 0,75, 1, 1,5, 2, 3, 4, 6, 8, и 12 ч после введения DON.The study used ten 3-week-old piglets, divided into 2 groups of 5 piglets each. Group 1 piglets were immunized IM twice at 3 and 6 weeks of age with DON-KLH (test sample 1; example 1). Group 2 piglets acted as a control and were given only the control liquid. At 11 weeks of age, all animals were administered DON (Fermentek, Israel) by bolus at a dose of 0.05 mg/kg, which (in terms of daily feed intake) corresponded to a contamination level of 1 mg/kg feed. Blood samples were taken from piglets immediately before DON administration and at 0.25, 0.5, 0.75, 1, 1.5, 2, 3, 4, 6, 8, and 12 h after DON administration.

Критерии включенияInclusion criteria

Использовали только здоровых животных.Only healthy animals were used.

Определение DON в плазмеDetermination of DON in plasma

Определение несвязанного DON в плазме проводили по аттестованной методике LC-MS/MS с помощью системы Acquity® UPLC, соединенной с прибором Xevo® TQ-S MS (Waters, Zellik, Belgium). Нижнее предельное значение количественного определения DON в плазме свиней по этой методике равнялось 0,1 нг/мл.Determination of unbound DON in plasma was performed using a validated LC-MS/MS method using an Acquity® UPLC system coupled to a Xevo® TQ-S MS instrument (Waters, Zellik, Belgium). The lower limit of quantitation of DON in pig plasma using this method was 0.1 ng/ml.

Токсикокинетический анализToxicokinetic analysis

Токсикокинетическое моделирование профилей концентрация DON - время в плазме проводили с помощью некомпартментального анализа (Phoenix, Pharsight Corporation, USA). Рассчитывали следующие параметры: площадь под кривой от нуля до бесконечности (AUC0→∞), максимальную концентрацию в плазме (Cmax) и время максимальной концентрации в плазме (tmax).Toxicokinetic modeling of plasma DON concentration-time profiles was performed using a noncompartmental assay (Phoenix, Pharsight Corporation, USA). The following parameters were calculated: area under the curve from zero to infinity (AUC0→∞), maximum plasma concentration (Cmax) and time of maximum plasma concentration (tmax).

Результатыresults

Токсикокинетические данные приведены ниже в таблице 5. Можно видеть, что иммунизация с помощью DON-KLH приводит к уменьшению всех токсикокинетических параметров. Поскольку проявление токсических эффектов обеспечивает несвязанный DON, можно заключить, что иммунизация с помощью DON-KLH будет уменьшать вызванные DON токсические эффекты путем уменьшения количества несвязанного DON в крови животных.The toxicokinetic data are shown below in Table 5. It can be seen that immunization with DON-KLH results in a decrease in all toxicokinetic parameters. Since unbound DON mediates toxic effects, it can be concluded that immunization with DON-KLH will reduce DON-induced toxic effects by reducing the amount of unbound DON in the blood of animals.

Таблица 5. Токсикокинетические параметры для несвязанного DONTable 5. Toxicokinetic parameters for unbound DON

Токсикокинетический параметрToxicokinetic parameter DON-KLHDON-KLH КонтрольControl AUC0→∞ AUC 0→∞ 77,3 ± 23,677.3 ± 23.6 187 ± 33187 ± 33 Cmax C max 12,5 ± 2,712.5 ± 2.7 30,8 ± 2,530.8 ± 2.5 tmax tmax 1,69 ± 1,031.69 ± 1.03 2,19 ± 1,072.19 ± 1.07

Пример 3: Серологический ответ на разные конъюгаты DONExample 3: Serological response to different DON conjugates

ЗадачаTask

Задачей этого исследования была оценка эффективности разных препаратов конъюгированного дезоксиниваленола.The objective of this study was to evaluate the effectiveness of different conjugated deoxynivalenol preparations.

Схема исследованияStudy design

В исследовании использовали восемнадцать 3-недельных поросят, разделенных на 3 группы по 6 поросят в каждой. Поросят группы 1 дважды иммунизировали внутримышечно в возрасте 3 и 5 недель с помощью DON-KLH (с использованием исследуемого образца 1 примера 1). Поросят группы 2 иммунизировали с помощью DON-OVA. Поросята группы 3 выступали в качестве отрицательного контроля. Для всех животных проверяли ответ на IgG к DON в возрасте 3 недель, в возрасте 5 недель и в возрасте 8 недель.Eighteen 3-week-old piglets were used in the study, divided into 3 groups of 6 piglets each. Group 1 piglets were immunized twice intramuscularly at 3 and 5 weeks of age with DON-KLH (using test sample 1 of example 1). Group 2 piglets were immunized with DON-OVA. Group 3 piglets served as negative controls. All animals were tested for anti-DON IgG responses at 3 weeks of age, 5 weeks of age, and 8 weeks of age.

Результатыresults

Серологические данные приведены ниже в таблице в виде титра антител log2.Serological data are shown in the table below as log2 antibody titer.

