RU2797189C1 - Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе - Google Patents

Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе Download PDF

Info

Publication number
RU2797189C1
RU2797189C1 RU2022111604A RU2022111604A RU2797189C1 RU 2797189 C1 RU2797189 C1 RU 2797189C1 RU 2022111604 A RU2022111604 A RU 2022111604A RU 2022111604 A RU2022111604 A RU 2022111604A RU 2797189 C1 RU2797189 C1 RU 2797189C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
sections
brain
solutions
phosphate buffer
Prior art date
Application number
RU2022111604A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Юрьевич Хорев
Юрий Николаевич Майборода
Светлана Михайловна Безроднова
Оксана Олеговна Кравченко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СтГМУ Минздрава России)
Олег Юрьевич Хорев
Юрий Николаевич Майборода
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СтГМУ Минздрава России), Олег Юрьевич Хорев, Юрий Николаевич Майборода filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СтГМУ Минздрава России)
Application granted granted Critical
Publication of RU2797189C1 publication Critical patent/RU2797189C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области медицины, в частности нейроморфологии, и может быть использовано для выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе у представителей различных видов млекопитающих. Способ включает: усыпление животного, последующую перфузию, фиксацию, получение исследуемых блоков мозга, приготовление срезов, помещение их в красящий раствор, промывание срезов, наслаивание кисточкой на предметное стекло, проведение их через спирты и бальзам. При этом отдельно готовят на дистиллированной воде растворы NaH2PO4×2H2O - 58 мг в 2 л H2O и NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O; фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов 660 мл NaH2PO4 и 340 мл NaOH, при рН=7,2. Затем приготавливают перфузат, состоящий из 5 г NaCl, растворенного в 0,5 л H2O. Добавляют в него 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина, причем температура раствора должна быть 37°С. Далее готовят раствор, состоящий из 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ), растворенной в 4 мл 2% диметилсульфоксида (ДМСО), 0,1 мл которого, с помощью стереотаксического столика, гидравлически, стеклянным градуированным электродом с диаметром кончика 4-6 мкм. Медленно вводят перфузатором в исследуемый объект мозга, который далее хранят в термостате при температуре 18-20°С и через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования. После инъекции ПХ и ДМСО, производят перфузию объекта мозга смесями растворов: 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2. Фиксируют его в этой смеси в течение 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм, помещают их на 40-50 минут в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленный 1:1 дистиллированной водой. Затем осуществляют далее обработку срезов по методике М.М. Mesulam. Изобретение обеспечивает повышение чувствительности анализируемых корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга, локализации нейронов на уровне световой микроскопии.

