RU2762291C1 - Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения - Google Patents

Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения Download PDF

Info

Publication number
RU2762291C1
RU2762291C1 RU2020143359A RU2020143359A RU2762291C1 RU 2762291 C1 RU2762291 C1 RU 2762291C1 RU 2020143359 A RU2020143359 A RU 2020143359A RU 2020143359 A RU2020143359 A RU 2020143359A RU 2762291 C1 RU2762291 C1 RU 2762291C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
reverse transcriptase
sto
protein
seq
sto7d
Prior art date
Application number
RU2020143359A
Other languages
English (en)
Inventor
Игорь Петрович Оскорбин
Евгений Александрович Храпов
Максим Леонидович Филипенко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН)
Priority to RU2020143359A priority Critical patent/RU2762291C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2762291C1 publication Critical patent/RU2762291C1/ru

Links

Images

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • B01D15/26Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
    • B01D15/36Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism involving ionic interaction, e.g. ion-exchange, ion-pair, ion-suppression or ion-exclusion
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к области генетической инженерии, конкретно к биотехнологии. В изобретении раскрыта рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации. Также раскрыт способ получения данной химерной обратной транскриптазы. 2 н.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл., 5 пр.

Description

Группа изобретений относится к области генетической инженерии, конкретно к биотехнологии, и может быть использована для выявления РНК-содержащих вирусов.
Методы ферментативного анализа нуклеиновых кислот являются неотъемлемой частью современных фундаментальных исследований и прикладных дисциплин, включая медицинскую и ветеринарную диагностику. Среди них важное место занимает ферментативный синтез РНК по матрице ДНК, т.е. обратная транскрипция, позволяющая анализировать тотальный набор РНК или отдельные молекулы РНК в разных клеточных образцах. С точки зрения фундаментальных исследований обратная транскрипция даёт возможность перевести РНК в более удобную для анализа и более стабильную форму нуклеиновой кислоты - комплементарную ДНК, кДНК [1]. Анализ кДНК предоставляет информацию о внутриклеточных процессах на уровне транскрипции отдельных генов или генома в целом, а также позволяет детектировать присутствие отдельных молекул РНК. Последнее обстоятельство послужило причиной широкого использования обратной транскрипции в сочетании с различными методами детекции и анализа молекул ДНК, например, ПЦР и секвенирования, в диагностических целях для выявления патогенов, в первую очередь, РНК-содержащих вирусов, по наличию специфических молекул РНК [2,3].
Ключевым компонентом обратной транскрипции являются ферменты, а именно РНК-зависимые ДНК-полимеразы или обратные транскриптазы, способные по матрице РНК синтезировать ДНК. В контексте практического использования обратных транскриптаз большое значение приобретает ряд их ферментативных характеристик, таких как термостабильность, специфический оптимум рабочей температуры, точность, процессивность и устойчивость к ингибиторам. Улучшение этих свойств повышает количество и качество синтезируемой комплементарной ДНК, что облегчает, в свою очередь, последующий анализ кДНК. Так, термостабильность в сочетании с высокой рабочей температурой позволяет проводить обратную транскрипцию в условиях, когда денатурирована вторичная структура РНК, в результате чего увеличивается эффективность обратной транскрипции [4]. Таким образом, удаётся преодолеть проблему анализа РНК со сложной вторичной структурой (в аспекте медицинской диагностики – геномной РНК вирусов), которая с трудом поддаётся конвертации в комплементарную ДНК. Высокие процессивность и точность позволят получать протяжённые фрагменты кДНК с нуклеотидной последовательностью, максимально приближенной к нуклеотидной последовательности анализируемой РНК [5]. Последнее обстоятельство особенно важно в контексте поиска соматических мутаций, в том числе перестроек, затрагивающих протоонкогены, такие как ALK, ROS1 [6,7]. Анализируемые препараты РНК могут содержать ингибирующие примеси, представляющие собой компоненты биоматериала, из которого препарат РНК был выделен, либо реагенты, использовавшиеся при очистке. Устойчивость к ингибиторам позволит повысить надёжность диагностических тестов с использованием обратной транскриптазы за счёт уменьшения вероятности ложноотрицательных результатов, спровоцированных наличием ингибиторов [8].
В настоящее время наиболее часто используются обратные транскриптазы вируса лейкемии птиц (AMV) и вируса лейкемии мышей Молони (M-MuLV). Однако оба эти фермента не полностью отвечают требованиям, выдвигаемым практическими приложениями, а именно высокой термостабильностью, оптимальной рабочей температурой, устойчивостью к ингибиторам, точностью синтеза ДНК, процессивностью [9,10].
