RU2675318C2 - Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum - Google Patents
Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum Download PDFInfo
- Publication number
- RU2675318C2 RU2675318C2 RU2016147461A RU2016147461A RU2675318C2 RU 2675318 C2 RU2675318 C2 RU 2675318C2 RU 2016147461 A RU2016147461 A RU 2016147461A RU 2016147461 A RU2016147461 A RU 2016147461A RU 2675318 C2 RU2675318 C2 RU 2675318C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- culture
- purpureum
- air
- cultivation
- biomass
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 25
- 241001494715 Porphyridium purpureum Species 0.000 title claims description 28
- 238000005286 illumination Methods 0.000 claims abstract description 11
- 230000001186 cumulative effect Effects 0.000 claims abstract description 10
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 7
- 230000005587 bubbling Effects 0.000 claims abstract description 6
- 238000005507 spraying Methods 0.000 claims abstract description 5
- 238000010926 purge Methods 0.000 claims abstract description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 11
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 9
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 abstract description 19
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 241000035759 Podospermum purpureum Species 0.000 abstract 1
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 28
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 18
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 14
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 14
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 10
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 description 5
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 4
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 3
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 3
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010004729 Phycoerythrin Proteins 0.000 description 2
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 2
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 230000037039 plant physiology Effects 0.000 description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 description 2
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 229920002444 Exopolysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 238000005033 Fourier transform infrared spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 241000206572 Rhodophyta Species 0.000 description 1
- 235000007122 Scenedesmus obliquus Nutrition 0.000 description 1
- 241000195662 Tetradesmus obliquus Species 0.000 description 1
- 235000021342 arachidonic acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000001651 autotrophic effect Effects 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 1
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 235000020673 eicosapentaenoic acid Nutrition 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 1
- 239000007792 gaseous phase Substances 0.000 description 1
- 235000003642 hunger Nutrition 0.000 description 1
- 238000009434 installation Methods 0.000 description 1
- 238000009533 lab test Methods 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 150000002823 nitrates Chemical class 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 150000003013 phosphoric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000037351 starvation Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009897 systematic effect Effects 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 235000021122 unsaturated fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 150000004670 unsaturated fatty acids Chemical class 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Virology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ, включающий в себя выращивание культуры P. purpureum при круглосуточной поверхностной освещенности 13 кЛк, температуре 26-28°С, скорости продувки атмосферного воздуха 1,25 л/л культуры в минуту, причем непрерывный барботаж культуры осуществляют путем распыления через аквариумный распылитель воздуха на среде по Тренкеншу, имеющей состав NaNO- 1,2 г⋅л, NaHPO×2HO - 0,45 г⋅л, NaEDTA - 0,037 г⋅л, FeCHO×7HO - 0,0265 г⋅л, MnCl×4HO - 0,0040 г⋅л, CoCl×6HO - 0,0031 г⋅л, (NH)MoO×4HO - 0,0009 г⋅л, KCr(SO)×24HO - 0,0017 г⋅л. Изобретение позволяет повысить выход биомассы в накопительном режиме в 2,7 раз по сравнению с прототипом. 3 ил., 2 табл., 1 пр.
Description
Изобретение относится к биотехнологии микроводорослей и предназначено для культивирования красной микроводоросли Porphyridium purpureum в лабораторных условиях.
Управление процессами роста микроводорослей и синтеза пигментов является основой биотехнологии получения биологически ценных веществ. Известно, что содержание растворенного углекислого газа в среде оказывает существенное влияние на продуктивность культур микроводорослей [3, 4, 12, 14]. При автотрофном выращивании снабжение водорослей углеродом обычно осуществляется с помощью газовоздушной смеси (воздух + СО2). Различные режимы подачи углекислоты в жидкую фазу направлены на поддержание оптимальной концентрации углерода в доступной форме в питательной среде. Когда рост культур микроводорослей не ограничен минеральным питанием и светом, недостаток углерода может являться основным лимитирующим фактором [3, 4]. С другой стороны, неоправданно высокий расход углекислоты при выращивании микроводорослей ведет к удорожанию получаемой биомассы. Выходом из такой ситуации может служить создание благоприятных условий, способствующих растворению углекислого газа, содержащегося в воздухе, в форме, оптимальной для использования клетками микроводорослей (например, увеличение удельной площади соприкосновения жидкой и газообразной фаз) [4, 14]. Таким образом, подбор способа подачи воздуха, способствующего поддержанию оптимального количества углерода в культуральной среде, для конкретной культуры и фотобиореактора при отсутствии минерального и светового лимитирования является определяющим для интенсивного культивирования микроводорослей.
