RU2621571C1 - Method of obtaining potato mini-tubers - Google Patents
Method of obtaining potato mini-tubers Download PDFInfo
- Publication number
- RU2621571C1 RU2621571C1 RU2016114686A RU2016114686A RU2621571C1 RU 2621571 C1 RU2621571 C1 RU 2621571C1 RU 2016114686 A RU2016114686 A RU 2016114686A RU 2016114686 A RU2016114686 A RU 2016114686A RU 2621571 C1 RU2621571 C1 RU 2621571C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nutrient medium
- planted
- plants
- grafting
- eyed
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
- A01G2/00—Vegetative propagation
Landscapes
- Cultivation Of Plants (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности к растениеводству и может быть использовано в системе первичного семеноводства картофеля при размножении безвирусного посадочного материала.The invention relates to the field of agriculture, in particular to crop production and can be used in the system of primary seed production of potatoes when propagating virus-free planting material.
Известен способ культивирования растительного материала in vitro, заключающийся в инициировании стерильной культуры на искусственной питательной среде Мурасиге-Скуга, содержащей в качестве в регулятора роста кинетин в концентрации 0,02 мг/л, последующем разрезании скальпелем отрастающих в течение 1-1,5 мес. стеблей с 5-8 листьями на одноглазковые микрочеренки, посадке последних на питательную среду того же состава для очередного ростового цикла с возможностью многократного повторения данной процедуры до накопления требуемого количества материала, после чего деление материала прекращают, давая ему хорошо укорениться. Далее, укорененные растения переносят в защищенный грунт, где их извлекают из пробирок и высаживают на подготовленный торфо-перегнойный субстрат на период 2-3 мес.для формирования миниклубней [Технологический регламент производства оригинального, элитного и репродукционного семенного картофеля / Сост.Е.А. Симаков, Б.В. Анисимов, СМ. Юрлова, А.И. Усков, Е.В. Овэс, В.Н. Зейрук, B.C. Чугунов, А.В. Митюшкин, О.С.Хутинаев, Москва. - 2010. - С. 11, С. 22].A known method of cultivating plant material in vitro, which consists in initiating a sterile culture on an artificial nutrient medium Murashige-Skoog, containing kinetin as a growth regulator in a concentration of 0.02 mg / l, followed by cutting with a scalpel growing for 1-1.5 months. stems with 5-8 leaves on one-eyed microstalks, planting the latter on a nutrient medium of the same composition for the next growth cycle with the possibility of repeating this procedure several times until the required amount of material has accumulated, after which the division of the material is stopped, giving it a good root. Further, rooted plants are transferred to a protected ground, where they are removed from test tubes and planted on a prepared peat-humus substrate for a period of 2-3 months to form minicubers [Technological regulations for the production of original, elite and reproduction seed potatoes / Sost.E.A. Simakov, B.V. Anisimov, SM. Yurlova, A.I. Uskov, E.V. Oves, V.N. Zeyruk, B.C. Chugunov, A.V. Mityushkin, O.S. Khutinaev, Moscow. - 2010. - S. 11, S. 22].
Недостатками этого способа являются высокая трудоемкость, низкая приживаемость материала при высадке растений в грунт, неудовлетворительная воспроизводимость результатов при массовом производстве.The disadvantages of this method are the high complexity, low survival rate of the material when planting plants in the ground, poor reproducibility of the results in mass production.
