RU2690498C1 - Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека - Google Patents

Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека Download PDF

Info

Publication number
RU2690498C1
RU2690498C1 RU2018118201A RU2018118201A RU2690498C1 RU 2690498 C1 RU2690498 C1 RU 2690498C1 RU 2018118201 A RU2018118201 A RU 2018118201A RU 2018118201 A RU2018118201 A RU 2018118201A RU 2690498 C1 RU2690498 C1 RU 2690498C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
protein
differentiation
ipsc
cells
medium
Prior art date
Application number
RU2018118201A
Other languages
English (en)
Inventor
Дмитрий Вадимович Гольдштейн
Михаил Александрович Пальцев
Сергей Львович Киселев
Константин Никитич Ярыгин
Татьяна Борисовна Бухарова
Дарья Дмитриевна Наместникова
Олег Владимирович Махнач
Диана Ирековна Салихова
Анна Сергеевна Ефремова
Ирина Александровна Федюнина
Георгий Евгеньевич Леонов
Тимур Хайсамудинович Фатхудинов
Андрей Витальевич Макаров
Лариса Петровна Некрасова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр"
Priority to RU2018118201A priority Critical patent/RU2690498C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2690498C1 publication Critical patent/RU2690498C1/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/48Reproductive organs
    • A61K35/54Ovaries; Ova; Ovules; Embryos; Foetal cells; Germ cells
    • A61K35/545Embryonic stem cells; Pluripotent stem cells; Induced pluripotent stem cells; Uncharacterised stem cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к способу получения белково-пептидной композиции с ноотропными свойствами и включает в себя: забор биоптата кожи, получение культуры фибробластов, криоконсервацию культуры фибробластов, размораживание культуры фибробластов, репрограммирование фибробластов для получения индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК), культивирование ИПСК, криоконсервацию ИПСК, размораживание ИПСК, нейрональную дифференцировку ИПСК, получение белково-пептидного комплекса. Получение белково-пептидного комплекса таким способом позволяет избежать иммунологических конфликтов, развитие которых возможно при использовании пептидных композиций ксеногенного происхождения, полученных из тканей мозга свиней, овец и других животных. Кроме того, использование клеточных культур человека позволит получить белково-пептидную композицию, содержащую белки и пептиды с молекулярной массой до 100 кДа, в которую будут включены не только небольшие пептиды, но и полноразмерные белковые нейрональные ростовые и дифференцировочные факторы. Эффективность действия таких факторов заведомо выше, чем у коротких пептидов, а иммуногенность отсутствует. Использование ИПСК в качестве источника получения белково-пептидной композиции позволяет решить проблему дефицита донорского материала и этические вопросы, возникающие при применении для аналогичных целей эмбрионального материала и культур эмбриональных стволовых клеток человека. 3 ил., 4 пр.

