RU2695525C1 - Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида - Google Patents

Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида Download PDF

Info

Publication number
RU2695525C1
RU2695525C1 RU2018124577A RU2018124577A RU2695525C1 RU 2695525 C1 RU2695525 C1 RU 2695525C1 RU 2018124577 A RU2018124577 A RU 2018124577A RU 2018124577 A RU2018124577 A RU 2018124577A RU 2695525 C1 RU2695525 C1 RU 2695525C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
pseudotuberculosis
wells
serotype
monoclonal antibodies
side chains
Prior art date
Application number
RU2018124577A
Other languages
English (en)
Inventor
Любовь Геннадьевна Дудина
Андрей Анатольевич Бывалов
Екатерина Александровна Мартинсон
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Вятский государственный университет" (ВятГУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Вятский государственный университет" (ВятГУ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Вятский государственный университет" (ВятГУ)
Priority to RU2018124577A priority Critical patent/RU2695525C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2695525C1 publication Critical patent/RU2695525C1/ru

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/577Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor involving monoclonal antibodies binding reaction mechanisms characterised by the use of monoclonal antibodies; monoclonal antibodies per se are classified with their corresponding antigens

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицинской микробиологии, а именно к способам обнаружения и идентификации псевдотуберкулезного микроба. Раскрыт способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза I серотипа, включающий сенсибилизацию лунок микропланшета кроличьими поликлональными антителами против Y. pseudotuberculosis, блокирование с помощью бычьего сывороточного альбумина, последовательное внесение исследуемой пробы, специфических моноклональных антител мыши против Y. pseudotuberculosis, конъюгата антимышиных антител с пероксидазой хрена, субстрата О-фенилендиамина и дальнейшее измерение оптической плотности при длине волны 492 нм, где положительным результатом для исследуемых проб является такой, когда оптическая плотность в опытных лунках превышает таковую в лунках с отрицательным контролем не менее чем на 0,15 единиц. При этом в качестве антител для сенсибилизации лунок планшета используют иммуноглобулины из поликлональной антисыворотки к инактивированным формальдегидом клеткам Y pseudotuberculosis I серотипа, выращенным при температуре 10 °С, а в качестве специфических моноклональных антител против Y. pseudotuberculosis используют моноклональные антитела к О-боковым цепям липополисахарида Y. pseudotuberculosis I серотипа. Изобретение обеспечивает высокую чувствительность и специфичность выявления псевдотуберкулезного микроба I серотипа. 2 табл.