Позднее Yasukawa K. с соавторами [11–13] были обнаружены другие аминокислотные замены, которые также приводили к увеличению оптимальной рабочей температуры и термостабильности M-MulV и AMV. Однако и в этом случае эффект также зависел от наличия в реакционной смеси праймированной РНК-матрицы. Аналогичные результаты были получены и с другим набором мутаций в работе Baranauskas A. с соавторами в 2012 г [14]. Основываясь на этих наблюдениях, можно предположить, что одним из основных факторов, влияющих на термостабильность обратной транскриптазы M-MulV, является аффинность фермента к праймированной РНК-матрице.
Увеличение аффинности ферментов к нуклеиновым кислотам можно достичь присоединением дополнительных ДНК- или РНК-связывающих белковых доменов. Ранее этот подход был успешно применён для получения процессивных химерных ДНК-полимераз на основе Pfu-полимеразы, Taq-полимеразы, Bst-полимеразы [15,16]. Кроме того, присоединение дополнительных белковых доменов увеличивает диапазон концентраций моно- и дивалетных катинов, необходимых для реализации ДНК-полимеразной активности [15], и увеличивает устойчивость ДНК-полимераз к действию ингибиторов [16].
Альтернативный подход к созданию обратных транскриптаз с повышенными процессивностью и термостабильностью заключается в использовании мутантных форм термостабильных ДНК-полимераз, способных использовать РНК в качестве матрицы при синтезе ДНК.
Известно, что некоторые природные ДНК-полимеразы, в частности, ДНК-полимераза I из термофильной бактерии Thermus thermophilus (Tth-полимераза), способны синтезировать ДНК по матрице РНК в присутствии ионов марганца [17]. Однако в качестве обратной транскриптазы Tth-полимераза синтезирует сравнительно короткие фрагменты ДНК и поэтому не может быть использована для получения протяженной комплементарной ДНК. С помощью сайт-ненаправленного введения аминокислотных замен на основе ДНК-полимеразы семейства А термофильной бактерии Thermotoga petrophila K4 (K4polL329A, [18]) и ДНК-полимеразы семейства В термофильной археи Thermococcus kodakaraensis (RTX, [19]) были созданы ферменты, способные синтезировать достаточно длинную ДНК по матрице РНК при проведении ОТ-ПЦР (обратной транскрипции с последующей ПЦР) без использования дополнительных ферментов. Тем не менее, нет данных об устойчивости созданных мутантных ферментов к ингибиторам, точности их синтеза. Кроме того, сравнения биохимических характеристик обратных транскриптаз K4polL329A и RTX с наиболее часто используемыми M-MulV и AMV не проводилось.
В настоящее время продолжается поиск новых ферментов, в том числе и из ранее неисследованных в этом отношении таксонов. Так, за последние несколько лет был изучен целый ряд обратных транскриптаз из метагеномов и интронов группы II [20,21]. Вновь открытые ферменты проявляют большую термостабильность, процессивность и точность по сравнению с M-MulV и AMV [20,21]. В частности, обратные транскриптазы, описанные в работах Mohr C. с соавторами и Zhao C. с соавторами, сохраняют ферментативную активность до 81℃ [20] или 50-60℃ [21], обладают высокой точностью и пригодны для анализа микроРНК и приготовления библиотек для секвенирования РНК. Тем не менее, устойчивость этих ферментов к ингибиторам остается неизвестной, равно как и другие их ферментативные характеристики, в том числе наличие терминалтрансферазной активности. Следует отметить, что проведение обратной транскрипции при температуре выше 60-65℃ представляется нецелесообразным, поскольку выигрыш в эффективности синтеза ДНК за счёт разрушения вторичной структуры РНК-матрицы будет нивелирован деградацией РНК-матрицы под действием высокой температуры.
Наиболее близкой к заявляемой группе изобретений – прототипом, является рекомбинантная обратная транскриптаза (РОТ) M-MuLV с пятью аминокислотными заменами, отличающаяся повышенной термостабильностью, и способ её получения, включающий следующие стадии. С помощью ПЦР нарабатывали нуклеотидную последовательность, кодирующую обратную транскриптазу M-MuLV без РНКазного домена с аминокислотной заменой D542N, после чего вносили в неё случайные нуклеотидные замены с помощью набора GeneMorph® Random Mutagenesis Kit. Полученную библиотеку нуклеотидных последовательностей клонировали в плазмиду для наработки белков в клетках E. coli и нарабатывали мутантные обратные транскриптазы, которые скринировали на наличие специфической активности при 55°С. Варианты мутантных обратных транскриптаз, показавших наибольшую термостабильность, секвенировали и вносили в них нуклеотидные замены по специческим позициям. Полученную библиотеку нуклеотидных последовательностей клонировали в плазмиду для наработки белков в клетках E. coli, нарабатывали мутантные обратные транскриптазы, которые скринировали на наличие специфической активности при 55°С. Варианты мутантных обратных транскриптаз, показавших наибольшую термостабильность, секвенировали. Аминокислотные замены, обеспечивавшие наибольшую термостабильность, объединяли в одной последовательности, используя QuikChange® Multi Site-Directed Mutagenesis Kit [22]. Полученная РОТ M-MuLV с аминокислотными заменами E69K, E302R, W313F, L435G, N454K обладала повышенной аффинностью к РНК-матрице, оптимумом рабочей температуры и устойчивостью к ингибиторам.