Description

В современной медицине нейропептидные лекарственные препараты нашли широкое применение для лечения целого ряда нейродегенеративных заболеваний различного генеза. Препараты представляют собой композицию биологически-активных полипептидов, полученных из тканей головного мозга млекопитающих и обладающих ноотропной и нейрометаболической активностью. Различия в протоколах позволяют получить препараты, обогащенные различными белковыми факторами [Патент (RU 2477637)], которые отличаются по источнику сырья, срокам гестации при заборе, молекулярным массам входящих в него белково-полипептидных фракций, их качественному составу, по эволюционно закрепленным в онтогенезе концентрационным соотношениям белков роста, факторов дифференцировки и сигнальных молекул, по способу применения (парентерально, интратекально, интраназально, субконъюктивально), по безопасности применения (отсутствие токсических, мутагенных, канцерогенных и аллергизирующих свойств), по биологической и фармакологической активности и ее специфичности (ткане- и органоспецифичная, репаративно-регенеративная). В экспериментальных и клинических исследованиях было показано, что такие препараты обладают мультимодальным действием и обеспечивают:
- метаболическую регуляцию - препараты повышают эффективность аэробного энергетического метаболизма мозга, улучшают внутриклеточный синтез белка в развивающемся и стареющем головном мозге;
- нейропротекторное действие - препараты защищают нейроны от повреждающего действия лактацидоза, предотвращают образование свободных радикалов и предотвращают гибель нейронов в условиях гипоксии и ишемии, снижают повреждающее нейротоксическое действие глутамата;
- нейротрофическую активность - препараты оказывают действие аналогичное действию естественных факторов нейронального роста (NGF);
- функциональную нейромодуляцию - препараты оказывают положительное влияние при нарушениях познавательных функций, улучшают концентрацию внимания, процессы запоминания.
К таким препаратам относятся: церебролизин - продукт обработки мозга интактных свиней - средство для лечения болезни Альцгеймера, геморрагического и ишемического инсультов, деменции различного генеза, хронической цереброваскулярной недостаточности, травматических повреждениий головного и спинного мозга фирмы «Ebewe» (Австрия) [РЛС, 2010]; цереброкурин - продукт обработки мозга эмбрионов животных - лекарственное средство при заболеваниях, сопровождающихся нарушением функций центральной нервной системы, фирмы ООО «НИР» (Украина) [РЛС, 2010]; кортексин - препарат полипептидной природы, получаемый путем экстракции из коры головного мозга крупного рогатого скота и свиней, фирмы ООО «Герофарм» (Россия) [РЛС, 2010], обладающий ноотропным, церебропротекторным, противосудорожным и антиоксидантным действием; церебролизат - препарат, повышающий устойчивость ткани головного мозга к интоксикации, гипоксии, гипогликемии, механической травме, фирмы «Микроген» НПО ФГУП (Пммунопрепарат) [РЛС, 2010], обладающий ноотропным действием, представляющий собой гидролизат коры головного мозга крупного рогатого скота.
В целом препараты пептидной природы обладают высокой эффективностью в малых и сверхмалых дозах (физиологическая активность пептидов во много раз превышает активность обычных химических соединений), не вызывают побочных эффектов, легко выводятся из организма без образования токсических продуктов, изменения в биохимических процессах организма, вызванные пептидами, физиологичны и безопасны для человека.
Нейропротекторное и трофическое действие данных препаратов осуществляется за счет специфических пептидов и аминокислот, молекулярной массы не выше 10 кДа, из которых доминирующими и определяющими свойства препарата являются аланин, лейцин и лизин. Наиболее известным и хорошо изученным препаратом группы является церебролизин. Препарат предназначен для внутримышечного, внутривенного введения и обладает невысокой концентрацией биологически активных компонентов, поэтому вводится в организм больного в значительных дозах длительное время [РЛС, 2014]. Разнородность входящих в препарат пептидов (по молекулярной массе, формуле и свойствам) не позволяет с определенностью связать положительные эффекты препарата с конкретной составляющей субстанцией. Действие церебролизина проявляется, прежде всего, преимущественным его влиянием на выраженность очагового неврологического дефекта. Вместе с тем изолированное назначение церебролизина, например, при исходно тяжелых инсультах, сопровождающихся не только очаговой, но и общемозговой симптоматикой, признаками отека мозга, часто оказывается недостаточно эффективным и требует совместного его применения с другими противоишемическими препаратами. Кроме того, выявлена сильная зависимость эффективности церебролизина от адекватности выбранной дозы. Бесконтрольное избыточное повышение дозы церебролизина часто оказывает негативное влияние на темпы и выраженность восстановительных процессов. Таким образом, основными недостатками препарата являются значительная продолжительность курса лечения, низкая активность и специфичность препарата в связи со слабым нейропротективным действием, обладая и низким регенеративным потенциалом для нервной ткани [Кайсарбекова, 2010, РЛС, 2014].
Основная причина, ограничивающая эффективность и безопасность всех существующих нейропептидных препаратов, полученных из головного мозга млекопитающих - это их ксеногенное происхождение. При выделении нейропептидов из тканей головного мозга животных для снижения их иммуногенности (антигенных свойств) прибегают к кислотному или ферментативному гидролизу белков и высокомолекулярных полипептидов, тем самым уменьшая количество нейротрофических факторов белковой и полипептидной природы [Хабриева. У., 2005]. Пептидный препарат, полученный таким способом, содержит денатурированные продукты кислотного гидролиза белков и полипептидов с нарушенной четвертичной и третичной структурой, что снижает его специфичность и биологическую активность, повышает его иммуногенность, вызывая аллергические реакции при применении.