Известен также способ выращивания миниклубней картофеля на основе микроклубней, образовавшихся in vitro, заключающийся в том, что стерильную культуру инициируют аналогично и ведут размножение подобно способу, описанному выше, но на конечном этапе растения не высаживают в защищенный грунт, а помещают в климатическую камеру с температурой в пределах ±15-18°С и освещенностью 3-5 тыс.люксов для формирования микроклубней на период 1,5-2 месяца. После этого микроклубням дают 2-3 месяца покоя при температуре+3-+7°С и высаживают в защищенный грунт, где еще через 2-3 месяца вегетации, в зависимости от сорта, получают миниклубни [Анисимов Б.В., Смолеговец Д.В., Шатилова О.Н. Рекомендации по технологии выращивания in vitro микроклубней и их использования в процессе оригинального семеноводства (рекомендации) / Россельхозакадемия, ВНИИКХ. М. 2009. -21 с].There is also known a method of growing potato minicubers based on microcubes formed in vitro, namely, that a sterile culture is initiated similarly and propagated similarly to the method described above, but at the final stage the plants are not planted in a protected soil, but placed in a climate chamber with a temperature within ± 15-18 ° С and illumination of 3-5 thousand lux for the formation of micro-tubers for a period of 1.5-2 months. After this, the micro-tubers are given 2-3 months of rest at a temperature of + 3- + 7 ° C and planted in a protected ground, where after another 2-3 months of vegetation, depending on the variety, minicubers are obtained [Anisimov B.V., Smolegovets D. V., Shatilova O.N. Recommendations on in vitro micro-tubers growing technology and their use in the process of original seed production (recommendations) / Russian Agricultural Academy, VNIIKH. M. 2009. -21 s].
Недостатками этого способа являются плохая предсказуемость результата, необходимость предпосевной подготовки микроклубней в контролируемых условиях, неудовлетворительная воспроизводимость результатов при массовом производстве.The disadvantages of this method are the poor predictability of the result, the need for pre-sowing preparation of micro-tubers under controlled conditions, poor reproducibility of the results in mass production.
Наиболее близким техническим решением (прототипом) является способ размножения картофеля in vitro, включающий следующие стадии: инициирование стерильной культуры на искусственной питательной среде Мурасиге-Скуга, содержащей в качестве в регулятора роста кинетин в концентрации 0,02 мг/л, последующее разрезание скальпелем отрастающих в течение 1-1,5 месяца стеблей с 5-8 листьями на одноглазковые микрочеренки, посадку последних на питательную среду того же состава для очередного ростового цикла с возможностью многократного повторения данной процедуры до накопления требуемого количества материала, при этом для повышения коэффициента размножения применяют стеблевое черенкование в нестерильных условиях, используя в качестве маточных уже адаптированные пробирочные растения. Пробирочные растения в возрасте 18-20 дней высаживают в контейнеры на торфяной субстрат, извлекая их из пробирки с помощью пинцета непосредственно перед посадкой, корневую систему при этом отрезают, место среза обрабатывают ростовым веществом, состоящим из талька, гетероауксина, витамина B1. Контейнеры с посаженными растениями устанавливают на стеллажи и укрывают полиэтиленовой пленкой для лучшего укоренения. В первые дни растения проветривают встряхиванием пленки, через 5 дней после высадки пленку убирают. По мере отрастания растений с них заготавливают черенки и укореняют их в торфяном субстрате аналогично первичным микрорастениям. После последнего черенкования на торфяном субстрате растения обрабатывают регулятором роста хлорхолинхлоридом в фазе 3-4 листочков с концентрацией 0,1% для получения у растений к моменту высадки в грунт хорошо развитой корневой системы, низкорослого стебля с укороченными междоузлиями и мощного листового аппарата [Лапшинов Н.А. Технология оздоровления и ускоренного размножения картофеля (методическое пособие) / Н.А. Лапшинов, В.И. Куликова, Т.В. Рябцева и др.; ФГБНУ «Кемеровский НИИСХ». - Кемерово, 2014. - 44 с.].The closest technical solution (prototype) is a method of propagating potatoes in vitro, which includes the following stages: initiating a sterile culture on an artificial nutrient medium Murashige-Skoog, containing kinetin as a growth regulator in a concentration of 0.02 mg / l, followed by cutting with a scalpel growing into within 1-1.5 months of stems with 5-8 leaves on one-eyed microstalks, planting the latter on a nutrient medium of the same composition for the next growth cycle with the possibility of repeated repetition of this cedures to accumulate the required amount of material, the stem cuttings used to increase the multiplication factor in non-sterile conditions, using as already adapted fallopian tube plants. Test tubes plants aged 18-20 days are planted in containers on a peat substrate, removing them from the test tube with tweezers immediately before planting, while the root system is cut off, the cut site is treated with a growth substance consisting of talc, heteroauxin, vitamin B 1 . Containers with planted plants are mounted on racks and covered with plastic wrap for better rooting. In the early days, the plants are aired by shaking the film, 5 days after planting, the film is removed. As the plants grow from them, cuttings are harvested from them and root them in a peat substrate similarly to primary microplants. After the last cuttings on a peat substrate, the plants are treated with a growth regulator with chlorocholine chloride in the phase of 3-4 leaflets with a concentration of 0.1% to obtain a well-developed root system, a stunted stem with shortened internodes and a powerful leaf apparatus by the time of planting in the soil [N. Lapshinov N. BUT. The technology of healing and accelerated propagation of potatoes (methodological manual) / N.A. Lapshinov, V.I. Kulikova, T.V. Ryabtseva et al .; Federal State Budgetary Institution "Kemerovo Research Institute of Agriculture". - Kemerovo, 2014. - 44 p.].
