RU2797189C1 - Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе - Google Patents
Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе Download PDFInfo
- Publication number
- RU2797189C1 RU2797189C1 RU2022111604A RU2022111604A RU2797189C1 RU 2797189 C1 RU2797189 C1 RU 2797189C1 RU 2022111604 A RU2022111604 A RU 2022111604A RU 2022111604 A RU2022111604 A RU 2022111604A RU 2797189 C1 RU2797189 C1 RU 2797189C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- solution
- sections
- brain
- solutions
- phosphate buffer
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относится к области медицины, в частности нейроморфологии, и может быть использовано для выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе у представителей различных видов млекопитающих. Способ включает: усыпление животного, последующую перфузию, фиксацию, получение исследуемых блоков мозга, приготовление срезов, помещение их в красящий раствор, промывание срезов, наслаивание кисточкой на предметное стекло, проведение их через спирты и бальзам. При этом отдельно готовят на дистиллированной воде растворы NaH2PO4×2H2O - 58 мг в 2 л H2O и NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O; фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов 660 мл NaH2PO4 и 340 мл NaOH, при рН=7,2. Затем приготавливают перфузат, состоящий из 5 г NaCl, растворенного в 0,5 л H2O. Добавляют в него 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина, причем температура раствора должна быть 37°С. Далее готовят раствор, состоящий из 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ), растворенной в 4 мл 2% диметилсульфоксида (ДМСО), 0,1 мл которого, с помощью стереотаксического столика, гидравлически, стеклянным градуированным электродом с диаметром кончика 4-6 мкм. Медленно вводят перфузатором в исследуемый объект мозга, который далее хранят в термостате при температуре 18-20°С и через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования. После инъекции ПХ и ДМСО, производят перфузию объекта мозга смесями растворов: 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2. Фиксируют его в этой смеси в течение 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм, помещают их на 40-50 минут в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленный 1:1 дистиллированной водой. Затем осуществляют далее обработку срезов по методике М.М. Mesulam. Изобретение обеспечивает повышение чувствительности анализируемых корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга, локализации нейронов на уровне световой микроскопии.
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности нейроморфологии, может использовано для выявления связей и локализации нейронов в нервной системе у представителей различных видов млекопитающих.
Известна методика выявления топографии нейронов, их связей в периферической и центральной нервной системе, основанная на ретроградном аксональном транспорте экзогенной пероксидазы хрена (ПХ), в базовой основе которой использована классическая методика «Fixation variebles in horseradish peroxidase neurohistochemistry» [M.M. Mesulam, J. Histochem Cytjchem, 1978. - v. 24. - p. 1273-1280]. Суть методики заключается в следующем:
1. Животное усыпляют этаминалом натрия с последующей перфузией и фиксацией.
2. Мозг животного режут на блоки, фиксируют в фиксаторе и помещают в холодильник на 4 часа.
3. Затем отмывают блоки в 30% растворе сахарозы на фосфатном буфере в течение 1-3 суток, со сменой раствора 3 раза, с хранением в холодильнике.
4. Далее готовят срезы толщиной 30-40 мкм на замораживающем микротоме и помещают в ванночки с 30% сахарозой на фосфатном буфере на 30-40 минут в холодильник.
5. Срезы промывают через ряд ванночек с дистиллированной водой и помещают на 20 минут в красящийся раствор, состоящий из двух растворов. Растворы готовят ex tempore: первый раствор - на основе 5 мг тетраметилбензидина в 2 мл абсолютного спирта, а второй раствор - на основе 70 мг нитрапруссида натрия в 5 мл ацетатного буфера. Эти два раствора перед окраской смешивают.
6. Затем к полученному раствору добавляют 1 мл 1% раствора Н2О2 на 3-5 минут, до получения срезами голубоватого оттенка.
7. Срезы промывают через ряд ванночек с ацетатным буфером и кисточкой наслаивают на предметное стекло. Далее предметные стекла подкрашивают нейтральным красным, проводят через спирты и бальзам.
Однако данным исследованием полностью не выявляются гранулы нейронов в центральной нервной системе, т.к. гранулы окрашиваются не полностью.
Поставлена задача повышения чувствительности анализируемых корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга, локализации нейронов на уровне световой микроскопии.
Поставленная задача достигается медленным равномерным введением перфузатором раствора, состоящего из пероксидазы хрена и диметилсульфоксида, стеклянным градуированным микроэлектродом с диаметром кончика 4-6 мкм в исследуемый объект, хранением его в термостате при температуре 18-20°С в течение 24-48 часов, дальнейшей перфузией смеси растворов параформальдегида и глютарадегида на фосфатном буфере, фиксацией исследуемого объекта в этой же смеси, приготовления замороженных срезов и помещения их в раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленном дистиллированной водой.
Способ осуществляют следующим образом.
1. Отдельно готовят растворы:
NaH2PO4x2H2O - 58 мг в 2 л H2O
NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O
2. Готовят фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов: 660 мл NaH2PO4+340 мл NaOH при рН=7,2.