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности нейроморфологии, может использовано для выявления связей и локализации нейронов в нервной системе у представителей различных видов млекопитающих.
Известна методика выявления топографии нейронов, их связей в периферической и центральной нервной системе, основанная на ретроградном аксональном транспорте экзогенной пероксидазы хрена (ПХ), в базовой основе которой использована классическая методика «Fixation variebles in horseradish peroxidase neurohistochemistry» [M.M. Mesulam, J. Histochem Cytjchem, 1978. - v. 24. - p. 1273-1280]. Суть методики заключается в следующем:
1. Животное усыпляют этаминалом натрия с последующей перфузией и фиксацией.
2. Мозг животного режут на блоки, фиксируют в фиксаторе и помещают в холодильник на 4 часа.
3. Затем отмывают блоки в 30% растворе сахарозы на фосфатном буфере в течение 1-3 суток, со сменой раствора 3 раза, с хранением в холодильнике.
4. Далее готовят срезы толщиной 30-40 мкм на замораживающем микротоме и помещают в ванночки с 30% сахарозой на фосфатном буфере на 30-40 минут в холодильник.
5. Срезы промывают через ряд ванночек с дистиллированной водой и помещают на 20 минут в красящийся раствор, состоящий из двух растворов. Растворы готовят ex tempore: первый раствор - на основе 5 мг тетраметилбензидина в 2 мл абсолютного спирта, а второй раствор - на основе 70 мг нитрапруссида натрия в 5 мл ацетатного буфера. Эти два раствора перед окраской смешивают.
6. Затем к полученному раствору добавляют 1 мл 1% раствора Н2О2 на 3-5 минут, до получения срезами голубоватого оттенка.
7. Срезы промывают через ряд ванночек с ацетатным буфером и кисточкой наслаивают на предметное стекло. Далее предметные стекла подкрашивают нейтральным красным, проводят через спирты и бальзам.
Однако данным исследованием полностью не выявляются гранулы нейронов в центральной нервной системе, т.к. гранулы окрашиваются не полностью.
Поставлена задача повышения чувствительности анализируемых корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга, локализации нейронов на уровне световой микроскопии.
Поставленная задача достигается медленным равномерным введением перфузатором раствора, состоящего из пероксидазы хрена и диметилсульфоксида, стеклянным градуированным микроэлектродом с диаметром кончика 4-6 мкм в исследуемый объект, хранением его в термостате при температуре 18-20°С в течение 24-48 часов, дальнейшей перфузией смеси растворов параформальдегида и глютарадегида на фосфатном буфере, фиксацией исследуемого объекта в этой же смеси, приготовления замороженных срезов и помещения их в раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленном дистиллированной водой.
Способ осуществляют следующим образом.
1. Отдельно готовят растворы:
NaH2PO4x2H2O - 58 мг в 2 л H2O
NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O
2. Готовят фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов: 660 мл NaH2PO4+340 мл NaOH при рН=7,2.
3. Приготавливают перфузат:
NaCl - 5 г растворяют в 0,5 л H2O, добавляют 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина. Температура раствора должна быть 37°С. Все растворы готовят на дистиллированной воде.
4. Далее готовят раствор: 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ) растворяют в 4 мл 2% раствора диметилсульфоксида (ДМСО). С помощью стереотаксического столика гидравлически вводят в объект 0,1 мл приготовленного раствора стеклянным градуированным микроэлектродом диаметром кончика 4-6 мкм.
Перфузатором осуществляют медленное и равномерное введение раствора ПХ+ДМСО в мозг исследуемого объекта, что способствует оптимальному пиноцитозу пероксидазы аксонными терминалями.
Далее исследуемый объект хранят в термостате при температуре 18-20°С.
Через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования, после инъекции ПХ+ДМСО, производят перфузию мозга объекта смесями растворов 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2.
Затем исследуемый мозг объекта, после перфузии, фиксируют в этой же смеси в течении 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм с последующим помещением их в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере на 40-50 минут, который предварительно разбавляют дистиллированной водой 1:1.
Дальнейшую обработку срезов осуществляют согласно методике по M.M. Mesulam(1978):
- Срезы помещают в красящийся раствор на 20 минут. Красящий раствор, состоит из двух растворов, которые готовят ex tempore.
Первый - на основе 5 мг тетраметилбензидина в 2 мл абсолютного спирта, второй - 70 мг нитрапруссида натрия добавляют в 5 мл ацетатного буфера. Перед окраской исследуемых срезов эти растворы смешивают. Затем в красящий раствор, с находящимися в нем срезами, добавляют 1 мл 1% раствора Н2О2 на 3-5 минут, до получения срезами коричневого оттенка. - Далее срезы проводят через 5 ванночек с ацетатным буфером.
- Кисточкой срезы наслаивают на предметное стекло, подкрашивают (на ночь) нейтральным красным и проводят через спирты и бальзам.
Благодаря применению 2% ДМСО выявляют - гранулы фермента интенсивно коричневой окраски в нейронах, что обусловлено увеличением числа сульфгидрильных (SH) групп. ДМСО увеличивает проницаемость клеточной мембраны. Добавление его в раствор фиксатора уменьшает экспозицию объектов исследования. Это имеет немаловажное значение для сохранения активности пероксидазы хрена, поскольку длительное воздействие фиксатора резко ингибирует его. ДМСО увеличивает проницаемость мембранных структур до фиксации, в момент фиксации и после фиксации. Нельзя не учитывать и другой момент. Сродство к ДМСО нервных структур можно трактовать исходя из химической конструкции их молекул, в состав которых входят SH-группы. Молекулы ДМСО вступают во взаимодействие с реагентоспособными группами биологических субстратов, входящих в состав нервной ткани. Благодаря ДМСО, концентрация пероксидазы хрена в аксонах мультиполярных нейронов становится более высокой, что способствует усилению проницаемости клеточной мембраны и тем самым облегчает захват синаптическими бутонами. Существующие методики перерезки на различных уровнях аксонов приводят к тому, что неизбежно рассекаются и находящиеся в этих образованиях транзиторные волокна, что усложняет трактовку результатов исследования нервных путей и их связей.
Предлагаемый способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе, позволяет одновременно изучать морфологию и микротопографию самих релейных нейронов, их дендритные и аксонные ветвления в органах и тканях, а глубокое окрашивание нейронов, и их аксонов, является более чувствительным для изучения корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга на уровне световой микроскопии.
Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе эффективен при исследованиях в области нейроморфологии, патологической анатомии и гистологии, может быть использован в лабораториях медицинских учреждений.

