RU2586504C1 - Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction - Google Patents

Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction Download PDF

Info

Publication number
RU2586504C1
RU2586504C1 RU2015116411/10A RU2015116411A RU2586504C1 RU 2586504 C1 RU2586504 C1 RU 2586504C1 RU 2015116411/10 A RU2015116411/10 A RU 2015116411/10A RU 2015116411 A RU2015116411 A RU 2015116411A RU 2586504 C1 RU2586504 C1 RU 2586504C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
felv
fiv
mcl
primers
cats
Prior art date
Application number
RU2015116411/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Екатерина Сергеевна Красникова
Ольга Сергеевна Ларионова
Юрий Иванович Яшечкин
Екатерина Владимировна Найденова
Александр Владимирович Красников
Анастасия Сергеевна Белякова
Юлия Алексеевна Марушева
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова"
Priority to RU2015116411/10A priority Critical patent/RU2586504C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2586504C1 publication Critical patent/RU2586504C1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • C12N15/1131Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
    • C12Q1/703Viruses associated with AIDS

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and a set of synthetic oligonucleotide primers and method for use thereof. Proposed set comprises two pairs of primers having following structure - FIV F: 5′-AAGAGTCCCAAATATGCCATAGG-3′ and FIV R: 5′-TCCATCCAAATTGCTACTGTTC-3′; FeLV F: 5′-GAATAAACCTCTTGCTGTTTGC-3′ and FeLV R: 5′-AATCAGATCGAATGACAGAGACAC-3′. Presented primers do not contain palindromic repetitions of nucleotides, do not form expressed secondary structure and do not have extended G-C portions, and temperature of annealing is 55 °C for both pairs of oligonucleotides. Described method involves preparation of reaction mixture by mixing buffer of 10-fold for PCR - 2.5 mcl, a dNTP (25 mM) - 0.4 mcl, primers FIV F, FIV R, FeLV F and FeLV R (15 pmol/mcl) in 1 mcl, Taq polymerase (5 units/mcl) - 0.2 mcl MgCl2 (50 mM) - 1.5 mcl bidistilled water - 11.4 mcl and test DNA 5 mcl, amplification is carried out in following mode: total denaturation 95 °C - 3 minutes, cycle denaturation (95°C - 20 or 60 s) - annealing (55 °C - 20 or 60 s) - elongation (72 °C - 40 or 60 s), cycle of denaturation-annealing-elongation is repeated 35 times, final elongation 72 °C - 5 minutes, storing 4 °C - 10 minutes, and detection of obtained results is carried out by 1.5 % agarose gel. Presence or absence of amplified fragments of nucleotide sequences length 397 base pairs for FIV (feline immunodeficiency virus) and 221 base pairs for FeLV (feline leukemia virus) indicates presence or absence of viruses in organism cat.
EFFECT: invention can be used in scientific research for detecting a genetic material of immunodeficiency viruses - FIV and leukemia FeLV cats by multiplex polymerase chain reaction (PCR) in animal blood.
2 cl, 3 dwg, 3 tbl

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, молекулярной биологии, молекулярно-генетической диагностики вирусных болезней животных, и может быть использовано в научных исследованиях для обнаружения генетического материала вирусов иммунодефицита FIV (feline immunodeficiency virus) и лейкемии FeLV (feline leukemia virus) кошек методом мультиплексной полимеразной цепной реакции (ПЦР) в крови животных.The invention relates to the field of biotechnology, molecular biology, molecular genetic diagnosis of animal viral diseases, and can be used in scientific research to detect the genetic material of FIV immunodeficiency viruses and feline leukemia virus leukemia feline leukemia multiplex polymerase chain reaction (PCR) in the blood of animals.

Возбудителей заболеваний - FIV и FeLV - относят к семейству Retroviridae. Данные вирусы характеризуются высокой степенью гомологии и сходным строением геномов: имеют три основных структурных гена, кодирующих вирусные протеины в следующем порядке: 5′-gag-pol-env-3′: gag (group specificanti gen - кодируют белки сердцевины), pol (кодируют обратную транскриптазу - polymerase и интегразу) и env (кодируют белки оболочки - envelope).The causative agents of diseases - FIV and FeLV - belong to the family Retroviridae. These viruses are characterized by a high degree of homology and a similar genome structure: they have three main structural genes encoding viral proteins in the following order: 5′-gag-pol-env-3 ′: gag (group specificanti gen - encode core proteins), pol (encode reverse transcriptase - polymerase and integrase) and env (encode envelope proteins - envelope).

Внутри группы штаммов FIV, изолируемых от домашних кошек, можно различить 5 генетических вариантов, обладающих определенной вариабельностью геномов. Разделение на типы и подтипы осуществляется на основании анализа модификаций структуры гена env (Martins A.N. et all, 2008). FeLV также характеризуется значительной вариабельностью в структуре генов. По результатам анализа вирусных геномов наименее вариабельными оказались: ген gag FIV и область, расположенная непосредственно перед геном gag-pro-pol FeLV.Within the group of FIV strains isolated from domestic cats, 5 genetic variants with a certain variability of genomes can be distinguished. Separation into types and subtypes is carried out on the basis of the analysis of modifications of the structure of the env gene (Martins A.N. et all, 2008). FeLV is also characterized by significant variability in the structure of genes. According to the results of the analysis of viral genomes, the least variable were: the gag FIV gene and the region located immediately in front of the gag-pro-pol FeLV gene.

Схема жизненного цикла ретровирусов включает: связывание вириона с рецептором клетки хозяина, вход в клетку, обратное транскрибирование с образованием кДНК интеграцию в геном хозяина (формирование провируса) (Супотницкий М.В. Эволюционная патология. К вопросу о месте ВИЧ-инфекции и ВИЧ/СПИД-пандемии среди других инфекционных, эпидемических и пандемических процессов. - М.: Вузовская книга, 2009. - 400 с.). В соответствии с биологическими особенностями вирусов методы, направленные на выявление антител, менее информативны, чем те, что позволяют обнаружить сам вирус.The life cycle scheme of retroviruses includes: binding of the virion to the receptor of the host cell, entry into the cell, reverse transcription with the formation of cDNA integration into the host genome (formation of the provirus) (Supotnitsky MV Evolutionary pathology. On the issue of HIV infection and HIV / AIDS pandemics among other infectious, epidemic and pandemic processes. - M.: University Book, 2009. - 400 p.). In accordance with the biological characteristics of viruses, methods aimed at detecting antibodies are less informative than those that can detect the virus itself.

