RU2590588C1 - Method for production of preparation based on non-replicating viral vector expressing gene of human toll-like receptor and gene of modified protein flagellin - Google Patents

Method for production of preparation based on non-replicating viral vector expressing gene of human toll-like receptor and gene of modified protein flagellin Download PDF

Info

Publication number
RU2590588C1
RU2590588C1 RU2015131308/10A RU2015131308A RU2590588C1 RU 2590588 C1 RU2590588 C1 RU 2590588C1 RU 2015131308/10 A RU2015131308/10 A RU 2015131308/10A RU 2015131308 A RU2015131308 A RU 2015131308A RU 2590588 C1 RU2590588 C1 RU 2590588C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
production
volume
gene
suspension
bottles
Prior art date
Application number
RU2015131308/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Максим Михайлович Шмаров
Ирина Алексеевна Калугина
Александра Владимировна Саморукова
Наталья Сергеевна Алферова
Рустам Равшанович Атауллаханов
Наталья Вахитовна Еремина
Василий Игоревич Казей
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Панацела Лабс" Инновационный центр сколково
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Панацела Лабс" Инновационный центр сколково filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Панацела Лабс" Инновационный центр сколково
Application granted granted Critical
Publication of RU2590588C1 publication Critical patent/RU2590588C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/76Viruses; Subviral particles; Bacteriophages
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • C12N7/02Recovery or purification
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7088Compounds having three or more nucleosides or nucleotides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/705Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and concerns a method for production of "Mobilan (M-VM3)" preparation. During updating developed following stable parameters of the production process: batch volume is 1,500 flasks, time of production is 18-22 days, total consumption of the nutrient medium is 44 l, the volume of virus-containing suspension of M-VM3 is 25 l, density of cells during infection in range from 0.8×106 to 1×106 cl/ml; time for gathering cells is on third day (approximately 72 h); temperature during infection is 36 °C, multiplicity of infection 5-10 PFU/cl, total concentration of viral construct at collection is 8×108 PFU/ml.
EFFECT: invention optimises production, increase its profitability, making optimum ratio of production time/amount of produced/amount spent on production.
1 cl, 2 tbl

Description

Изобретение относится к биотехнологии и касается способа производства препарата «Мобилан (M-VM3)». Изобретение оптимизирует стадии производства, повышая его рентабельность, делая оптимальным соотношение время производства/количество полученного препарата/количество средств, затраченных на производство. В частности, в ходе модернизации были разработаны следующие устойчивые параметры производственного процесса: объем партии - 1500 флаконов, время на производство - 18-22 суток, общий расход питательной среды - 44 л, объем вируссодержащей суспензии M-VM3 - 25 л, плотность клеток во время заражения - в диапазоне от 0,8×106 до 1×106 кл/мл; время сбора клеток - на третий день (приблизительно 72 ч); температура при заражении - 36°С, множественность заражения - 5-10 БОЕ/кл, итоговая концентрация вирусного конструкта при сборе - 8×108 БОЕ/мл.The invention relates to biotechnology and relates to a method for the production of the drug "Mobilan (M-VM3)". The invention optimizes the stages of production, increasing its profitability, making the optimal ratio of production time / amount of drug received / amount of funds spent on production. In particular, during the modernization, the following stable parameters of the production process were developed: batch volume - 1,500 bottles, production time - 18-22 days, total consumption of nutrient medium - 44 l, volume of virus-containing suspension M-VM3 - 25 l, cell density infection time - in the range from 0.8 × 10 6 to 1 × 10 6 cells / ml; cell collection time - on the third day (approximately 72 hours); the temperature at infection is 36 ° C, the multiplicity of infection is 5-10 PFU / cell, the final concentration of the viral construct during collection is 8 × 10 8 PFU / ml.

Инновационный препарат Мобилан (M-VM3), концентрат для приготовления раствора для внутриопухолевого введения, содержащий неспособный к репликации бицистронный человеческий аденовирусный вектор, экспрессирующий ген человеческого Толл-подобного рецептора 5 типа и ген фармакологически оптимизированного секретируемого фрагмента белка флагеллина бактерий рода Salmonella, в концентрации 1012 частиц неспособного к репликации бицистронного человеческого аденовирусного вектора в 1 мл буферного раствора.Innovative drug Mobilan (M-VM3), a concentrate for the preparation of a solution for intratumoral administration, containing a replicable bicistronic human adenovirus vector expressing the human Toll-like receptor type 5 gene and a pharmacologically optimized secreted gene fragment of the flagellin of Salmonella bacteria, at a concentration of 10 12 particles of replication-bicistronic human adenovirus vector in 1 ml of buffer solution.

Из уровня техники известно получение концентратов вирусов в промышленных масштабах, в частности, из RU 2029561 от 27.02.1995. Наиболее близким решением, обнаруженным в уровне техники, является RU 2465327 от 27.10.12, которое описывает очистку рекомбинантных аденовирусов человека. Способ включает подготовку вируссодержащего материала в культуре клеток HEK293, в том числе: сбор этих клеток, подготовительный лизис клеток и освобождение аденовируса от клеточного дебриса, а также непосредственно очистка аденовируса на носителе с мономерным авидином, включающая предварительную подготовку носителя и посадку на него аденовируса, осаждение и промывка носителя с аденовирусом, элюирование аденовируса с носителя и итоговый отбор вируса после центрифугирования.The prior art it is known to obtain virus concentrates on an industrial scale, in particular, from RU 2029561 from 02.27.1995. The closest solution found in the prior art is RU 2465327 from 10.27.12, which describes the purification of recombinant human adenoviruses. The method includes preparing virus-containing material in a HEK293 cell culture, including: collecting these cells, preparatory cell lysis and release of adenovirus from cell debris, as well as directly cleaning the adenovirus on a carrier with monomeric avidin, including preliminary preparation of the carrier and landing of an adenovirus on it, precipitation and washing the carrier with adenovirus, eluting the adenovirus from the carrier and the final selection of the virus after centrifugation.