Для решения данной проблемы нами предложено получать белково-пептидную композицию с выраженными ноотропными свойствами из нейрональных и глиальных клеток, полученных путем направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) человека. Видовая специфичность используемых клеточных культур позволит избежать иммунологических конфликтов, развитие которых возможно при использовании пептидных композиций ксеногенного происхождения, полученных из тканей мозга свиней, овец и других животных. Кроме того, использование клеточных культур человека позволит получить белково-пептидную композицию содержащую белки и пептиды с молекулярной массой до 100 кДа, в которую будут включены не только небольшие пептиды, но и полноразмерные белковые нейрональные ростовые и дифференцировочные факторы. Эффективность действия таких факторов заведомо выше, чем у коротких пептидов, а иммуногенность отсутствует. Использование ИПСК в качестве источника получения белково-пептидной композиции позволяет решить проблему дефицита донорского материала и этические вопросы, возникающие при применении для аналогичных целей эмбрионального материала и культур эмбриональных стволовых клеток человека.
Таким образом, нами к рассмотрению предложен способ получения белково-пептидной композиции с ноотропными свойствами, включающий: забор биоптата кожи, получение культуры фибробластов, криоконсервацию культуры фибробластов, размораживание культуры фибробластов, адаптирование культуры фибробластов к xeno free условиям, репрограммирование фибробластов для получения индуцированных плюрипатентных стволовых клеток (ИПСК), культивирование ИПСК, криоконсервацию ИПСК, размораживание ИПСК, нейрональную дифференцировку ИПСК, получение белково-пептидного комплекса, где для проведения нейрональной дифференцировки ИПСК культивируют на чашках Петри в среде Е8 до 80-90% монослоя, при этом на первом этапе дифференцировки используют нейрональную среду №1 (Н-1) состоящую из DMEM/F12, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, 1% добавки N2, Noggin 20-80 нг/мл, SB431542 5-12 мкМ, дорсоморфин 2-6 мкМ (или LDN193189 0,1-3 мкМ), на втором этапе дифференцировки используют нейрональную среду №2 (Н-2) состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, FGF2 5-20 нг/мл, Purmorphamine 1-10 мкМ, на третьем этапе дифференцировки используют нейрональную среду №3 (Н-3) состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, смеси незаменимых аминокислот 1%, аскорбиновой кислоты 200 мкМ, BDNF 10-20 нг/мл, а для получения белково-пептидного комплекса культуру нейронов и глиальных клеток, полученных методом нейрональной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека, поэтапно гомогенизируют в буферном растворе, с одновременной экстракцией в присутствии обратимых ингибиторов протеолиза и неионных детергентов при рН не менее 5,3 и не выше 8,3 с последующим центрифугированием; полученный супернатант фильтруют; фильтрат подвергают ионообменной хроматографии с сепарацией связавшихся белков, сбор целевых фракций подвижной фазой начинают при значении ионной силы 0,175 ммоль/л, увеличивая ее постепенно или ступенчато с шагом 0,035 ммоль/л до значения ионной силы 0,22 ммоль/л, полученные фракции объединяют и подвергают стерилизующей фильтрации.
Получение ИПСК является простой и отработанной задачей, несмотря на то, что экспериментальные исследования проводятся только последние 10 лет. Характеристика и стандартизация культур ИПСК стала возможной благодаря открытию ряда транскрипционных факторов, которые являются уникальными для плюрипотентного состояния. К ним относятся, как минимум, 4 гена - Oct-4, Sox2, с-Мус и Klf4, которые способны трансформировать фибробласты в плюрипотентное состояние.
Помимо этого, известен следующий набор транскрипционных факторов: Oct4, Sox2, Nanog и Lin28 [Yu J. et al., 2007]. Исследования данных факторов дали возможность получения ИПСК, как от различных млекопитающих [Li W. et al., 2009, Liu H. et al., 2008, Kwon D.-J. et al., 2013]; так и из различных типов клеток [Aasen Т. et al., 2008, Aoi 2008, Lagarkova M.A. et al., 2010], и что самое важное для настоящей задачи - нейрональных клеток [Eminli S. et al. 2008], что говорит об универсальных механизмах репрограммирования соматических клеток до плюрипотентного состояния.
Для характеристики нейрональной дифференцировки известны такие маркеры, как nestin совместно с Sox2, ядерный белок нервных клеток NeuN, β-тубулин III, ассоциированный с микротрубочками белок МАР2, белки нейрофиламентов, нейрон- специфическая енолаза, синаптофизин и связанная с полисиаловой кислотой молекула адгезии нервных клеток (PSA-NCAM), кислый глиальный фибриллярный белок GFAP, белок S-100 и др.
Способ осуществляется следующим образом.
Пример 1.
Забор биоптата кожи (размером от 0,5 до 1 см2) производят из любого доступного участка (наиболее удобно из-за ушной раковиной или с внутренней стороны предплечья). После асептической обработки и анестезии 0,5% раствором новокаина участок кожи отсекают с помощью микрохирургического лезвия. Биоптат помещают в стерильный флакон, содержащий транспортную среду (F12 с амикацином, 0,5 г/л). Флакон с содержимым запечатывают и маркируют следующими данными: ФИО донора, дата и время забора. Транспортировку производят при температуре 2-6°С.
Полученный материал стерильно переносят в культуральную посуду и тщательно промывают раствором Хенкса с цефазолином (1 г/л). Материал трижды промывают раствором Версена и дезагрегируют путем инкубации в растворе Версена с добавлением 0,25% трипсина. В течение 1-1,5 часов при 37°С. После инкубации тканевую взвесь интенсивно перемешивают и центрифугируют в течение 10 минут при 1100 об/мин. Осадок разводят культуральной средой (DMEM/F12 1:1 с добавлением аутогенной сыворотки до 10%, амикацина до 500 мг/л), перемешивают и переносят в культуральную посуду. Культуральные флаконы помещают в CO2-инкубатор (37°С, 5% CO2).