Вирусы лейкемии и иммунодефицита кошек могут долгие годы не проявлять себя в зараженном организме, делая его источником инфекции. Они передаются горизонтальным путем и вертикально, от матери к плоду. Часто данные болезни протекают сочетано, то есть одно животное является носителем обоих вирусов. Эти инфекции широко распространены как среди домашних, так и среди бродячих кошек (Красников А.В., Ларионова О.С., Марушева Ю.А. Анализ инфицированности кошек ретровирусными инфекциями в Саратовской области // Аграрный научный журнал №2, 2015. С. 14-16).Viruses of leukemia and immunodeficiency in cats may not manifest themselves in the infected body for many years, making it a source of infection. They are transmitted horizontally and vertically, from mother to fetus. Often these diseases occur in combination, that is, one animal is a carrier of both viruses. These infections are widespread among both domestic and stray cats (Krasnikov A.V., Larionova O.S., Marusheva Yu.A. Analysis of infection of cats with retroviral infections in the Saratov region // Agrarian scientific journal No. 2, 2015. S . 14-16).

Вирусы являются лимфонейротропными, инфицирование приводит к глубокой иммуносупресии, проявляющейся развитием вторичных инфекций и опухолевых процессов. Животное всю жизнь находится на поддерживающей терапии. При этом схемы лечения вирусных лейкемии и иммунодефицита кошек различны, так как несмотря на то что вирусы поражают преимущественно лимфоциты, FIV вызывает иммунное заболевание - снижение популяции CD4-Т-лимфоцитов, а FeLV провоцирует онкологическое заболевание - клонирование вирусмодифицированных В-лимфоцитов (Сулимов А.А. Вирусные болезни кошек. - М.: КолосС, 2004. - С. 40-48, 66-70).Viruses are lymphoneurotropic, infection leads to deep immunosuppression, manifested by the development of secondary infections and tumor processes. The animal has been on maintenance therapy all his life. At the same time, treatment regimens for viral leukemia and immunodeficiency in cats are different, because despite the fact that viruses primarily affect lymphocytes, FIV causes an immune disease - a decrease in the population of CD4-T lymphocytes, and FeLV provokes an oncological disease - cloning of virus-modified B-lymphocytes (Sulimov A. A. Viral diseases of cats. - M .: KolosS, 2004. - S. 40-48, 66-70).

В России для диагностики этих инфекций есть две ПЦР-тест-системы, одна для выявления лейкоза, другая - иммунодефицита кошек (ООО ИнтерЛабСервис, Россия). Обе предназначены для проведения ПЦР в реальном времени. Прибор, на котором можно провести анализ, стоит от 2 миллионов рублей и выше. Это делает недоступной диагностику данных заболеваний для рядовых ветеринарных лечебниц и лабораторий. Там же, где есть такой прибор, один анализ стоит от 600 рублей. Учитывая то, что инфекционных агентов два и в ряде случаев исследование требуется повторить, владельцы не в состоянии оплатить качественную диагностику. Поэтому возникает необходимость разработки и внедрения в практику более доступных и экономичных методов.In Russia, there are two PCR test systems for diagnosing these infections, one for detecting leukemia and the other for cat immunodeficiency (InterLabService LLC, Russia). Both are designed for real-time PCR. A device on which analysis can be carried out costs from 2 million rubles and more. This makes the diagnosis of these diseases unavailable for ordinary veterinary hospitals and laboratories. Where there is such a device, one analysis costs from 600 rubles. Given the fact that there are two infectious agents and in some cases the study needs to be repeated, the owners are not able to pay for a high-quality diagnosis. Therefore, there is a need to develop and put into practice more accessible and economical methods.

Метод ПЦР является прямым высокочувствительным и высокоспецифичным методом, с помощью которого можно идентифицировать фрагменты провирусной ДНК FIV и FeLV в лимфоцитах периферической крови кошек. Специфичность метода обуславливают праймеры - олигонуклеотиды, которые фланкируют искомый участок, присоединяясь по принципу комплиментарности на денатурированную ДНК (отжиг), и, являясь затравкой для полимеразы, инициируют элонгацию новой цепи на искомом фрагменте ДНК. Основными параметрами эффективного прохождения реакции амплификации, обеспечивающими специфичность и чувствительность, являются правильный выбор области генома идентифицируемого агента, структура и температурный режим отжига праймеров.The PCR method is a direct highly sensitive and highly specific method by which it is possible to identify fragments of proviral DNA FIV and FeLV in lymphocytes of peripheral blood of cats. The specificity of the method is determined by primers - oligonucleotides that flank the desired site, joining on the principle of complementarity on denatured DNA (annealing), and, being a seed for polymerase, initiate the elongation of a new chain on the desired DNA fragment. The main parameters for the efficient passage of the amplification reaction, which provide specificity and sensitivity, are the correct choice of the genome region of the identified agent, the structure and temperature regime of primer annealing.

Известен способ определения антител к FIV и FeLV в крови животных методом твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA), основанный на обнаружении специфического комплекса антиген-антитело с помощью цветной реакции вследствие ферментирования субстрата энзимом, связанным с коньюгатом (BMC Vet Res. 2013; 9: 2. Comparison of the geographical distribution of feline immunodeficiency virus and feline leukemia virus infections in the United States of America (2000-2011). Bimal К Chhetri, Olaf Berke, David L Pearl, and Dorothee Bienzle). Недостатком метода является невысокая информативность в случае обследования вакцинированного животного (ложноположительные результаты) и на ранних этапах заражения, когда в крови не достаточно высокий уровень антител (ложноотрицательные результаты).A known method for the determination of antibodies to FIV and FeLV in animal blood by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), based on the detection of a specific antigen-antibody complex using a color reaction due to the fermentation of the substrate with an enzyme associated with the conjugate (BMC Vet Res. 2013; 9: 2. Comparison of the geographical distribution of feline immunodeficiency virus and feline leukemia virus infections in the United States of America (2000-2011). Bimal K Chhetri, Olaf Berke, David L Pearl, and Dorothee Bienzle). The disadvantage of this method is the low information content in the case of examination of a vaccinated animal (false positive results) and in the early stages of infection, when the blood level of antibodies is not high enough (false negative results).