Сущность изобретения.SUMMARY OF THE INVENTION

Вирусный конструкт M-VM3 (Мобилан) был произведен в полупромышленном масштабе при использовании оптимизированного процесса получения клеточной культуры для данного определенного конструкта и условий лизиса и очистки человеческого аденовируса 5 серотипа, т.е. очистки методом анионообменной хроматографии. Производство осуществлялось согласно правилам GLP, все анализы были проведены с использованием надлежащей документационной практики.The viral construct M-VM3 (Mobilan) was produced on a semi-industrial scale using an optimized cell culture production process for this specific construct and the conditions for lysis and purification of human serotype 5 adenovirus, i.e. purification by anion exchange chromatography. Production was carried out in accordance with GLP rules, all analyzes were carried out using good documentation practice.

Отличительной особенностью конструкта M-VM3 от других рекомбинантных аденовирусных векторов является наличие в составе генома как гена человеческого Толл-подобного рецептора 5 типа, который экспрессируется на мембране инфицированных клеток, так и гена фармакологически оптимизированного секретируемого фрагмента белка флагеллина бактерий рода Salmonella. При выращивании частиц препарата M-VM3 (Мобилан) в клетках HEK293 происходит активация Толл-подобного рецептора 5 типа, что ведет к экспрессии в клетках гена транскрипционного фактора NF-κΒ. Транскрипционный фактор NF-κB - универсальный фактор транскрипции, контролирующий экспрессию генов иммунного ответа, так же он способен защищать клетку от апоптоза и влиять на клеточный цикл. Из предыдущего уровня техники не было известно, как скажется активация фактора NF-κΒ в клетках, в которых происходит размножение конструкта M-VM3, на эффективность наработки препарата и последующие стадии очистки. В результате проведения наработки нескольких серий препарата M-VM3 (Мобилан) нами был разработан следующий способ промышленного производства препарата, который условно делится на две стадии: наращивание вирусного конструкта M-VM3 в культуре клеток HEK293 и его многостадийная очистка.A distinctive feature of the M-VM3 construct from other recombinant adenoviral vectors is the presence in the genome of both the human Toll-like receptor type 5 gene, which is expressed on the membrane of infected cells, and the pharmacologically optimized secreted protein flagellin fragment of the Salmonella bacteria. When particles of the M-VM3 preparation (Mobilan) are grown in HEK293 cells, a Toll-like type 5 receptor is activated, which leads to the expression of the transcription factor NF-κΒ gene in the cells. The transcription factor NF-κB is a universal transcription factor that controls the expression of the immune response genes, it is also able to protect the cell from apoptosis and affect the cell cycle. It was not known from the prior art how the activation of the NF-κ factor in cells in which the M-VM3 construct propagates will affect the effectiveness of the drug production and subsequent purification steps. As a result of the production of several series of the M-VM3 preparation (Mobilan), we developed the following method for the industrial production of the drug, which is conditionally divided into two stages: building up the M-VM3 virus construct in the HEK293 cell culture and its multi-stage purification.

Для получения 25 л вируссодержащей клеточной суспензии было затрачено 44 л питательной среды. При этом культивирование проводится в инокуляторе с магнитной мешалкой Cell spin, а при масштабировании - в волновом биореакторе Biostat CultiBag, с использованием двух одноразовых стерильных пластиковых емкостей рабочим объемом 10 л и одной рабочим объемом 25 л. В процессе выращивания количество клеточной суспензии масштабируется от образца клеточного банка количеством 1 пробирка (1,5 мл) до 24.4 л. При этом в процессе масштабирования клеточная суспензия выращивается с частичной заменой отработанной питательной среды на свежую в соотношении 2/3 свежей к 1/3 старой. Процесс наращивания необходимого объема клеточной культуры в объеме 23,8 л ведется параллельно выращиванию вирусного стока объемом 1,2 л, для последующего заражения данной культуры. Концентрация клеток при заражении 1,0·106 кл/мл. Наращивание клеток проводится до финальной концентрации вируса 8×108 БОЕ/мл.To obtain 25 l of virus-containing cell suspension, 44 l of culture medium was expended. At the same time, cultivation is carried out in a cell spin magnetic inoculator and, when scaling, in a Biostat CultiBag wave bioreactor, using two disposable sterile plastic containers with a working volume of 10 l and one working volume of 25 l. During the growing process, the amount of cell suspension is scaled from a sample of the cell bank in the amount of 1 tube (1.5 ml) to 24.4 L. Moreover, in the process of scaling, the cell suspension is grown with a partial replacement of the spent nutrient medium with fresh in the ratio of 2/3 fresh to 1/3 old. The process of increasing the required volume of cell culture in a volume of 23.8 liters is carried out simultaneously with the cultivation of a 1.2 liter viral flow for subsequent infection of this culture. The concentration of cells upon infection is 1.0 · 10 6 cells / ml. Cell growth is carried out to a final virus concentration of 8 × 10 8 PFU / ml.

