RU2688327C2 - Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов - Google Patents

Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов Download PDF

Info

Publication number
RU2688327C2
RU2688327C2 RU2017117772A RU2017117772A RU2688327C2 RU 2688327 C2 RU2688327 C2 RU 2688327C2 RU 2017117772 A RU2017117772 A RU 2017117772A RU 2017117772 A RU2017117772 A RU 2017117772A RU 2688327 C2 RU2688327 C2 RU 2688327C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
monolayer
peninsulae
apodemus
cell line
tick
Prior art date
Application number
RU2017117772A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2017117772A3 (ru
RU2017117772A (ru
Inventor
Максим Анатольевич Хаснатинов
Галина Анатольевна Данчинова
Константин Сергеевич Миловидов
Наталья Андреевна Болотова
Эллина Лопсоновна Манзарова
Александр Валерьевич Ляпунов
Иннокентий Сергеевич Соловаров
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека"
Priority to RU2017117772A priority Critical patent/RU2688327C2/ru
Publication of RU2017117772A3 publication Critical patent/RU2017117772A3/ru
Publication of RU2017117772A publication Critical patent/RU2017117772A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2688327C2 publication Critical patent/RU2688327C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов, включающий гомогенизацию почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae, затем суспендирование в 5 мл раствора трипсина (0,167%) в фосфатно-солевом буфере (рН 7,4) и инкубирование суспензии при 37°С в течение 1 часа, после чего суспензию центрифугируют при 1200g, удаляют супернатант и ресуспендируют осадок в 5 мл среды RPMI1640 с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед./мл пенициллина, 100 м кг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина, затем первичные культуры клеток инкубируют при 37°С в атмосфере 5% СОдо формирования монослоя. Изобретение может быть использовано для производства вакцин и диагностических препаратов, а также для выделения, накопления и изучения ВКЭ. 4 ил., 4 пр.