Таблица 6. Ответ на IgG к DONTable 6. IgG response to DON

Исследуемый образецTest sample 3 недели3 weeks 5 недель5 weeks 8 недель8 weeks DON-KLHDON-KLH 3,53.5 6,66.6 8,38.3 DON-OVADON-OVA 3,33.3 3,93.9 11,811.8 КонтрольControl 4,84.8 3,33.3 3,33.3

Представляется, что оба конъюгата являются подходящими для усиления ответа на IgG к DON. Кроме того, представляется, что ответ проявляется только при одном введении.It appears that both conjugates are suitable for enhancing the IgG response to DON. In addition, the response appears to occur with only one administration.

Пример 4: Серологический ответ у цыплятExample 4: Serological response in chickens

ЗадачаTask

Задачей этого исследования была оценка серологического ответа на DON-KLH у цыплят.The objective of this study was to evaluate the serological response to DON-KLH in chickens.

Схема исследованияStudy design

В этом исследовании использовали 30 четырехнедельных цыплят, разделенных на 3 группы по 10 цыплят в каждой. Цыплят иммунизировали внутримышечно с помощью DON-KLH. Цыплят группы 1 использовали в качестве контроля и им давали только PBS. Цыплятам группы 2 давали DON-KLH без какого-либо адъюванта и цыплятам группы 3 давали DON-KLH, приготовленный в адъюванте GNE (выпускает фирма MSD Animal Health, Boxmeer). Первичную иммунизацию проводили в день 0 с помощью 0,5 мл вакцины в правую лапу. В день 14 для цыплят проводили сопоставимую бустерную иммунизацию в левую лапу.This study used 30 four-week-old chicks, divided into 3 groups of 10 chicks each. Chickens were immunized intramuscularly with DON-KLH. Group 1 chickens were used as a control and were given PBS only. Group 2 chickens were given DON-KLH without any adjuvant and Group 3 chickens were given DON-KLH prepared in GNE adjuvant (manufactured by MSD Animal Health, Boxmeer). Primary immunization was performed on day 0 with 0.5 ml of vaccine in the right paw. On day 14, chicks were given a comparable booster immunization in the left foot.

Пробы крови брали в дни 0 и 14, а также в дни 35, 56, 70 и 84. Выделяли сыворотку для определения IgY к DON. В дни 0 и 14 пробы крови брали непосредственно перед иммунизацией.Blood samples were collected on days 0 and 14, and on days 35, 56, 70 and 84. Serum was isolated for determination of IgY to DON. On days 0 and 14, blood samples were collected immediately before immunization.

Результатыresults

Серологические данные приведены в таблице 7 в виде титра антител log2. Из данных вычитали фоновое значение PBS.Serological data are shown in Table 7 as log2 antibody titer. The background PBS value was subtracted from the data.

Таблица 7. Ответ на IgY к DONTable 7. IgY response to DON

ВакцинаVaccine День 0Day 0 День 14Day 14 День 35Day 35 День 56Day 56 День 70Day 70 День 84Day 84 DON-KLHDON-KLH 00 00 0,60.6 1,21.2 1,11.1 1,21.2 DON-KLH в GNEDON-KLH to GNE 00 1,91.9 6,56.5 6,06.0 6,76.7 7,77.7

Можно видеть, что конъюгированный DON также приводит к титру к DON у цыплят. Адъювант GNE значительно увеличивает ответ, но не представляется существенным для получения суммарного ответа, как такового.It can be seen that conjugated DON also results in DON titers in chickens. The adjuvant GNE significantly increases the response, but does not appear to be essential for the overall response per se.

Claims (14)