Далее полученная суспензия передается на очистку. Изначально суспензия центрифугируется с отводом отработанной питательной среды. Далее обрабатывается лизирующим буфером, замораживается и обрабатывается нуклеазой для эффективного клеточного лизиса с дальнейшим успешным высвобождением вирусного конструкта M-VM3, с учетом ядерной локализации последнего. Были подобраны температурные и временные условия мягкого перемешивания для эффективной обработки нуклеазой. После лизиса проводится повторное центрифугирование с целью освобождения вирусного стока от клеточного дебриса. Далее вируссодержащий раствор передается на ультрафильтрацию и хроматографическую очистку в соответствии с разработанными параметрами для аденовируса. Выполняются множественные процедуры хроматографической очистки с объемом наполненной колонки ~ 174 мл, используя хроматографическую систему ÄKTA Avant. Далее препарат передается на стерилизующую фильтрацию и розлив во флаконы. После обжатия флаконов алюминиевыми колпачками, проверки на герметичность и маркировки препарат M-VM3 (Мобилан) замораживается и хранится при -70°С. Производственный выход - 1500 флаконов препарата с концентрацией 1012 частиц неспособного к репликации бицистронного человеческого аденовирусного вектора в 1 мл буферного раствора. Тестирование конечного продукта по показателям: описание, pH, микробиологическая чистота, содержание бактериальных эндотоксинов (ЛАЛ-тест), инфекционный титр, концентрация вирусных частиц и RCA (способный к репликации аденовирус), показало, что продукт обладает ожидаемыми характеристиками качества.Next, the resulting suspension is transferred for purification. Initially, the suspension is centrifuged to drain the spent nutrient medium. It is further processed with lysis buffer, frozen and treated with nuclease for efficient cell lysis with further successful release of the M-VM3 viral construct, taking into account the nuclear localization of the latter. The temperature and time conditions of gentle mixing were selected for efficient nuclease treatment. After lysis, repeated centrifugation is performed to release the viral runoff from cell debris. Then the virus-containing solution is transferred to ultrafiltration and chromatographic purification in accordance with the developed parameters for adenovirus. Multiple chromatographic purification procedures are performed with a filled column volume of ~ 174 ml using the ÄKTA Avant chromatographic system. Next, the drug is transferred to sterilizing filtration and bottling. After crimping the bottles with aluminum caps, checking for leaks and labeling, the M-VM3 preparation (Mobilan) is frozen and stored at -70 ° C. Production output - 1,500 vials of the drug with a concentration of 10 12 particles of the bicistronic human adenovirus vector unable to replicate in 1 ml of buffer solution. Testing of the final product by indicators: description, pH, microbiological purity, bacterial endotoxin content (LAL test), infectious titer, concentration of viral particles and RCA (adenovirus capable of replication), showed that the product has the expected quality characteristics.

ПримерыExamples

Пример 1. Культивирование клеточной суспензииExample 1. Cultivation of cell suspension

Приготовление и хранение питательной средыPreparation and storage of culture medium

Подготовили навеску сухой питательной среды CD293AGT и растворили ее в части очищенной воды с перемешиванием на магнитной мешалке. После растворения добавили вторую часть очищенной воды из соотношения состава. Далее провели стерилизацию жидких питательных сред на системе фильтрации с вакуум-фильтрами Corning, диаметр пор 0,22 мкм. Добавили глутамин в стерильную среду. Приготовление питательных сред производили в помещении, отдельном от боксов, предназначенных для работы с культурой клеток и культурой M-VM3. Путем оптимизации процесса (за счет частичной замены питательной среды при пересеве) сокращается необходимый объем питательной среды. Общий объем 44 л (44000 мл).A sample of dry nutrient medium CD293AGT was prepared and dissolved in parts of purified water with stirring on a magnetic stirrer. After dissolution, a second part of purified water was added from the composition ratio. Then sterilized liquid nutrient media on a filtration system with Corning vacuum filters, pore diameter 0.22 μm. Glutamine was added to the sterile medium. The preparation of culture media was carried out in a room separate from the boxes intended for work with cell culture and M-VM3 culture. By optimizing the process (due to partial replacement of the nutrient medium during reseeding), the required volume of the nutrient medium is reduced. Total volume 44 l (44000 ml).

Транспортировали готовую среду в:The finished medium was transported to:

а) культуральный боксa) cultural boxing

б) вирусный боксb) viral boxing

в) реакторc) reactor

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Таким образом, для получения 600 мл клеточной суспензии в качестве субстрата вирусной «затравки» M-VM3 и 23800 мл клеточной суспензии для получение вирусного конструкта M-VM3 в процессе оптимизированного масштабирования было затрачено 43 литра питательной среды. При стандартном способе культивирования эукариотической культуры клеток HEK293, включающем центрифугирование клеточной суспензии на каждой стадии и полную замену питательной среды, расход питательной среды - не менее 52,1 литра (табл. 1).Thus, in order to obtain 600 ml of the cell suspension as a substrate for the viral seed of M-VM3 and 23800 ml of the cell suspension for the preparation of the M-VM3 virus construct, 43 liters of culture medium were used in the process of optimized scaling. In the standard method for culturing a eukaryotic cell culture of HEK293, including centrifuging the cell suspension at each stage and completely replacing the culture medium, the consumption of culture medium is at least 52.1 liters (Table 1).

Figure 00000005
Figure 00000005

Пример 2. Получение вирусного конструкта M-VM3 в суспензии клетокExample 2. Obtaining the viral construct M-VM3 in cell suspension

Для получения вирусного конструкта необходимо параллельно с наращиванием клеточной суспензии получить вирусную «затравку» с использованием клеточной суспензии, описанной в Примере 1. Для этого стерильно отобрали 600 мл клеточной суспензии из ферментера и перелили ее в Cellspin объемом 1000 мл, отстояли и слили надосадочную жидкость. Довели оставшийся объем до 1200 мл, таким образом, концентрация клеток составила 0,8-1,0×106 кл/мл. В вирусном ламинар-боксе с ламинарным потоком класса В внесли 70 мл вирусного материала M-VM3 из рабочего банка (с титром не менее 108 БОЕ/мл) в полученную клеточную суспензию. Таким образом, соотношение культуры из рабочего банка (исходной) и полученной клеточной суспензии составляет 1/17, и культивировали в нем 48-72 часа. Инкубировали в CO2-инкубаторе. Контролер ОКК провел анализ «затравки» титрованием. Титр должен быть не менее 2×108 БОЕ/мл.In order to obtain a viral construct, it is necessary to obtain a virus “seed” using the cell suspension described in Example 1 in parallel with the growth of the cell suspension. To do this, 600 ml of the cell suspension were sterilized from the fermenter and transferred to 1000 ml of Cellspin, sedimented and the supernatant was drained. The remaining volume was brought to 1200 ml, thus, the cell concentration was 0.8-1.0 × 10 6 cells / ml. In a Class B virus laminar box with a Class B laminar flow, 70 ml of M-VM3 virus material was added from a work bank (with a titer of at least 10 8 PFU / ml) to the resulting cell suspension. Thus, the ratio of culture from the working bank (initial) and the resulting cell suspension is 1/17, and cultured in it for 48-72 hours. Incubated in a CO 2 incubator. The controller of the JCC conducted an analysis of the "seed" titration. The titer should be at least 2 × 10 8 PFU / ml.

