RU2668406C1 - Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом - Google Patents

Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом Download PDF

Info

Publication number
RU2668406C1
RU2668406C1 RU2017122657A RU2017122657A RU2668406C1 RU 2668406 C1 RU2668406 C1 RU 2668406C1 RU 2017122657 A RU2017122657 A RU 2017122657A RU 2017122657 A RU2017122657 A RU 2017122657A RU 2668406 C1 RU2668406 C1 RU 2668406C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
patients
cystic fibrosis
crops
biomaterial
Prior art date
Application number
RU2017122657A
Other languages
English (en)
Inventor
Ольга Владимировна Кондратенко
Артем Викторович Лямин
Данир Дамирович Исматуллин
Original Assignee
Ольга Владимировна Кондратенко
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ольга Владимировна Кондратенко filed Critical Ольга Владимировна Кондратенко
Priority to RU2017122657A priority Critical patent/RU2668406C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2668406C1 publication Critical patent/RU2668406C1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано для первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом, при проведении микробиологического исследования. Способ предусматривает посев на поверхность чашек с 5% кровяным агаром, шоколадным агаром, универсальной хромогенной средой, селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) гомогенизированного материала из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием техники посева «штрихом» с последующим инкубированием при заданных параметрах процесса с ежедневным просмотром посевов. На поверхность чашек с агаром Сабуро производится посев гомогенизированного материала методом бляшек с последующей инкубацией при 28°C до 14 суток с ежедневными просмотрами посевов. Изобретение позволяет улучшить диагностику инфекционных осложнений у пациентов с муковисцидозом. 2 табл., 2 пр.