Через 2-3 дня удаляют среду с неприкрепившимися клетками. Замену культуральной среды на свежую осуществляют каждые 3-4 дня. После образования субконфлуентного монослоя клетки дезагрегируют раствором Версена с добавлением 0,25% трипсина и переносят в новую культуральную посуду. Коэффициент рассева составляет от 3 до 10 выбирают в зависимости от индивидуальных пролиферативных характеристик фибробластов. Культивируют не более пяти пассажей. На пятом пассаже проводят контроль стабильности кариотипа и способность фибробластов синтезировать коллаген I типа (с помощью иммунофлуоресцентного окрашивания).
В результате были получены фибробласты в количестве 150 млн. клеток. Клеточная культура характеризовалась интенсивной пролиферацией, экспрессией тканеспецифических белков внеклеточного матрикса (гликозаминогликанов, хондроэтинсульфатов, фибронектина, коллагенов I, III типа). С помощью иммуноцитохимии охарактеризован фенотип полученных культур, относительное количество названных клеток в культуре составляет не менее 95%.
При необходимости длительного хранения полученные фибробласты подвергают криоконсервации. Перед замораживанием клетки рассевают из расчета получения субконфлуентного монослоя через 1-2 дня.
В боксе на ледяной бане (при 4°С) готовят криозащитный раствор, состоящий из 10% ДМСО (высокоочищенного диметилсульфоксида) и 90% аутогенной сыворотки.
Клеточную культуру дезагрегируют раствором Версена с добавлением 0,25% трипсина, подсчитывают количество клеток с помощью счетчика и осаждают клетки центрифугированием (1100 об/мин, 10 мин). К осадку добавляют свежеприготовленный криозащитный раствор из расчета 1 мл на 5 млн клеток, перемешивают и помещают полученную суспензию в криопробирки. Маркируют, указывая ФИО донора, номер пассажа, количество клеток, дату криозамораживания, данные ответственного исполнителя.
Образцы замораживают до - 80°C с помощью программного замораживателя, а затем помещают в сосуды Дьюара с жидким азотом и хранят при - 196°С.
Криопробирки с клеточным материалом извлекают из сосуда Дьюара и быстро размораживают при температуре 37°С на водяной бане.
Клеточную суспензию из криопробирки по каплям переносят в центрифужную пробирку, доливают полной культуральной средой до десятикратного объема и центрифугируют при 1100 об/мин в течение 10 мин.
Отмытые от криоконсерванта клетки переносят в культуральную посуду с полной ростовой средой.
Перед процедурой репрограммирования культуру фибробластов переводят на среду, не содержащую компонентов животного происхождения. Для этого клетки 2-3 пассажа промывают PBS, затем открепляют раствором трипсина-версена в течение 3-5 минут. Открепленные клетки переносят в 15 мл пробирки, добавляют среду DMEM с содержанием 10% эмбриональной телячьей сыворотки для инактивации работы фермента и центрифугируют 5 минут при 1100 об/мин. Далее супернатант отбирают и сажают клетки на культуральный пластик в количестве 1500-2000 клеток/см2 в среду DMEM, содержащую эмбриональную телячью сыворотку 10%, L-глутамин 2 тМ, пенициллин-стрептомицин 100 мг/л. Через 24 часа клетки промывают PBS и заливают среду без добавления компонентов животного происхождения (на 1 литр готовой среды: DMEM/F12, HEPES 872 мл; натрия бикарбонат 7.5% 6,4 мл, заменитель эмбриональной телячьей сыворотки 100 мл, основной фактор роста фибробластов человека bFGF (10 μg/mL) 1,2 мл, эпидермальный фактор роста человека EGF (1 mg/mL) 1 мл, гидрокортизон (50 μМ) 20 мл). Клетки культивируют в данной среде один-два пассажа.
Для получения индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) проводят репрограммирование фибробластов путем трансдукции с помощью вектора Sendai (CytoTune®-iPS Reprogramming Kits (Cat. № A13780-01, A13780-02)).
Фибробласты культивируют на 6 луночном планшете в течение 2 суток так, чтобы получить плотность клеток 200-300 тыс. клеток на лунку. Перед проведением трансдукции снимают клетки с одной лунки и подсчитывают их число. Производят расчет объема вирусной суспензии по формуле:
Figure 00000001
Трансдукцию производят со значениями MOI 5,5 и 3 (так как KOS MOI=5, he-Мус MOI=5, hKlf4 MOI=3). Титр вектора зависит от номера партии реактива и должен быть определен на сайте производителя.
Для размораживания вирусной суспензии CytoTune®2.0 Sendai, которая хранится при -80°С, каждую пробирку, погружают на 5-10 сек в воду при 37°С, а затем инкубируют при комнатной температуре до полного оттаивания. Суспензию центрифугируют, пробирку помещают в лед и добавляют необходимое количество CytoTune®2.0 Sendai в 1 мл среды для фибробластов, предварительно прогретой до 37°С. Аккуратно размешивают суспензию. Через 5 мин удаляют среду из лунок, в которых находятся фибробласты, и добавляют приготовленную вирусную суспензию. Инкубируют клетки ночь при стандартных культуральных условиях. Через 24 часа после трансдукции, производят замену среды на свежую. После трансдукции контролируют цитотоксичность вируса в течение 48 часов. Допускается гибель клеток не более 50%.
Клетки культивируют в течение 6 суток, меняя среду каждый день. На 7 сутки трансдуцированные клетки пересаживают на чашки Петри, предварительно покрытые витронектином.
Перед культивированием клеток на дне культуральной посуды формируют подложку из витронектина. Витронектин размораживают при комнатной температуре и разводят из расчета 40 мкл витронектина на 1 мл DPBS. Наносят 1 мл приготовленного раствора на чашку Петри диаметром 35 мм и инкубируют 1 час при комнатной температуре. Перед нанесением клеточной суспензии витронектин удаляют.
Для пересева на новые чашки Петри клетки промывают DPBS и дезагрегируют раствором Версена с добавлением 0,25% трипсина при комнатной температуре. Добавляют 2 мл культуральной среды в каждую лунку, перемешивают, переносят клеточную суспензию в пробирку и центрифугируют в режиме 200×g в течение 4 минут. Осадок ресуспензируют в культуральной среде, подсчитывают число клеток и рассаживают клетки на чашки Петри диаметорм 10 см из расчета от 100 до 500 тыс. клеток на чашку. Культивируют при стандартных культуральных условиях. Через сутки заменяют среду на Essential 8™ (Е8), которую далее меняют на свежую ежедневно. При визуальном осмотре под микроскопом выявляют репрограммированные клетки.