На данной стадии израсходовано: клеточной суспензии HEK293 0,6 л; питательной среды 1,0 л; вирусного материала M-VM3 0,07 л. Итого: 1,67 л.At this stage, the following was consumed: HEK293 cell suspension 0.6 L; nutrient medium 1.0 l; viral material M-VM3 0.07 l. Total: 1.67 liters.

Получено на стадии: вирусная «затравка» M-VM3 1,27 л; отработанная питательная среда 0,4 л. «Затравка» объемом 20 мл отбирается на контроль качества.Obtained at the stage: virus "seed" M-VM3 1.27 l; spent nutrient medium 0.4 l. A “seed” of 20 ml is selected for quality control.

Получение вирусного конструкта M-VM3 объемом 25 лObtaining the virus construct M-VM3 volume of 25 l

В вирусном ламинар-боксе с ламинарным потоком класса В произвели настройку режима культивирования: температура, угол наклона платформы, расход воздуха, концентрация CO2, pH, pO2. Засеяли «затравкой» M-VM3 (титр не менее 2×108 БОЕ/мл), объемом 1250 мл мешок CultiBag RM 50 с клеточной суспензией объемом 23750 мл. Культивирование продолжали до достижения концентрации M-VM3 не менее 8×108 БОЕ/мл 48-72 часов.In the viral laminar box with a class B laminar flow, the cultivation mode was adjusted: temperature, platform angle, air flow, CO 2 concentration, pH, pO 2 . Inoculated with “seed” M-VM3 (titer of at least 2 × 10 8 PFU / ml), 1250 ml bag of CultiBag RM 50 bag with 23750 ml cell suspension. Cultivation was continued until a concentration of M-VM3 of at least 8 × 10 8 PFU / ml was reached for 48-72 hours.

Израсходовано на стадии: клеточной суспензии HEK293 23,75 л; M-VM3 вирусная «затравка» 1,25 л. Итого: 25 л.Spent on stage: HEK293 cell suspension 23.75 L; M-VM3 virus "seed" of 1.25 liters. Total: 25 L

Получено на стадии 25 л M-VM3 вирусного конструкта.Obtained at the stage of 25 l of M-VM3 viral construct.

Figure 00000006
Figure 00000006

Figure 00000007
Figure 00000007

Пример 3. Очистка вирусного конструкта M-VM3Example 3. Purification of the viral construct M-VM3

- Центрифугирование- centrifugation

Полученный и охарактеризованный вирусный конструкт M-VM3 из биореактора стерильно разлили в центрифужные пробирки, уравновесили их и центрифугировали при 6000g в течение 15 мин. Осуществили отвод супернатанта отработанной питательной среды, продуктов метаболизма и др. физических частиц, перенесли их на инактивацию автоклавированием.The obtained and characterized M-VM3 viral construct from the bioreactor was sterilely poured into centrifuge tubes, balanced, and centrifuged at 6000 g for 15 minutes. The supernatant of the spent nutrient medium, metabolic products, and other physical particles was removed, transferred to inactivation by autoclaving.

Осадок из 25 л вирусной суспензии ресуспендировали в буфере (коэффициент концентрации х67), таким образом, соотношение объема осадка к объему буфера составляет 1-16,6, и перемешали на магнитной мешалке. Объем суспензии составил 380±5 мл.The precipitate from 25 l of the viral suspension was resuspended in the buffer (concentration coefficient x67), thus, the ratio of the volume of the sediment to the volume of the buffer is 1-16.6, and mixed on a magnetic stirrer. The volume of the suspension was 380 ± 5 ml.

- Заморозка- freezing

М-VM3-содержащая суспензия была разлита в необходимое количество флаконов объемом 50 мл (по 20 мл суспензии в каждом). Далее хранилась в течение 2 часов в холодильнике.M-VM3-containing suspension was poured into the required number of 50 ml vials (20 ml of suspension in each). It was then stored for 2 hours in the refrigerator.

- Разрушение клеток и обработка нуклеазой- Cell destruction and nuclease treatment

Разморозили суспензию на водяной бане (23-25°С), не давая согреться. Содержимое всех пробирок объединили в один стеклянный флакон. Визуально провели контроль цветности и мутности суспензии. Обработали бензоназой до финальной концентрации 150 Ед/мл (≈240 мкл). Проводили мягкое перемешивание на магнитной мешалке, 3 часа при комнатной температуре (21-23°С).Thawed the suspension in a water bath (23-25 ° C), not allowing to warm. The contents of all tubes were combined into one glass bottle. Visually conducted a control of color and turbidity of the suspension. Treated with benzonase to a final concentration of 150 U / ml (≈240 μl). Spent gentle stirring on a magnetic stirrer for 3 hours at room temperature (21-23 ° C).

Израсходовано на стадии: 0,38 л M-VM3 содержащей суспензии; бензонала 2,4×10-4. Получено на стадии: M-VM3 содержащей суспензии (лизат) 0,377 л.Spent on stage: 0.38 L of M-VM3 containing suspension; benzonal 2.4 × 10 -4 . Obtained at the stage: M-VM3 containing suspension (lysate) of 0.377 liters.

- Центрифугирование- centrifugation

Растворенную M-VM3-содержащую суспензию разлили в 5 центрифужных пробирок по ≈25 мл в каждую. Центрифугировали при 9000g в течение 10 мин. Операцию повторили дважды, используя оставшийся объем лизата. Супернатант перенесли в чистую емкость, закрыли многопортовой крышкой и поставили на магнитную мешалку для ультрафильтрации. Отвели осадок в виде клеточного дебриса на инактивацию для последующей утилизации.The dissolved M-VM3-containing suspension was poured into 5 centrifuge tubes of ≈25 ml each. Centrifuged at 9000g for 10 min. The operation was repeated twice using the remaining volume of the lysate. The supernatant was transferred to a clean container, closed with a multi-port lid and placed on a magnetic stirrer for ultrafiltration. The sediment was removed in the form of cell debris for inactivation for subsequent disposal.