Недостатками известной мутантной обратной транскриптазы M-MuLV являются недостаточная процессивность и устойчивость к ингибиторам амплификации. Кроме этого, увеличение термостабильности последней было отмечено только в присутствии праймированной РНК-матрицы.
Недостатками способа получения M-MuLV являются трудоемкость и длительность стадий, связанных с необходимостью скрининга множества аминокислотных замен в M-MuLV на предмет их влияния на эффективность обратной транскрипции и устойчивость фермента к ингибиторам.
Задачей изобретения является разработка нового способа получения химерной обратной транкриптазы, обладающей повышенной процессивностю и устойчивостью к ингибиторам амплификации.
Технический результат: повышение процессивности и устойчивости химерной обратной транскриптазы к ингибиторам амплификации, а также уменьшение трудоемкости и длительности способа ее получения.
Поставленная задача достигается заявляемой химерной обратной транкриптазой, имеющей молекулярную массу 66,1 кДа, содержащей кодирующую последовательность ДНК-связывающего белка Sto7d термофильной археи Sulfolobus tokodaii, аминокислотную замену K12L в Sto7d.
Поставленная задача достигается также предлагаемым способом получения химерной обратной транкриптазы путём присоединения к С-концу обратной транкриптазы вируса лейкемии мышей Молони ДНК-связывающего белка Sto7d из археи Sulfolobus tokodaii, заключающегося в следующем.
С помощью ПЦР в кодирующую последовательность ДНК-связывающего белка Sto7d термофильной археи Sulfolobus tokodaii вводят мутацию AA>ТТ для замены остатка лизина-12 на лейцин, в результате чего в белке Sto7d инактивируется РНКазная активность. К 3’-концу кодирующей последовательности обратной транскриптазы M-MuLV присоединяют посредством перекрывающейся ПЦР кодирующую последовательность белка Sto7d. Между кодирующими последовательностями белков помещают нуклеотидную последовательность (SEQ ID NO: 1), кодирующую гибкий пептидный линкер Гли-Тре-Гли-Гли-Гли-Гли.
Полученный посредством ПЦР сборный фрагмент ДНК, имеющий нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 2, кодирующую химерную обратную транскриптазу, далее именуемую химерная RT-Sto, клонируют рестриктазно-лигазным методом в вектор для экспрессии в E. coli pET23b с использованием рестриктаз NdeI, NotI. Соответствие клонированной нуклеотидной последовательности плазмиды pET23b-RT-Sto теоретически ожидаемой было подтверждено секвенированием по Сэнгеру. Карта генетической конструкции pET23b-RT-Sto представлена на фиг.1, где:
T7 – промотор РНК-полимеразы фага Т7
RT-Sto – нуклеотидная последовательность, кодирующая белок RT-Sto
Linker - нуклеотидная последовательность, кодирующая гибкий пептидный линкер Гли-Тре-Гли-Гли-Гли-Гли
Sto7d - нуклеотидная последовательность, кодирующая белок Sto7d
AA -> TT Lys ->Leu – нуклеотидная замена, приводящая к аминокислотной замене Lys на Leu
His tag – нуклеотидная последовательность, кодирующая гистидиновый гексапептид
T7 terminator - терминатор РНК-полимеразы фага Т7
f1 origin – ориджин фага F1
bla (Ap) sequence - ген бета-лактамазы
ColE1 pBR322 origin – ориджин плазмиды pBR322
Химерную обратную транскриптазу RT-Sto нарабатывали в клетках E. coli штамма BL21 (DE3) pLysS. Синтез рекомбинантного белка индуцировали с помощью изопропил-β-D-тиогалактозида, наработку рекомбинантного белка проводили в течение 4 часов при 37°С. Рекомбинантную химерную RT-Sto очищали с помощью последовательных хроматографий: металл-хелатной на Ni-NTA-сорбенте и ионообменной на сорбенте HighQ, после чего химерную RT-Sto переводили в буфер для хранения с помощью диализа.
Химерная обратная транскриптаза RT-Sto имеет аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 3, кодирующая последовательность SEQ ID NO: 2 которой находится в плазмиде pET23b-RT-Sto, имеющей нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 4, представленную в перечне последовательностей.
Для лучшего понимания сущности предлагаемых изобретений, они иллюстрируются следующими примерами осуществления.