Description

Изобретение относится к медицинской микробиологии, а именно к способам обнаружения и идентификации псевдотуберкулезного микроба, в том числе выявления обсемененности бактериями Yersinia pseudotuberculosis (Y. pseudotuberculosis) эпидемиологически значимых объектов.
На территории Российской федерации порядка 93÷98% от числа выделенных штаммов Y. pseudotuberculosis относятся к I сероварианту [Псевдотуберкулез / Г.П. Сомов [и др.]. М.: Медицина, 2001. - 256 с], поэтому актуальным является разработка диагностикума, направленного на выявление возбудителя именно этого серотипа.
Традиционно для диагностики псевдотуберкулеза используется бактериологический метод, который отличается трудоемкостью и длительностью исследования материала. В литературных источниках также имеется информация о различных иммунохимических методах идентификации псевдотуберкулезного микроба.
Так, известен диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный иммуноглобулиновый, основанный на использовании иммуноглобулинов класса G, выделенных из поликлональной псевдотуберкулезной агглютинирующей сыворотки. Диагностикум предназначен для выявления антигенов Y. pseudotuberculosis в сыворотке крови больных. Набор позволяет выявлять клетки Y. pseudotuberculosis в концентрации 800 тыс.м.к./мл, при этом, по данным авторов, отсутствуют перекрестные реакции с антигенами возбудителей дизентерии, сальмонелеза основных групп и кишечного иерсиниоза [Дулатова М.В., Антонов B.C., Головачева С.Н. и др. Опыт применения иммуноглобулинового эритроцитарного препарата для ранней лабораторной диагностики псевдотуберкулеза // Журн. микробиол. - 1992. - №4. - С. 55-57]. Диагностикум не проверялся на наличие перекрестных реакций с антигенами возбудителя чумы, наиболее близкородственного с псевдотуберкулезным микробом. Также при клинических испытаниях доля неспецифических реакций составила 15%. Данный диагностикум не проходил государственной сертификации.
Известен диагностикум латексный иммуноглобулиновый жидкий производства НИИ вакцин и сывороток, г. Санкт-Петербург [Шпилюк Г.Ф., Головешкина Т.Н., Володина И.Н. и др. Иммуноглобулиновые латексные препараты для экспресс-диагностики иерсиниозов // Журн. микробиол. - 1993. - №6. - С.92-93]. Этот набор является сертифицированным и разрешенным к применению для выявления возбудителя псевдотуберкулеза. Диагностикум основан на применении иммуноглобулинов класса G из поликлональной агглютинирующей сыворотки, полученной к Y. pseudotuberculosis I серотипа. Препарат позволяет выявлять псевдотуберкулезный микроб в копрофильтратах путем реакции агглютинации латекса (РАЛ) на стекле. При этом диагностикуму присущи такие недостатки как невысокая чувствительность и относительно невысокая специфичность, что связано с использованием поливалентной сыворотки, а также высокая стоимость.
Известен также способ идентификации Y. pseudotuberculosis - диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный моноклональный [патент на изобретение RU 2377308. Диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный моноклониальный // Бывалов А.А., Елагин Г.Д., Печенкин Д.В. МПК С12Р 21/08, G01N 33/554. Заявка №2008120443/13, 22.05.2008. Опубл. 27.12.2009 в бюл. №36]. Данный диагностикум основан на использовании формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизированных моноклональными антителами (МКАт). МКАт, использованные в этом диагностикуме являются специфичными в отношении липополисахарида, выделенного из клеток Y. pseudotuberculosis серотипа I. Набор предназначен для проведения реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) и позволяет выявлять клетки псевдотуберкулезного микроба в концентрации 500 тыс.м.к./мл. При этом отсутствуют перекрестные реакции с клетками Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Escherichia coli в концентрации 100 млн м.к./мл. Большая специфичность анализа достигается за счет применения моноклональных антител. Недостатком диагностикума является относительно невысокая воспроизводимость анализа, определяемая нестандартностью отдельных серий носителя антител - эритроцитов барана.
Также известна иммунохроматографическая моноклональная тест-система для выявления Y. pseudotuberculosis [Н.В. Богачева, Г.Д. Елагин и др. Разработка иммунохроматографической моноклональной тест-системы для выявления Yersinia pseudotuberculosis серогруппы I // Пробл. особо опасных инф. - 2016. - №2. - С. 65-68.]. В диагностикуме использованы нитроцеллюлозные мембраны с нанесенными на них моноклональными антителами, полученными к «холодовому» липополисахариду псевдотуберкулезного микроба. Полученная тест-система показала свою специфичность в отношении псевдотуберкулезного микроба серогруппы I, не выявляя Y. pseudotuberculosis II серогруппы, а также Y. pestis, Y. enterocolitica и Е. coli в концентрации 100 млн. м.к./мл. Чуствительность диагностикума находится в пределах 500 тыс.м.к./мл до 4 млн. м.к./мл. Также тест-система позволяет быстро проводить анализ, время постановки анализа составляет 15 минут. Недостатками тест-системы являются трудоемкость способа изготовления, относительно высокая себестоимость анализа и субъективность оценки результатов при концентрациях микробных клеток в образцах, близких к пороговым значениям.