Израсходовано на стадии: M-VM3 содержащей суспензии (лизат) 0,377 л.Spent on stage: M-VM3 containing suspension (lysate) 0.377 l.

Получено на стадии: M-VM3 содержащей суспензии (осветленный лизат) 0,370 л;Obtained at the stage: M-VM3 containing suspension (clarified lysate) 0.370 l;

клеточный дебрис 0,007 л.cell debris of 0.007 liters.

- Ультрафильтрация- Ultrafiltration

Промыли систему водой очищенной объемом 7л до полного вымывания консервирующего раствора 0.1 M NaOH (контроль pH - 6,0-7,0). Прокачали систему воздухом, уравновесили 0,5 л буфера для ультрафильтрации.The system was washed with purified water of 7 l volume until the preservation solution of 0.1 M NaOH was completely washed out (pH control - 6.0-7.0). Pumped the system with air, balanced 0.5 l of ultrafiltration buffer.

Суспензию объемом ≈400 мл довели буфером для ультрафильтрации до объема 1600 мл, подвергли ультрафильтрации на установке для ультрафильтрации. Путь ретентата промыли «пустым» буфером в объеме 200 мл, объединили данный смыв с отфильтрованным ретентатом и добавили 800 мл «пустого» буфера. Измерили объем ретентата. По окончании измерили объем буфера (пермеата), прокаченного через мембрану. Производили замер давления по манометру каждые 5 минут (не должно превышать 1,2 атм).The suspension with a volume of ≈400 ml was brought with ultrafiltration buffer to a volume of 1600 ml, ultrafiltered in an ultrafiltration unit. The retentate pathway was washed with 200 ml empty buffer, this wash was combined with filtered retentate and 800 ml of empty buffer was added. The retentate volume was measured. At the end, the volume of the buffer (permeate) pumped through the membrane was measured. We measured the pressure on the manometer every 5 minutes (should not exceed 1.2 atm).

Израсходовано на стадии: M-VM3 содержащей суспензии (осветленный лизат) 0,370 л; буфер для ультрафильтрации 1,7 л, «пустой» буфер 1,0 л, вода очищенная 7 л.Spent on stage: M-VM3 containing suspension (clarified lysate) 0.370 L; ultrafiltration buffer 1.7 l, “empty” buffer 1.0 l, purified water 7 l.

Получено на стадии: M-VM3 - ретентат 1,2 л.Obtained at the stage: M-VM3 - 1.2 L retentate.

- Анионообменная хроматография- Anion exchange chromatography

Уравновесили анионообменную колонку буфером А и наполнили каналы: до установления неизменяемой проводимости ~40-50 mS/cm (1.4CV=500 мл). Приготовили буфер Б и уравновесили им колонку до проводимости ~28-30 mS/cm (1.4CV=500 мл). Контролировали давление в процессе хроматографирования (не должно превышать 2 бар).The anion-exchange column was balanced with buffer A and the channels were filled: until a constant conductivity of ~ 40-50 mS / cm (1.4CV = 500 ml) was established. Buffer B was prepared and the column was equilibrated to a conductivity of ~ 28-30 mS / cm (1.4CV = 500 ml). The pressure was monitored during chromatography (should not exceed 2 bar).

Раствор, содержащий M-VM3, нанесли на колонку, поток 193 мл/мин (300 см/ч). Объем колонки 400 мл.A solution containing M-VM3 was applied to the column, flow 193 ml / min (300 cm / h). Column volume 400 ml.

Промыли содержимое колонки буфером А в объеме 7CV (2800 мл) при скорости потока 100 мл/мин. Элюция примесей - 1.5 CV (600 мл) буфера Б при скорости потока 100 мл/мин; во время элюции сходит пик (фракция), содержащий M-VM3. Колонку кондиционировали буфером А - 1.5 CV (600 мл). Собрали фракции нужного пика.Washed the contents of the column with buffer A in a volume of 7CV (2800 ml) at a flow rate of 100 ml / min. Impurity Elution - 1.5 CV (600 ml) of buffer B at a flow rate of 100 ml / min; during elution, a peak (fraction) containing M-VM3 converges. The column was conditioned with buffer A - 1.5 CV (600 ml). The fractions of the desired peak were collected.

Израсходовано на стадии: M-VM3-содержащая суспензия (ретентат + смыв) 1,2 л; буфер «А» 3,9 л (NaCl 0.5М), буфер «Б» 1,1 л (NaCl 0.27М); сорбент Sepharose 4 Fast Flow 0,4 л.Spent on stage: M-VM3-containing suspension (retentate + flush) 1.2 l; buffer "A" 3.9 L (NaCl 0.5 M), buffer "B" 1.1 L (NaCl 0.27 M); sorbent Sepharose 4 Fast Flow 0.4 l.

Получено на стадии:Obtained at the stage:

M-VM3-содержащий раствор (пик M-VM3) 0,4 л.M-VM3-containing solution (peak M-VM3) 0.4 l.

- Эксклюзионная хроматография- Size exclusion chromatography

Колонку уравновесили буфером для эксклюзионной хроматографии в объеме 1.5CV (1.2 л). На колонку нанесли элюированный с анионообменной колонки препарат в объеме 130-140 мл, поток 100 мл/мин (77 см/ч). Собрали проскок. Элюция 1.5CV (1.2 л) буфера для эксклюзионной хроматографии, поток 100 мл/мин (~12 мин). Собрали пик и следующий элюат. Повторили операцию дважды с оставшимся объемом элюата.The column was equilibrated with size exclusion chromatography buffer in a volume of 1.5CV (1.2 L). The preparation was eluted from the anion exchange column in a volume of 130-140 ml, flow 100 ml / min (77 cm / h). Collected a slip. Elution 1.5CV (1.2 L) size exclusion chromatography buffer, flow 100 ml / min (~ 12 min). They collected the peak and the next eluate. Repeated operation twice with the remaining volume of the eluate.