Биомасса Р. ригригеит, выращенная в интенсивных условиях, является источником широкого спектра биологически активных веществ, таких как: пигменты (В-фикоэритрин), внеклеточные сульфополисахариды и ненасыщенные жирные кислоты, в том числе арахидоновая и эйкозапентаеновая кислоты [1, 5, 9, 10, 13].
В настоящее время известны несколько способов выращивания Р. purpureum: накопительный, непропорционально-проточный, квазинепрерывный (полупроточный) [1, 6, 10, 11, 13]. Чаще всего для выращивания Р. purpureum используют накопительный режим культивирования, который является наиболее разработанным, изученным и технически легко реализуемым. В литературе описаны различные режимы подачи углекислоты в жидкую фазу, варьирующие временной интервал (непрерывная или импульсная) или объемную концентрацию СО2 в газовоздушной смеси, все они направлены на поддержание оптимальной концентрации углерода в доступной форме в среде для культивирования микроводорослей. Аналогичный результат может быть получен за счет повышения скорости растворения углекислоты воздуха в питательной среде в результате увеличения поверхности соприкосновения фаз воздух-жидкая среда.
При проведении предельной оценки скорости роста культур морских микроводорослей на воздухе, скорость подачи которого составляет 1 л/мин на 1 л культуры, считаем, что объемная концентрация углекислого газа в атмосферном воздухе составляет 0,03% [2], тогда объем СО2, проходящий через 1 л культуры за сутки составит:
V (CO2)=0,432 л/сут.
Считая условия нормальными и учитывая молярную массу СО2, получим эквивалент по массе углекислого газа, проходящего через 1 л культуры за сутки:
m (CO2)=0,849 г/сут.
Рассчитав массовую долю углерода в CO2 (w=0,273), получим массу углерода в подаваемом воздухе на 1 л культуры в сутки:
m (С)=0,231 г/сут.
Считая условия для растворения CO2 идеальными (углекислый газ полностью переходит в культуральную жидкость), и, считая, что содержание углерода в биомассе микроводорослей составляет 50% [8], получим предельное значение продуктивности культур микроводорослей при выращивании на воздухе с 1 л культуры в сутки:
Pm=463 мг сухой биомассы на литр в сутки.
Полученные теоретические значения максимальной продуктивности культур микроводорослей верны только для условий ограничения скорости роста количеством подаваемого углекислого газа, в то время как световые условия и минеральное обеспечение не является лимитирующими факторами [3, 12].
Известен способ культивирования Р. purpureum, при котором выращивание микроводоросли происходит в трубчатых фотобиореакторах [10]. Культивирование осуществляют в теплицах при естественной освещенности и температуре. В способе Р. purpureum выращивают на питательной среде F/2, отбор 1/3 части культуры и добавление свежей среды проводят каждые 7 суток. Максимальная плотность культуры составляет 1,43⋅107 кл⋅мл-1. Водоросли выращивают в трубчатых фотобиореакторах с длиной 10 м и диаметром 0,04 м при естественном уровне освещенности и температуре. Перемешивание и подача углекислоты в культуру осуществляется фильтрованным воздухом стандартных параметров (с содержанием 0,039% CO2), который непрерывно подается через стеклянную трубку диаметром 1 мм внутрь емкости для создания пузырьков «воздух-CO2» внутри культуры со скоростью 0,6 л (v/v). При таком режиме культивирования Р. purpureum средняя продуктивность по биомассе составляет 47,04 мг⋅л-1⋅сут-11, а максимальная продуктивность - 145 мг⋅л-1⋅сут-1.
Указанная работа имеет принципиальное значение, так как подтверждает возможность получения биомассы Р. purpureum при выращивании на атмосферном воздухе. Однако предложенный способ выращивания микроводоросли Р. purpureum для получения биомассы имеет некоторые ограничения. Наиболее важными из них являются:
а) более низкая плотность культуры и продуктивность с единицы объема по сравнению с предлагаемым способом;
б) значительные затраты на предлагаемую установку, в том числе и закупку для каждого цикла выращивания трубчатых реакторов;
в) более низкая эффективность использования CO2 воздуха в связи с крайне малым количеством и большим диаметром пор распылителя по сравнению с предлагаемым способом.