Ближайшим аналогом (прототипом) заявляемого решения является способ, описанный в работах [Feodorova V.A., Sfmalija J.G., Devdariani Z.L. Heat-stable serogroup-specific proteins of Yersinia pseudotuberculosis // Journal of Medical Microbiology. - 2003. - Vol.52. - P. 1-7; Федорова В.А. и др. Моноклональные антитела для изучения роли антигенов белковой природы в серотипировании бактерий Yersinia pseudotuberculosis // Молекул, генетика. - 2001. - №3. - С. 28-35]. Данная методика, используемая для серотипирования Y. pseudotuberculosis, основана на использовании поликлональных и моноклональных антител к белковым эпитопам возбудителя в сэндвич-варианте иммуноферментного анализа (ИФА). В процессе выполнения методики дно лунки планшета сенсибилизируют иммуногобулинами, выделенными из поликлональной сыворотки, полученной путем иммунизации кроликов бактериями Y. pseudotuberculosis I-VI сероваров. После стадий отмывки и блокировки лунок 1%-ным раствором бычьего сывороточного альбумина (БСА) в них добавлялась суспензия бактериальных клеток в концентрации 1×109 м.к./мл. Лунки отмывались, после чего проводили инкубацию с меченными пероксидазой хрена моноклональными антителами, полученными авторами. После инкубации и отмывки в лунки добавлялся субстрат, содержащий 2,2'-азинобис-(3-этилбензтиазолин-6-сульфоновой кислоты), после инкубации с которым проводили измерение оптической плотности при длине волны 405 нм. Благодаря набору моноклональных антител, взаимодействующих с белковыми эпитопами, специфичными для различных серогрупп псевдотуберкулезного микроба, возможно проведение его серотипирования, а также дифференциации Y. pseudotuberculosis от других патогенных иерсиний. Недостатком данного метода является то, что методика направлена главным образом на серотипирование возбудителя псевдотуберкулеза с использованием бактериальных суспензий с высокой концентрацией клеток (1×109 м.к./мл), а не на его обнаружение и идентификацию. Сведений о чувствительности анализа авторами не представлено.
Рассмотренные тест-системы характеризуются либо невысокой чувствительностью выявления Y. pseudotuberculosis, либо высокой трудоемкостью изготовления и стоимостью одного анализа, либо относительно низкой воспроизводимостью, либо субъективностью учета результатов анализа.
Технический результат заключается в разработке иммуноферментного способа выявления возбудителя псевдотуберкулеза с высокой чувствительностью и специфичностью.
Достигается технический результат тем, что в заявляемом способе, включающем сенсибилизацию лунок планшета кроличьими поликлональными антипсевдотуберкулезными антителами, блокирование с помощью бычьего сывороточного альбумина, последовательное внесение исследуемой пробы, специфических моноклональных антител мыши, антимышиного иммунопероксидазного конъюгата, субстрата О-фенилендиамина, используют в качестве антител-сенситина иммуноглобулинов из поликлональной антисыворотки к инактивированным формальдегидом клеткам Y. pseudotuberculosis I серотипа, выращенным при температуре 10°С, а в качестве вторых антител используют моноклональных антител к О-боковым цепям липополисахарида Y. pseudotuberculosis I серотипа.
Используемые высокоспецифичные моноклональные антитела МКАт2 к О-боковым цепям липополисахарида Y. pseudotuberculosis, полученные с использованием ранее полученной гибридомы, характеризуются стабильными антителопродуцирующими и пролиферативными свойствами [Бывалов А.А., Дудина Л.Г. и др. Исследование поверхностных антигенных эпитопов Yersinia pseudotuberculosis с помощью моноклональных антител // Прикладная биохимия и микробиология. - 2014. - Т. 50. - №2. - С. 203-210.]. Тест-система предназначена для выявления возбудителя псевдотуберкулеза в пробах (смывы с объектов окружающей среды, копрофильтраты), предварительно прошедших «холодовое» обогащение в жидкой питательной среде на основе солянокислотного гидролизата казеина в течение 3 суток при температуре 8-12°C. Названное условие определяется психрофильностью Y. pseudotuberculosis, которая выражается в том числе резким повышением продукции О-боковых цепей липополисахарида при понижении температуры культивирования, что обеспечивает высокие чувствительность и специфичность иммуноферментного выявления возбудителя с помощью МКАт2.
Способ включает в себя:
1. Получение иммуноспецифических реагентов.
2. Постановку анализа.
1. Получение иммуноспецифических реагентов.
А. Получение асцитной жидкости, содержащей моноклональные антитела.
Гибридомы были получены способом, описанным в работе [Бывалов А.А., Дудина Л.Г. и др. Исследование поверхностных антигенных эпитопов Yersinia pseudotuberculosis с помощью моноклональных антител // Прикладная биохимия и микробиология. - 2014. - Т. 50. - №2. - С. 203-210.] и хранились до использования в жидком азоте. Культуру гибридом, продуцирующую МКАт2, вводят внутрибрюшинным способом мышам линии BALB/c в дозе 2-5 млн живых клеток на одно животное. Через 9-12 сут. у мышей с развитым асцитом после цервикальной дислокации брюшную полость промывают 5 мл фосфатного буферного раствора (ФБР), отсасывают содержимое брюшной полости, центрифугируют. Полученную надосадочную жидкость фильтруют через бумажный фильтр. Ее контролируют по показателю специфической активности в ИФА с использованием в качестве сенситина липополисахарида бактерий Y. pseudotuberculosis, выращенных при температуре 10°С. Асцитная жидкость признается кондиционной при ее титре в ИФА не ниже 1:51200.
Б. Получение поликлональной сыворотки.
В качестве первичных антител, адсорбируемых на дно лунок полистиролового планшета, использовали иммуноглобулины, выделенные из поликлональной кроличьей сыворотки. Поликлональные антитела получали путем гипериммунизации кроликов породы «Шиншилла», включающей трехкратное, с интервалом в один месяц, подкожное введение суспензии инактивированных формальдегидом бактерий Y. pseudotuberculosis I серотипа, выращенных при температуре 10°С, в нарастающих дозах: ~0.5⋅109, 1.0⋅109, 3.0⋅109 м.к. соответственно. В качестве адъюванта использовали неполный адъювант Фрейнда. Забор крови для получения сыворотки производили через 10 суток после заключительной инъекции. Сыворотка признается кондиционной, если ее титр в ИФА, проводимом как и в контроле асцитной жидкости, не ниже 1:12800.