Description

Изобретение относится к области медицинской биотехнологии и вирусологии, в частности к разработке клеточного субстрата для репродукции вируса клещевого энцефалита in vitro и производству вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов.
Вирус клещевого энцефалита (ВКЭ) относится к семейству Flaviviridae и ежегодно вызывает до 10 тысяч случаев заболевания человека. Человеку ВКЭ передается при укусах иксодовых клещей. Естественными хозяевами вируса в природе являются прокормители клещей - мелкие млекопитающие, в том числе восточноазиатская лесная мышь Apodemus peninsulae, зараженность которой ВКЭ может достигать 20% [Клещевой энцефалит…, 1996; Балахонов С.В. и др., 2012]. В последние годы, в качестве наиболее перспективного пути совершенствования модельных и производственных систем культивирования вирусов in vitro, рассматривается создание новых модельных систем на основе естественных хозяев инфекций [Eckerle I et al., 2014; Stoltz M et al., 2011; Mourya DT et al., 2013; Sheng et al., 2011]. Однако разнообразие, доступность и степень изученности таких моделей еще очень невелики. Так, недавно была разработана клеточная линия MRK101 красно-серой полевки (Myodes rufocanus bedfordiae). Линия клеток MRK101 получена в Японии из почки полевки - представителя хомякообразных - другого семейства грызунов, являющихся важными хозяевами многих трансмиссивных инфекций, в том числе ВКЭ [Sanada Т et al., 2012]. Однако, данная линия клеток рекомендована как инструмент для изучения хантавирусов in vitro и не тестирована на восприимчивость к ВКЭ и другим флавивирусам.
В настоящее время для производства антигена ВКЭ, изучения биологии вируса и разработки новых средств диагностики, профилактики и лечения заболевания используются клетки позвоночных: VERO, ВНК-21, ФЭК, СПЭВ. Все эти клеточные линии получены от животных, не являющихся естественными хозяевами клещевых флавивирусов - курицы, обезьяны, свиньи, хомяка, человека. Именно с этим связаны основные недостатки существующих клеточных культур. Это и быстрая (до 4 пассажей) адаптация ВКЭ к линии клеток, приводящая к изменению естественных свойств вируса [Mandl et al, 2001], и избыток куриного белка в иммунопрепаратах при производстве вакцинных антигенов на культуре ФЭК [Воробьева М.С. и др., 2007], и то, что доступные клеточные модели не отражают характеристики специфичных взаимодействий вирусов и их позвоночных хозяев [Stoltz et al. 2011, Eckerle et al. 2013, Tigabu В et al., 2010]. У линии клеток VERO отсутствует секреция интерферонов типа I (IFN α/β) [Emeny J. and Morgan M., 1979], кроме того, эффективность репродукции ВКЭ в этих клеток снижена [Морозова О.В. и др., 2012]. Отмечается дерегуляция естественных клеточных механизмов, связанная с вырождением традиционных клеточных линий в процессе культивирования [Eckerle et al., 2014]. Многие традиционные культуры клеток (СПЭВ, ВНК-21) быстро, в течение 3-5 дней, гибнут от цитопатического действия ВКЭ, что повышает ресурсоемкость производства антигена с использованием этих линий в качестве субстрата. Эти недостатки традиционных линий оказывают негативное влияние на совершенствование производства вакцин и диагностических препаратов. Поэтому разработка новых эффективных клеточных субстратов для репродукции ВКЭ и производства вирусного антигена является актуальной задачей.
Задачей, на решение которой направлено данное изобретение, явилось создание новой линии клеток из почки Apodemus peninsulae, пригодной для репродукции ВКЭ, а также для производства вирусного антигена.
Цель данного изобретения создание монослойной перевиваемой линии клеток естественного хозяина ВКЭ для репродукции вируса и производства вирусного антигена.
Поставленная цель достигается тем, что создана перевиваемая линия клеток почки восточноазиатской лесной мыши (Apodemus peninsulae), для которой показана возможность репродукции ВКЭ и накопления вирусного антигена в культуральной жидкости. Полученная клеточная линия обладает стабильными культуральными и морфологическими характеристиками. Клеточная линия хранится в коллекции клеточных культур лаборатории трансмиссивных инфекций Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека» (г. Иркутск) под обозначением ApnK.
Таким образом, создана новая перевиваемая линия клеток для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов и следовательно, данное техническое решение соответствует критерию изобретения «новизна».