Задача - культивировать микроводоросли без дополнительного внесения углекислого газа.
Технический результат от использования изобретения заключается в удешевлении способа и повышении выхода биомассы.
Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum без дополнительного внесения углекислого газа основан на использовании накопительного режима, а подбор условий культивирования, способствующих повышению продуктивности культуры при выращивании на воздухе, были выполнены авторами в лабораторных экспериментах.
Поставленная цель достигается тем, что в способе выращивания микроводоросли Р. purpureum для получения биомассы культура микроводоросли выращивается методом накопительного культивирования на питательной среде по Тренкеншу [6] (таблица 1), в условиях искусственного освещения, барботирования воздухом без дополнительной добавки CO2.
Заявляемое изобретение поясняется иллюстрациями. Фиг. 1 - Общий вид аквариумного распылителя воздуха. Фиг. 2 - Общий вид культиваторов: А - с использованием стеклянного капилляра, Б - аквариумного распылителя воздуха. Фиг. 3 - Накопительные кривые роста Р. purpureum при различных способах подачи воздуха в фотобиореактор.
Температура поддерживается на уровне 28°С, рН среды - 8-9 ед. Культура микроводоросли выращивается в лабораторных фотобиореакторах плоскопараллельного типа толщиной 2 см при круглосуточном искусственном освещении, средняя освещенность на поверхности фотобиореакторов составляет 13 кЛк. Барботаж культуры осуществляется путем распыления воздуха при помощи аквариумного компрессора, скорость подачи воздуха составляет 1,25 л/л культуры в минуту.
Общим для прототипа и заявляемого способа является культивирование при барботировании атмосферным воздухом без дополнительного внесения углекислого газа. Основные отличия от прототипа заключаются в том, что в заявляемом способе культивирования используются другая питательная середа, культиваторы иного (плоскопараллельного) типа, а барботаж осуществляется путем распыления воздуха посредством аквариумного распылителя (Фиг. 1).
Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum реализуется следующим образом:
Для культивирования может быть использован штамм Porphyridium purpureum (Bory) Ross (синоним Porphyridium cruentum .) (штамм IMBR-70) из коллекции ФГБУН ИМБИ. Его коллекционное хранение осуществляется на питательной среде Golberg и температуре 20-25°С с пересевом каждые 1,5-2 месяца.
Получение инокулята. Для получения инокулята культура водоросли из музея 5-7 дней выращивается методом накопительной культуры на среде по Тренкеншу (таблица 1), разбавленной водой 1:1 при освещении 6 кЛк. Затем культура переносится в неразбавленную среду Тренкеншу и культивируется при искусственном освещении люминесцентными лампами дневного света с освещенностью 13 кЛк в накопительном режиме при непрерывном барботаже газо-воздушной смесью (1 л мин-1⋅л-1 культуры), содержащей 2-3% CO2 (по объему). Для засева культиваторов используется активно делящаяся культура, взятая на линейной стадии роста, когда ее продуктивность максимальна. Суспензия клеток вносится в культиваторы из такого расчета, чтобы начальная плотность культур составляла не менее 0,1-0,2 г⋅л-1 сухого вещества.
Процесс культивирования. Питательной средой для предлагаемого способа культивирования служит питательная среда по Тренкеншу (см. табл. 1). Выращивание водоросли осуществляется при поверхностной освещенности культиваторов 13 кЛк, скорости продувки воздухом 1,25 л⋅мин-1⋅л-1 культуры с помощью аквариумного распылителя и температуре питательной среды 26-28°С. Р. purpureum культивируется в накопительном режиме, в плоскопараллельных культиваторах. Объем культуры в культиваторах составлял 2 л, начальная плотность культуры - 0,25-0,4 г СВ⋅л-1.
При накопительном режиме выращивания систематического внесения биогенных элементов в культуру не происходит, а плотность культуры увеличивается и достигает максимального значения (Фиг. 3)
Общий выход биомассы Р. purpureum при накопительном культивировании определяется конечным сбором биомассы, собираемой из культиваторов по окончании технологического цикла. С целью выявления оптимального выявления барботажа провели эксперимент. В первом варианте эксперимента, который позволил выбрать наиболее эффективный барботаж, его осуществляют через капилляр с внутренним диаметром 4 мм (Фиг. 2А), во втором - через аквариумный распылитель воздуха, представляющий собой пластиковую трубку длиной 15 см, диаметром 5 мм, с отверстиями размером не более 0,1 мм, выполненных в количестве 50 шт. на 1 см длины (Фиг. 2Б).
Данные, характеризующие продуктивность культуры Р. purpureum по биомассе при накопительном режиме культивирования при различных способах подачи воздуха представлены в табл. 2.
Первоначальный запас нитратов и фосфатов обеспечивает поддержание клеток в культуре в вегетативном состоянии. В предлагаемом способе культивирования по результатам проведенных экспериментов максимальная продуктивность культуры Р. purpureum при выращивании на распыленном воздухе в 4 раза превышает ее продуктивность при подаче воздуха через капилляр, а средняя за 6 суток выращивания - в 5 раз.
Разработан эффективный способ, не требующий дополнительного внесения СО2 при культивирования одноклеточной красной микроводоросли Р. purpureum, биомасса которой является сырьем для получения БАВ и пигментов, который может быть положен в основу ее промышленного выращивания.
Предложенный способ обладает преимуществом по сравнению с прототипом. Так, в предлагаемом способе максимальная продуктивность по биомассе по сравнению с прототипом выше в 2,7 раза, а средняя - в 7,8 раза.
Пример
Для культивирования использовали культуру микроводоросли Р. purpureum штамм IMBR-70, имеющийся в коллекции ФГБУН ИМБИ.
Для получения инокулята культуру водоросли из музея 5-7 дней выращивали методом накопительной культуры на среде по Тренкеншу (таблица 1), разбавленной водой 1:1 при средней освещенности 6 кЛк.
Затем культуру переносили в неразбавленную среду Тренкеншу: NaNO3 - 1,2 г⋅л-1, NaH2PO4 × 2H2O - 0,45 г⋅л-1, Na2EDTA - 0,037 г⋅л-1, FeC6H5O7 × 7H2O - 0,0265 г⋅л-1, MnCl2 × 4H2O - 0,0040 г⋅л-1, CoCl2 × 6H2O - 0,0031 г⋅л-1, (NH4)6Mo7O24 × 4H2O - 0,0009 г⋅л-1, K2Cr2(SO4)4 × 24H2O - 0,0017 г⋅л-1 и /продолжали культивировать в накопительном режиме при непрерывном барботаже газо-воздушной смесью (1 л⋅мин-1⋅л-1 культуры), содержащей 2-3% CO2 (по объему). Культуру микроводоросли выращивали в лабораторных фотобиореакторах плоскопараллельного типа толщиной 2 см при круглосуточном искусственном освещении люминесцентными лампами дневного света, средняя освещенность на поверхности фотобиореакторов составляла 13 кЛк. Температуру поддерживали на уровне 28°С, рН среды - 8-9 ед. Полученную культуру использовали в качестве инокулята. Для засева культиваторов использовали активно делящуюся культуру, взятую на линейной стадии роста, когда ее продуктивность максимальна. Суспензию клеток вносили в культиваторы из такого расчета, чтобы начальная плотность культур составляла не менее 0,1-0,2 г⋅л-1 сухого вещества. Культуру переносили в аналогичные культиваторы, содержащие свежую питательную среду по Тренкеншу и продолжали выращивать в течение 7-8 суток при тех же условиях, причем барботаж культуры осуществляли посредством распыления атмосферного воздуха через аквариумный распылитель, скорость подачи которого составляла 1,25 л/л культуры в минуту.
Сбор полученной биомассы осуществляли через 7-8 суток. Выход полученной биомассы составлял около 0,4 г СВ с 1 л культуры в сутки.
Источники информации
1. Боровков А.Б., Гудвилович И.Н., Новикова Т.М. Продукционные характеристики полупроточной культуры Porphyridium purpureum (Bory) Ross, при различной освещенности // Фундаментальные и прикладные проблемы современной экспериментальной биологии растений: сб. материалов Всерос. науч. конф. с междунар. участием и школы для молодых ученых, посвящ. 125-летию Ин-та физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН (Москва, 23-27 нояб. 2015 г.). Москва, 2015. С. 108-112.
2. Полевой В.В. Физиология растений. М.: Высшая школа, 1989. 464 с.
3. Пронина Н.А. Организация и физиологическая роль СО2-концентрирующего механизма при фотосинтезе микроводорослей // Физиология растений. 2000. Т. 47, №5. С. 801-810.
4. Семененко В.Е., Владимирова М.Г., Цоглин Л.Н., Попова М.А. Зависимость роста продуктивности и интенсивности фотосинтеза хлореллы от концентрации CO2 в газовой смеси и коэффициента вентиляции культуры // Управляемый биосинтез / М.: Наука, 1966. С. 128-136.
5 О.Г., Шнюкова Э.I., Мушак П.О., Лось С.I., Фомiшина Р.М., Тупiк Н.Д., Лозова Г.I. Бiохiмiя червоних водоростей. Киев, 2007. 320 с.
6. Тренкеншу Р.П., Терсков И.А., Фуряев Е.А., Ярунцов С.А. Ростовые и продукционные показатели водоросли Porphyridium cruentum в плотных культурах // Интенсивная светокультура растений. Красноярск, 1977. С. 191-200.
7. Цоглин Л.Н., Пронина Н.А. Биотехнология микроводорослей. Москва: Научный мир, 2013. 184 с.
8. Anderson L.A. On the hydrogen and oxygen-content of marine phytoplankton //Deep Sea Res. I. 1995. V. 42. P. 1675-1680.
9. Fabregas J., Garcia D., Morales E., Dominguez A., Otero A. Renewal rate of semicontinuous cultures of the microalga Porphyridium cruentum modifies phycoerythrin, exopolysaccharide and fatty acid productivity // J. Ferment. Bioeng. 1998. V. 86, No 5. P. 477-481.
10. Fuentes-Grunewald C., Bayliss C, Zanain M., Pooley C, Scolamacchia M., Silkina A. Evaluation of batch and semi-continuous culture of Porphyridium purpureum in a photobioreactor in high latitudes using Fourier Transform Infrared spectroscopy for monitoring biomass composition and metabolites production // Biores. Technol. 2015. V. 189. P. 357-363.
11. Gudvilovich I.N., Borovkov A.B. Production characteristics of the microalga Porphyridium purpureum (Bory) Drew Ross (Rhodophyta) in batch and quasi-continuous culture // Intern. J. Alg. 2014. V. 16, No 3. P. 271-283.
12. Ho Sh.-H., Chen Ch.-Y., Chang Jo-Sh. Effect of light intensity and nitrogen starvation on CO2 fixation and lipid / carbonhydrate production of an indigenous microalga Scenedesmus obliquus CNW-N // Biores. Technol. 2012. V. 113. P. 244-252.
13. Kathiresan S., Sarada R., Bhattacharya S., Ravishankar A. Culture media optimization for growth and phycoerythrin production from Porphyridium purpureum // Biotech, and Bioeng. 2006. V. 96. P. 456-463.
14. Ying K., Al-Mashhadani M. K.H., Hanotu J.O., Gilmour D.J., Zimmerman W.B. Enhanced mass transfer in microbubble driven airlift bioreactor for microalgal culture // Engineering. 2013. V. 5. P. 735-743.
Claims (2)
- Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum, предусматривающий накопительный режим культивирования в течение 7 сут на питательной среде в фитобиореакторах при непрерывном барботировании атмосферным воздухом, отличающийся тем, что культуру Р. purpureum выращивают при круглосуточной искусственной поверхностной освещенности 13 кЛк, температуре 26-28°С, при этом барботаж культуры осуществляют непрерывно атмосферным воздухом путем распыления через аквариумный распылитель при скорости продувки атмосферного воздуха 1,25 л/л культуры в минуту, на среде по Тренкеншу, имеющей состав, г⋅л-1:
-
NaNO3 1,2 NaH2PO4×2H2O 0,45 Na2EDTA 0,037 FeC6H5O7×7H2O 0,0265 MnC12×4H2O 0,0040 CoCl2×6H2O 0,0031 (NH4)6Mo7O24×4H2O 0,0009 K2Cr2(SO4)4×24H2O 0,0017
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016147461A RU2675318C2 (ru) | 2016-12-02 | 2016-12-02 | Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016147461A RU2675318C2 (ru) | 2016-12-02 | 2016-12-02 | Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2016147461A RU2016147461A (ru) | 2018-06-05 |
RU2016147461A3 RU2016147461A3 (ru) | 2018-06-25 |
RU2675318C2 true RU2675318C2 (ru) | 2018-12-18 |
Family
ID=62557449
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016147461A RU2675318C2 (ru) | 2016-12-02 | 2016-12-02 | Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2675318C2 (ru) |
-
2016
- 2016-12-02 RU RU2016147461A patent/RU2675318C2/ru active IP Right Revival
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Fuentes-Grunewald C. et al. Evaluation of batch and semi-continuous culture of Porphyridium purpureum in a photobioreactor in high latitudes using Fourier Transform Infrared spectroscopy for monitoring biomass composition and metabolites production // Biores. Technol. 2015. V. 189. P. 357-363. * |
Fuentes-Grunewald C. et al. Evaluation of batch and semi-continuous culture of Porphyridium purpureum in a photobioreactor in high latitudes using Fourier Transform Infrared spectroscopy for monitoring biomass composition and metabolites production // Biores. Technol. 2015. V. 189. P. 357-363. ГУДВИЛОВИЧ И.Н. и др. Продукционные характеристики Porphyridium purpureum (Bory) Ross в условиях накопительной и квазинепрерывной культуры, Algologia, 2014, 24 (1), с.34-46. Технология промышленного культивирования спирулины (Spirulina pratensis), Севастополь, 2004, с.15. * |
ГУДВИЛОВИЧ И.Н. и др. Продукционные характеристики Porphyridium purpureum (Bory) Ross в условиях накопительной и квазинепрерывной культуры, Algologia, 2014, 24 (1), с.34-46. * |
Технология промышленного культивирования спирулины (Spirulina pratensis), Севастополь, 2004, с.15. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2016147461A (ru) | 2018-06-05 |
RU2016147461A3 (ru) | 2018-06-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR101577820B1 (ko) | 종속영양 미세조류의 신규 배양 방법 | |
Borowitzka | Commercial production of microalgae: ponds, tanks, tubes and fermenters | |
Pulz | Photobioreactors: production systems for phototrophic microorganisms | |
AU2012215362B2 (en) | Method and bioreactor for the cultivation of microorganisms | |
CN111248139B (zh) | 一种高密度轮虫的培养装置及方法 | |
CN104046566B (zh) | 一种快速制备高密度高纯藻种的方法 | |
Erbland et al. | Design and performance of a low-cost, automated, large-scale photobioreactor for microalgae production | |
CN108410737A (zh) | 一种紫球藻的两步培养法 | |
RU150345U1 (ru) | Установка для культивирования низших фототрофов | |
CN103184157B (zh) | 一种治理原生动物并实现稳定高产的藻类养殖工艺 | |
RU2675318C2 (ru) | Способ выращивания микроводоросли Porphyridium purpureum | |
TW201529843A (zh) | 用於微生物大量培養之系統及其所獲得之產物 | |
US12012581B2 (en) | Method and system for heterotrophic and mixotrophic cultivation of microalgae | |
CN102428896A (zh) | 一种淡水轮虫休眠卵的快速生产方法 | |
Trinh | Comparison of Growth of Chlorella vulgaris in Flat-Plate Photobioreactor Using Batch, Fed-Batch, and Repeated Fed-Batch Techniques with Various Concentrations of Walne Medium | |
Ritcharoen et al. | Cultivation options for indoor and outdoor growth of Chaetoceros gracilis with airlift photobioreactors. | |
Imamoglu et al. | Semi-continuous cultivation of Haematococcus pluvialis for commercial production | |
Lelekov et al. | Production characteristics of Phaeodactylum tricornutum Bohlin grown on medium with artificial sea water | |
RU2644261C2 (ru) | Способ культивирования микроводоросли Chlorella | |
Ramanathan et al. | Construction of vertical tubular photobioreactor for microalgae cultivation | |
JP2007006763A (ja) | 水産動物用餌料とその製造方法 | |
CN115449485B (zh) | 一种养殖海水小球藻的方法 | |
CN110257250A (zh) | 牟氏角毛藻的培养基组合物及培养方法及光生物反应器 | |
KR20150116053A (ko) | 지질 함량이 증진된 미세조류의 배양방법 | |
RU2541446C1 (ru) | Способ культивирования одноклеточной зеленой микроводоросли dunaliella salina для получения биомассы |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20181203 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20191218 |