Пример 1
Конструирование плазмиды pET23b-RT-Sto.
С помощью ПЦР синтезировали кодирующую последовательность обратной транскриптазы M-MuLV без РНКазного домена, используя праймеры (RT-F 5’-TATGGCTAGCCTAAATATAGAAGATGAGCATCGGC-3’ и RT-R 5’- ACCGCCACCGCCGGTACCATCAAGGCAGTTGTGTTGC-3’) и комплементарную ДНК вируса M-MuLV в качестве матрицы. Далее с помощью ПЦР синтезировали кодирующую последовательность белка Sto7d с нуклеотидными заменами AA>ТТ (Sto-F 5’- GGTACCGGCGGTGGCGGTGTAACAGTAAAGTTCAAGTATAA -3’ и Sto-R 5’-GATGATGCGGCCGCTTTTTCTAACATTTGTAGTAATTCTT-3’). В качестве матрицы для наработки мутантной кодирующей последовательности Sto7d использовали ранее полученную плазмиду pET-Sto-Gss [16]. Наработанные кодирующие фрагменты ДНК были соединены с помощью ПЦР с праймерами RT-F, Sto-R. Объединённый фрагмент и вектор pET23b (Novagen, США) гидролизовали эндонуклеазами рестрикции FauNDI и CciNI (Сибэнзим, Россия). Гидролизованные фрагмент и вектор лигировали с помощью ДНК-лигазы фага Т4 (Биосан, Россия), трансформировали реакционной смесью после лигирования компетентные клетки E. coli штамма BL21 (DE3) pLysS и распределяли клетки по чашке Петри со средой LB, содержавшей ампициллин (100 мкг/мл). Колонии-трансформанты скрининровали на предмет наличия вставки с помощью праймеров RT-F, Sto-R, соответствие нуклеотидной последовательности вставки теоретически ожидаемой оценивали с помощью секвенирования по Сенгеру (ЦКП «Геномика» ИХБФМ СО РАН). Плазмиду со вставкой, соответствующей теоретически ожидаемой (pET23b-RT-Sto), очищали с помощью щелочного лизиса и хранили при -20 °С до момента использования. Физическая карта плазмиды pET23b-RT-Sto, имеющей нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 4, приведена на фиг. 1.
Пример 2
Получение штамма E. coli - продуцента рекомбинантной химерной обратной транскриптазы RT-Sto.
Рекомбинантную химерную обратную транскриптазу RT-Sto нарабатывали в клетках E. coli штамма BL21 (DE3) pLysS. Для этого трансформировали плазмидой pET23b-RT-Sto компетентные клетки E. coli штамма BL21 (DE3) pLysS и распределяли клетки по чашке Петри со средой LB, содержавшей ампициллин (100 мкг/мл) и хлорамфеникол (34,5 мкг/мл). Инкубировали чашки Петри при 37°С в течение ночи. На следующий день готовили стартовую культуру. Для этого инокулировали одной колонией пробирку с 2 мл среды LB, содержавшей ампициллин (100 мкг/мл) и хлорамфеникол (34,5 мкг/мл), инкубировали пробирку в течение 5 часов при 37°С и помешивании со скоростью 200 об/мин до достижения оптической плотности при 600 нМ 1,0. Переносили стартовую культуру в колбу на 1 л с 200 мл среды LB, содержавшей ампициллин (100 мкг/мл) и хлорамфеникол (34,5 мкг/мл), инкубировали колбу в течение 4 часов при 37°С и помешивании со скоростью 200 об/мин до достижения оптической плотности при 600 нМ 1,0. По достижению указанной оптической плотности индуцировали синтез RT-Sto с помощью изопропил-β-D-тиогалактозида, добавляя к 200 мл культуры 2 мл 1 М изопропил-β-D-тиогалактозида. После добавления изопропил-β-D-тиогалактозида продолжали инкубацию в течение 4 часов в тех же условиях. По завершению времени инкубации собирали клетки центрифугированием при 4°С и 6000×g в течение 15 мин, клеточный осадок хранили при -70 °С до моемента выделения RT-Sto.
Пример 3
Выделение и очистка рекомбинантной химерной обратной транскриптазы RT-Sto из клеток-продуцентов E. coli.
Рекомбинантную химерную RT-Sto очищали с помощью последовательных хроматографий: металл-хелатной на Ni-NTA-сорбенте и ионообменной на сорбенте HighQ, после чего химерную RT-Sto переводили в буфер для хранения с помощью диализа. Хроматографию проводили на хроматографе BioLogic LP (Bio-Rad Laboratories, Inc, США), снабженном оптической и кондуктометрической ячейками. Оптическую плотность и электропроводность в элюате визуализировали при помощи программы BioLogicTM LP Data ViewTM Software (Bio-Rad Laboratories, Inc, США). Все растворы подавали на колонку со скоростью 1 мл/мин.