Израсходовано на стадии: M-VM3-содержащий раствор (пик M-VM3) 0,4 л; буфер для эксклюзионной хроматографии 4,8 л, сорбент Q SepharoseXL Virus Licensed 0,8 л.Spent on stage: M-VM3-containing solution (peak M-VM3) 0.4 l; size exclusion chromatography buffer 4.8 l, sorbent Q SepharoseXL Virus Licensed 0.8 l.

Получено на стадии: раствор (M-VM3) 1,65 л, в т.ч. M-VM3 1,1×1012 частиц/мл.Obtained at the stage: solution (M-VM3) 1.65 L, incl. M-VM3 1.1 × 10 12 particles / ml.

- Стерилизующая фильтрация (M-VM3)- Sterilizing Filtration (M-VM3)

Провели стерилизующую фильтрацию через систему, используя фильтр-патрон с размером пор 0,45 мкм и фильтр-патрон с размером пор 0,22 мкм под давлением (1,5-2,0) атм.Sterilized filtration was performed through the system using a filter cartridge with a pore size of 0.45 μm and a filter cartridge with a pore size of 0.22 μm under a pressure of (1.5-2.0) atm.

Израсходовано на стадии: полупродукт-раствор (M-VM3) 1,65 л, в т.ч. M-VM3 1,1×1012 частиц/мл.Spent on stage: intermediate product-solution (M-VM3) 1.65 l, incl. M-VM3 1.1 × 10 12 particles / ml.

Получено на стадии: Раствор (M-VM3) 1,65 л, в т.ч. M-VM3 1,0×1012 частиц/мл.Obtained at the stage: Solution (M-VM3) 1.65 L, incl. M-VM3 1.0 × 10 12 particles / ml.

Пример 4. Розлив и упаковка препарата МобиланExample 4. Filling and packaging of the drug Mobilan

- Розлив раствора Мобилан (M-VM3) во флаконы- Bottling Mobilan solution (M-VM3) in bottles

На дозаторе установить объем дозируемого раствора - 1,0 мл с помощью подвижного зажима эксцентрика, фиксируя его прижимным винтом. Включить машину и проверить точность установленной дозы. Заполнить вибробункер стерильными пробками нужного размера. Заполнить подающий стол аппарата стерильными флаконами нужной емкости. Провести розлив. Периодически в процессе работы через каждые (50-100) флаконов (в зависимости от объема серии) технолог и контролер ОКК проводят контроль дозы раствора во флаконе.On the dispenser, set the volume of the dosed solution - 1.0 ml with the help of a movable clutch of the eccentric, fixing it with a clamping screw. Turn on the machine and check the accuracy of the set dose. Fill the vibratory hopper with sterile plugs of the correct size. Fill the feeder table with sterile bottles of the required capacity. Carry out bottling. Periodically during the operation, every (50-100) bottles (depending on the volume of the series), the technologist and the QC controller monitor the dose of the solution in the bottle.

Израсходовано на стадии: раствор (M-VM3) 1,65 л, в т.ч. M-VM3 1,0×1012 частиц/мл, 1650 стерильных флаконов и резиновых пробок.Spent on stage: solution (M-VM3) 1.65 L, incl. M-VM3 1.0 × 1012 particles / ml, 1650 sterile vials and rubber stoppers.

Получено на стадии: Мобилан (M-VM3) во флаконах 1610 шт., в т.ч. M-VM3 1,0×1012 частиц/мл.Obtained at the stage: Mobilan (M-VM3) in bottles of 1610 pcs., Incl. M-VM3 1.0 × 10 12 particles / ml.

- Вальцовка флаконов- Rolling bottles

Флаконы, укупоренные резиновыми пробками, завальцевали алюминиевыми колпачками на машине для вальцовки флаконов GM 200 фирмы Cozzoli. Далее осуществляли проверку на герметичность. Затем маркировку и упаковку флаконов.Bottles corked with rubber stoppers were rolled with aluminum caps on a Cozzoli GM 200 bottle rolling machine. Next, a leak test was performed. Then labeling and packaging of the bottles.

Израсходовано на стадии: Мобилан (M-VM3) во флаконах 1610 шт., в т.ч. M-VM3 1,0×1012 частиц/мл., 1650 стерильных алюминиевых колпачков.Spent on stage: Mobilan (M-VM3) in bottles of 1610 pcs., Incl. M-VM3 1.0 × 10 12 particles / ml., 1650 sterile aluminum caps.

Получено на стадии: Мобилан (M-VM3) во флаконах 1520 шт., в т.ч. M-VM3 1,0×1012 частиц/мл.Obtained at the stage: Mobilan (M-VM3) in bottles of 1520 pcs., Incl. M-VM3 1.0 × 10 12 particles / ml.

- Замораживание готовой продукции- Freezing finished products

Готовую продукцию сложили в контейнеры, на которые повесили желтую этикетку «В карантине» с указанием наименования препарата, номера серии, даты выработки продукта, даты сдачи на анализ в ОКК и количества пачек в контейнере. Контейнеры закрыли крышкой, опечатывают. Далее контейнеры помещают в фармацевтический холодильник на температуру -70°С на 24 часа. Далее контролер ОКК отбирал необходимое количество упаковок и передал при -70°С для проведения анализа на соответствие ФСП и арбитражного хранения. После получения положительного заключения ОКК контейнеры маркировали зеленой этикеткой, на которой указали номер серии, количество пачек в серии, количество пачек в каждом контейнере и дату сдачи на склад готовой продукции. Упакованный препарат передали на склад готовой продукции в условиях транспортировки -70°С.The finished product was put in containers, on which they hung a yellow label “In quarantine” with the name of the preparation, batch number, date of production of the product, date of delivery for analysis in the OKC and the number of packs in the container. The containers were sealed with a lid. Then the containers are placed in a pharmaceutical refrigerator at a temperature of -70 ° C for 24 hours. Next, the OCC controller selected the required number of packages and transferred them at -70 ° C for analysis on the conformity of the FSP and arbitration storage. After receiving a positive opinion, the containers were marked with a green label on which the batch number, the number of packs in the series, the number of packs in each container and the date of delivery of the finished product to the warehouse were indicated. The packaged preparation was transferred to the finished goods warehouse under transportation conditions of -70 ° C.