Description

Область техники, к которой относится изобретение
Изобретение относится к медицине, а именно к микробиологии, и может быть использовано для первичного посева биоматериала, выделенного из дыхательных путей пациентов с муковисцидозом при проведении микробиологического исследования.
Уровень техники
Известны способы первичного посева биоматериала, выделенного из дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием различных комбинаций наборов питательных сред: Мак-Конки, маннитолового солевого агара, селективной среды для Burkholderia cepacia, шоколадного агара, дезоксирибонуклеазной среды; с использованием агара Сабуро, маннитолового солевого агара, селективной среды для Burkholderia cepacia, шоколадного агара, среды Левенштейна-Йенсена; с использованием кровяного агара, шоколадного агара, агара Эндо, желточно-солевого агара, агара Сабуро, цетримидного агара и селективной среды BCSA для Burkholderia cepacia.
Известен способ первичного посева биоматериала, выделенного с дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием 5 питательных сред: агара Мак-Конки, маннитолового солевого агара, селективной среды для Burkholderia cepacia, шоколадного агара, дезоксирибонуклеазной среды. Суть метода заключается в первичном посеве биоматериала на чашки Петри с вышеуказанными средами с последующей инкубацией при 35-37°С.[Lisa Saiman, Jane Seigel. Infection Control Recommendations for Patients With Cystic Fibrosis: Microbiology, Control Practices to Prevent Patien-to-Patient Transmission. The Official Journal of the Society for Healthcare Epidemiology of America. May 2003, Vol. 24, №5].
Недостатками данного способа являются отсутствие в предлагаемой схеме питательных сред для культивирования грибов, что ограничивает возможности их выделения из биоматериала.
Известен способ первичного посева биоматериала, выделенного из дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием 5 питательных сред: агара Сабуро, маннитолового солевого агара, селективной среды для Burkholderia cepacia, шоколадного агара, среды Левенштейна-Йенсена. Суть метода заключается в первичном посеве биоматериала на чашки Петри с вышеуказанными средами с последующей инкубацией при 28-37°С [Laboratory Standarts for Processing Microbiological Samples from People with cystic fibrosis. First edition. September 2010].
Недостатками указанного способа является отсутствие питательных сред для первичного выделения энтеробактерий и ряда других грамотрицательных палочек, а также гемолизирующих стрептококков.
За прототип принимается способ первичного посева биоматериала с использованием кровяного агара, шоколадного агара, агара Эндо, желточно-солевого агара, агара Сабуро, цетримидного агара и селективной среды BCSA для Burkholderia cepacia. Суть способа заключается в первичном посеве биоматериала на чашки Петри с вышеуказанными средами с последующей инкубацией при 28-37°С. [Национальный консенсус «Муковисцидоз: определение, диагностические критерии, терапия», Москва, 2016 год].
Недостатками данного метода является использование набора из 7 питательных сред, что экономически является более затратным, чем при использовании других алгоритмов исследования. При этом часть сред являются дублирующими друг друга по ростовым свойствам искомых микроорганизмов.
Раскрытие изобретения
Задачей изобретения является улучшение диагностики инфекционных осложнений у пациентов с муковисцидозом путем получения в первичном посеве отделяемого из дыхательных путей от пациентов с муковисцидозом максимального количества клинически значимых микроорганизмов с использованием минимального количества питательных сред. Технический результат изобретения заключается в том, что заявленный способ посева с использованием предлагаемого набора питательных сред позволяет одномоментно выделить при первичном посеве микроорганизмы, имеющие клиническое значение при муковисцидозе: бактерии рода Pseudomonas, Burkholderia, Acinetobacter, Stenotrophomonas, Achromobacter, Chryseobacterium, Brevundimonas, Inquilinus, Kingella, Staphylococcus, Mycobacterium, а также энтеробактерии и грибы.
Это достигается тем, что в отличие от известных способов первичного посева биоматериала, выделенного с дыхательных путей пациентов с муковисцидозом используется набор из 5 питательных сред, включающий в себя 5% кровяной агар с дефибринированной бараньей кровью [Atlas, Ronald М., 1946-. Handbook of microbiological media. - Taylor & Francis, 2010-01-01.], шоколадный агар, универсальную хромогенную среду [1. Pezzlo М (1998), Clinical Microbiology Reviews 1:268-280; 2.Wilkie M.E., Almond M.K., Marsh F.P. (1992), British Medical Journal 305:1137-1141; 3. Friedman M.P. et al (1991), Journal of Clinical Microbiology, 29:2385-2389; 4. Murray P., Traynor P. Hopson D., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:1600-1601; 5. Soriano F., Ponte C., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:3033-3034; 6. Merlino et al (1995) Abstr. Austr. Microbiol. 16(4):17-3.], селективную среду для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) содержащую бацитрацин и полимиксина сульфат [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2012/12473], а также агар Сабуро с хлорамфениколом.
Осуществление изобретения