Аффинную хроматографию проводили на колонке, заполненной 5 мл сорбента Profinity IMAC Resin (Bio-Rad Laboratories, Inc, США), которую перед использованием уравновешивали 25 мл буфера А (50 мМ Tris-HCl pH 7,5, 50 мМ NaCl). После уравновешивания колонки подготавливали белковый препарат для очистки. Биомассу после препаративной экспрессии рекомбинантного белка ресуспендировали в буфере А для хроматографии (в соотношении 10 мл буфера на 1 г биомассы) и лизировали клетки обработкой ультразвуком. Растворимую белковую фракцию отделяли центрифугированием в течение 15 мин при 14000×g.
Подготовленный к очистке белковый препарат наносили на колонку, после чего колонку промывали 25 мл буфера А для хроматографии. Рекомбинантные белки элюировали буфером B (50 мМ Tris-HCl pH 7,5, 50 мМ NaCl, 0,5 М имидазол) для хроматографии. Элюат собирали фракциями, время сбора фракции – 1 мин, объем фракции – 1 мл. Все фракции, полученные в ходе очистки, анализировали с помощью гель-электрофореза в денатурирующих условиях по Лэммли.
Ионообменную хроматографию проводили на колонке, заполненной 5 мл сорбента 2 мл сорбента HighQ (Bio-Rad Laboratories, Inc, США), перед использованием уравновешивали 50 мл буфера E для хроматографии.
На подготовленную колонку наносили препарат химерной RT-Sto, очищенный с помощью аффинной хроматографии, и промывали колонку 20 мл буфера С (50 мМ Tris-HCl pH 7,5, 50 мМ NaCl). Рекомбинантные белки элюировали буфером D (50 мМ Tris-HCl pH 7,5, 1 М NaCl) для хроматографии. Элюат собирали фракциями, время сбора фракции - 1 мин, объем фракции - 1 мл. Все фракции анализировали с помощью гель-электрофореза в денатурирующих условиях по Лэммли.
Фракции, содержавшие химерную RT-Sto, объединяли и переносили в диализный мешок (Sigma-Aldrich, США), после чего помещали в 1 литр буфера для хранения (100 мМ Трис-HCl рН 7,5, 300 мМ NaCl, 0,2 мМ ЭДТА, 1 мМ ДТТ, 55% глицерин) и оставляли на 12-14 часов при +4℃ и постоянном помешивании. По окончании диализа препараты белков из диализного мешка анализировали с помощью гель-электрофореза в денатурирующих условиях по Лэммли и оценивали их концентрацию по методу Брэдфорд. Далее препараты белков делили на аликвоты по 500 мкл каждая и хранили при -20℃.
Пример 4
Оценка специфической активности и процессивности химерной обратной транскриптазы RT-Sto.
Специфическую активность препарата химерной RT-Sto оценивали по включению дезокситимидин трифосфата, меченного 32P, в полирибоаденозин монофосфат. За одну единицу специфической активности принимали количество ферменте, необходимое для включения 1 наномоля дезокситимидин трифосфата в кислотонерастворимый материал за 10 минут при 37°С. Активность очищенной химерной RT-Sto составила 1,18*104 е.а. на мг белка.
Процессивность химерной RT-Sto оценивали по элонгации праймера, меченного на 5’-конце флуорофором. Праймер был комплементарен геномной ДНК фага лямбда, в качестве матрицы использовали геномную ДНК фага лямбда либо искусственно наработанную РНК, идентичную по последовательности соответствующей цепи ДНК фага лямбда. Длину продуктов элонгации оценивали с помощью капиллярного гель-элетрофореза. Процессивность определяли согласно формуле: П = [[(1×И(1)]+[(2×(И(2)]+…+[(н)×(И(н))])/[И(1)+И(2)+…+И(н)]], где П - процессивность, И −  площадь под пиком, н  − количество включённых в праймер нуклеотидов. Процессивность обратной транскриптазы M-MuLV RT (прототип) и химерной RT-Sto представлена в таблице 1.
Таблица 1
Фермент Процессивность, нт
РНК-матрица ДНК-матрица
M-MuLV RT 78±2 17±3
RT-Sto mut 677±6 287±6
Из данных, представленных в таблице 1, следует, что заявляемая химерная RT-Sto обладает повышенной в 8 раз процессивностью по матрице РНК, и в 17 раз - по матрице ДНК, по сравнению с исходным ферментом.
Пример 5
Оценка устойчивости к ингибиторам амплификации рекомбинантной обратной транскриптазы M-MuLV RT (прототип) и химерной обратной транскриптазы RT-Sto.