Проведенный анализ патентной и научной литературы не выявил публикаций, описывающих перевиваемые линии клеток A. peninsulae и их применение для репродукции ВКЭ. А именно, предлагаемая линия клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae позволяет поддерживать репродукцию вируса клещевого энцефалита и накапливать вирус в культуральной жидкости в количестве 6-7,1 lg БОЕ/мл. При этом происходит выработка специфичного антигена ВКЭ в количествах, сопоставимых с коммерческими антигенами ВКЭ. По результатам иммуноферментного анализа, через 4 дня после заражения клеток ApnK, концентрация антигена ВКЭ в культуральной среде превышает как концентрацию коммерческих антигенов (2,5 ОЕ), так и аналитический предел тест-системы (3,5 ОЕ). Репродукция ВКЭ и накопление специфичного антигена проходит на протяжении 3 недель без смены культуральной среды.
В отличие от традиционных клеточных линий, линия клеток ApnK является более адаптированным к ВКЭ субстратом, поскольку получена от естественного хозяина вируса. Это обеспечивает стабильную репродукцию ВКЭ в культуре клеток и накопление вирусного антигена в культуральной жидкости в течение трех недель.
Предлагаемую линию клеток можно использовать в научно-исследовательских лабораториях как модельную систему для изучения ВКЭ, в биотехнологических компаниях, на фармацевтических заводах для производства антигена ВКЭ для вакцин и диагностических препаратов.
Таким образом, предлагаемое техническое решение соответствует критериям изобретения «изобретательский уровень» и «промышленная применимость».
Пассажная история клеточной линии ApnK. Первичная культура клеток получена из почек взрослой самки Apodemus peninsulae, отловленной в Иркутской области. Животное эвтаназировали под анестезией и немедленно препарировали для извлечения органов. Суспензию клеток почки культивировали в течение 40 суток до получения монослоя первичной культуры прикрепленных клеток и затем пассировали с разведением от 1:2 до 1:5. Стабильно растущая перевиваемая морфологически однородная линия клеток ApnK сформировалась на 17 пассаже. Основные характеристики клеточной линии установлены на 30 пассаже.
Морфология клеточной линии ApnK. Адгезивная, монослойная, эпителиоподобная (см приложение к описанию фиг. 1 а, в). На фиг. 1 представлена морфология адгезивной монослойной линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши ApnK. Фиксация формальдегидом, окраска кристаллическим фиолетовым. А) увеличение ×10; В) увеличение ×40.
Культуральные свойства клеточной линии ApnK. Ростовая среда RPMI-1640 с добавлением 10% или 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и L-глутамина (2 mM). Клеточную линию ApnK в количестве 1×106 клеток ресуспендируют в 5 мл ростовой среды и засевают в культуральный флакон с площадью рабочей поверхности 25 см2. Условия инкубации: 37°C в атмосфере 5% CO2. Монослой клеток плотностью 90-100% формируется через 3-5 дней. Среднее время удвоения клеточной культуры ApnK составляет 28 часов. Без смены среды монослой стабилен не менее 19 суток. Клетки снимаются с использованием 0,25% раствора трипсина с добавлением 0,5 mM этилендиаминтетрауксусной кислоты (EDTA). Частота пересева 1-2 раза в неделю с кратностью 1:5. Для криоконсервации в жидком азоте используется среда для заморозки, состоящая из 90% эмбриональной телячьей сыворотки и 10% диметилсульфоксида (DMSO). Замораживание медленное со снижением температуры на 1°C в минуту до -80°C затем перенос в жидкий азот. Размораживание быстрое при 37°C. Размороженные клетки ресуспендируют в 5 мл среды RPMI-1640 с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и L-глутамина (2 mM), засевают в культуральный флакон с площадью рабочей поверхности 25 см2 и инкубируют в течение ночи при 37°C в атмосфере 5% CO2. На следующий день культуральную жидкость над монослоем заменяют на 5 мл свежей ростовой среды.
Подтверждение видовой принадлежности клеточной линии ApnK. Кариологичская характеристика: кариотип нормальный диплоидный, 2n=48 A-хромосом (см приложение к описанию, фиг. 2), присутствует 21±2 B-хромосом.
На фиг. 2 представлен кариотип A-хромосом ApnK. Метафазные пластинки приготовлены по методу A. Nagy et al. (Nagy A., Gertsenstein M., Vintersten K., Behringer R. 2008. CSH Protocols; doi: 10.1101/pdb.prot4706) с окраской по Гимза. Увеличение ×1000, масляная иммерсия.
Генетическая характеристика: проанализирована первичная нуклеотидная структура двух локусов генома клеточной линии ApnK - гена цитохрома В (mtCytB) и D-петли митохондриального генома (d-loop). Последовательности депонированы в международную базу данных GenBank с номерами доступа KT983422 (mtCytB) и KT983423 (d-loop). Филогенетический анализ и анализ BLAST (National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine) показали что клеточная линия ApnK является линией клеток восточноазиатской лесной мыши А. peninsulae. Наиболее генетически близкие особи A. peninsulae были отловлены в Республике Бурятия (номер доступа AY588251), Приморском крае (DQ121415), Томской области (АВ073806) и Монголии (JQ664596).