Недостатками этого способа являются высокая трудоемкость, связанная с большим числом технологических операций, плохая предсказуемость результата, низкая приживаемость материала при высадке растений в грунт.The disadvantages of this method are the high complexity associated with a large number of technological operations, poor predictability of the result, low survival rate of the material when planting plants in the ground.
Техническим результатом изобретения является снижение трудоемкости получения микроклубней, повышение приживаемости материала при высадке в грунт и воспроизводимости результатов при массовом получении миниклубней, возможность механизации посадки растений в теплице.The technical result of the invention is to reduce the complexity of obtaining micro-tubers, increase the survival rate of the material when planting in the soil and reproducibility of the results when mass-producing minitubers, the possibility of mechanization of planting plants in the greenhouse.
Технический результат достигается тем, что способ получения миниклубней картофеля включает культивирование растительного материала in vitro посредством черенкования на одноглазковые микрочеренки в стерильных условиях на искусственной питательной среде, содержащей регулятор роста, поэтапное черенкование по мере отрастания растений, укорачивание корневой системы и обработку места среза ростовым веществом, последующее высаживание растений на субстрат, их доращивание и высадку в грунт, при этом в течение всего периода культивирования черенкование ведут в колбах объемом не менее 250 мл на питательной среде, дополнительно содержащей хлорхолинхлорид в концентрации, в зависимости от сорта, картофеля от 0,1 до 1,0 мг/л, при этом на поверхность питательной среды стерильно высаживают по 10-12 одноглазковых микрочеренков в колбу, которые при отрастании до высоты 5-7 см высаживают на субстрат, в качестве которого используют торфотаблетки, после чего укоренившиеся и окрепшие растения перемещают в теплицу.The technical result is achieved by the fact that the method for producing potato minicubers involves cultivating plant material in vitro by grafting onto one-eyed microgrids in sterile conditions on an artificial nutrient medium containing a growth regulator, phased grafting as plants grow, shortening the root system and treating the cut site with growth material, subsequent planting of plants on a substrate, their growing and planting in the soil, while during the entire cultivation period, Counting is carried out in flasks with a volume of at least 250 ml on a nutrient medium additionally containing chlorocholinchloride in a concentration, depending on the variety, of potato from 0.1 to 1.0 mg / l, while 10-12 one-eyed sterile plants are planted on the surface of the nutrient medium microcranes in a flask, which, when growing to a height of 5-7 cm, are planted on a substrate, peat tablets are used, after which rooted and mature plants are transferred to the greenhouse.