3. Приготавливают перфузат:
NaCl - 5 г растворяют в 0,5 л H2O, добавляют 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина. Температура раствора должна быть 37°С. Все растворы готовят на дистиллированной воде.
4. Далее готовят раствор: 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ) растворяют в 4 мл 2% раствора диметилсульфоксида (ДМСО). С помощью стереотаксического столика гидравлически вводят в объект 0,1 мл приготовленного раствора стеклянным градуированным микроэлектродом диаметром кончика 4-6 мкм.
Перфузатором осуществляют медленное и равномерное введение раствора ПХ+ДМСО в мозг исследуемого объекта, что способствует оптимальному пиноцитозу пероксидазы аксонными терминалями.
Далее исследуемый объект хранят в термостате при температуре 18-20°С.
Через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования, после инъекции ПХ+ДМСО, производят перфузию мозга объекта смесями растворов 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2.
Затем исследуемый мозг объекта, после перфузии, фиксируют в этой же смеси в течении 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм с последующим помещением их в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере на 40-50 минут, который предварительно разбавляют дистиллированной водой 1:1.
Дальнейшую обработку срезов осуществляют согласно методике по M.M. Mesulam(1978):
- Срезы помещают в красящийся раствор на 20 минут. Красящий раствор, состоит из двух растворов, которые готовят ex tempore.
Первый - на основе 5 мг тетраметилбензидина в 2 мл абсолютного спирта, второй - 70 мг нитрапруссида натрия добавляют в 5 мл ацетатного буфера. Перед окраской исследуемых срезов эти растворы смешивают. Затем в красящий раствор, с находящимися в нем срезами, добавляют 1 мл 1% раствора Н2О2 на 3-5 минут, до получения срезами коричневого оттенка. - Далее срезы проводят через 5 ванночек с ацетатным буфером.
- Кисточкой срезы наслаивают на предметное стекло, подкрашивают (на ночь) нейтральным красным и проводят через спирты и бальзам.
Благодаря применению 2% ДМСО выявляют - гранулы фермента интенсивно коричневой окраски в нейронах, что обусловлено увеличением числа сульфгидрильных (SH) групп. ДМСО увеличивает проницаемость клеточной мембраны. Добавление его в раствор фиксатора уменьшает экспозицию объектов исследования. Это имеет немаловажное значение для сохранения активности пероксидазы хрена, поскольку длительное воздействие фиксатора резко ингибирует его. ДМСО увеличивает проницаемость мембранных структур до фиксации, в момент фиксации и после фиксации. Нельзя не учитывать и другой момент. Сродство к ДМСО нервных структур можно трактовать исходя из химической конструкции их молекул, в состав которых входят SH-группы. Молекулы ДМСО вступают во взаимодействие с реагентоспособными группами биологических субстратов, входящих в состав нервной ткани. Благодаря ДМСО, концентрация пероксидазы хрена в аксонах мультиполярных нейронов становится более высокой, что способствует усилению проницаемости клеточной мембраны и тем самым облегчает захват синаптическими бутонами. Существующие методики перерезки на различных уровнях аксонов приводят к тому, что неизбежно рассекаются и находящиеся в этих образованиях транзиторные волокна, что усложняет трактовку результатов исследования нервных путей и их связей.
Предлагаемый способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе, позволяет одновременно изучать морфологию и микротопографию самих релейных нейронов, их дендритные и аксонные ветвления в органах и тканях, а глубокое окрашивание нейронов, и их аксонов, является более чувствительным для изучения корково-корковых и корково-подкорковых связей мозга на уровне световой микроскопии.
Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе эффективен при исследованиях в области нейроморфологии, патологической анатомии и гистологии, может быть использован в лабораториях медицинских учреждений.
Claims (1)
- Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе, включающий усыпление животного, последующую перфузию, фиксацию, получение исследуемых блоков мозга, приготовление срезов, помещение их в красящий раствор, промывание срезов, наслаивание кисточкой на предметное стекло, проведение их через спирты и бальзам, отличающийся тем, что отдельно готовят на дистиллированной воде растворы NaH2PO4×2H2O - 58 мг в 2 л H2O и NaOH - 12,6 г в 0,5 л H2O, фосфатный буфер, состоящий из смеси растворов 660 мл NaH2PO4 и 340 мл NaOH, при рН=7,2, затем приготавливают перфузат, состоящий из 5 г NaCl, растворенного в 0,5 л H2O, добавляют в него 0,4 л полиглюкина и 2,0 г гепарина, причем температура раствора должна быть 37°С, далее готовят раствор, состоящий из 0,5 мг пероксидазы хрена (ПХ), растворенной в 4 мл 2% диметилсульфоксида (ДМСО), 0,1 мл которого, с помощью стереотаксического столика, гидравлически, стеклянным градуированным электродом с диаметром кончика 4-6 мкм, медленно вводят перфузатором в исследуемый объект мозга, который далее хранят в термостате при температуре 18-20°С и через 24-48 часов, в зависимости от объекта исследования, после инъекции ПХ и ДМСО, производят перфузию объекта мозга смесями растворов: 1% параформальдегида и 2,5% глютарадегида на фосфатном буфере при рН 7,2, фиксируют его в этой смеси в течение 4 часов и готовят замороженные срезы толщиной 40 мкм, помещают их на 40-50 минут в 30% раствор сахарозы на фосфатном буфере, предварительно разбавленный 1:1 дистиллированной водой, и осуществляют далее обработку срезов по методике М.М. Mesulam (1978).
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2797189C1 true RU2797189C1 (ru) | 2023-05-31 |
Family
ID=
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1318839A1 (ru) * | 1985-02-27 | 1987-06-23 | Институт Физиологии Им.А.А.Богомольца | Способ вы влени нейронов при люминесцентной микроскопии |
AT501960A1 (de) * | 2004-12-30 | 2006-12-15 | Red Bull Gmbh | Verfahren zur identifizierung von neuronalen zellen und astrozyten |
RU2666256C2 (ru) * | 2016-12-30 | 2018-09-06 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") | Способ одновременного выявления нейронов и астроцитов на гистологических препаратах нервной ткани |
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1318839A1 (ru) * | 1985-02-27 | 1987-06-23 | Институт Физиологии Им.А.А.Богомольца | Способ вы влени нейронов при люминесцентной микроскопии |
AT501960A1 (de) * | 2004-12-30 | 2006-12-15 | Red Bull Gmbh | Verfahren zur identifizierung von neuronalen zellen und astrozyten |
RU2666256C2 (ru) * | 2016-12-30 | 2018-09-06 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") | Способ одновременного выявления нейронов и астроцитов на гистологических препаратах нервной ткани |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Д.Э. Коржевский и др. ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ ДЛЯ НЕЙРОБИОЛОГИИ. Медицинский академический журнал. Том 19, Выпуск 4, 2019, с. 7-24. Yezierski R.P. et al,, А retrograde label tracing technique using horseradish peroxidase and the fluorescent.- I.Neurosei, Methods, 1981, V. 4, N 1, p. 53-62. M.M. Mesulam, J. Histochem Cytjchem, 1978. v. 24. p. 1273-1280.. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10883903B2 (en) | Method for rendering biological material transparent and processing kit for rendering biological material transparent | |
Furness et al. | Aqueous aldehyde (Faglu) methods for the fluorescence histochemical localization of catecholamines and for ultrastructural studies of central nervous tissue | |
US20210131925A1 (en) | Method for making biological material transparent and use thereof | |
CN108061677B (zh) | 用于生物材料的澄清试剂和其用途 | |
Buhl et al. | Intracellular lucifer yellow injection in fixed brain slices combined with retrograde tracing, light and electron microscopy | |
Stewart et al. | Structural and histochemical features of the avian blood‐brain barrier | |
Zhang et al. | An improved conductivity method for the measurement of frost hardiness | |
JP7209799B2 (ja) | 神経培養システム | |
RU2797189C1 (ru) | Способ выявления микротопографии нейронов в центральной нервной системе | |
Altman | Neuroanatomical techniques: insect nervous system | |
Abbott et al. | Brain vascular volume, electrolytes and blood‐brain interface in the cuttlefish Sepia officinalis (Cephalopoda). | |
RU2620559C1 (ru) | Способ окрашивания препаратов цельных биологических тканей и органов методом клик-гистохимии (варианты) | |
Miller et al. | Mode of infection and early colonization of slash pine seedlings by Cronartium quercuum f. sp. fusiforme | |
KR20210155870A (ko) | 1 mm 이하 크기 생체 시료의 투명화 전처리 방법 및 이를 포함하는 생체 시료의 투명화 방법 | |
Hendelman et al. | Catecholamine neurons of the central nervous system in organotypic culture | |
US20220287295A1 (en) | Use of annelid haemoglobin in vitro | |
Young | Development of pigment in the larva of the sea urchin, Lytechinus variegatus | |
Al-Mhanawi et al. | The effect of adding nano concentrations of hydrogen peroxide to the diluted semen of iraqi local roosters on some laboratory characteristics after cooling and cryopreservation | |
Gardiner | The histology of the cell wall, with special reference to the mode of connexion of cells. preliminary communication | |
RU2563679C2 (ru) | Способ иммуногистохимического окрашивания тотальных препаратов образцов биологических тканей (варианты) | |
GIACOBINI | Value and limitations of quantitative chemical studies in individual cells | |
Rosenberg | The squid giant axon: Methods and applications | |
CN117063919B (zh) | 吡咯喹啉醌在提高精液冷冻效果中的用途 | |
Kisnierienë et al. | The effect of aluminium on bioelectrical activity of the Nitellopsis obtusa cell membrane after H+-ATPase inhibition | |
RU2226275C2 (ru) | Способ определения цитотоксического эффекта и ростстимулирующей активности веществ для доклинических испытаний |