Контроль контаминации. При культивировании в течение 3-х недель бактерии и грибы не обнаружены (ПНР). Микоплазмы не обнаружены (ПЦР). При исследовании в ПЦР и методом культивирования не выявлено ВКЭ, хантавирусов, морбилливирусов (в т.ч. вируса чумы плотоядных), вируса бешенства, Borrelia burgdorferi sensu lato, Anaplasma phagocytophilum, Ehrlichia muris, Ehrlichia chaffeensis, Rickettsia sp.
Чувствительность к вирусам. Поддерживает репродукцию ВКЭ.
Пример 1. Получение линии клеток ApnK.
Цельные почки азиатской лесной мыши получали при заборе материала от грызунов для вирусологических исследований. Вид мыши определяли на основе морфологических признаков. Для приготовления суспензии клеток почек, органы гомогенизиовали с помощью фарфоровой ступки и пестика. Клетки суспендировали в 5 мл раствора трипсина (0,167%) в фосфатно-солевом буфере (pH=7,4) и инкубировали при 37°C в течение 1 часа. После этого суспензию центрифугировали при 1200g, удаляли супернатант и ресуспендировали в 5 мл среды RPMI1640 с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина. Первичные культуры клеток инкубировали при 37°C в атмосфере 5% CO2 до формирования монослоя. Клеточную линию пассировали по мере формирования монослоя с разведениями 1:2-1:5.
Пример 2. Культивирование линии клеток ApnK.
Клеточную линию ApnK выращивали в культуральном флаконе с площадью рабочей поверхности 25 см2 до формирования 90% монослоя. Ростовую среду удаляли и клетки открепляли с помощью раствора трипсина (0,25%) и ЭДТА (0,5 mM) в фосфатно-солевом буфере (pH=7,4) при температуре 37°C. После этого суспензию клеток центрифугировали при 1200g, удаляли супернатант и ресуспендировали в 5 мл среды RPMI1640 с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина. Суспензию клеток в количестве 1 мл переносили в чистый культуральный флакон с площадью рабочей поверхности 25 см2 и инкубировали при 37°C в атмосфере 5% CO2. Клеточную линию пассировали по мере формирования монослоя с разведением 1:5.
Пример 3. Репродукция ВКЭ в клеточной линии ApnK. Линию клеток ApnK выращивали на 24-луночных планшетах в количестве 1,5×105 клеток на лунку. Культуральную жидкость удаляли, промывали монослой стерильным фосфатно-солевым буфером (pH=7,4) и заражали ВКЭ с множественностью инфекции 1 бляшкообразующая единица (БОЕ) на клетку. Адсорбцию проводили в течение 1 ч при 37°C. После этого, заражающую дозу убирали и тщательно отмывали несвязавшийся вирус посредством трех промывок монослоя и стенок планшеты средой RPMI 1640 без сыворотки. Затем вносили в каждую лунку 1 мл среды поддержки (RPMI1640 с добавлением 2% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина). Зараженные клетки инкубировали при 37°C, 5% CO2 в течение двух недель. В течение первых суток культуральную жидкость собирали каждые 4 часа, после этого - один раз в 4 дня. Каждую временную точку собирали в трех независимых повторах. Содержание инфекционного ВКЭ в культуральной жидкости определяли с помощью титрования БОЕ и выражали в виде логарифма БОЕ по основанию 10 в 1 мл культуральной жидкости (lg БОЕ/мл). Нарастание количества инфекционного вируса начинается между 12 и 16 часами после заражения и достигает максимальных значений с титром 7,1 lg БОЕ/мл на 4 день инфекции. Без смены среды поддержки к 14 дню количество инфекционного вируса снижается до титра 6 lg БОЕ/мл, возможно, из-за деградации монослоя клеток вследствие истощения культуральной среды (см приложение к описанию, фиг. 3). На фиг. 3 представлена репродукция инфекционного ВКЭ в линии клеток ApnK. Приведены средние значения трех независимых повторов. Планки погрешностей отражают стандартное отклонение. Обнаружено, что ВКЭ не оказывает цитопатического действия на линию клеток ApnK, через трое суток после заражения выживаемость клеток составляет 90-100% по сравнению с контролем, а через 8 суток - 80-81%. Таким образом, установлено, что клеточная линия ApnK стабильно и эффективно поддерживает репродукцию ВКЭ в течение длительного времени без гибели культуры клеток.
Пример 4. Накопление антигена ВКЭ в клеточной линии ApnK. Линию клеток ApnK выращивали на 24-луночных планшетах в количестве 1,5×105 клеток на лунку. Культуральную жидкость удаляли, промывали монослой стерильным фосфатно-солевым буфером (pH=7,4) и заражали ВКЭ с множественностью инфекции 1 бляшкообразующая единица (БОЕ) на клетку. Адсорбцию проводили в течение 1 ч при 37°C. После этого, заражающую дозу убирали и тщательно отмывали несвязавшийся вирус посредством трех промывок монослоя и стенок планшеты средой RPMI 1640 без сыворотки. Затем вносили в каждую лунку 1 мл среды поддержки (RPMI1640 с добавлением 2% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина). Зараженные клетки инкубировали при 37°C, 5% CO2 в течение трех недель. В течение первых суток культуральную жидкость собирали каждые 4 часа, после этого - один раз в 4 дня. Каждую временную точку собирали в трех независимых повторах. Антиген ВКЭ выявляли с помощью иммуноферментного анализа с тест-системой «Векто-ВКЭ антиген» (Вектор-бест, Новосибирск). Концентрацию антигена ВКЭ оценивали по оптической плотности реакционной смеси при длине волны 450 нм в сравнении с незараженными клетками и контрольными образцами антигена ВКЭ. Нарастание концентрации специфичного антигена начинается через 16-20 часов после заражения и достигает максимальных значений на четвертые сутки инфекции (см приложение к описанию, фиг. 4). К этому времени концентрация антигена ВКЭ превышала как концентрацию контрольных коммерческих антигенов (2,7±0,4 ОЕ), так и аналитический предел тест-системы (3,5 ОЕ). После этого концентрация оставалась стабильно высокой в течение 14 дней с тенденцией к некоторому снижению к концу третьей недели инкубации (см приложение к описанию, фиг. 4).
На фиг. 4 показано накопление антигена ВКЭ в культуральной жидкости с использованием клеточной линии ApnK. Приведены средние значения трех независимых повторов. Планки погрешностей отражают стандартное отклонение.
К концу эксперимента показатели серопозитивности культуральной жидкости (3,4 ОЕ) превышали таковые контрольных образцов антигена ВКЭ (в среднем 2,45 ОЕ) в 1,5 раза. Установлено, что линия клеток ApnK позволяет накапливать антиген ВКЭ в культуральной жидкости без смены среды в течение, не менее 3-х недель.
Таким образом, предлагаемая монослойная перевиваемая линия клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae позволяет поддерживать репродукцию вируса клещевого энцефалита и накапливать вирус в культуральной жидкости в количестве 6-7,1 lg БОЕ/мл. При этом происходит выработка специфичного антигена ВКЭ в количествах, сопоставимых с коммерческими антигенами ВКЭ. Кроме того, полученную линию клеток можно использовать для изучения in vitro биологии ВКЭ в условиях близких к естественным.
Литература:
1. Клещевой энцефалит: Этиология. Эпидемиология и профилактика в Сибири. / Злобин В.И., Горин О.З. - Новосибирск: Наука. Сибирская издательская фирма РАН, 1996. - 177 с;
2. Балахонов С.В., Никитин А.Я., Андаев Е.И., Алленов А.В., Борисенко Е.А., Зверева Т.В., Гордейко Н.С., Краснощеков В.Н., Аделыпин Р.В., Борисова Т.Н., Вержуцкая Ю.А., Вершинин Е.А., Сидорова Е.А. Эколого-паразитологическая характеристика совмещенных очагов инфекций, передаваемых клещами, на территории проведения саммита АТ-ЭС (2012 г.) // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2012. Т. 111. №4. С. 67-71
3. Mandl CW, Kroschewski Н, Allison SL, Kofler R, Holzmann H, Meixner T, Heinz FX. Adaptation of tick-borne encephalitis virus to BHK-21 cells results in the formation of multiple heparan sulfate binding sites in the envelope protein and attenuation in vivo. J Virol. 2001; 75 (12): 5627-37.
4. Воробьева M.C., Расщепкина M.H. История создания и развитие производства вакцины клещевого энцефалита в России и за рубежом. // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. №11, 2007, С. 21-26
5. Stoltz et al. 2011, Eckerle et al. 2013, Tigabu B1, Juelich T, Holbrook MR. Comparative analysis of immune responses to Russian spring-summer encephalitis and Omsk hemorrhagic fever viruses in mouse models. // Virology. 2010; 408 (1): 57-63
6. Emeny JM, Morgan MJ. Regulation of the interferon system: evidence that Vero cells have a genetic defect in interferon production. J Gen Virol. 1979; 43 (1): 247-52.
7. Морозова О.В., Гришечкин А.Е., Бахвалова В.Н., Исаева Е.И., Подчерняева Р.Я. Динамика репродукции вируса клещевого энцефалита в культурах клеток. // Вопросы вирусологии. 2012. Т. 57. №2. С. 40-43
8. Eckerle I, Lenk М, Ulrich RG. More novel hantaviruses and diversifying reservoir hosts--time for development of reservoir-derived cell culture models? // Viruses. 2014; 6 (3): 951-67;
9. Stoltz M,
Figure 00000001
KB, Hidmark
Figure 00000002
, Tolf C, Vene S, Ahlm C, Lindberg AM, Lundkvist
Figure 00000002
,
Figure 00000003
J. A model system for in vitro studies of bank vole borne viruses. // PLoS One. 201 1; 6 (12): e 28992.;
10. Mourya DT, Lakra RJ, Yadav PD, Tyagi P, Raut CG, Shete AM, Singh DK. Establishment of cell line from embryonic tissue of Pipistrellus ceylonicus bat species from India & its susceptibility to different viruses. // Indian J Med Res. 2013; 138: 224-31;
11. Sheng Li Xue Bao. [Primary culture and purification of cerebral astrocyte of tree shrew]. // Acta Phys. Sinica, 201 1; 63 (1): 89-92
12. Sanada T, Seto T, Ozaki Y, Saasa N, Yoshimatsu K, Arikawa J, Yoshii K, Kariwa H. Isolation of Hokkaido virus, genus Hantavirus, using a newly established cell line derived from the kidney of the grey red-backed vole (Myodes rufocanus bedfordiae). J Gen Virol. 2012; 93 (Pt 10): 2237-46