Пример 5. Контроль качества препарата МобиланExample 5. Quality control of the drug Mobilan

Инновационный препарат Мобилан (M-VM3) передается на контроль качества и должен соответствовать нормам, описанным в фармакопейной статье предприятия:The innovative drug Mobilan (M-VM3) is transferred to quality control and must comply with the standards described in the pharmacopoeial article of the enterprise:

1) Описание. Препарат должен быть бесцветным или с голубоватым оттенком опалесцирующим раствором.1) Description. The drug should be a colorless or bluish tinge with an opalescent solution.

2) Подлинность. Должен присутствовать геном неспособного к репликации бицистронного человеческого аденовирусного вектора и гены человеческого Толл-подобного рецептора 5 типа и фармакологически оптимизированного секретируемого фрагмента белка флагеллина бактерий рода Salmonella. Должны отсутствовать неспецифические фрагменты.2) Authenticity. The gene for the bicistronic bicistronic human adenovirus vector and the genes for the human Toll-like type 5 receptor and a pharmacologically optimized secreted fragment of the flagellin protein of bacteria of the genus Salmonella must be present. There should be no nonspecific fragments.

3) Прозрачность. 10% раствор препарата в 5% водном растворе глюкозы должен выдерживать сравнение с эталоном № IV (по ГФ XII).3) Transparency. A 10% solution of the drug in a 5% aqueous glucose solution should withstand comparison with reference No. IV (according to GF XII).

4) Цветность. Препарат должен быть бесцветным или интенсивность окраски раствора должна быть не более окраски эталона Y6.4) Color. The drug should be colorless or the color intensity of the solution should be no more than the color of the standard Y6.

5) Механические включения. Видимые и довидимые частицы. Препарат должен выдерживать требования согласно РД 42-501-98.5) Mechanical inclusion. Visible and visible particles. The drug must withstand the requirements according to RD 42-501-98.

6) pH. От 7,0 до 9,0.6) pH. From 7.0 to 9.0.

7) Извлекаемый объем. Не менее номинального (по ГФ XII).7) Recoverable volume. Not less than nominal (according to GF XII).

8) Стерильность. Должен быть стерильным (по ГФ XII, метод мембранной фильтрации или прямого посева).8) Sterility. It must be sterile (according to GF XII, the method of membrane filtration or direct seeding).

9) Вирусная безопасность. Препарат должен содержать менее 7×103 репликативно-компетентных аденовирусов на мл. Анализ цитопатического эффекта на культуре клеток (А549).9) Viral safety. The drug should contain less than 7 × 103 replicatively competent adenoviruses per ml. Analysis of the cytopathic effect on cell culture (A549).

10) Аномальная токсичность. Препарат должен быть нетоксичным (по ГФ XII).10) Abnormal toxicity. The drug should be non-toxic (according to GF XII).

11) Пирогенность. Препарат должен быть апирогенным (по ГФ XII).11) Pyrogenicity. The drug should be pyrogen-free (according to GF XII).

12) Посторонние примеси. Не идентифицированные примеси не более 5%.12) Foreign matter. Unidentified impurities no more than 5%.

13) Количественное определение. Препарат должен содержать (1,0±0,2)×1012 частиц/мл.13) Quantification. The drug should contain (1.0 ± 0.2) × 10 12 particles / ml.

14) Биологическая активность. Не менее 1×1010 бляшкообразующих единиц/мл.14) Biological activity. At least 1 × 10 10 plaque forming units / ml.

Препарат, произведенный в количестве 1500 флаконов по оптимизированной технологии (Табл. 2), соответствует нормам ФСП на «Мобилан (M-VM3), концентрат для приготовления раствора для внутриопухолевого введения, 1012 частиц/мл».The preparation, produced in the amount of 1,500 bottles according to the optimized technology (Table 2), complies with the FSP standards for Mobilan (M-VM3), concentrate for the preparation of a solution for intratumoral administration, 10 12 particles / ml.

Figure 00000008
Figure 00000008

Figure 00000009
Figure 00000009

Claims (1)