Через 3-4 недели после трансдукции клетки формируют крупные колонии. Выявление колоний репрограммированных клеток путем прижизненной окраски Tral-60 или Tral-81. Колонии iPS-клеток вручную отбирают и переносят на чашки Петри, покрытые витронектином для дальнейших исследований.
При культивировании ИПСК ведется визуальный контроль за морфологическими характеристиками культур. ИПСК растут плотными колониями с ровными краями. Клетки мелкие, с крупными ядрышками. Культивирование осуществляют в чашках Петри диаметром 35 мм, используя культуральную среду Essential 8™ (Е8).
Клетки рассаживают по достижении плотности 50-70% монослоя. Из чашек удаляют культуральную среду и промывают 2 мл DPBS. Для дезагрегации добавляют 1 мл 0,5 мМ раствора EDTA на DPBS и инкубируют 5-8 мин при комнатной температуре. Затем удаляют раствор EDTA, добавляют 2 мл предварительно подогретой среды, взбалтывают и переносят клеточную суспензию на чашки, предварительно покрытые витронектином, и добавляют среды до 2 мл. Замену среды на свежую проводят каждый день.
Стандартизацию ИПСК проводят по экспрессии генов, специфичных для эмбриональных стволовых клеток ОСТ4, SOX2, NANOG, FOXD3, HESX1, SALL4 методом ПЦР с обратной транскрипцией.
ИПСК подвергают криоконсервации. Готовят на льду криозащитный раствор из расчета на 1 чашку: 900 мкл среды Е8, 100 мкл DMSO и 1 мкл ингибитора Rho-киназы (сток 5 мМ). Из каждой чашки удаляют среду и промывают 2 мл DPBS. Добавляют 1 мл 0,5 мМ раствора EDTA и инкубируют 10 мин при комнатной температуре. Затем удаляют раствор EDTA и добавляют 1 мл криозащитного раствора. Клетки снимают с поверхности чашки, перемешивают и переносят в криопробирку объемом 1,8 мл (1 мл на 1 пробирку). Образцы замораживают до - 80°C с помощью программного замораживателя, а затем помещают в сосуды Дьюара с жидким азотом и хранят при - 196°С.
Криопробирки с клеточным материалом извлекают из сосуда Дьюара и размораживают при температуре 37°С на водяной бане.
Клеточную суспензию из криопробирки (1 мл) по каплям переносят в центрифужную пробирку, доливают 9 мл теплой культуральной среды DMEM/F12 до десятикратного объема и центрифугируют при 800 об/мин в течение 5 мин.
Отмытые от криоконсерванта клетки переносят на чашки Петри, предварительно покрытые витронектином, с культуральной средой Е8, содержащей ингибитор Rho-киназы. При переносе сохряняют целостность колоний. Адаптация клеток после криоконсервации продолжается от 1 до 3 недель.
Для проведения нейрональной дифференцировки ИПСК культивируют на чашках Петри диаметром 35 мм, покрытых человеческим рекомбинантным ламинином в среде Е8 до 80-90% монослоя. Среду меняют каждый день, наливая по 2 мл на чашку.
На первом этапе дифференцировки используют нейрональную среду №1 (Н-1) состоящую из DMEM/F12, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, 1% добавки N2, Noggin 20-80 нг/мл, SB431542 5-12 мкМ, дорсоморфин 2-6 мкМ (или LDN193189 0,1-3 мкМ). В первый день производят смену среды на смесь среды Е8 и Н-1 в соотношении 1:4, через день производят полную смену среда на Н-1. Клетки культивируют в течение 14-20 суток до формирования характерных скоплений звездчатой формы, что соответствует стадии формирования нервной трубки в эмбриогенезе. Скопления выявляют визуально при помощи микроскопа. Клетки дезагрегируют, добавляя 1 мл раствора Версена и инкубируют 3-5 мин при комнатной температуре. Затем удаляют раствор Версена, клетки снимают с подложки суспендированием и переносят в пробирку. Клетки центрифугируют 10 минут при 800-1100 об/мин., затем осадок переносят на новые чашки Петри в соотношении 1:3, предварительно покрытые человеческим рекомбинантным ламинином, и культивируют в среде для нейрональных предшественников (Н-2), состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, FGF2 5-20 нг/мл, Purmorphamine 1-10 мкМ. Среду меняют через сутки до достижения плотного монослоя, после чего снова производят пересев в соотношении 1:3.
До полной зрелости нейрональные предшественники необходимо культивировать в среде для созревания №3 (Н-3), состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, смеси незаменимых аминокислот 1%, аскорбиновой кислоты 200 мкМ, BDNF 10-20 нг/мл. На этом этапе происходит созревание нейрональных предшественников и глии. Морфологически большинство клеток имеют отростчатую форму.
Стандартизацию нейральных клеток проводили по экспрессии генов DARPP-32, РАХ6, FOXP2, NCAM1, EN02, Nestin, TUBB3, НТТ, GFAP, S-100 и синаптического транспортера ГАМК GAT1.
Активную композицию белков и пептидов получают путем ионообменной хроматографии фильтрата надосадочной фракции отцентрифугированного гомогената кульутры нейронов и глиальных клеток, в присутствии буферного раствора, детергентов и солюбилизантов. Условия ионообменной хромотаграфии подобраны таким образом, что катионные (внутриядерные белки) не сорбируются на сорбенте.
Культуру нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека поэтапно:
- гомогенизируют в буферном растворе, с одновременной экстракцией в присутствии обратимых ингибиторов протеолиза и неионных детергентов при рН не менее 5,3 и не выше 8,3 с последующим центрифугированием при значении g в интервале 10000-28000 в течение 90-30 мин;
- полученный супернатант фильтруют;
- фильтрат подвергают ионообменной хроматографии с сепарацией связавшихся белков с использованием элюента с ионной силой в интервале от 0,14 до 0,21 ммоль/л при рН в интервале от 5,3 до 8,3. Сбор целевых фракций подвижной фазой начинают при значении ионной силы 0,175 ммоль/л, увеличивая ее постепенно или ступенчато с шагом 0,035 ммоль/л до значения ионной силы 0,22 ммоль/л, полученные фракции объединяют и подвергают стерилизующей фильтрации.
Полученная композиция включает в себя белки и пептиды молекулярной массой в пределах от 0,5 до 200 кДа, средняя молекулярная фракция находится в пределах от 20 до 180 кДа не менее 70%.
Пример 2. Характеристика ИПСК.