Claims (1)

  1. Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов, включающий гомогенизацию почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae, затем суспендирование в 5 мл раствора трипсина (0,167%) в фосфатно-солевом буфере (рН 7,4) и инкубирование суспензии при 37°С в течение 1 часа, после чего суспензию центрифугируют при 1200g, удаляют супернатант и ресуспендируют осадок в 5 мл среды RPMI1640 с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед./мл пенициллина, 100 м кг/мл стрептомицина и 2 мМ L-глутамина, затем первичные культуры клеток инкубируют при 37°С в атмосфере 5% СО2 до формирования монослоя.
RU2017117772A 2017-05-22 2017-05-22 Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов RU2688327C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017117772A RU2688327C2 (ru) 2017-05-22 2017-05-22 Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017117772A RU2688327C2 (ru) 2017-05-22 2017-05-22 Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2017117772A3 RU2017117772A3 (ru) 2018-11-23
RU2017117772A RU2017117772A (ru) 2018-11-23
RU2688327C2 true RU2688327C2 (ru) 2019-05-21

Family

ID=64400944

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017117772A RU2688327C2 (ru) 2017-05-22 2017-05-22 Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2688327C2 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2402603C1 (ru) * 2009-02-12 2010-10-27 Государственное учреждение Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН КЛЕТОЧНАЯ ЛИНИЯ МЕЛАНОМЫ ЧЕЛОВЕКА mel Me, ИСПОЛЬЗУЕМАЯ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН
RU2509803C2 (ru) * 2008-02-25 2014-03-20 Бакстер Интернэшнл Инк. Способ получения непрерывных клеточных линий и их применение