Заявляемое техническое решение отличается от прототипа тем, что весь процесс размножения одноузловыми микрочеренками проводят в колбе объемом 250 и высотой 13 см на питательной среде, включающей дополнительно регулятор роста растений хлорхолинхлорид, обеспечивающей формирование перед каждой пересадкой in vitro мощных и высокожизнеспособных растений высотой 5-7 см со стеблем толщиной 1,5-2 мм и короткими междоузлиями. Полученные растения после технологически последнего пассажа не разрезают на микрочеренки, а высаживают на нестерильные торфотаблетки в лабораторных условиях для укоренения и адаптации и, впоследствии, через 2 недели транспортируют на место постоянной посадки и выращивают до получения миниклубней без качественных и количественных потерь растительного материала. Добавление в питательную среду хлорхолинхлорида в указанном диапазоне концентраций позволяет предсказуемо контролировать в течение 1,5-2 месяцев рост и развитие микрорастений различных сортов в культивационных сосудах с указанными выше параметрами.The claimed technical solution differs from the prototype in that the entire process of propagation by single-node microcranes is carried out in a flask with a volume of 250 and a height of 13 cm on a nutrient medium, which additionally includes the plant growth regulator chlorcholine chloride, which ensures the formation of powerful and highly viable plants 5-7 cm tall before each transplant. with a stem 1.5-2 mm thick and short internodes. The resulting plants, after the technologically last passage, are not cut into micro stalks, but are planted on non-sterile peat pellets in the laboratory for rooting and adaptation and, subsequently, after 2 weeks they are transported to the place of constant planting and grown to minicubers without qualitative and quantitative losses of plant material. The addition of chlorocholinchloride to the nutrient medium in the indicated concentration range makes it possible to predict for 1.5-2 months the growth and development of various micro-plants in cultivation vessels with the above parameters.
Предлагаемый способ осуществляется следующим образом. The proposed method is as follows.
Для получения микрорастений используют колбы объемом не менее 250 мл и высотой 10-13 см. Данный типоразмер колбы является оптимальным, т.к. площадь дна позволяет достаточно комфортно провести посадку 10-12 микрочеренков, а горловина диаметром 34 мм извлечь растения без травмирования, что существенно для последующей высадки на торфотаблетки. Внутренний объем пробирки не позволяет выращивать более, чем 1 микрочеренок, а извлечение его из пробирки часто сопровождается травмированием последнего. В колбы добавляют по 100 мл питательной среды, дополнительно содержащей хлорхолинхлорид в концентрации в зависимости от сорта картофеля от 0,1 до 1,0 мг/л, что обеспечивает получение у микрочеренков принципиально новых качеств и свойств (Приложения 1 и 2). В стерильных условиях на поверхность питательной среды высаживают по 10-12 одноглазковых микрочеренков, которые через 4-6 недель формируют микрорастения высотой 5-7 см со стеблем толщиной 1,5-2 мм и короткими междоузлиями, из которых снова получают одноглазковые микрочеренки. Размножение ведут аналогично в стерильных условиях до достижения требуемого количества микрорастений. После последнего черенкования и достижения растениями упомянутых параметров микрорастения извлекают из колб, корневую систему укорачивают и погружают в ауксинсодержащую пасту на основе порошкообразного мела, и высаживают на предварительно увлажненные торфотаблетки, которые далее помещают в условия высокой влажности. Спустя еще 2-3 недели, торфотаблетки с хорошо укоренившимися и окрепшими растениями перемещают в теплицу на постоянное место, где растения вегетируют 2-3 месяца и продуцируют миниклубни. По предложенному способу за 2-3 часа можно высадить 6000 пробирочных растений. В то время как, используя известный способ посадки миниклубней, высаживают 600 штук в день.To obtain microplants, use flasks with a volume of at least 250 ml and a height of 10-13 cm. This flask size is optimal, because the bottom area allows you to quite comfortably plant 10-12 microcrops, and the neck with a diameter of 34 mm to extract plants without injury, which is essential for subsequent planting on peat tablets. The internal volume of the test tube does not allow growing more than 1 microgrown, and removing it from the test tube is often accompanied by injury to the latter. Add 100 ml of culture medium to the flasks, additionally containing chlorocholine chloride in a concentration depending on the type of potato from 0.1 to 1.0 mg / l, which ensures the receipt of fundamentally new qualities and properties from microcranes (Appendixes 1 and 2). Under sterile conditions, 10-12 one-eyed microgranules are planted on the surface of the nutrient medium, which after 4-6 weeks form microplants 5-7 cm tall with a stem 1.5-2 mm thick and short internodes, from which one-eyed microgranules are again obtained. Reproduction is carried out similarly under sterile conditions until the required number of microplants is reached. After the last cuttings and the plants reach the mentioned parameters, the microplants are removed from the flasks, the root system is shortened and immersed in an auxin-containing paste based on powdered chalk, and planted on pre-moistened peat pellets, which are then placed in high humidity conditions. After another 2-3 weeks, peat pellets with well-rooted and mature plants are moved to the greenhouse to a permanent place where the plants vegetate for 2-3 months and produce minitubers. According to the proposed method for 2-3 hours you can plant 6,000 test plants. While using the well-known method of planting minitubers, 600 pieces are planted per day.
Приложение №1Appendix No. 1
Приложение №2Appendix No. 2
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016114686A RU2621571C1 (en) | 2016-04-15 | 2016-04-15 | Method of obtaining potato mini-tubers |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016114686A RU2621571C1 (en) | 2016-04-15 | 2016-04-15 | Method of obtaining potato mini-tubers |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2621571C1 true RU2621571C1 (en) | 2017-06-06 |
Family
ID=59032445
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016114686A RU2621571C1 (en) | 2016-04-15 | 2016-04-15 | Method of obtaining potato mini-tubers |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2621571C1 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994009612A1 (en) * | 1992-10-27 | 1994-05-11 | Samka Vejle A/S | A machine and a method for clearing and covering up seed potatoes |
-
2016
- 2016-04-15 RU RU2016114686A patent/RU2621571C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994009612A1 (en) * | 1992-10-27 | 1994-05-11 | Samka Vejle A/S | A machine and a method for clearing and covering up seed potatoes |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ЛАПШИНОВ Н.А. И ДР. Технология оздоровления и ускоренного размножения картофеля (методическое пособие) /ФГБНУ "Кемеровский НИИСХ" - Кемерово, 2014-44 с. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Batukaev et al. | Use of growth regulators in grapes grinding by in vitro method | |
CN104106468B (en) | The quick breeding method for tissue culture of a kind of radix fici simplicissimae | |
CN112586346B (en) | Tree eggplant, and cultivation method, rapid propagation method and application thereof | |
CN102783418B (en) | Tissue culture method for pyrethrum cinerariifolium | |
Osman et al. | Factors affecting microcuttings of Stevia using a mist-chamber propagation box | |
Tarique et al. | Micropropagation of sugarcane through leaf sheath culture | |
CN105309317A (en) | Method for propagating moghania macrophylla by tissue culture | |
KR101204896B1 (en) | Tissue Culture Method of Smilax China | |
CN109105262A (en) | A kind of wild tinosporae tissue culture and rapid propagation method | |
Baday | Plant tissue culture | |
Sudhersan et al. | In vitro propagation of Ziziphus mauritiana cultivar Umran by shoot tip and nodal multiplication | |
RU2621571C1 (en) | Method of obtaining potato mini-tubers | |
CN112806265B (en) | Yaozhao tissue culture method taking leaves as explants | |
RU2558195C1 (en) | Method of reproduction of selection samples of potatoes | |
Idol et al. | Vegetative and micropropagation of leucaena | |
RU2724494C2 (en) | Method of accelerated reproduction of potatoes | |
RU2785462C1 (en) | Method for in vitro adaptation of strawberries in a two-layer substrate | |
KR100775080B1 (en) | The method for mass propagation of iris odaesanensis y. lee via embryo genesis from growing point tissue | |
NL8201937A (en) | PROCESS FOR THE PREPARATION OF THE MULTIPLICATING MATERIAL OF FINGERED HERBS (DIGITALIS LANATA EHRH.) IN TISSUE CULTURE. | |
Shandil et al. | Micropropagation of breadfruit (A. altilis) enhanced using a bioreactor system | |
RU2802586C1 (en) | Method for obtaining early-fruiting cherry plants | |
RU2810554C1 (en) | Method of accelerated propagation of potato tubers ex vivo | |
RU2732450C1 (en) | Method for clonal microreproduction of western serviceberry varieties (amelanchier alnifolia (nutt_) nutt_ ex m_roem_) | |
CN109917072A (en) | A method of simple and effective non-damaging observation root nodule and Root morphology | |
Jamarun et al. | In vitro regeneration of Sesbania grandiflora using explants |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20200416 |