В. Выделение иммуноглобулинов.
К асцитной жидкости, содержащей МКАт2, добавляли насыщенный раствор сульфата аммоний в объемном соотношении 1:1. Выдерживали смесь при комнатной температуре в течение 40 минут. Образовавшийся осадок отделяли при 5000 g в течение 15 минут на центрифуге Universal 320 R (Hettich, Германия). Осадок растворяли в забуференном физиологическом растворе (ЗФР), рН 7.3, в объеме, равном объему надосадочной жидкости. К полученному раствору, содержащему антитела, добавляли насыщенный раствор сульфата аммония в объемном соотношении 1.5:1, выдерживали смесь при комнатной температуре в течение 40 минут. Образовавшийся осадок, содержащий иммуноглобулины, после центрифугирования (5000 g, 15 минут) ресуспендировали в ФБР. Антитела из кроличьей поликлональной сыворотки выделяли аналогичным методом.
У полученных препаратов иммуноглобулинов определяли содержание белка по Лоури и иммунохимическую активность в ИФА, используя в качестве сенситина лунок планшета препарат липополисахарида, выделенный из культуры бактерий Y. pseudotuberculosis серотипа I, выращенных при температуре 10°С.
2. Постановка анализа.
Сенсибилизацию лунок 96-луночного полистиролового планшета осуществляли 100 мкл разведенных в карбонат-бикарбонатном буфере, рН 9.5, поликлональных кроличьих иммуноглобулинов в концентрации 5 мкг/мл, которые выдерживали в лунках планшета в течение ночи при комнатной температуре. После инкубации лунки трижды отмывали 250 мкл буфера для разведения и отмывки (ЗФР, рН 7.3, содержащий 0.05% Твин-20), после чего вносили 250 мкл буфера для блокировки (1% БСА в буфере для разведения и отмывки). Планшет выдерживался на термошейкере при температуре 37°С и 250 встряхиваниях/мин в течение одного часа. Затем блокирующий буфер удаляли, в лунки приливали 250 мкл буфера для разведения и отмывки, выдерживали планшет 30 минут при комнатной температуре, после чего буфер удаляли.
Исследуемые образцы микробных культур разводили в буфере для разведения и отмывки. В лунки вносили по 100 мкл исследуемых образцов. На этой стадии в лунки, служащие отрицательным контролем, вносили по 100 мкл буфера для разведения и отмывки. Планшет инкубировали 1 час при температуре 37°С на термошейкере при 250 встряхиваниях/мин. После инкубации лунки четырежды отмывали 250 мкл буфера для разведения и отмывки. Затем в лунки добавляли по 100 мкл раствора иммуноглобулинов МКАт2 в разведении 1:2000 в буфере для разведения и отмывки, выдерживали в течение 1.5 часов при температуре 37°С на термошейкере при 250 встряхиваний/мин, после чего лунки четырежды отмывали 250 мкл буфера для разведения и отмывки. После этого в лунки вносили конъюгат антимышиных антител с пероксидазой хрена (Anti-Mous IgG (Fab specific) - Peroxidase antibody produced in goat, Sigma aldrich (США)), в рабочем разведении (1:2000) в буфере для разведения и отмывки, с добавлением 0.5% БСА, инкубировали 1 час при температуре 37°С на термошейкере при 250 встряхиваниях/ мин и затем четырежды отмывали описанным выше способом. В чистой стеклянной посуде готовили раствор субстрата, растворяя навеску ортофенилендиамина, требуемую для получения концентрации 0.04%, в буфере для приготовления субстрата (0.05% перекиси водорода в цитрат-фосфатном буфере, рН 4.8). В лунки вносили по 100 мкл раствора субстрата и выдерживали в течение 30 минут при комнатной температуре в защищенном от света месте. Для остановки реакции в каждую лунку добавляли по 50 мкл 1 н раствора серной кислоты. Измерение оптической плотности осуществляли при длине волны 492 нм. Положительным результатом для исследуемых проб считали такой, когда оптическая плотность в опытных лунках превышала таковую в лунках с отрицательным контролем не менее чем на 0.15 единиц.
Возможность осуществления заявляемого изобретения показана следующим примером.
В соответствии с изложенной выше процедурой осуществления заявляемого способа были приготовлены три серии иммуноферментной моноклональной тест-системы, результаты оценки чувствительности и специфичности которой представлены ниже.
Для определения специфичности тест-системы использовали бактерии нескольких видов энтеробактерий, включая генетически наиболее близкие псевдотуберкулезному микробу Yersinia pestis и Yersinia enterocolitica. Анализ проводили описанным выше методом ИФА. Результаты представлены в таблице 1.
Представленные в таблице 1 данные, свидетельствуют о высокой специфичности ИФА на основе приготовленных серий тест-системы. Ни в одном из опытов не было зарегистрировано положительного сигнала при анализе всех бактериальных культур, взятых в концентрации 100 млн м.к./мл.
Результаты лабораторного изучения чувствительности тест-системы представлены в таблице 2.
Как видно из приведенных в таблице 2 данных, чувствительность тест-системы была не ниже 400 тыс.м.к./мл и ~1000 тыс.м.к./мл для культур, выращенных при температурах 10 и 37°С соответственно.
Таким образом, иммуноферментная тест-система, основанная на использовании моноклональных антител к О-боковым цепям липополисахарида (МКАт2) в качестве вторых антител является видоспецифической и высокочувствительной для выявления возбудителя псевдотуберкулеза.
Figure 00000001
Figure 00000002
Примечание. В качестве антигена использовали разводки суспензии клеток Y. pseudotuberculosis 1b (штамм депонирован в коллекции ФКУЗ РосНИИПЧИ «Микроб», кат. №474), выращенных на плотной питательной среде на основе БТН-агара («Биотехновация», Россия).