1. Применение конъюгированного дезоксиниваленола (DON) для защиты животного от вызванного DON микотоксикоза.1. Use of conjugated deoxynivalenol (DON) to protect the animal from DON-induced mycotoxicosis. 2. Применение по п. 1, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному системно.2. Use according to claim 1, characterized in that the conjugated DON is administered to the animal systemically. 3. Применение по п. 2, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят внутримышечно, перорально и/или внутрикожно.3. Use according to claim 2, characterized in that the conjugated DON is administered intramuscularly, orally and/or intradermally. 4. Применение по любому из пп. 1-3, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 6 недель или моложе.4. Application according to any one of paragraphs. 1-3, characterized in that the conjugated DON is administered to an animal 6 weeks of age or younger. 5. Применение по п. 4, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 4 недель или моложе.5. Use according to claim 4, characterized in that the conjugated DON is administered to the animal at 4 weeks of age or younger. 6. Применение по п. 5, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному в возрасте 1-3 недель.6. Use according to claim 5, characterized in that the conjugated DON is administered to the animal at the age of 1-3 weeks. 7. Применение по любому из пп. 1-6, отличающееся тем, что конъюгированный DON вводят животному по меньшей мере дважды.7. Application according to any one of paragraphs. 1-6, characterized in that the conjugated DON is administered to the animal at least twice. 8. Применение по любому из пп. 1-7, отличающееся тем, что конъюгированный DON используют в композиции, содержащей адъювант в дополнение к конъюгированному DON.8. Application according to any one of paragraphs. 1-7, characterized in that the conjugated DON is used in a composition containing an adjuvant in addition to the conjugated DON. 9. Применение по п. 8, отличающееся тем, что адъювантом является эмульсия воды и масла.9. Application according to claim 8, characterized in that the adjuvant is an emulsion of water and oil. 10. Применение по п. 9, отличающееся тем, что адъювантом является эмульсия вода-в-масле или эмульсия масло-в-воде.10. Use according to claim 9, characterized in that the adjuvant is a water-in-oil emulsion or an oil-in-water emulsion. 11. Применение по любому из пп. 1-10, отличающееся тем, что конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с белком, обладающим молекулярной массой, равной более 10000 Да.11. Application according to any one of paragraphs. 1-10, characterized in that the conjugated DON includes DON conjugated to a protein having a molecular weight of more than 10,000 Da. 12. Применение в способе по п. 11, отличающееся тем, что конъюгированный DON включает DON, конъюгированный с гемоцианином лимфы улитки (KLH) или овальбумином (OVA).12. Use in the method of claim 11, wherein the conjugated DON includes DON conjugated to keyhole limpet hemocyanin (KLH) or ovalbumin (OVA). 13. Применение по любому из пп. 1-12, отличающееся тем, что животные защищаются от снижения среднего суточного привеса, поражения печени, язв желудка и/или поражения почек.13. Application according to any one of paragraphs. 1-12, characterized in that the animals are protected from a decrease in average daily weight gain, liver damage, stomach ulcers and/or kidney damage. 14. Применение по любому из пп. 1-13, отличающееся тем, что животным является свинья или курица.14. Application according to any one of paragraphs. 1-13, characterized in that the animal is a pig or chicken.
RU2022102371A 2019-07-03 2020-07-02 Conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxicosis RU2812627C2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP19184132.9 2019-07-03

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2022102371A RU2022102371A (en) 2023-08-03
RU2812627C2 true RU2812627C2 (en) 2024-01-30

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007079893A1 (en) * 2005-12-23 2007-07-19 Bayer Technology Services Gmbh Device and method for identifying mycotoxins
CN101413954A (en) * 2008-11-07 2009-04-22 无锡益达生物技术有限公司 Test kit special for enzyme linked immunosorbent assay adsorption of vomitus toxin and preparing and detecting method thereof
KR20120024239A (en) * 2010-09-06 2012-03-14 대한민국(관리부서 : 농림수산식품부 농림수산검역검사본부) Monoclonal antibody specifically binding to deoxynivalenol and the kit for detecting deoxynivalenol comprising thereof

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007079893A1 (en) * 2005-12-23 2007-07-19 Bayer Technology Services Gmbh Device and method for identifying mycotoxins
CN101413954A (en) * 2008-11-07 2009-04-22 无锡益达生物技术有限公司 Test kit special for enzyme linked immunosorbent assay adsorption of vomitus toxin and preparing and detecting method thereof
KR20120024239A (en) * 2010-09-06 2012-03-14 대한민국(관리부서 : 농림수산식품부 농림수산검역검사본부) Monoclonal antibody specifically binding to deoxynivalenol and the kit for detecting deoxynivalenol comprising thereof

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ZHANG XIYA ET AL, One-Step Core/Multishell Quantum Dots-Based Fluoroimmunoassay for Screening of Deoxynivalenol in Maize, 03 April 2018 (2018-04-03), Vol. 11, No. 9, page 2570-2572, DOI: 10.1007/S12161-018-1198-X external link. Р. С. Овчинников и др., МИКОТОКСИНЫ И МИКОТОКСИКОЗЫ ЖИВОТНЫХ - АКТУАЛЬНАЯ ПРОБЛЕМА СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА, РЖ "Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии", 1 (25), 2018, 114-123. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gujral et al. Effect of anti-gliadin IgY antibody on epithelial intestinal integrity and inflammatory response induced by gliadin
BE1011033A6 (en) PHARMACEUTICAL AND / OR FOOD COMPOSITION FOR THE TREATMENT OF CONDITIONS RELATED TO A GRAFT REJECTION, AN ALLERGIC OR AUTOIMMUNE REACTION OR CANCER.
RU2812627C2 (en) Conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxicosis
JP7555363B2 (en) Conjugated deoxynivalenol for protection against mycotoxinosis
EP4267190A1 (en) Conjugated t-2 toxin to protect against mycotoxicosis
CN116940385A (en) Conjugated fumonisins for preventing mycotoxin poisoning
CN116710144A (en) Coupled zearalenone for preventing mycotoxin poisoning
US20240024446A1 (en) Conjugated aflatoxin b to protect against mycotoxicosis
CN116457004A (en) Combination vaccine for protecting pigs from various diseases
Bižanov et al. Adjuvant effect of saponin on the immune responses to bovine serum albumin in hens
Bižanov et al. Experimental immunology Adjuvant effect of saponin on the immune responses to bovine serum albumin in hens