Устойчивость ферментов к ингибиторам синтеза ДНК оценивали по способности проводить обратную транскрипцию в присутствии различных субстанций: цельной крови и плазмы крови человека, NaCl, формамида, фенола, гуанидина изотиоцианата и гуанидина хлорида. Для этого проводили обратную транскрипцию по матрице тотальной РНК из ядерных клеток крови человека, полученной от 5 здоровых доноров. В реакционную смесь обратной транскрипции добавляли разное количество ингибитора, после чего проводили реакцию и оценивали количество наработанной кДНК с помощью ПЦР в режимер реального времени. В качестве меры степени ингибирования использовали показатель IC50 (концентрацию полумаксимального ингибирования), который рассчитывался как количество ингибитора, необходимое для снижения количества продукта напловину от уровня пробы без ингибитора.
Результаты проведения обратной траскрипции с помощью обратной транскриптазы M-MuLV и химерной RT-Sto в присутствии ингибиторов амплификации представлены на фиг. 2. На фиг. 2 приведены показатели IC50 разных ингибиторов синтеза РНК, полученные при добавлении ингибиторов в реакционные смеси обратной транскрипции с исходной обратной транскриптазой M-MuLV и химерной RT-Sto. На фиг. 2 приведены показатели IC50 инигибиторов амплификации в обратной транкрипции с обратными транкриптазами M-MuLV и RT-Sto, выраженные в объемных процентах, а на фиг. 3 – показатели IC50 инигибиторов амплификации в обратной транкрипции с обратными транкриптазами M-MuLV и RT-Sto, выраженные в мМ.
Из данных, представленных на фиг. 2 и фиг. 3 следует, что устойчивость химерной RT-Sto возросла ко всем ингибиторам: цельной крови и плазмы крови человека, NaCl, формамида, фенола, гуанидина изотиоцианата и гуанидина хлорида.
Таким образом, предлагаемая химерная обратная транскриптаза RT-Sto, полученная путём присоединения ДНК-связывающего белка Sto7d из археи Sulfolobus tokodaii обладает повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации и может с успехом использоваться в медицинских диагностических тестах, основанных на использовании обратных транскриптаз.
Источники информации
1. Bayega A. et al. Current and future methods for mRNA analysis: A drive toward single molecule sequencing // Methods in Molecular Biology. Humana Press Inc., 2018. Vol. 1783. P. 209–241.
2. Zhou B. et al. Multiplex reverse transcription-PCR for simultaneous surveillance of influenza A and B viruses // J. Clin. Microbiol. American Society for Microbiology, 2017. Vol. 55, № 12. P. 3492–3501.
3. Burchard P.R. et al. A rapid RT-PCR assay for the detection of HIV-1 in human plasma specimens // Exp. Mol. Pathol. Academic Press Inc., 2014. Vol. 97, № 1. P. 111–115.
4. Malboeuf C.M. et al. Thermal Effects on Reverse Transcription: Improvement of Accuracy and Processivity in cDNA Synthesis // Biotechniques. 2001. Vol. 30, № 5. P. 1074–1084.
5. Zhao C., Liu F., Pyle A.M. An ultraprocessive, accurate reverse transcriptase encoded by a metazoan group II intron // RNA. 2018. Vol. 24, № 2. P. 183–195.
6. Davies K.D., Doebele R.C. Molecular pathways: ROS1 fusion proteins in cancer // Clin. Cancer Res. American Association for Cancer Research Inc., 2013. Vol. 19, № 15. P. 4040–4045.
7. Kozuma Y., Toyokawa G., Seto T. ALK testing methods: is there a winner or loser? // Expert Review of Anticancer Therapy. Taylor and Francis Ltd, 2019. Vol. 19, № 3. P. 237–244.
8. Arezi B., McCarthy M., Hogrefe H. Mutant of Moloney murine leukemia virus reverse transcriptase exhibits higher resistance to common RT-qPCR inhibitors // Anal. Biochem. 2010. Vol. 400, № 2. P. 301–303.
9. Gerard G.F. et al. The role of template-primer in protection of reverse transcriptase from thermal inactivation // Nucleic Acids Res. Oxford University Press, 2002. Vol. 30, № 14. P. 3118.
10. Harrison G.P. et al. Pausing of reverse transcriptase on retroviral RNA templates is influenced by secondary structures both 5’ and 3’ of the catalytic site // Nucleic Acids Res. 1998. Vol. 26, № 14. P. 3433–3442.
11. Yasukawa K. et al. Increase in thermal stability of Moloney murine leukaemia virus reverse transcriptase by site-directed mutagenesis // J. Biotechnol. 2010. Vol. 150, № 3. P. 299–306.
12. Konishi A., Yasukawa K., Inouye K. Improving the thermal stability of avian myeloblastosis virus reverse transcriptase α-subunit by site-directed mutagenesis // Biotechnol. Lett. 2012. Vol. 34, № 7. P. 1209–1215.
13. Okano H. et al. High sensitive RNA detection by one-step RT-PCR using the genetically engineered variant of DNA polymerase with reverse transcriptase activity from hyperthermophilies // J. Biosci. Bioeng. 2018. Vol. 125, № 3. P. 275–281.
14. Baranauskas A. et al. Generation and characterization of new highly thermostable and processive M-MuLV reverse transcriptase variants // Protein Eng. Des. Sel. 2012. Vol. 25, № 10. P. 657–668.
15. Wang Y. et al. A novel strategy to engineer DNA polymerases for enhanced processivity and improved performance in vitro. // Nucleic Acids Res. 2004. Vol. 32, № 3. P. 1197–1207.
16. Oscorbin I.P. et al. Derivatives of Bst-like Gss-polymerase with improved processivity and inhibitor tolerance // Nucleic Acids Res. 2017. Vol. 45, № 16.
17. Katcher H.L., Schwartz I. A distinctive property of Tth DNA polymerase: Enzymatic amplification in the presence of phenol // Biotechniques. 1994. Vol. 16, № 1. P. 84–92.
18. Sano S. et al. Mutations to create thermostable reverse transcriptase with bacterial family A DNA polymerase from Thermotoga petrophila K4 // J. Biosci. Bioeng. 2012. Vol. 113, № 3. P. 315–321.
19. Ellefson J.W. et al. Synthetic evolutionary origin of a proofreading reverse transcriptase // Science (80-. ). 2016. Vol. 352, № 6293.
20. Mohr S. et al. Thermostable group II intron reverse transcriptase fusion proteins and their use in cDNA synthesis and next-generation RNA sequencing // RNA. 2013. Vol. 19, № 7. P. 958–970.
21. Zhao C., Liu F., Pyle A.M. An ultraprocessive, accurate reverse transcriptase encoded by a metazoan group II intron // RNA. 2018. Vol. 24, № 2. P. 183–195.
22. Arezi B., Hogrefe H. Novel mutations in Moloney Murine Leukemia Virus reverse transcriptase increase thermostability through tighter binding to template-primer. // Nucleic Acids Res. 2009. Vol. 37, № 2. P. 473–481.

Claims (2)

1. Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, имеющая молекулярную массу 66,1 кДа, содержащая кодирующую последовательность ДНК-связывающего белка Sto7d термофильной археи Sulfolobus tokodaii, аминокислотную замену K12L в Sto7d, имеющая аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 3, кодируемую нуклеотидной последовательностью SEQ ID NO: 2, представленные в перечне последовательностей.
2. Способ получения рекомбинантной химерной обратной транскриптазы по п.1, включающий направленный мутагенез с помощью ПЦР, клонирование с помощью рестриктазно-лигазного метода, наработку рекомбинантного белка в клетках E. coli с последующей очисткой рекомбинантного белка с помощью хроматографических методов, отличающийся тем, что в кодирующую последовательность белка Sto7d вводят нуклеотидную замену AA>ТТ, присоединяют кодирующую последовательность белка Sto7d к 3’-концу кодирующей последовательности обратной транскриптазы вируса M-MuLV, затем между кодирующими последовательностями белков помещают нуклеотидную последовательность с SEQ ID NO: 1, кодирующую гибкий пептидный линкер Гли-Тре-Гли-Гли-Гли-Гли, полученный сборный фрагмент ДНК, представленный в SEQ ID NO: 2, клонируют в вектор для экспрессии pET23b, сконструированной плазмидой pET23b-RT-Sto, представленной в SEQ ID NO: 4, трансформируют клетки E. coli штамма BL21 (DE3) pLysS, наработанную рекомбинантную химерную обратную транскриптазу очищают сначала с помощью металл-хелатной хроматографии на Ni-NTA-сорбенте, а затем с помощью ионообменной хроматографии на сорбенте HighQ, после чего целевой фермент переводят в буфер для хранения с помощью диализа.