Claims (1)

  1. Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза I серотипа на основе моноклональных антител к О-боковым цепям липополисахарида, включающий сенсибилизацию лунок микропланшета кроличьими поликлональными антителами против Y. pseudotuberculosis, блокирование с помощью бычьего сывороточного альбумина, последовательное внесение исследуемой пробы, специфических моноклональных антител мыши против Y. pseudotuberculosis, конъюгата антимышиных антител с пероксидазой хрена, субстрата О-фенилендиамина, отличающийся использованием в качестве антител для сенсибилизации лунок планшета иммуноглобулинов из поликлональной антисыворотки к инактивированным формальдегидом клеткам Y pseudotuberculosis I серотипа, выращенным при температуре 10°С, а в качестве специфических моноклональных антител против Y. pseudotuberculosis - моноклональных антител к О-боковым цепям липополисахарида Y. pseudotuberculosis I серотипа, измерение оптической плотности при длине волны 492 нм, положительным результатом для исследуемых проб является такой, когда оптическая плотность в опытных лунках превышает таковую в лунках с отрицательным контролем не менее чем на 0,15 единиц.
RU2018124577A 2018-07-04 2018-07-04 Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида RU2695525C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018124577A RU2695525C1 (ru) 2018-07-04 2018-07-04 Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018124577A RU2695525C1 (ru) 2018-07-04 2018-07-04 Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2695525C1 true RU2695525C1 (ru) 2019-07-23

Family

ID=67512212

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018124577A RU2695525C1 (ru) 2018-07-04 2018-07-04 Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2695525C1 (ru)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2377308C1 (ru) * 2008-05-22 2009-12-27 Федеральное государственное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации" Диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный моноклональный

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2377308C1 (ru) * 2008-05-22 2009-12-27 Федеральное государственное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации" Диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный моноклональный

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FEDOROVA V.A. et al. Heat-stable serogroup-specific proteins of Yersinia pseudotuberculosis // Journal of Medical Microbiology, 2003, V.52, pp.389-395. *
БЫВАЛОВ А.А. и др. ИММУНОХИМИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ Б-АНТИГЕНА YERSINIA PSEUDOTUBERCULOSIS // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, 2015, N 2, стр.32-38. *
БЫВАЛОВ А.А. и др. ИССЛЕДОВАНИЕ ПОВЕРХНОСТНЫХ АНТИГЕННЫХ ЭПИТОПОВ Yersinia pseudotuberculosis C ПОМОЩЬЮ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ // Прикладная биохимия и микробиология, 2014, Т.50, N 2, стр.203-210. *
БЫВАЛОВ А.А. и др. ИССЛЕДОВАНИЕ ПОВЕРХНОСТНЫХ АНТИГЕННЫХ ЭПИТОПОВ Yersinia pseudotuberculosis C ПОМОЩЬЮ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ // Прикладная биохимия и микробиология, 2014, Т.50, N 2, стр.203-210. БЫВАЛОВ А.А. и др. ИММУНОХИМИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ Б-АНТИГЕНА YERSINIA PSEUDOTUBERCULOSIS // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, 2015, N 2, стр.32-38. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10550175B2 (en) Mycoplasma pneumoniae immunological detection method and kit
Luk et al. Rapid and sensitive detection of Salmonella (0: 6, 7) by immunomagnetic monoclonal antibody-based assays
JPH03504412A (ja) カンピロバクター・ピロリの高分子型細胞関連蛋白の調製法とカンピロバクター・ピロリ感染の血清学的検出のための用法
US20230357372A1 (en) Immunological detection method and kit for mycoplasma pneumoniae
Adams et al. The gp135 of caprine arthritis encephalitis virus affords greater sensitivity than the p28 in immunodiffusion serology
US20180002407A1 (en) Immunological detection method and kit for mycoplasma pneumoniae
Devi et al. A new serum hydatid antigen detection test for diagnosis of cystic echinococcosis
Barbuddhe et al. Immunodetection of bacteria causing brucellosis
Ren et al. A brief review of diagnosis of small ruminants brucellosis
Dharakul et al. Rapid identification of Burkholderia pseudomallei in blood cultures by latex agglutination using lipopolysaccharide-specific monoclonal antibody.
Boraker et al. BrucELISA: an enzyme-antibody immunoassay for detection of Brucella abortus antibodies in milk: correlation with the Brucella ring test and with shedding of viable organisms
RU2695525C1 (ru) Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида
US11307202B1 (en) Antibody binding detection method for detecting MERS-CoV
US6489148B1 (en) Immunoassay for equine protozoal myeloencephalitis in horses
US20030092086A1 (en) Method for detecting streptococcus sobrinus and antibody therefor
KR101894489B1 (ko) Igm 반정량적 렙토스피라증 진단 키트
NO317151B1 (no) Pavisning av antistoffproduksjon
KR102124258B1 (ko) 신속 면역크로마토그래피법을 이용한 황색 포도알균 장독소 b 진단·탐지 키트 및 이를 위한 특이항체와 항체생산세포주
US20010026922A1 (en) Method of diagnosing Crohn's disease
Wienecka et al. Detection of Giardia antigen in stool samples by a semi-quantitative enzyme immunoassay (EIA) test
Lehman Immunodiagnosis of Infectious Diseases
RU2794855C1 (ru) Способ диагностики туберкулеза
JP4022005B2 (ja) 簡易抗体検査方法及び検査用キット
Wongratanacheewin et al. Retrospective study on the diagnostic value of IgG ELISA, dot immunoassay and indirect hemagglutination in septicemic melioidosis
Sathar et al. Detection of Entamoeba histolytica immunoglobulins G and M to plasma membrane antigen by enzyme-linked immunosorbent assay