В процессе репрограммирования до плюрипотентного состояния происходят значительные изменения в паттерне экспрессии генов. Анализ экспрессии некоторых маркерных генов в клонах ИПСК проводят двумя различными методами: окрашивание антителами и ПЦР с обратной транскрипцией. Показано, что полученные клоны ИПСК специфично окрашиваются на маркеры ПСК ОСТ4 и SSEA-4. ОСТ4 и SSEA-4 является общепринятыми маркерами ПСК (Рисунок 1А, 1Б). Методом ПЦР с обратной транскрипцией была показана экспрессия генов, специфичных для ПСК ОСТ4, SOX2, NANOG, FOXD3, HESX1, SALL4, на таком же уровне, что и в ЭСК человека. Для нормировки количества кДНК использовали уровень экспрессии гена домашнего хозяйства GAPDH, в качестве положительного и отрицательного контролей использовали кДНК из ЭСК и фибробластов кожи человека.
Тест на формирование жизнеспособных химер используют для выявления способности к дифференцировке во все типы клеток организма, доказательства плюрипотентности ИПСК мыши. В случае клеток человека доступны менее строгие тесты, такие как in vitro дифференцировка в клетки трех зародышевых листков, способность к образованию эмбриоидных телец, а в случае in vivo формирование тератома-подобных новообразований при введении ПСК иммунодефицитным мышам. Эмбриоидное тельце представляет начальный этап спонтанной дифференцировки и позволяет определить в своем составе клетки, принадлежащие разным зародышевым листкам. В результате такой спонтанной дифференцировки образовались клетки различной принадлежности. Через две недели после начала культивирования в адгезионной форме клетки фиксируют и проводят окрашивание клеточных культур с использованием антител к белкам-маркерам трех зародышевых листков. В культуре спонтанно дифференцировавшихся клеток находят клетки, положительно окрашивающиеся на маркер эктодермы пан-цитокератин (Cytokeratin), мезодермы CD105 и энтодермы α-фетопротеин (AFP) (рис. 2А). Также для части клонов был выполнен тест на формирование тератом. ИПСК инъецировали подкожно в заднюю лапу иммунодифицитных мышей, после чего, через 10-12 недель формировались тератомы, в которых находили ткани, принадлежащие к трем зародышевым листкам (рис. 2Б). Таким образом, полученные ИПСК способны дифференцироваться в клетки всех трех зародышевых листков и являются плюрипотентными.
Анализ экспрессии маркерных генов в нейронально преддифиренцированных плюрипотентных стволовых клеток
Проведен анализ и выявлены нейроны, экспрессирующие белок DARPP-32, известный специфический маркер серединных шипиковых нейронов стриатума. На этапе наращивания, клетки латерального ганглионарного бугорка, демонстрировали экспрессию маркерных генов SOX2, РАХ6, FOXP2, NCAM1, ENO2, Nestin (рис. 3Б). Анализ показал, что до 95% полученных клеток экспрессировали нейрональный маркер TUBB3, до 80% клеток, экспрессирующих TUBB3, также экспрессировали DARPP-32 (рис. 3В). Дифференцированные нейроны также продемонстрировали экспрессию НТТ и синаптического транспортера ГАМК GAT1 (рис. 3В).
Пример 3.
Дополнительно композицию характеризовали по количеству в 1 мл общего белка и таких факторов, как мозговой нейротрофический фактор (Brain-Derived Neurotrophic Factor, BDNF) и глиальный нейротрофический фактор (GDNF). Для этого использовали твердофазный иммуноферментный анализ. 1 мл суспензии центрифугировали, полученные в результате центрифугирования супернатанты апплицировали в лунки планшета с предварительно адсорбированными первичными антителами к BDNF и GDNF, далее анализ проводили согласно инструкции производителя. Содержание факторов выражали в пг/мл композиции. Всего было исследовано 10 образцов композиции, получены результаты по содержанию BDNF не менее 50 пг/мл и GDNF не менее 40 пг/мл.
Общий белок в 1 мл суспензии определяли методом Бредфорда. Суммарная масса белка в составе композиции составляет не менее 20 мг/мл препарата.
Пример 4.
Оценка эффективности использования композиции на модели перманентной окклюзии правой средней мозговой артерии у крыс
На экспериментальной модели перманентной окклюзии правой средней мозговой артерии у крыс была продемонстирована эффективность системного введения Препарата в отношении объема развивающегося инфаркта в бассейне средней мозговой артерии. В эксперименте были сформированы две группы: введение препарата (n=12) и введение физиологического раствора (n=12) в объеме 1 мл.
Введение Препарата осуществляли внутрибрюшинно однократно через 60 минут после наступления окклюзии. Факт окклюзии кровеносных сосудов подтверждали с помощью лазерной допплероской флоуметрии.
Проводили сравнение выживаемости (кривые Каплан-Мейера) через 14 суток между группой крыс с моделью инсульта и группой крыс с моделью инсульта и введением Препарата, при этом выживаемость составила 50 и 91, 6% соответственно.
Все крысы тестировались по шкале mNSS на 1, 8 и 15 сутки после инсульта. Нормирование баллов каждого животного производилась к 1 суткам (до введения Препарата и физиологического раствора). Отмечается достоверная разница нормированных баллов по шкале mNSS между группами на 8 (р=0,005) и 16 (р=0,005) сутки (U-критерий Манна - Уитни). Медиана нормированных баллов по шкале mNSS составила 95 и 49% на 8 день для группы с введением физиологического раствора и Препарата соответственно и 78 и 23% на 15 день.
Через 15 суток после наступления окклюзии животных выводили из эксперимента и исследовали серийные срезы всего головного мозга толщиной 2 мм, окрашенные 2,3,5-трифенилтетразолий хлоридом (ТТХ). Данный краситель окрашивает неишемизированые участки в розовый цвет, а ишемизированные, где наблюдается гибель клеток, остаются неокрашенными. Окрашенные срезы сканируют с двух сторон и высчитывают объем инфаркта ишемизированного полушария. Объемная доля инфаркта при введении физиологического раствора составила 25,4±5,6%, а после введения Препарата 19,8±3,9%.
Таким образом, введение композиции экспериментальным животным с острой перманентной окклюзией средней мозговой артерии приводит к достоверному увеличению выживаемости и уменьшению неврологических дефицитов у экспериментальных животных.

Claims (1)

  1. Способ получения ноотропной белково-пептидной композиции, включающий: забор биоптата кожи, получение культуры фибробластов, криоконсервацию культуры фибробластов, размораживание культуры фибробластов, адаптирование культуры фибробластов к xeno free условиям культивирования, репрограммирование фибробластов для получения индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК), культивирование ИПСК, криоконсервацию ИПСК, размораживание ИПСК, нейрональную дифференцировку ИПСК, получение белково-пептидного комплекса, где для проведения нейрональной дифференцировки ИПСК культивируют на чашках Петри, покрытых витронектином в среде Е8 до 70% монослоя, при этом на первом этапе дифференцировки используют нейрональную среду №1 (Н-1), состоящую из DMEM/F12, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, 1% добавки N2, Noggin 20-80 нг/мл, SB431542 5-12 мкМ, дорсоморфина 2-6 мкМ (или LDN193189 0,1-3 мкМ), на втором этапе дифференцировки используют нейрональную среду №2 (Н-2), состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, FGF2 5-20 нг/мл, Purmorphamine 1-10 мкМ, на третьем этапе дифференцировки используют нейрональную среду №3 (Н-3), состоящую из Neurobasal, 2% В27, пенициллин-стрептомицина 50 ед/мл, L-глутамина 1 мМ, смеси незаменимых аминокислот 1%, аскорбиновой кислоты 200 мкМ, BDNF 10-20 нг/мл, а для получения белково-пептидного комплекса культуру нейронов и глиальных клеток, полученных методом нейрональной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека, поэтапно гомогенизируют в буферном растворе с одновременной экстракцией в присутствии обратимых ингибиторов протеолиза и неионных детергентов при рН не менее 5,3 и не выше 8,3 с последующим центрифугированием; полученный супернатант фильтруют; фильтрат подвергают ионообменной хроматографии с сепарацией связавшихся белков, сбор целевых фракций подвижной фазой начинают при значении ионной силы 0,175 ммоль/л, увеличивая ее постепенно или ступенчато с шагом 0,035 ммоль/л до значения ионной силы 0,22 ммоль/л, полученные фракции объединяют и подвергают стерилизующей фильтрации.
RU2018118201A 2018-05-17 2018-05-17 Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека RU2690498C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018118201A RU2690498C1 (ru) 2018-05-17 2018-05-17 Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018118201A RU2690498C1 (ru) 2018-05-17 2018-05-17 Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2690498C1 true RU2690498C1 (ru) 2019-06-04