Сущность предложенного метода заключается в следующем: на поверхность чашек с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью, шоколадным агаром, универсальной хромогенной средой, селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-arap) с бацитрацином и полимиксина сульфатом производится посев гомогенизированного материала из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием техники посева «штрихом». Затем засеянные чашки с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью, универсальной хромогенной средой инкубируются в термостате при температуре 37°С в течение 24-48 часов с ежедневным просмотром посевов. Чашки с шоколадным агаром инкубируются при 35°С в атмосфере 5-7% CO2 в течение 24-48 часов с ежедневным просмотром посевов. Засеянные чашки с селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-arap) с бацитрацином и полимиксина сульфатом инкубируются 24-48 часов при температуре 37°С, далее инкубируются до 14 суток при температуре 28°С с ежедневным просмотром посевов. На поверхность чашек с агаром Сабуро с хлорамфениколом производится посев гомогенизированного материала методом бляшек с последующей инкубацией при 28°С до 14 суток с ежедневными просмотрами посевов.
Предлагаемый способ позволяет получать точные качественные и количественные характеристики состояния микробиоценоза дыхательных путей пациентов с муковисцидозом для улучшения диагностики инфекционных осложнений у данной группы пациентов.
Это может быть необходимо для проведения регулярного микробиологического мониторинга пациентов с муковисцидозом, а также для статистических исследований в рамках ведения ежегодного единого Регистра больных муковисцидозом в Российской Федерации [проект Регистр больных муковисцидозом Российской Федерации одобрен Комитетов по Этике ФГБНУ «МГНЦ» 20 декабря 2012 года].
В предложенном способе первичного посева биоматериала, выделенного с дыхательных путей пациентов с муковисцидозом предусмотрены следующие отличия: использование селективной среды для культивирования Burkholderia cepacia (OFPBL-arap) с бацитрацином и полимиксина сульфатом позволяет выделять из первичного материала не только указанного возбудителя, но также и представителей родов Achromobacter spp., Chryseobacterium spp., Brevundimonas spp., Inquilinus spp., Kingella spp.и некоторых других редко встречающихся представителей неферментирующих грамотрицательных бактерий, а использование продленного срока инкубации посевов позволяет использовать ее для выявления нетуберкулезных; микобактерий (в частности, Mycobacterium abscessus); применение универсальной хромогенной среды позволяет выявлять и дифференцировать ряд энтеробактерий, Staphylococcus aureus, а также бактерии рода Pseudomonas, Acinetobacter, Stenotrophomonas в первичном посеве, что позволит отказаться от использования дополнительного перечня питательных сред.
Осуществление предлагаемого способа можно продемонстрировать на следующих примерах:
Пример 1.
Пациент С., 7 лет. Диагноз: муковисцидоз, смешанная форма, тяжелое течение. В лабораторию поступил биоматериал мокрота. Произведен первичный посев двумя способами: способом, описанном в прототипе, а также предлагаемым нами способом с последующей инкубацией при 28-37°С.
Были получены следующие результаты:
Figure 00000001
Figure 00000002
Таким образом, благодаря применению предлагаемого нами способа был получен рост 4 микроорганизмов на 4 питательных средах, в то время как при использовании способа, описанного в прототипе, был получен рост 3 культур микроорганизмов на 5 питательных средах при первичном посеве. При использовании предлагаемого нами способа посева был получен рост культуры Pseudomonas aeruginosa 106 на чашках с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью, шоколадным агаром и универсальной хромогенной средой (3 чашки). В то же время, при использовании способа посева, описанного в прототипе, был получен рост культуры Pseudomonas aeruginosa 106 на чашках с кровяным агаром, шоколадным агаром и средой Эндо и цетримидном агаре (4 чашки).
При использовании предлагаемого нами способа посева был также получен рост культуры Kingella denitrificans 104, рост которой не мог быть получен на селективной среде BCSA для Burkholderia cepacia ввиду ее узкоспецифичности. Тем самым, несмотря на то, что при использовании способа, описанного в прототипе, применяется 7 питательных сред, это не приводит к увеличению выделения количества микрорганизмов в первичном посеве. Кроме того, рост большинства возбудителей отмечается не только на основных средах (таких, как кровяной агар), но и дублируется на элективных средах (цетримидный агар).
Таким образом, использование предлагаемого нами способа позволяет получать более широкий диапазон возбудителей при первичном посеве с использованием меньшего количества питательных сред.
Пример 2.
Пациент А., 13 лет. Диагноз: муковисцидоз, смешанная форма, тяжелое течение. В лабораторию поступил биоматериал мокрота. Произведен первичный посев двумя способами: способом, описанном в прототипе, а также предлагаемым нами способом с последующей инкубацией при 28-37°С.
Были получены следующие результаты:
Figure 00000003
Figure 00000004
Таким образом, благодаря применению предлагаемого нами способа первичного посева было выделено 5 видов микроорганизмов, в то время как при использовании способа, описанного в прототипе, в первичном посеве получено 3 вида микроорганизмов. Благодаря использованию универсальной хромогенной среды был получен рост 2 культур энтеробактерий (Enterobacter aerogenes 106, Citrobacter freundii 105), которые нельзя было различить при использовании других сред ввиду морфологической идентичности колоний. Благодаря использованию селективной среды для Burkholderia cepacia (OFPBL-arap) с бацитрацином и полимиксин сульфатом был получен рост не только культуры Burkholderia cepacia 104, но и культуры Chryseobacterium indologenes 103, рост которой не мог быть получен на селективной среде BCSA для Burkholderia cepacia ввиду ее узкоспецифичности. Кроме того, благодаря продленной схеме инкубации - 14 суток - был получен рост такого значимого возбудителя, как Mycobacterium abscesus 104 (на 14 сутки инкубирования).
Таким образом, использование предлагаемого нами способа позволяет получать более широкий диапазон возбудителей при первичном посеве и минимизировать риск некорректной идентификации морфологически сходных культур энтеробактерий.

Claims (1)

  1. Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом, отличающийся тем, что на поверхность чашек с 5% кровяным агаром, шоколадным агаром, универсальной хромогенной средой, селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) производят посев гомогенизированного материала с нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом с использованием техники посева «штрихом»; затем засеянные чашки с 5% кровяным агаром, универсальной хромогенной средой инкубируют в термостате при температуре 37°C в течение 24-48 часов с ежедневным просмотром посевов; чашки с шоколадным агаром инкубируют при 35°C в атмосфере 5-7% CO2 в течение 24-48 часов с ежедневным просмотром посевов; засеянные чашки с селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) инкубируют 24-48 часов при температуре 37°C, далее инкубируют до 14 суток при температуре 28°C с ежедневным просмотром посевов; на поверхность чашек с агаром Сабуро производят посев гомогенизированного материала методом бляшек с последующей инкубацией при 28°C до 14 суток с ежедневными просмотрами посевов.
RU2017122657A 2017-06-27 2017-06-27 Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом RU2668406C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017122657A RU2668406C1 (ru) 2017-06-27 2017-06-27 Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017122657A RU2668406C1 (ru) 2017-06-27 2017-06-27 Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2668406C1 true RU2668406C1 (ru) 2018-09-28

Family

ID=63798113

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017122657A RU2668406C1 (ru) 2017-06-27 2017-06-27 Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2668406C1 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2686052C1 (ru) * 2018-10-01 2019-04-24 Андрей Владимирович Козлов Способ оценки активности инфекционного процесса, вызванного неферментирующими грамотрицательными бактериями в бронхолегочной системе у пациентов с муковисцидозом
CN115491407A (zh) * 2022-11-17 2022-12-20 山东格研生物技术有限公司 一种洋葱伯克霍尔德氏菌显色培养基及其应用
RU2789114C1 (ru) * 2022-08-16 2023-01-30 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ оценки риска осложнений инфекционного процесса у пациентов с муковисцидозом