RU2020143359A 2020-12-28 2020-12-28 Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения RU2762291C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020143359A RU2762291C1 (ru) 2020-12-28 2020-12-28 Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020143359A RU2762291C1 (ru) 2020-12-28 2020-12-28 Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2762291C1 true RU2762291C1 (ru) 2021-12-17

Family

ID=79175315

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020143359A RU2762291C1 (ru) 2020-12-28 2020-12-28 Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2762291C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN116004564A (zh) * 2022-06-01 2023-04-25 北京擎科生物科技有限公司 逆转录突变体及其应用

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ARMENTANO D. et al., Effect of internal viral sequences on the utility of retroviral vectors, Journal of Virology, 1987, Vol.61, N5, pp.1647-1650. *
MOHR S. et al., Thermostable group II intron reverse transcriptase fusion proteins and their use in cDNA synthesis and next-generation RNA sequencing, RNA, 2013, Vol.19, N7, pp.958-70. *
SCHONBRUNNE N.J. et al., Chimeric Thermostable DNA Polymerases with Reverse Transcriptase and Attenuated 3‘−5‘ Exonuclease Activity, Biochemistry, 2006, Vol.45, N42, pp.12786-12795. *
SCHONBRUNNE N.J. et al., Chimeric Thermostable DNA Polymerases with Reverse Transcriptase and Attenuated 3‘−5‘ Exonuclease Activity, Biochemistry, 2006, Vol.45, N42, pp.12786-12795. STAMOS J.L et al., Structure of a Thermostable Group II Intron Reverse Transcriptase with Template-Primer and Its Functional and Evolutionary Implications, Mol Cell, 2017, Vol.68, N5, pp.926-939. ZHAO C. et al., An ultraprocessive, accurate reverse transcriptase encoded by a metazoan group II intron, RNA, 2018, Vol.24, N2, 183-195. MOHR S. et al., Thermostable group II intron reverse transcriptase fusion proteins and their use in cDNA synthesis and next-generation RNA sequencing, RNA, 2013, Vol.19, N7, pp.958-70. ЛУКЬЯНОВ К.А. и др., Метод получения нормализованных библиотек кДНК, основанный на эффекте супрессии полимеразной цепной реакции, БИООРГАНИЧЕСКАЯ ХИМИЯ, 1996, т.22, н.9, стр.686-690. ARMENTANO D. et al., Effect of internal viral sequences on the utility of retroviral vectors, Journal of Virology, *
STAMOS J.L et al., Structure of a Thermostable Group II Intron Reverse Transcriptase with Template-Primer and Its Functional and Evolutionary Implications, Mol Cell, 2017, Vol.68, N5, pp.926-939. *
ZHAO C. et al., An ultraprocessive, accurate reverse transcriptase encoded by a metazoan group II intron, RNA, 2018, Vol.24, N2, 183-195. *
ЛУКЬЯНОВ К.А. и др., Метод получения нормализованных библиотек кДНК, основанный на эффекте супрессии полимеразной цепной реакции, БИООРГАНИЧЕСКАЯ ХИМИЯ, 1996, т.22, н.9, стр.686-690. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN116004564A (zh) * 2022-06-01 2023-04-25 北京擎科生物科技有限公司 逆转录突变体及其应用
CN116004564B (zh) * 2022-06-01 2023-08-18 北京擎科生物科技股份有限公司 逆转录突变体及其应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6150847B2 (ja) キメラdnaポリメラーゼ
US7488816B2 (en) Methods for obtaining thermostable enzymes, DNA polymerase I variants from Thermus aquaticus having new catalytic activities, methods for obtaining the same, and applications of the same
JP4689163B2 (ja) 改良型ポリメラーゼの使用方法
CN103492559B (zh) 具有改进活性的dna聚合酶
JP2015171384A (ja) 改変a型dnaポリメラーゼ
KR102880295B1 (ko) Rna로부터의 핵산 증폭반응에 적합한 dna 폴리머라아제 돌연변이체
JP3112148B2 (ja) 核酸の増幅方法およびその試薬
JP2019512217A (ja) エキソヌクレアーゼ欠損ポリメラーゼ
US7803596B2 (en) Enzyme derived from thermophilic organisms that functions as a chromosomal replicase, and preparation and uses thereof
CN103687943B (zh) 具有改进活性的dna聚合酶
WO2017090684A1 (ja) Dnaポリメラーゼ変異体
CN116042569A (zh) Mmlv逆转录酶突变体及其应用
KR20080031255A (ko) 변이형 pcna
RU2762291C1 (ru) Рекомбинантная химерная обратная транскриптаза, обладающая повышенной процессивностью и устойчивостью к ингибиторам амплификации, и способ ее получения
JP6720632B2 (ja) 融合タンパク質
SG186325A1 (en) Dna polymerases with increased 3'-mismatch discrimination
WO2021127848A1 (zh) 嵌合dna聚合酶及其应用
WO1998045452A2 (en) Enzyme derived from thermophilic organisms that functions as a chromosomal replicase, and preparation and uses thereof
WO2019002178A1 (en) DNA MUTANTS THERMOPHILIC POLYMERASES
JPH07298879A (ja) 超好熱始原菌由来のdnaポリメラーゼ遺伝子およびその用途
CN120457200A (zh) Dna聚合酶变体
JP5707705B2 (ja) 新規な核酸合成用組成物
JP6416885B2 (ja) 高温で活性なhivタイプ1グループo逆転写酵素
WO2024138419A1 (zh) 具有dna聚合酶活性的多肽及其应用
WO2025166644A1 (zh) 多核苷酸激酶突变体及其应用