Family

ID=67037769

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018118201A RU2690498C1 (ru) 2018-05-17 2018-05-17 Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2690498C1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2732600C1 (ru) * 2019-12-26 2020-09-21 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова" Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях гипоксии, и способ ее получения
RU2752906C2 (ru) * 2019-12-26 2021-08-11 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова" Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях теплового шока, и способ ее получения
RU2803498C1 (ru) * 2022-04-12 2023-09-14 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук Способ получения средства, обладающего ноотропной активностью
CN117126801A (zh) * 2023-08-30 2023-11-28 呈诺再生医学科技(北京)有限公司 一种高再生传代的纤维软骨细胞制备方法、产品及应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001088104A2 (en) * 2000-05-17 2001-11-22 Geron Corporation Neural progenitor cell populations
US6455277B1 (en) * 1996-04-22 2002-09-24 Amgen Inc. Polynucleotides encoding human glial cell line-derived neurotrophic factor receptor polypeptides
RU2345133C2 (ru) * 2003-03-12 2009-01-27 Релайанс Лайф Сайенсиз Пвт. Лтд. Получение терминально дифференцированных дофаминергических нейронов из эмбриональных стволовых клеток человека
RU2380410C2 (ru) * 2003-09-03 2010-01-27 Релайанс Лайф Сайенсиз Пвт. Лтд. ПОЛУЧЕНИЕ ГАМКергических НЕЙРОНОВ in vitro ИЗ ЭМБРИОНАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ ПРИ ЛЕЧЕНИИ НЕВРОЛОГИЧЕСКИХ РАССТРОЙСТВ
RU2445106C1 (ru) * 2010-07-01 2012-03-20 Закрытое Акционерное Общество "Фарм-Синтез" Фармацевтическая композиция, предназначенная для лечения заболеваний центральной и периферической нервной системы сосудистого, травматического, токсического, гипоксического и аутоиммунного генеза

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6455277B1 (en) * 1996-04-22 2002-09-24 Amgen Inc. Polynucleotides encoding human glial cell line-derived neurotrophic factor receptor polypeptides
WO2001088104A2 (en) * 2000-05-17 2001-11-22 Geron Corporation Neural progenitor cell populations
RU2345133C2 (ru) * 2003-03-12 2009-01-27 Релайанс Лайф Сайенсиз Пвт. Лтд. Получение терминально дифференцированных дофаминергических нейронов из эмбриональных стволовых клеток человека
RU2380410C2 (ru) * 2003-09-03 2010-01-27 Релайанс Лайф Сайенсиз Пвт. Лтд. ПОЛУЧЕНИЕ ГАМКергических НЕЙРОНОВ in vitro ИЗ ЭМБРИОНАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ ПРИ ЛЕЧЕНИИ НЕВРОЛОГИЧЕСКИХ РАССТРОЙСТВ
RU2445106C1 (ru) * 2010-07-01 2012-03-20 Закрытое Акционерное Общество "Фарм-Синтез" Фармацевтическая композиция, предназначенная для лечения заболеваний центральной и периферической нервной системы сосудистого, травматического, токсического, гипоксического и аутоиммунного генеза

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2732600C1 (ru) * 2019-12-26 2020-09-21 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова" Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях гипоксии, и способ ее получения
RU2752906C2 (ru) * 2019-12-26 2021-08-11 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова" Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях теплового шока, и способ ее получения
RU2803498C1 (ru) * 2022-04-12 2023-09-14 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук Способ получения средства, обладающего ноотропной активностью
CN117126801A (zh) * 2023-08-30 2023-11-28 呈诺再生医学科技(北京)有限公司 一种高再生传代的纤维软骨细胞制备方法、产品及应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2021225187B2 (en) Methods for differentiating pluripotent cells
US20210102177A1 (en) Derivation of human skin organoids from pluripotent stem cells
US9249390B2 (en) Method for producing polarized retinal progenitor cells from pluripotent stem cells and their differentiation into retinal pigment epithelium cells
KR102210180B1 (ko) 모양체 주연부형 구조체의 제조 방법
RU2690498C1 (ru) Способ получения ноотропной композиции на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека
JP2010537626A (ja) フィーダ細胞を含まない培地および培養系
RU2690846C1 (ru) Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейронов и глиальных клеток, полученных методом направленной дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека
JP7260475B2 (ja) 網膜前駆体、網膜色素上皮細胞及び神経網膜細胞を得るフィーダーフリーの方法
CN111386338B (zh) 包含神经系统细胞或神经组织和非神经上皮组织的细胞团块的制备方法及该细胞团块
JP2024059771A (ja) 細胞のリプログラミング方法
US20210315938A1 (en) Methods and Compositions for Retinal Neuron Generation in Carrier-Free 3D Sphere Suspension Culture
US20070020608A1 (en) Method for the generation of neural progenitor cells
Kandasamy et al. Glycoconjugates reveal diversity of human neural stem cells (hNSCs) derived from human induced pluripotent stem cells (hiPSCs)
RU2732600C1 (ru) Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях гипоксии, и способ ее получения
RU2646446C1 (ru) Способ оценки нейропротекторных свойств веществ in vitro и тест-система для его осуществления
Kamiya et al. Induction of Functional Mesenchymal Stem/Stromal Cells from Human iPCs Via a Neural Crest Cell Lineage Under Xeno-Free Conditions
RU2732599C1 (ru) Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из глиальных прогениторных клеток в условиях теплового шока, и способ её получения
RU2752906C2 (ru) Ноотропная композиция на основе полипептидных комплексов, выделенных из нейрональных прогениторных клеток в условиях теплового шока, и способ ее получения
Kishigami et al. Histological analysis of epithelial stem cells during induced pluripotent stem cell-derived teratoma development
KR20240144127A (ko) 다능성 줄기세포로부터 표피각질형성세포로의 분화 유도 방법
Santos Culture Platform for Induction of Human Induced Pluripotent Stem Cells into Cortical Neural Stem and Progenitor Cells under Chemically Defined Conditions
Baltazar Monolayer differentiation of human induced Pluripotent Stem Cells (hiPSC) into cardiomyocytes

Legal Events

Date Code Title Description
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20201209

PD4A Correction of name of patent owner