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АШЕРОВА И.К., КАПРАНОВ Н.И. Современные подходы к диагностике и лечению распираторных инфекций у больных муковисцидозом, Клиническая микробиология и антибактериальная химиотерапия, 2014, Т. 16,N 2, с. 100-110. *
КОНДРАТЬЕВА Е.И. и др. Национальный консенсус "Муковисцидоз: Определение, диагностические критерии, терапия", М., 2016, с. 25-33. *
КОНДРАТЬЕВА Е.И. и др. Национальный консенсус "Муковисцидоз: Определение, диагностические критерии, терапия", М., 2016, с. 25-33. ЧЕРНУХА М.Ю., АВЕТИСЯН Л.Р. и др. Алгоритм микробиологической диагностики хронической инфекции легких у больных муковисцидозом, Клиническая микробиология и антибактериальная химиотерапия, 2014, Т. 16,N 4, с.312-324. АШЕРОВА И.К., КАПРАНОВ Н.И. Современные подходы к диагностике и лечению распираторных инфекций у больных муковисцидозом, Клиническая микробиология и антибактериальная химиотерапия, 2014, Т. 16,N 2, с. 100-110. *
ЧЕРНУХА М.Ю., АВЕТИСЯН Л.Р. и др. Алгоритм микробиологической диагностики хронической инфекции легких у больных муковисцидозом, Клиническая микробиология и антибактериальная химиотерапия, 2014, Т. 16,N 4, с.312-324. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2686052C1 (ru) * 2018-10-01 2019-04-24 Андрей Владимирович Козлов Способ оценки активности инфекционного процесса, вызванного неферментирующими грамотрицательными бактериями в бронхолегочной системе у пациентов с муковисцидозом
RU2789114C1 (ru) * 2022-08-16 2023-01-30 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ оценки риска осложнений инфекционного процесса у пациентов с муковисцидозом
CN115491407A (zh) * 2022-11-17 2022-12-20 山东格研生物技术有限公司 一种洋葱伯克霍尔德氏菌显色培养基及其应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101908411B1 (ko) 신규한 국내형 메티실린-내성 황색포도상구균 균주 및 이를 이용한 바이오필름 억제제 스크리닝 방법
Aalbæk et al. Coryneform bacteria associated with canine otitis externa
RU2668406C1 (ru) Способ первичного посева биоматериала, выделенного из нижних дыхательных путей пациентов с муковисцидозом
Abedin et al. Occurrence and antimicrobial susceptibility profiling of bacteria isolated from cultured Pangas Catfish (Pangasius pangasius) and Climbing Perch (Anabas testudineus) Fishes
Chang et al. Antibiotic treatment of orbital cellulitis: an analysis of pathogenic bacteria and bacterial susceptibility
RU2296163C2 (ru) Способ оценки специфической активности бактериофагов
Mahmood et al. Isolation, Identification of Bacterial Species Causing Chronic suppurative Otitis Media and Detection Some of Their Virulence Factors
RU2416635C2 (ru) Хромогенная питательная среда для выявления и идентификации клебсиелл
Reddy et al. Fungal keratitis due to Schizophyllum commune: an emerging pathogenic fungus
Islam et al. Prevalence and antimicrobial resistance patterns of Vibrio Cholerae from Bangladesh Agricultural University dairy farm
Abed et al. Antibiotics susceptibility pattern of clinical and environmental Escherichia coli isolates from Babylon hospitals
RU2779641C1 (ru) Способ первичного посева биоматериала, выделенного из полости рта пациентов с муковисцидозом при стоматологическом обследовании
McCue et al. Microbiology: Microbial Culture
Sapkota et al. Prevelance and associated risk factor of escherichia coli from the cases of Poultry at Regional Veterinary Laboratory (RVL) Surkhet, Nepal
Bauwens Prevalence of Devriesea agamarum in the lizard collection of The Royal Zoological Society of Antwerp.
Koh et al. Effects of Preincubating Blood Culture Bottles at 37o C during the Night Shift and of Collected Blood Volume on Time to Detection and Days to Final Report
Vignesh et al. Iodine-glycerol as an alternative to lactophenol cotton blue for identification of fungal elements in clinical laboratory
Al-awkally et al. Antibiotic susceptibility and resistant pattern of isolates of Pseudomonas aeruginosa recovered from infected swabs, abscess, burn, medical tips and blood from patients at 4 geographical locations in Libya (Al-Bayda, Shahat, Derna and Benghazi)
RU2181144C1 (ru) Способ выделения дерматофитов из клинического материала
RU2786394C1 (ru) СПОСОБ СНИЖЕНИЯ УРОВНЯ КОНТАМИНАЦИИ КЛИНИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ПРИ ПОСЕВЕ НА ПЛОТНЫЕ ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ Mycobacterium tuberculosis complex
RU2646101C2 (ru) Способ оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение
RU2237709C2 (ru) Микробиологическая среда для выделения trichophyton verrucosum
RU2711954C1 (ru) Способ предварительной идентификации нетуберкулезных микобактерий с использованием универсальной хромогенной среды
RU2580227C1 (ru) Питательная среда для выделения legionella pneumophila
RU2511436C2 (ru) Дифференциально-диагностическая питательная среда для идентификации бактерий рода yersinia

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190628