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2509803C2 (ru) * 2008-02-25 2014-03-20 Бакстер Интернэшнл Инк. Способ получения непрерывных клеточных линий и их применение
RU2402603C1 (ru) * 2009-02-12 2010-10-27 Государственное учреждение Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН КЛЕТОЧНАЯ ЛИНИЯ МЕЛАНОМЫ ЧЕЛОВЕКА mel Me, ИСПОЛЬЗУЕМАЯ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHRISTIAN W. MANDL et al., Adaptation of Tick-Borne Encephalitis Virus to BHK-21 Cells Results in the Formation of Multiple Heparan Sulfate Binding Sites in the Envelope Protein and Attenuation In Vivo, JOURNAL OF VIROLOGY, June 2001, Vol.75, No.12, pp.5627-5637. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2017117772A3 (ru) 2018-11-23
RU2017117772A (ru) 2018-11-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sunarto et al. Isolation and characterization of koi herpesvirus (KHV) from Indonesia: identification of a new genetic lineage
Fernandes et al. Endosymbiotic relationship between animal viruses and host cells: a study of rabies virus in tissue culture
KR101624089B1 (ko) 고감염가의 파보바이러스의 생산 방법
Davies et al. Characteristics of a Kenyan camelpox virus
CN111500542B (zh) 一种牛睾丸支持细胞癌细胞及其在痘病毒分离、培养中的应用
Mani et al. Serological evidence of lyssavirus infection among bats in Nagaland, a north-eastern state in India
Swaminathan et al. Establishment of caudal fin cell lines from tropical ornamental fishes Puntius fasciatus and Pristolepis fasciata endemic to the Western Ghats of India
Ma et al. Characteristics and viral propagation properties of a new human diploid cell line, walvax-2, and its suitability as a candidate cell substrate for vaccine production
Gao et al. Key techniques for somatic embryogenesis and plant regeneration of Pinus koraiensis
Li et al. Comparison of gE/gI-and TK/gE/gI-gene-deleted pseudorabies virus vaccines mediated by CRISPR/Cas9 and Cre/Lox systems
Pennington et al. New paradigms for the study of ocular alphaherpesvirus infections: insights into the use of non-traditional host model systems
CN109735499B (zh) 新生牛睾丸支持细胞永生化细胞系及其建立方法和应用
Wang et al. Establishment and characterization of a new cell line from koi brain (Cyprinus carpio L.)
RU2688327C2 (ru) Способ получения монослойной перевиваемой линии клеток почки восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae для репродукции вируса клещевого энцефалита и производства вирусного антигена для вакцин и диагностических препаратов
Justice et al. Quantitative proteomic analysis of enriched nuclear fractions from BK polyomavirus-infected primary renal proximal tubule epithelial cells
Dunnebacke et al. Preparation and cultivation of primary human amnion cells
CN114058566B (zh) 一种鳜皮肤细胞系及其应用
ES2795040T3 (es) Métodos para producir virus
Lawal et al. Propagation and molecular characterization of bioreactor adapted very virulent infectious bursal disease virus isolates of Malaysia
Diosi et al. Genetic control of resistance to mouse cytomegalovirus infection
CN107603942B (zh) 用于流感疫苗生产的mdck细胞株
TW200846471A (en) Lymantria xylina cell strain
CN105985446A (zh) 可优化病毒复制的培养基
Mase et al. Experimental assessment of the pathogenicity of H5N1 influenza A viruses isolated in Japan
Razmaraii et al. Study on propagation and adaptation of eds-76 avian adenovirus in duck and spf primary embryonic chicken cell culture comparison to duck and spf embryonated chicken eggs

Legal Events

Date Code Title Description
FZ9A Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal)

Effective date: 20181113