Известен способ выявления FIV в крови кошек методом one-step PCR, основанный на обнаружении ДНК провируса иммунодефицита кошек, а также способ выявления FeLV в крови кошек методом one-step RT-PCR, основанный на обнаружении РНК вируса лейкемии кошек (Vet Res Forum. 2014 Fall; 5(4): 255-61. Molecular and clinical study on prevalence of feline herpesvirus type 1 and calicivirus in correlation with feline leukemia and immunodeficiency viruses. Hamideh Najafi, Omid Madadgar, Shahram Jamshidi, Arash Ghalyanchi Langeroudi, and Mahdieh Darzi Lemraski). Недостатками метода являются многооперационность анализа, то есть необходимость постановки как минимум трех последовательных реакций на одном биоматериале для выявления вышеуказанных патогенов, причем каждого в отдельности.A known method for detecting FIV in the blood of cats by one-step PCR based on the detection of feline immunodeficiency virus DNA of cats, as well as a method for detecting FeLV in the blood of cats by one-step RT-PCR based on the detection of feline leukemia virus RNA (Vet Res Forum. 2014 Fall; 5 (4): 255-61. Molecular and clinical study on prevalence of feline herpesvirus type 1 and calicivirus in correlation with feline leukemia and immunodeficiency viruses. Hamideh Najafi, Omid Madadgar, Shahram Jamshidi, Arash Ghalyanchi Langeroudi, and Mahdieh Darz ) The disadvantages of the method are multioperational analysis, that is, the need for at least three sequential reactions on one biomaterial to identify the above pathogens, each separately.

Известен способ выявления FIV и FeLV в крови кошек методом Real-time PCR, основанный на обнаружении каждого из патогенов по отдельности с помощью двояко меченых флуоресцентных зондов (Красникова Е.С., Красников А.В., Агольцов В.А. Оценка диагностической ценности полимеразной цепной реакции и иммунохроматографического анализа при некоторых превалирующих ретровирусных инфекциях кошек // Аграрный научный журнал. 2013. №2. С. 23-25). Недостатками данного способа является невозможность выявления FIV и FeLV одновременно, что приводит к увеличению времени исследования и повышенному расходу материалов, кроме того, необходимость применения флуоресцентных зондов для учета результатов способствует удорожанию.A known method for detecting FIV and FeLV in cats blood using the Real-time PCR method, based on the detection of each pathogen individually using double-labeled fluorescent probes (Krasnikova E.S., Krasnikov A.V., Agoltsov V.A. Diagnostic value assessment polymerase chain reaction and immunochromatographic analysis in some prevailing retroviral infections of cats // Agrarian scientific journal. 2013. No. 2. P. 23-25). The disadvantages of this method is the inability to detect FIV and FeLV at the same time, which leads to an increase in research time and increased consumption of materials, in addition, the need to use fluorescent probes to account for the results contributes to a rise in price.

Наиболее близким к заявленному изобретению является способ, описанный в патенте RU №2340673 от 10.04.2007, опубликован 10.12.2008 г.: «Набор олигонуклеотидных праймеров для идентификации РНК вируса бешенства в образцах». В котором конструирование праймеров осуществлялось путем сравнения нуклеотидных последовательностей различных штаммов лиссавирусов, депонированных в международной базе данных GeneBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank). При этом были рассчитаны и синтезированы две пары олигонуклеотидных праймеров на консервативный район гена нуклеопротеина: Rab134F ATCGTRGAYCAATATGAGTACAAGTA, Rab1292R CNTCCATTCATCATGATTCG, Rab299F GCAATGCAGTTCTTTGAGGG и Rab857R TATCTCTTCTTCAAAGTTCTT, которые не имеют полиндромных повторов нуклеотидов, не образуют выраженных вторичных структур, не имеют протяженных G-C участков и имеют расчетную температуру плавления 52°C. Для апробации праймеров использовали следующие параметры ПЦР: 94°C 10 сек, 56°C 30 сек с понижением температуры на 1°C за цикл, 72°C 1 мин - 6 циклов, затем 94°C 10 сек., 50°C 15 сек, 72°C 30 сек. 35 циклов, завершающий синтез - 7 мин 72°C, обеспечивает синтез фрагментов ДНК рассчитанного размера (558 п.о.) в условиях ОТ-ПЦР. Специфичность продуктов амплификации подтверждали методом прямого секвенирования.Closest to the claimed invention is the method described in patent RU No. 2340673 dated 04/10/2007, published on 12/10/2008: “A set of oligonucleotide primers for identification of rabies virus RNA in samples”. In which the design of the primers was carried out by comparing the nucleotide sequences of various strains of lissaviruses deposited in the international GeneBank database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank). In this case, two pairs of oligonucleotide primers for the conserved region of the nucleoprotein gene were calculated and melting point 52 ° C. For testing the primers, the following PCR parameters were used: 94 ° C for 10 sec, 56 ° C for 30 sec with a temperature decrease of 1 ° C per cycle, 72 ° C for 1 min - 6 cycles, then 94 ° C for 10 sec., 50 ° C 15 sec. 72 ° C 30 sec. 35 cycles, the final synthesis - 7 min 72 ° C, provides the synthesis of DNA fragments of the calculated size (558 bp) under the conditions of RT-PCR. The specificity of amplification products was confirmed by direct sequencing.

Но данный способ не предназначен для выявления вирусов бешенства у животных методом мультиплексной ПЦР и не может быть использован для обнаружения вирусов иммунодефицита и лейкемии из-за неспецифичности праймеров для FIV и FeLV, а также необходимо осуществлять реакцию обратной транскрипции перед постановкой ПЦР и секвенирование для учета результатов, что достаточно трудоемко и затратно.But this method is not designed to detect rabies viruses in animals by multiplex PCR and cannot be used to detect immunodeficiency viruses and leukemia due to the unspecificity of primers for FIV and FeLV, and it is also necessary to carry out a reverse transcription reaction before PCR and sequencing to take into account the results , which is quite laborious and costly.

Технической задачей является разработка эффективного, быстрого и недорогого способа обнаружения ДНК провирусов иммунодефицита и лейкемии кошек методом мультиплексной ПЦР путем конструирования двух специфических пар олигонуклеотидных праймеров и подбора условий для проведения мультиплексной ПЦР с ними.The technical task is to develop an effective, fast and inexpensive method for the detection of DNA of immunodeficiency virus and leukemia of cats by multiplex PCR by constructing two specific pairs of oligonucleotide primers and selecting the conditions for conducting multiplex PCR with them.

Технический результат предлагаемого изобретения достигается за счет конструирования диагностического набора праймеров на консервативную область геномов FIV и FeLV и разработка способа их применения в мультиплексной ПЦР с учетом результата методом электрофореза в агарозном геле, что обеспечивает простоту, информативность и доступность исследований для рядовых лабораторий.The technical result of the invention is achieved by constructing a diagnostic set of primers for the conserved region of the FIV and FeLV genomes and developing a method for their use in multiplex PCR taking into account the result by agarose gel electrophoresis, which ensures simplicity, informativeness and accessibility of studies for ordinary laboratories.

Указанный технический результат достигается созданием набора олигонуклеотидных праймеров для идентификации вирусов иммунодефицита и лейкемии кошек путем сравнения нуклеотидных последовательностей различных штаммов FIV и FeLV, депонированных в международной базе данных GeneBank. При этом на консервативных районах геномов FIV и FeLV, которые не имеют полиндромных повторов нуклеотидов, были рассчитаны и синтезированы две пары олигонуклеотидных праймеров, которые не образуют выраженных вторичных структур, не имеют протяженных G-C участков и отличаются тем, что имеют температуру отжига - 55°C для обоих пар олигонуклеотидов и следующую структуру - FIV F: 5′-AAGAGTCCCAAATATGCCATAGG-3′ и FIV R: 5′-TCCATCCAAATTGCTACTGTTC-3′; FeLV F: 5′-GAATAAACCTCTTGCTGTTTGC-3′ и FeLV R: 5′-AATCAGATCGAATGACAGAGACAC-3′, с образованием в результате работы одной пары (FIV) фрагмента длиной 397 п.н., в результате работы другой пары (FeLV) - длиной 221 п.н. Для применения праймеров используют мультиплексную ПЦР, отличающуюся от прототипа тем, что отсутствует необходимость проводить ОТ, а также составом реакционной смеси, которая готовится путем смешения буфера 10-кратного для ПЦР - 2,5 мкл, дНТФ (25 мМ) - 0,4 мкл, праймеров FIV F, FIV R FeLV F и FeLV R (15 пмоль/мкл) по 1 мкл, Taq полимеразы (5 ед./мкл) - 0,2 мкл, MgCl2 (50 мМ) - 1,5 мкл, бидистиллированной воды - 11,4 мкл и пробы ДНК - 5 мкл. При этом амплификацию проводят в следующем режиме: тотальная денатурация 95°C - 3 мин, цикл денатурация (95°C - 20 или 60 сек) - отжиг (55°C - 20 или 60 сек) - элонгация (72°C - 40 или 60 сек), причем цикл денатурация-отжиг-элонгация повторяется 35 раз, заключительная элонгация 72°C - 5 мин., хранение 4°C - 10 мин. При этом детекция полученных результатов осуществляется методом электрофореза в 1,5%-ном агарозном геле, где по наличию или отсутствию амплифицируемых фрагментов нуклеотидных последовательностей длиной 397 п.н. для FIV и 221 п.н. для FeLV судят о наличии или отсутствии вирусов в организме кошек.The specified technical result is achieved by creating a set of oligonucleotide primers for the identification of immunodeficiency viruses and leukemia of cats by comparing the nucleotide sequences of different strains of FIV and FeLV, deposited in the international GeneBank database. Moreover, in conservative regions of the FIV and FeLV genomes that do not have polindromic nucleotide repeats, two pairs of oligonucleotide primers were calculated and synthesized that do not form pronounced secondary structures, do not have extended GC sites, and differ in that they have an annealing temperature of 55 ° C for both pairs of oligonucleotides, the following structure is FIV F: 5′-AAGAGTCCCAAATATGCCATAGG-3 ′ and FIV R: 5′-TCCATCCAAATTGCTACTGTTC-3 ′; FeLV F: 5′-GAATAAACCTCTTGCTGTTTGC-3 ′ and FeLV R: 5′-AATCAGATCGAATGACAGAGACAC-3 ′, with the formation of one pair (FIV) of a fragment of 397 bp in length, as a result of the work of another pair (FeLV) - of length 221 bp For the use of primers, multiplex PCR is used, which differs from the prototype in that there is no need to carry out RT, as well as the composition of the reaction mixture, which is prepared by mixing a 10-fold buffer for PCR - 2.5 μl, dNTP (25 mm) - 0.4 μl primers FIV F, FIV R FeLV F and FeLV R (15 pmol / μl) 1 μl, Taq polymerase (5 units / μl) 0.2 μl, MgCl 2 (50 mm) 1.5 μl bidistilled water - 11.4 μl and DNA samples - 5 μl. In this case, amplification is carried out in the following mode: total denaturation 95 ° C - 3 min, denaturation cycle (95 ° C - 20 or 60 sec) - annealing (55 ° C - 20 or 60 sec) - elongation (72 ° C - 40 or 60 sec), and the denaturation-annealing-elongation cycle is repeated 35 times, the final elongation is 72 ° C for 5 minutes, storage 4 ° C for 10 minutes. In this case, the results obtained are detected by electrophoresis in a 1.5% agarose gel, where, by the presence or absence of amplified fragments of nucleotide sequences 397 bp in length. for FIV and 221 bp for FeLV, the presence or absence of viruses in cats is judged.

На фигуре 1 представлены схемы строения геномов вирусов иммунодефицита и лейкемии кошек, где показано, что вирусы содержат аналогичные гены и имеют примерно одинаковый размер геномов. На фигуре 1 овалом выделены области, на которых осуществлялось конструирование праймеров.The figure 1 presents the structure of the genomes of the viruses of immunodeficiency and leukemia of cats, where it is shown that the viruses contain similar genes and have approximately the same genome size. In figure 1, the oval marks the areas on which the design of the primers was carried out.

На фигуре 2 представлена электрофореграмма результатов исследования крови FIV и FeLV позитивных кошек методом мультиплексной ПЦР с использованием разработанных праймеров для определении размеров амплифицируемых фрагментов. Пробы 1, 4, 5, 7 и 8 являются FIV и FeLV положительными, а пробы 2, 3 и 6 содержат только ДНК FeLV.The figure 2 presents the electrophoregram of the results of a blood test of FIV and FeLV positive cats by multiplex PCR using developed primers to determine the size of amplified fragments. Samples 1, 4, 5, 7, and 8 are FIV and FeLV positive, and samples 2, 3, and 6 contain only FeLV DNA.

На фигуре 3 представлена электрофореграмма результатов исследования клинического материала от кошек разработанным способом. Пробы 1, 2, 3, 4, 5, 9 - FIV и FeLV - положительные, пробы 6, 7, 10 содержат только ДНК FeLV, проба 8 - отрицательная.The figure 3 presents an electrophoregram of the results of the study of clinical material from cats in a developed way. Samples 1, 2, 3, 4, 5, 9 - FIV and FeLV - positive, samples 6, 7, 10 contain only FeLV DNA, sample 8 - negative.

Конструирование двух пар синтетических олигонуклеотидных праймеров, применяемых для выделения ДНК провирусов иммунодефицита и лейкемии кошек, и разработка способа диагностики вирусного иммунодефицита и лейкемии кошек с их использованием осуществлялись в пять этапов:The construction of two pairs of synthetic oligonucleotide primers used to isolate DNA from immunodeficiency viruses and feline leukemia, and the development of a method for the diagnosis of viral immunodeficiency and feline leukemia using them was carried out in five stages:

- анализ структуры геномов FIV и FeLV;- analysis of the structure of the FIV and FeLV genomes;

- конструирование праймеров;- design of primers;

- подбор оптимально сочетающихся между собой двух пар праймеров;- selection of two pairs of primers that are optimally combined with each other;

- моделирование состава реакционной смеси способа диагностики вирусных иммунодефицита и лейкемии кошек с использованием подобранных пар праймеров;- modeling the composition of the reaction mixture of the method for the diagnosis of viral immunodeficiency and leukemia in cats using selected pairs of primers;

- проверка эффективности работы подобранных праймеров с клиническим материалом.- verification of the effectiveness of selected primers with clinical material.

Анализ структуры геномов FIV и FeLV. Анализ геномных последовательностей FIV и FeLV, размещенных на ресурсе NCBI, осуществлялись методом компьютерного моделирования с применением авторских компьютерных программ: «Нуклеотидные последовательности и характеристики геномов, вариабельных тандемных повторов, олигонуклеотидных праймеров и зондов штаммов возбудителей бактериальных и вирусных инфекций I-II групп патогенности» (Свидетельство о госрегистрации базы данных №2011620585 (авторы - Яшечкин Ю.И., Найденова Е.В., Щербакова С.А.)) и «Программа расчета олигонуклеотидных праймеров на гомологичных геномах РНК-содержащих вирусов для их выявления в ПЦР и формирования базы данных» (Свидетельство о госрегистрации программ для ЭВМ №2013613699 (авторы - Яшечкин Ю.И., Найденова Е.В., Щербакова С.А.)). Выравнивание геномных последовательностей осуществлялось методом ClustaW, кластерное дерево моделировали методом UPGMA.Analysis of the structure of the FIV and FeLV genomes. Analysis of the FIV and FeLV genomic sequences hosted on the NCBI resource was carried out by computer simulation using proprietary computer programs: “Nucleotide sequences and characteristics of genomes, variable tandem repeats, oligonucleotide primers and probes of pathogens of bacterial and viral infections of pathogenicity groups I-II” ( Certificate of state registration of the database №2011620585 (authors - Yashechkin Yu.I., Naydenova E.V., Scherbakova S.A.)) and "Program for the calculation of oligonucleotide primers on th the homologous genomes of RNA-containing viruses for their detection in PCR and database formation ”(Certificate on state registration of computer programs No. 20133613699 (authors - Yashechkin Yu.I., Naydenova EV, Scherbakova SA)). Alignment of genomic sequences was carried out using the ClustaW method, the cluster tree was modeled using the UPGMA method.

Конструирование праймеров. С помощью компьютерной программы GeneRunner, геном вирусов в формате FASTA применяли для подбора праймеров на участке гена gag FIV и на участке, расположенном непосредственно перед геном gag-pro-pol FeLV, как наиболее консервативных областях геномов данных вирусов.Design primers. Using the GeneRunner computer program, the FASTA virus genome was used to select primers in the gIV FIV gene region and in the region immediately in front of the gag-pro-pol FeLV gene, as the most conserved genomes of these viruses.

Подбор оптимально сочетающихся между собой двух пар праймеров. Проверку качества и термодинамический анализ выбранных праймеров выполняли с помощью программ OLIGO DNA/RNA primer analysis software, v. 5.0. (http://molbiol-tools.ca/molecular_biology_freeware.htm#Primer%20design) и BLAST (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi). При дизайне праймеров основными требованиями были: степень гомологии (комплементарность) с выбранным участком гена; отсутствие самокоплементарных участков внутри праймеров и комплементарности друг другу, чтобы не допускать возникновения устойчивых вторичных структур (димеров); близость значений температуры отжига и плавления праймеров.Selection of two pairs of primers that are optimally combined with each other. Quality control and thermodynamic analysis of the selected primers was performed using OLIGO DNA / RNA primer analysis software, v. 5.0. (http://molbiol-tools.ca/molecular_biology_freeware.htm#Primer%20design) and BLAST (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi). When designing primers, the main requirements were: the degree of homology (complementarity) with the selected gene region; the lack of self-complementary sites within the primers and complementarity to each other in order to prevent the emergence of stable secondary structures (dimers); the proximity of the annealing and melting temperatures of the primers.

На основании проведенного компьютерного анализа была подобраны две пары праймеров, характеристики которых приведены в таблице 1.Based on the computer analysis, two pairs of primers were selected, the characteristics of which are shown in table 1.

Figure 00000001
Figure 00000001

Подобранные две пары олигонуклеотидных праймеров (FIV F и FIV R; FeLV F и FeLV R) имеют оптимальные размер (22-24 н.) и структуру (отсутствие само- и взаимокомплементарности), о чем свидетельствуют показатели энергии Гиббса на 3′ конце (0 cal/mol) и энергии Гиббса димерных структур (-1 cal/mol), оптимальный GC состав (42%) и температуру отжига для обоих пар праймеров 55°C. В результате работы одной пары (FIV F и FIV R) образуется фрагмент длиной 397 п.н., в результате работы другой пары (FeLV F и FeLV R) - длиной 221 п.н., GC состав продуктов 40% и 56% соответственно, температура плавления продукта 74°C и 79°C соответственно.The selected two pairs of oligonucleotide primers (FIV F and FIV R; FeLV F and FeLV R) have the optimal size (22-24 N.) and structure (lack of self- and mutual complementarity), as evidenced by the Gibbs energy indicators at the 3 ′ end (0 cal / mol) and Gibbs energy of dimeric structures (-1 cal / mol), optimal GC composition (42%) and annealing temperature for both primer pairs 55 ° C. As a result of the work of one pair (FIV F and FIV R), a fragment with a length of 397 bp is formed, as a result of the work of another pair (FeLV F and FeLV R) of a length of 221 bp, GC the composition of the products is 40% and 56%, respectively the melting point of the product is 74 ° C and 79 ° C, respectively.

Моделирование состава реакционной смеси способа диагностики вирусных иммунодефицита и лейкемии кошек с использованием подобранных пар праймеров. Выделение и очистку нуклеиновых кислот из крови кошек осуществляли методом нуклеосорбции на силикогеле с использованием набора «ДНК-сорб-В» (ООО ИнтерЛабСервис, Россия). ПЦР проводили в объеме реакционной смеси - 25 мкл на 1 пробу. Состав реакционной смеси представлен в таблице 2.Modeling the composition of the reaction mixture of the method for the diagnosis of viral immunodeficiency and leukemia in cats using selected pairs of primers. Isolation and purification of nucleic acids from the blood of cats was carried out by the method of nucleosorption on silica gel using the DNA sorb-B kit (LLC InterLabService, Russia). PCR was performed in the volume of the reaction mixture - 25 μl per 1 sample. The composition of the reaction mixture are presented in table 2.

Figure 00000002
Figure 00000002

Состав реакционной смеси подбирали таким образом, чтобы концентрация ионов MgCl2 (1,5 мМ) обеспечивала оптимальную скорость и точность работы фермента Taq-полимеразы, концентрация дНТФ - 0,4 мМ, концентрация праймеров - 15 пмоль/мкл и объем пробы - 5 мкл, что способствует повышению специфичности реакции. При использовании амплификатора с крышкой без нагрева на смесь наслаивают 20 мкл минерального масла для ПЦР. При использовании амплификатора с нагревающейся крышкой минеральное масло не используется.The composition of the reaction mixture was selected so that the concentration of MgCl 2 ions (1.5 mM) ensured the optimal speed and accuracy of the Taq polymerase enzyme, the concentration of dNTP - 0.4 mm, the concentration of primers - 15 pmol / μl and the sample volume - 5 μl , which helps to increase the specificity of the reaction. When using an amplifier with a lid without heating, 20 μl of PCR mineral oil is layered onto the mixture. When using an amplifier with a heated lid, mineral oil is not used.

Проведение ПЦР с использованием разработанных праймеров осуществляли на амплификаторах «АМПЛИ 4» («Биоком», Россия) и «Т100» («BioRad», США). Температурно-временной режим проведения реакции для амплификаторов представлен в таблице 3.PCR using the developed primers was performed on amplifiers “AMPLI 4” (“Biocom”, Russia) and “T100” (“BioRad”, USA). The temperature-time regime of the reaction for amplifiers is presented in table 3.

Figure 00000003
Figure 00000003

Для амплификаторов с активным регулированием температуры по раствору в пробирке, например «Т100», время прохождения всех этапов амплификации (денатурация-отжиг-элонгация) короче, чем для амплификатора с матричным регулированием температуры, например «АМПЛИ 4».For amplifiers with active temperature control in a solution in a test tube, for example, T100, the passage time of all stages of amplification (denaturation-annealing-elongation) is shorter than for amplifiers with matrix temperature control, for example, AMPLI 4.

Учет осуществляли методом гельэлектрофореза в 1,5% агарозном геле с добавлением бромистого этидия в качестве интерколирующего красителя для ДНК. Результат учитывали на оборудовании фирмы «BioRad» (США). Для определения размера ампликонов после проведения ПЦР с разработанными праймерами использовали маркер молекулярных масс «1 kb DNA ladder» («Stratagene», США) (фиг. 2). В электрофоретических дорожках проб 1, 4, 5, 7 и 8 присутствуют светящиеся полосы на уровнях 397 п.н. и 221 п.н., что свидетельствует о наличии в пробах ДНК провирусов FIV и FeLV. В электрофоретических дорожках проб 2, 3 и 6 присутствуют светящиеся полосы только на уровне 221 п.н., что свидетельствует о присутствии в пробах только ДНК провируса FeLV.Accounting was carried out by gel electrophoresis in a 1.5% agarose gel with the addition of ethidium bromide as an intercolating dye for DNA. The result was taken into account on the equipment of the BioRad company (USA). To determine the size of amplicons after PCR with the developed primers, the molecular weight marker “1 kb DNA ladder” (“Stratagene”, USA) was used (Fig. 2). In electrophoretic paths of samples 1, 4, 5, 7, and 8, there are luminous bands at levels of 397 bp and 221 bp, which indicates the presence of FIV and FeLV proviruses in DNA samples. In the electrophoretic paths of samples 2, 3, and 6, luminous bands are present only at the level of 221 bp, which indicates the presence of only FeLV provirus DNA in the samples.

Проверка эффективности работы подобранных праймеров с клиническим материалом. В качестве положительного контроля использовали ДНК, выделенную из крови кошек, у которых наличие FIV и FeLV были подтверждены методом иммунной хроматографии (Animal Genetics, inc., Корея) и Real-time PCR (ООО ИнтерЛабСервис, Россия). Для исследования брали пробы крови от кошек, подозрительных в заражении вирусным иммунодефицитом и лейкемией (фиг. 3). Пробы 1, 2, 3, 4, 5, 9 - содержат ДНК провирусов FIV и FeLV, электрофоретическая подвижность ампликонов которых 397 п.н. и 221 п.н. соответственно и совпадает с размерами ампликонов положительного контроля (К+). Пробы 6, 7, 10 содержат только ДНК провируса FeLV, электрофоретическая подвижность ампликонов которого 221 п.н., проба 8 - отрицательная. В электрофоретической дорожке, соответствующей отрицательному контролю (К-), полосы отсутствуют.Verification of the effectiveness of selected primers with clinical material. As a positive control, we used DNA isolated from the blood of cats in which the presence of FIV and FeLV were confirmed by immune chromatography (Animal Genetics, inc., Korea) and Real-time PCR (LLC InterLabService, Russia). For research, blood samples were taken from cats suspected of being infected with viral immunodeficiency and leukemia (Fig. 3). Samples 1, 2, 3, 4, 5, 9 - contain DNA of proviruses FIV and FeLV, the electrophoretic mobility of amplicons of which is 397 bp and 221 bp accordingly, it coincides with the sizes of amplicons of the positive control (K +). Samples 6, 7, 10 contain only FeLV provirus DNA, the amplicon electrophoretic mobility of which is 221 bp, sample 8 is negative. In the electrophoretic track corresponding to the negative control (K-), there are no bands.

Заявленное изобретение является доступным по стоимости, достоверным, высокочувствительным и высокоспецифичным способом выявления фрагментов провирусной ДНК вирусов иммунодефицита и лейкемии кошек в лимфоцитах крови животных в короткие сроки. При этом компьютерный анализ показал отсутствие реакции на гомологичные и гетерологичные организмы.The claimed invention is an affordable, reliable, highly sensitive and highly specific method for detecting fragments of proviral DNA of immunodeficiency virus and leukemia of cats in animal blood lymphocytes in a short time. Moreover, computer analysis showed a lack of response to homologous and heterologous organisms.

Предложенный способ апробирован с положительными результатами и регулярной воспроизводимостью этих результатов в 2015 году на 18 пробах ДНК, полученных из крови кошек, принадлежащих частным владельцам и обращавшимся в УНИЦ «Ветеринарный госпиталь» ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ». Работу проводили на базе межкафедральной учебно-научно-исследовательской лаборатории «Геном» ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ» и ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб» (г. Саратов).The proposed method was tested with positive results and regular reproducibility of these results in 2015 on 18 DNA samples obtained from the blood of cats belonging to private owners and contacting the UNIVERSITY Veterinary Hospital FSBEI HPE Saratov State Autonomous Administration. The work was carried out on the basis of the interdepartmental educational and research laboratory "Genome" of the Federal State Budget Educational Establishment of Higher Professional Education "Saratov State Agrarian University" and the Federal Public Health Institution of RosNIPCHI "Microbe" (Saratov).

Claims (2)

1. Набор синтетических олигонуклеотидных праймеров, применяемых для выделения ДНК провирусов иммунодефицита и лейкемии кошек, полученных с помощью компьютерных программ, путем анализа структуры вирусов, выбора консервативных участков вирусных геномов, подбора двух оптимальных пар праймеров, у которых отсутствуют полиндромные повторы нуклеотидов, которые не образуют выраженных вторичных структур, и не имеют протяженных G-C участков и отличаются тем, что имеют температуру отжига - 55°С для обоих пар олигонуклеотидов и следующую структуру - FIV F: 5′-AAGAGTCCCAAATATGCCATAGG-3′ и FIV R: 5′-TCCATCCAAATTGCTACTGTTC-3′; FeLV F: 5′-GAATAAACCTCTTGCTGTTTGC-3′ и FeLV R: 5′-AATCAGATCGAATGACAGAGACAC-3′, с образованием в результате их использования фрагмента длиной 397 п.н. для FIV и 221 п.н. для FeLV.1. A set of synthetic oligonucleotide primers used to isolate DNA from immunodeficiency proviruses and feline leukemia obtained by computer programs by analyzing the structure of viruses, selecting conserved regions of the viral genomes, selecting two optimal pairs of primers that lack polindromic nucleotide repeats that do not form expressed secondary structures, and do not have extended GC sites and differ in that they have an annealing temperature of 55 ° C for both pairs of oligonucleotides and the following structure - FIV F: 5′-AAGAGTCCCAAATATGCCATAGG-3 ′ and FIV R: 5′-TCCATCCAAATTGCTACTGTTC-3 ′; FeLV F: 5′-GAATAAACCTCTTGCTGTTTGC-3 ′ and FeLV R: 5′-AATCAGATCGAATGACAGAGACAC-3 ′, resulting in the use of a fragment of 397 bp for FIV and 221 bp for FeLV. 2. Способ диагностики вирусных иммунодефицита и лейкемии кошек с использованием двух пар синтетических олигонуклеотидных праймеров, заключающийся в проведении мультиплексной ПЦР, отличающийся тем, что отсутствует необходимость проводить ОТ, реакционная смесь готовится путем смешения буфера 10-и кратного для ПЦР - 2,5 мкл, дНТФ (25 мМ) - 0,4 мкл, набора праймеров по п. 1 (15 пмоль/мкл) по 1 мкл, Taq полимеразы (5 ед./мкл) - 0,2 мкл, MgCl2 (50 мМ) - 1,5 мкл, бидистиллированной воды - 11,4 мкл и пробы ДНК - 5 мкл, при этом амплификацию проводят в следующем режиме: тотальная денатурация 95°С - 3 мин, цикл денатурация (95°С - 20 или 60 сек) - отжиг (55°С - 20 или 60 сек) - элонгация (72°С - 40 или 60 сек), причем цикл денатурация-отжиг-элонгация повторяется 35 раз, заключительная элонгация 72°С - 5 мин, хранение 4°С - 10 мин, а детекция полученных результатов осуществляется методом электрофореза в 1,5%-ном агарозном геле, где по наличию или отсутствию амплифицируемых фрагментов нуклеотидных последовательностей длиной 397 п.н. для FIV и 221 п.н. для FeLV судят о наличии или отсутствии вирусов в организме кошки. 2. A method for the diagnosis of viral immunodeficiency and leukemia in cats using two pairs of synthetic oligonucleotide primers, which consists in conducting multiplex PCR, characterized in that there is no need for RT, the reaction mixture is prepared by mixing a 10-fold buffer for PCR - 2.5 μl, dNTP (25 mM) - 0.4 μl, a set of primers according to claim 1 (15 pmol / μl) 1 μl, Taq polymerase (5 units / μl) - 0.2 μl, MgCl 2 (50 mm) - 1 5 μl, double-distilled water - 11.4 μl and DNA samples - 5 μl, while amplification is carried out in the following mode: total denaturation 95 ° С - 3 min, denaturation cycle (95 ° С - 20 or 60 sec) - annealing (55 ° С - 20 or 60 sec) - elongation (72 ° С - 40 or 60 sec), and denaturation-annealing cycle elongation is repeated 35 times, final elongation is 72 ° C for 5 minutes, storage is 4 ° C for 10 minutes, and the results are detected by electrophoresis in a 1.5% agarose gel, where, by the presence or absence of amplified fragments of nucleotide sequences of length 397 bp for FIV and 221 bp for FeLV, the presence or absence of viruses in a cat is judged.
RU2015116411/10A 2015-04-29 2015-04-29 Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction RU2586504C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015116411/10A RU2586504C1 (en) 2015-04-29 2015-04-29 Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015116411/10A RU2586504C1 (en) 2015-04-29 2015-04-29 Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2586504C1 true RU2586504C1 (en) 2016-06-10

Family

ID=56115446

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015116411/10A RU2586504C1 (en) 2015-04-29 2015-04-29 Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2586504C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000037672A1 (en) * 1998-12-21 2000-06-29 Hans Lutz Quantitative polymerase chain reaction using a fluorogenic real-time detection system
RU2312676C2 (en) * 1996-07-19 2007-12-20 Мериаль Formula of feline vaccine
RU2340673C1 (en) * 2007-04-10 2008-12-10 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Set of oligonucleotide primers for rna identification of rabies virus in samples

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2312676C2 (en) * 1996-07-19 2007-12-20 Мериаль Formula of feline vaccine
WO2000037672A1 (en) * 1998-12-21 2000-06-29 Hans Lutz Quantitative polymerase chain reaction using a fluorogenic real-time detection system
RU2340673C1 (en) * 2007-04-10 2008-12-10 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Set of oligonucleotide primers for rna identification of rabies virus in samples

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HAMIDEH NAJAFI et al., Molecular and clinical study on prevalence of feline herpesvirus type 1 and calicivirus in correlation with feline leukemia and immunodeficiency viruses, Veterinary Research Forum., 2014, Vol.5, No.4, pp.255 - 261. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Joosten et al. Identification of biomarkers for tuberculosis disease using a novel dual-color RT–MLPA assay
Dacheux et al. Dual combined real-time reverse transcription polymerase chain reaction assay for the diagnosis of lyssavirus infection
RU2629604C1 (en) Set of oligonucleotide primers and probes for identification of tick-borne encephalitis virus, west nile fever, borrelia and rickettsia by real time multiplex pcr
RU2727054C1 (en) Method for detecting cdna of sars-cov-2 coronavirus using synthetic oligonucleotide primers in polymerase chain reaction
Fernandez et al. Screening and confirmatory testing of MHC class I alleles in pig-tailed macaques
RU2504585C1 (en) Set of oligodesoxyribonycleotide primers and fluorescent-marked probe for identification of rna of human coronavirus associated with severe sharp respiratory syndrome
Puenpa et al. Molecular characterisation and tracking of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 in Thailand, 2020–2022
Erdmann et al. HLA class-II associated HIV polymorphisms predict escape from CD4+ T cell responses
RU2473702C1 (en) Set of oligodeoxyribonucleotide primers and fluorescent-marked probes for 229e, nl63, oc43, hku1 coronavirus rna identification by fluorescence in situ hybridisation and reverse transcription-polymerase chain reaction
Furuya et al. Quantitative PCR detection of feline morbillivirus in cat urine samples
Goto et al. Association of plasma viral RNA load with prognosis in cats naturally infected with feline immunodeficiency virus
KR20180115967A (en) Primer for detecting FCoV, CCoV and TGEV simultaneously and detecting method using the same
RU2550257C2 (en) METHOD OF DIFFERENTIATING TYPICAL AND ATYPICAL STRAINS Yersinia pestis OF MEDIEVAL BIOVAR BY PCR METHOD WITH HYBRIDISATION-FLUORESCENT RECORDING RESULTS
RU2471872C1 (en) Method for differentiating yersinia pestis strains of various subspecies and biovars by polymerase chain reaction and multilocus sequence typing
RU2586504C1 (en) Synthetic oligonucleotide primers and method for thereof for indicating immunodeficiency viruses and leukaemia of cats in clinical material by multiplex polymerase chain reaction
RU2615465C2 (en) Diagnostic system for detection of cattle leukemia and immune deficiency provirus dna by multiplex polymerase chain reaction
RU2553534C1 (en) Pair of synthetic oligonucleotide primers for detection of virus of immunodeficiency of cats and method of diagnostics of virus of immunodeficiency of cats
RU2595373C1 (en) Kit for dna detection of bovine immunodeficiency provirus containing a pair of specific primers and probe and diagnostic technique for cattle immunodeficiency virus by polymerase chain reaction in real time
RU2586527C1 (en) Oligonucleotide primers and fluorescent probe and method for detection of epidemic diarrhea virus genome by reverse transcription - polymerase chain reaction
RU2515911C1 (en) Set of oligodesoxyribonucleic primers and fluorescence-labelled probes for identification of rna and differentiation of human parainfluenza virus of 1, 2, 3 and 4 types
RU2565554C2 (en) DIFFERENTIATION METHOD OF BIOVARS AND GENOVARIATIONS OF Yersinia pestis STRAINS OF MAIN SUBSPECIES BY MEANS OF POLYMERASE CHAIN REACTION
CA2573591A1 (en) Method of in-vitro detection and quantification of hiv dna by quantitative pcr
WO2011050050A2 (en) Use of a high-resolution melting assay to measure genetic diversity
Iwata et al. Molecular subtyping of feline immunodeficiency virus from cats in Melbourne
Bardeskar et al. Human leukocyte antigen (HLA)-C and its association with HIV-1 transmission in discordant couple and mother-to-child cohorts

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170430