Claims (1)

  1. Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе, включающий усыпление животного, последующую перфузию, фиксацию, получение исследуемых блоков мозга, приготовление срезов, помещение их в красящий раствор, промывание срезов, наслаивание кисточкой на предметное стекло, проведение их через спирты и бальзам, отличающийся тем, что отдельно готовят на дистиллированной воде растворы NaH2PO4×2H2O - 58 мг в 2 л H2O и NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O, фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов 660 мл NaH2PO4 и 340 мл NaOH, при рН=7,2, затем приготавливают перфузат, состоящий из 5 г NaCl, растворенного в 0,5 л H2O, добавляют в него 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина, причем температура раствора должна быть 37°С, далее готовят раствор, состоящий из 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ), растворенной в 4 мл 2% диметилсульфоксида (ДМСО), 0,1 мл которого, с помощью стереотаксического столика, гидравлически, стеклянным градуированным электродом с диаметром кончика 4-6 мкм, медленно вводят перфузатором в исследуемый объект мозга, который далее хранят в термостате при температуре 18-20°С и через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования, после инъекции ПХ и ДМСО, производят перфузию объекта мозга смесями растворов: 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2, фиксируют его в этой смеси в течение 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм, помещают их на 40-50 минут в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленный 1:1 дистиллированной водой, и осуществляют далее обработку срезов по методике М.М. Mesulam (1978).
RU2022111604A 2022-04-27 Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе RU2797189C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2797189C1 true RU2797189C1 (ru) 2023-05-31

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1318839A1 (ru) * 1985-02-27 1987-06-23 Институт Физиологии Им.А.А.Богомольца Способ вы влени нейронов при люминесцентной микроскопии
AT501960A1 (de) * 2004-12-30 2006-12-15 Red Bull Gmbh Verfahren zur identifizierung von neuronalen zellen und astrozyten
RU2666256C2 (ru) * 2016-12-30 2018-09-06 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") Способ одновременного выявления нейронов и астроцитов на гистологических препаратах нервной ткани

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1318839A1 (ru) * 1985-02-27 1987-06-23 Институт Физиологии Им.А.А.Богомольца Способ вы влени нейронов при люминесцентной микроскопии
AT501960A1 (de) * 2004-12-30 2006-12-15 Red Bull Gmbh Verfahren zur identifizierung von neuronalen zellen und astrozyten
RU2666256C2 (ru) * 2016-12-30 2018-09-06 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") Способ одновременного выявления нейронов и астроцитов на гистологических препаратах нервной ткани

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Д.Э. Коржевский и др. ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ ДЛЯ НЕЙРОБИОЛОГИИ. Медицинский академический журнал. Том 19, Выпуск 4, 2019, с. 7-24. Yezierski R.P. et al,, А retrograde label tracing technique using horseradish peroxidase and the fluorescent.- I.Neurosei, Methods, 1981, V. 4, N 1, p. 53-62. M.M. Mesulam, J. Histochem Cytjchem, 1978. v. 24. p. 1273-1280.. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10883903B2 (en) Method for rendering biological material transparent and processing kit for rendering biological material transparent
Furness et al. Aqueous aldehyde (Faglu) methods for the fluorescence histochemical localization of catecholamines and for ultrastructural studies of central nervous tissue
US20210131925A1 (en) Method for making biological material transparent and use thereof
CN108061677B (zh) 用于生物材料的澄清试剂和其用途
Buhl et al. Intracellular lucifer yellow injection in fixed brain slices combined with retrograde tracing, light and electron microscopy
Stewart et al. Structural and histochemical features of the avian blood‐brain barrier
Zhang et al. An improved conductivity method for the measurement of frost hardiness
JP7209799B2 (ja) 神経培養システム
RU2797189C1 (ru) Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе
Altman Neuroanatomical techniques: insect nervous system
Abbott et al. Brain vascular volume, electrolytes and blood‐brain interface in the cuttlefish Sepia officinalis (Cephalopoda).
RU2620559C1 (ru) Способ окрашивания препаратов цельных биологических тканей и органов методом клик-гистохимии (варианты)
Miller et al. Mode of infection and early colonization of slash pine seedlings by Cronartium quercuum f. sp. fusiforme
KR20210155870A (ko) 1 mm 이하 크기 생체 시료의 투명화 전처리 방법 및 이를 포함하는 생체 시료의 투명화 방법
Hendelman et al. Catecholamine neurons of the central nervous system in organotypic culture
US20220287295A1 (en) Use of annelid haemoglobin in vitro
Young Development of pigment in the larva of the sea urchin, Lytechinus variegatus
Al-Mhanawi et al. The effect of adding nano concentrations of hydrogen peroxide to the diluted semen of iraqi local roosters on some laboratory characteristics after cooling and cryopreservation
Gardiner The histology of the cell wall, with special reference to the mode of connexion of cells. preliminary communication
RU2563679C2 (ru) Способ иммуногистохимического окрашивания тотальных препаратов образцов биологических тканей (варианты)
GIACOBINI Value and limitations of quantitative chemical studies in individual cells
Rosenberg The squid giant axon: Methods and applications
CN117063919B (zh) 吡咯喹啉醌在提高精液冷冻效果中的用途
Kisnierienë et al. The effect of aluminium on bioelectrical activity of the Nitellopsis obtusa cell membrane after H+-ATPase inhibition
RU2226275C2 (ru) Способ определения цитотоксического эффекта и ростстимулирующей активности веществ для доклинических испытаний