Способ производства препарата на основе нереплицирующегося аденовирусного вектора, экспрессирующего ген человеческого TOLL-подобного рецептора 5 типа и ген фрагмента белка флагелина, включающий: приготовление питательной среды из сухой среды CD293AGT, глутамина и воды; получение клеточной суспензии из клеток линии HEK293, для этого размораживают клетки линии HEK293, центрифугируют, сливают надосадочную жидкость и добавляют питательную среду и культивируют до необходимой концентрации 2,0×106 кл/мл, периодически пересеивая; клеточную суспензию линии HEK293 помещают в ферментер и отстаивают в течение 30 мин, сливают надосадочную жидкость - примерно 2/3 объема и добавляют в ферментер приготовленную питательную среду до концентрации клеток «под заражение» 1,0×106 кл/мл, добавляют M-VM3 вирусный конструкт в объеме, равном примерно 1/17 от общего объема суспензии и питательной среды, и культивируют до 2×108 БОЕ/мл; полученной «затравкой» заражают нарощенный в волновом биореакторе объем клеточной суспензии до конечной концентрации 8×108 БОЕ/мл; проводят центрифугирование и отвод супернатанта, осадок ресуспендируют лизисным буфером в соотношении примерно 1/16,6, разливают по флаконам и замораживают на 2 часа; размораживают на водяной бане 23-25°С, не давая согреться, объединяют содержимое всех флаконов и обрабатывают бензоназой до финальной концентрации 150 ед/мл, перемешивают, центрифугируют, супернатант подвергают ультрафильтрации; проводят последовательно анионообменную и эксклюзионную хроматографию; проводят стерилизующую фильтрацию; разливают во флаконы; проводят вальцовку флаконов и замораживание готовой продукции. A method for producing a preparation based on a non-replicating adenoviral vector expressing a human type 5 TOLL-like receptor gene and flagelin protein fragment gene, comprising: preparing a nutrient medium from CD293AGT dry medium, glutamine and water; obtaining a cell suspension from HEK293 cell line, for this, HEK293 cell line is thawed, centrifuged, the supernatant is drained and culture medium is added and cultured to the required concentration of 2.0 × 10 6 cells / ml, periodically replanting; the HEK293 cell suspension is placed in the fermenter and sedimented for 30 minutes, the supernatant liquid is drained - about 2/3 of the volume and the prepared nutrient medium is added to the fermenter to the cell concentration “under infection” of 1.0 × 10 6 cells / ml, M- is added VM3 viral construct in a volume equal to approximately 1/17 of the total volume of the suspension and culture medium, and cultured to 2 × 10 8 PFU / ml; the resulting “seed” infects the volume of cell suspension grown in the wave bioreactor to a final concentration of 8 × 10 8 PFU / ml; centrifugation and removal of the supernatant are carried out, the precipitate is resuspended in lysis buffer at a ratio of about 1 / 16.6, poured into vials and frozen for 2 hours; thawed in a water bath 23-25 ° C, not allowing to warm up, combine the contents of all the bottles and treat with benzonase to a final concentration of 150 units / ml, mix, centrifuged, the supernatant is subjected to ultrafiltration; sequentially anion exchange and size exclusion chromatography; carry out sterilizing filtration; poured into bottles; rolling the bottles and freezing the finished product.
RU2015131308/10A 2015-06-19 2015-06-19 Method for production of preparation based on non-replicating viral vector expressing gene of human toll-like receptor and gene of modified protein flagellin RU2590588C1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/RU2015/000379 WO2016204644A1 (en) 2015-06-19 2015-06-19 Method of producing a drug based on a non-replicating viral vector expressing a human toll-like receptor gene and a modified flagellin gene

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2590588C1 true RU2590588C1 (en) 2016-07-10

Family

ID=56371975

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015131308/10A RU2590588C1 (en) 2015-06-19 2015-06-19 Method for production of preparation based on non-replicating viral vector expressing gene of human toll-like receptor and gene of modified protein flagellin

Country Status (2)

Country Link
RU (1) RU2590588C1 (en)
WO (1) WO2016204644A1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2091489C1 (en) * 1993-04-08 1997-09-27 Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Strain of recombinant small pox virus expressing structural proteins of the horse venezuelan encephalomyelitis virus and useful for immunobiological preparations production and a method of its preparing
WO2010055292A2 (en) * 2008-11-11 2010-05-20 London School Of Hygiene & Tropical Medicine Vectors
WO2015080631A1 (en) * 2013-11-27 2015-06-04 Obschestvo S Ogranichennoy Otvetstvennost`Yu "Panacela Labs" Improved expression vector for toll-like receptor and agonist and use for treating cancer

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2091489C1 (en) * 1993-04-08 1997-09-27 Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Strain of recombinant small pox virus expressing structural proteins of the horse venezuelan encephalomyelitis virus and useful for immunobiological preparations production and a method of its preparing
WO2010055292A2 (en) * 2008-11-11 2010-05-20 London School Of Hygiene & Tropical Medicine Vectors
WO2015080631A1 (en) * 2013-11-27 2015-06-04 Obschestvo S Ogranichennoy Otvetstvennost`Yu "Panacela Labs" Improved expression vector for toll-like receptor and agonist and use for treating cancer

Also Published As

Publication number Publication date
WO2016204644A1 (en) 2016-12-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR102015933B1 (en) Systems and methods of virus propagation in cell culture for vaccine manufacture
Lusky Good manufacturing practice production of adenoviral vectors for clinical trials
KR102022952B1 (en) Methods and compositions for production of vaccina virus
Tollefson et al. Preparation and titration of CsCl-banded adenovirus stocks
Lesch et al. Process development of adenoviral vector production in fixed bed bioreactor: from bench to commercial scale
Regulski et al. Bacteriophage manufacturing: From early twentieth-century processes to current GMP
WO2020251405A1 (en) Method of obtaining an antigen or antigens for producing an influenza vaccine and vaccine based thereon
WO2013123734A1 (en) Optimized in vitro nucleated cell separation kit and application method
CN114181970B (en) Lentiviral vector purification method
WO2016188781A1 (en) Method and system for cell cultivation
CN105483092A (en) Novel technology for producing recombinant adeno associated viruses in pilot test manner
WO2022262206A1 (en) Purification method for and application of gmp-grade retroviral vector
US20210268405A1 (en) Method for producing recombinant adenovirus
RU2590588C1 (en) Method for production of preparation based on non-replicating viral vector expressing gene of human toll-like receptor and gene of modified protein flagellin
EP1731598A1 (en) Methods for cultivating cells and propagating viruses
CN111494615A (en) Method for producing recombinant adenovirus gene vaccine for preventing novel coronavirus
CN104099288B (en) A kind of production technology of new-born calf serum
Lothert et al. Upstream and downstream processes for viral Nanoplexes as vaccines
CN116162601A (en) Preparation method of influenza virus split vaccine
Veluchamy An off the shelf, GMP compliant, fully closed and semi-automated large-scale production system for allogeneic NK cells
US20030049829A1 (en) Concentration and lysis of adenovirus-infected cells in a single unit operation
CN113337475B (en) Production and purification process of hemorrhagic fever vaccine
RU2614127C2 (en) Method for production of recombinant pseudoadenovirus particles concentrate, expressing hemagglutinin gene of influenza a/california/07/2009(h1n1)
CN102327608B (en) Purifying method of encephalitis B vaccine
RU2448158C1 (en) Method for preparing preparation fortelysin showing fibrinolytic properties, and its application for treating myocardial infraction

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner