RU2584402C1 - Method for simulating traumatic osteomyelitis - Google Patents

Method for simulating traumatic osteomyelitis Download PDF

Info

Publication number
RU2584402C1
RU2584402C1 RU2015109516/14A RU2015109516A RU2584402C1 RU 2584402 C1 RU2584402 C1 RU 2584402C1 RU 2015109516/14 A RU2015109516/14 A RU 2015109516/14A RU 2015109516 A RU2015109516 A RU 2015109516A RU 2584402 C1 RU2584402 C1 RU 2584402C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
days
dose
osteomyelitis
bone
sensitisation
Prior art date
Application number
RU2015109516/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Елена Юрьевна Авдеева
Григорий Владимирович Слизовский
Марина Геннадьевна Скороходова
Татьяна Ивановна Фомина
Максим Александрович Зоркальцев
Владимир Владимирович Иванов
Ефим Авраамович Краснов
Original Assignee
государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России)
Елена Юрьевна Авдеева
Григорий Владимирович Слизовский
Марина Геннадьевна Скороходова
Татьяна Ивановна Фомина
Максим Александрович Зоркальцев
Владимир Владимирович Иванов
Ефим Авраамович Краснов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России), Елена Юрьевна Авдеева, Григорий Владимирович Слизовский, Марина Геннадьевна Скороходова, Татьяна Ивановна Фомина, Максим Александрович Зоркальцев, Владимир Владимирович Иванов, Ефим Авраамович Краснов filed Critical государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России)
Priority to RU2015109516/14A priority Critical patent/RU2584402C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2584402C1 publication Critical patent/RU2584402C1/en

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to experimental medicine and can be used for simulating traumatic osteomyelitis of long bones. Method includes preliminary sensitisation of rats by triple intraperitoneal introduction of low virulent Staphylococcus aureus culture weakened by heating at 60 °C for 30 minutes. At that, every 3 days sensitisation is performed with gradual increase in dose from 1 to 3 million bacterial bodies. Further, three days after sensitisation in sterile conditions under anaesthesia soft tissues are incised. Through distal femoral metaphysis hole in bone-medullary canal is formed with large needle, into which active aureus in dose of 6 mln bacterial bodies in 0.1 g 30 % solution of gelatine is introduced. Thereafter, soft tissues are closed with catgut; and wound is treated.
EFFECT: method enables to obtain physiologically accurate model of various stages of postoperative traumatic osteomyelitis while reducing mortality of test animals.
1 cl, 3 dwg, 2 tbl

Description

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для моделирования острого и хронического травматического остеомиелита.The invention relates to medicine and can be used to simulate acute and chronic traumatic osteomyelitis.

В современном представлении о патогенезе остеомиелита остаются нерешенные задачи. Невозможность их решения клиническим путем актуализирует поиск модели остеомиелита, которая соответствует закономерностям возникновения и обеспечивает возможность изучения механизма его развития.In the modern concept of the pathogenesis of osteomyelitis, unresolved problems remain. The impossibility of solving them clinically actualizes the search for a model of osteomyelitis, which corresponds to the laws of occurrence and provides an opportunity to study the mechanism of its development.

Известен способ моделирования остемиелита, предполагающий использование крольчат [1, 2]. Для развития заболевания проводят первоначальную сенсибилизацию организма с последующим депонированием микробов в костно-мозговую полость помощью вязких веществ (ланолина или желатина) [3].A known method of modeling osteomyelitis, involving the use of rabbits [1, 2]. For the development of the disease, an initial sensitization of the body is carried out, followed by the deposition of microbes into the bone marrow using viscous substances (lanolin or gelatin) [3].

Указанная модель вполне эффективна и приемлема для изучения патогенеза заболевания, но требует значительных материальных затрат и не всегда целесообразна для проведения скрининговых исследований.The indicated model is quite effective and acceptable for studying the pathogenesis of the disease, but it requires significant material costs and is not always advisable for conducting screening studies.

Для испытания новых лекарственных средств для лечения заболевания необходимо наличие эффективной и легко реализуемой модели, включающей различные стадии развития остеомиелита. Представляется целесообразным усовершенствование указанной модели остеомиелита с применением крыс, что значительно удешевит эксперимент и сделает более доступным возможность его применения.To test new drugs for the treatment of the disease, an effective and easily implemented model that includes various stages of osteomyelitis development is necessary. It seems appropriate to improve the indicated model of osteomyelitis using rats, which will significantly reduce the cost of the experiment and make the possibility of its use more accessible.

Известен способ моделирования развития остеомиелита на крысах [4]. Он заключается в следующем. В костно-мозговой канал большеберцовой кости вводят полую трубку с глухим концом. Производят поперечный дефект кости. Одновременно выполняют сквозное отверстие в стенке трубки. Инфицирующий материал вводят дробно через свободный конец трубки, находящийся вне раны. Введение инфицирующего материала осуществляют в место дефекта кости. Однако у данной модели имеется ряд недостатков:A known method of modeling the development of osteomyelitis in rats [4]. It is as follows. A hollow tube with a blind end is inserted into the bone marrow canal of the tibia. A transverse bone defect is produced. At the same time, a through hole is made in the tube wall. The infectious material is introduced fractionally through the free end of the tube outside the wound. The introduction of infectious material is carried out in place of a bone defect. However, this model has several disadvantages:

- модель не предполагает предварительной сенсибилизации организма, в связи с этим возможен большой процент не заболевших животных, что требует повторного инфицирования;- the model does not involve preliminary sensitization of the body, in connection with this a large percentage of unhealthy animals is possible, which requires re-infection;

- игла постоянно находится в костно-мозговом канале, дополнительно травматизирует животных и доставляет неудобство в их жизнедеятельности, что не согласуется с «Правилами лабораторной практики в Российской Федерации (GLP) (утв. Приказом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 19.06.2003 N 267);- the needle is constantly located in the bone marrow canal, additionally traumatizes animals and causes inconvenience in their livelihoods, which is not consistent with the “Laboratory Practice Rules in the Russian Federation (GLP) (approved by Order of the Ministry of Health of the Russian Federation of June 19, 2003 N 267);

- диаметр большеберцовой кости красы довольно мал, что затрудняет введение инъекционной иглы в костно-мозговой канал;- the diameter of the tibia of the beauty is quite small, which complicates the introduction of an injection needle into the bone marrow canal;

- введение стафилококка осуществляется без использования вязких веществ, поэтому в ряде случаев наблюдается тяжелое течение заболевания с генерализацией инфекции и гибель животных.- the introduction of staphylococcus is carried out without the use of viscous substances, so in some cases there is a severe course of the disease with generalization of infection and death of animals.

Новый технический результат - получение более физиологически точной модели различных стадий травматического остеомиелита, соответствующей диагнозу, расширение области применения модели и снижение летальности испытуемых животных.A new technical result is to obtain a more physiologically accurate model of the various stages of traumatic osteomyelitis corresponding to the diagnosis, expanding the scope of the model and reducing the mortality of the tested animals.

Для достижения нового технического результата в способе моделирования травматического остеомиелита, включающем формирование дефекта костной ткани большеберцовой кости у экспериментального животного с последующим введением в место дефекта инфицирующего материала, предварительно крыс сенсибилизируют путем трехкратного внутрибрюшинного введения ослабленной нагреванием при 60°С в течение 30 мин культуры слабовирулентного золотистого стафилококка, причем через каждые 3 дня сенсибилизацию проводят с постепенным увеличением дозы от 1 до 3 млн бактериальных тел, далее, через три дня после окончания сенсибилизации, в стерильных условиях, под наркозом производят разрез мягких тканей, через дистальный метафиз бедренной кости толстой иглой формируют отверстие в костно-мозговом канале, куда вводят активный стафилококк в дозе 6 млн бактериальных тел в 0,1 г 30%-ного раствора желатина, после этого мягкие ткани ушивают кетгутом, рану обрабатывают.In order to achieve a new technical result in a method for modeling traumatic osteomyelitis, including the formation of a defect in the bone tissue of the tibia in an experimental animal, followed by the introduction of an infectious material into the defect, the rats are preliminarily sensitized by triple intraperitoneal administration with a weakly virulent golden culture weakened at 60 ° C for 30 minutes staphylococcus, and every 3 days sensitization is carried out with a gradual increase in dose from 1 d 3 million bacterial bodies, then, three days after the end of sensitization, under sterile conditions, an incision of soft tissues is performed under anesthesia, a hole in the bone marrow canal is formed with a thick needle through the distal metaphysis of the femur, into which staphylococcus is injected at a dose of 6 million bacterial bodies in 0.1 g of a 30% solution of gelatin, after which the soft tissues are sutured with catgut, the wound is treated.

Способ осуществляют следующим образом. У экспериментального животного формируют дефект костной ткани большеберцовой кости с последующим введением в место дефекта инфицирующего материала, при этом предварительно крыс сенсибилизируют путем трехкратного внутрибрюшинного введения ослабленной нагреванием при 60°С в течение 30 мин культуры слабовирулентного золотистого стафилококка, причем через каждые 3 дня сенсибилизацию проводят с постепенным увеличением дозы от 1 до 3 млн бактериальных тел, далее, через три дня после окончания сенсибилизации, в стерильных условиях, под наркозом производят разрез мягких тканей, через дистальный метафиз бедренной кости толстой иглой формируют отверстие в костно-мозговом канале, куда вводят активный стафилококк в дозе 6 млн бактериальных тел в 0,1 г 30%-ного раствора желатина, после этого мягкие ткани ушивают кетгутом, рану обрабатывают и появление на 10-й день таких признаков изменений лейкоцитарной формулы крови, наличии таких клинических проявлений, как боль при пальпации коленного сустава, увеличение коленного сустава в 2-3 раза по сравнению со здоровой конечностью, наличие гнойного отделяемого из раны, регистрация при проведении сцинтиграфии ускоренного и повышенного поступления препарата в артерии на стороне поражения, также определение участков гиперфиксации индикатора в мягкотканую и костную фазы исследования, подтверждает формирование модели острой стадии травматического остеомиелита, а при появлении к 21 дню признаков снижения общего количества миелокариоцитов, мегакариоцитов, моноцитов и лимфоцитов в костном мозге, изменении лейкоэритробластического отношения клеток костного мозга в сторону уменьшения клеток миелоидного ряда, элементов подтверждающих гнойная инфильтрация костного мозга подтверждает создание модели хронической стадии травматического остеомиелитаThe method is as follows. In the experimental animal, a defect in the bone tissue of the tibia is formed, followed by the introduction of infectious material into the defect site, while the rats are preliminarily sensitized by triple intraperitoneal administration by attenuated heating at 60 ° C for 30 min, a culture of weakly virulent Staphylococcus aureus, and every 3 days sensitization is carried out with a gradual increase in dose from 1 to 3 million bacterial bodies, then, three days after the end of sensitization, under sterile conditions, under the drug Then the soft tissue is cut, through the distal metaphysis of the femur with a thick needle, a hole is formed in the bone marrow canal, where active staphylococcus is injected at a dose of 6 million bacterial bodies in 0.1 g of a 30% gelatin solution, after which the soft tissues are sutured with catgut, the wound is treated and the appearance on the 10th day of such signs of changes in the leukocyte blood count, the presence of such clinical manifestations as pain during palpation of the knee joint, an increase in the knee joint by 2-3 times compared with a healthy limb, the presence of pus of a discharge from the wound, registration during scintigraphy of accelerated and increased drug intake in the arteries on the affected side, as well as determination of areas of indicator hyperfixation in the soft tissue and bone phases of the study, confirms the formation of a model of the acute stage of traumatic osteomyelitis, and when signs of a decrease in the total number appear by day 21 myelokaryocytes, megakaryocytes, monocytes and lymphocytes in the bone marrow, a change in the leukoerythroblastic ratio of bone marrow cells towards sperm cells of the myeloid series, elements confirming purulent bone marrow infiltration confirms the creation of a model of the chronic stage of traumatic osteomyelitis

Предлагаемый способ основан на анализе результатов экспериментальных исследований. Эксперименты выполняли на 20 белых нелинейных крысах-самцах массой 200-250 г. Животных содержали в стандартных условиях вивария при свободном доступе к воде и пище. При проведении экспериментов руководствовались «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» (Приложение к приказу МЗ СССР от 12.08.1977 г., №755).The proposed method is based on the analysis of the results of experimental studies. The experiments were performed on 20 nonlinear white male rats weighing 200-250 g. The animals were kept under standard vivarium conditions with free access to water and food. When conducting the experiments, they were guided by the "Rules for conducting work using experimental animals" (Appendix to the order of the Ministry of Health of the USSR dated 08/12/1977, No. 755).

Крыс распределяли на две группы: интактные (группа-1) и животные с экспериментальным остеомиелитом (группа-2). Предварительно крыс группы-2 сенсибилизировали путем внутрибрюшинного введения ослабленной нагреванием (60°С, 30 мин) культуры слабовирулентного золотистого стафилококка через каждые 3 дня. Сенсибилизацию проводили с постепенным увеличением дозы (1 млн, 2 млн и 3 млн бактериальных тел). Микробную взвесь готовили по стандарту мутности ГНИИСК им. Л.А. Тарасевича.Rats were divided into two groups: intact (group-1) and animals with experimental osteomyelitis (group-2). Preliminarily, group 2 rats were sensitized by intraperitoneal administration of a weakly virulent Staphylococcus aureus (60 ° C, 30 min) every 3 days. Sensitization was carried out with a gradual increase in dose (1 million, 2 million and 3 million bacterial bodies). Microbial suspension was prepared according to the standard turbidity GNIISK them. L.A. Tarasevich.

Через три дня после окончания сенсибилизации в стерильных условиях, под наркозом (Золетил, 10 мг/кг в/м) в дистальный метафиз правой бедренной кости вводили дозу активного стафилококка (6 млн. бактериальных тел в 0,1 г 30%-ного раствора желатина). Для чего производили разрез мягких тканей, толстой иглой формировали отверстие в костномозговой канал и, с помощью шприца вводили инфицирующий материал. Затем мягкие ткани ушивали кетгутом. Рану обрабатывали раствором бриллиантового зеленого.Three days after the end of sensitization under sterile conditions, under anesthesia (Zoletil, 10 mg / kg i / m), a dose of active staphylococcus (6 million bacterial bodies in 0.1 g of a 30% gelatin solution) was injected into the distal metaphysis of the right femur ) For this, an incision was made in the soft tissues, a hole was formed with a thick needle into the medullary canal, and infectious material was injected using a syringe. Then the soft tissue was sutured with catgut. The wound was treated with a brilliant green solution.

Со следующего дня после проведения операции начинали наблюдение клинических проявлений. Фиксировали показатели общего состояния животных (вялость, малоподвижность, ректально определяли температуру тела) и местные проявления (отек мягких тканей конечности, локальную гипертермию, щадящее положение конечности, наличие свищей, абсцессов). Маркерами развития воспаления служили данные анализов крови, результаты исследования костного мозга, сцинтиграфии и гистологического исследования.The day after the operation, observation of clinical manifestations began. We recorded indicators of the general condition of animals (lethargy, inactivity, rectally determined body temperature) and local manifestations (edema of soft tissues of the limb, local hyperthermia, sparing position of the limb, the presence of fistulas, abscesses). Markers for the development of inflammation were blood test data, bone marrow examination, scintigraphy, and histological examination.

Анализ крови проводили на 7 сутки после операции на автоматическом гематологическом анализаторе для ветеринарии РСЕ 90 Vet (США, High Technology). На 21 сутки эксперимента после эвтаназии СО2-асфиксией левую бедренную кость забирали для количественного определения клеток костного мозга, правую бедренную кость помещали в раствор формалина для последующего гистологического исследования. Костный мозг для подсчета миелограмм брали из грудины, мазки фиксировали в метиловом спирте в течение 5 мин и окрашивали азур II - эозином, приготовленном по Нохту. Для определения общего количества миелокариоцитов (ОКМ), костный мозг из канала левой бедренной кости вымывали 1 мл 5% раствора уксусной кислоты и ресуспендировали. Дополнительное разведение проводили с помощью лейкоцитарного меланжера (конечное разведение в 20000 раз). Вычисление ОКМ проводили с помощью камеры Горяева [5].A blood test was performed on the 7th day after the operation on an automatic hematology analyzer for veterinary medicine PCE 90 Vet (USA, High Technology). On the 21st day of the experiment, after euthanasia with CO 2 asphyxia, the left femur was taken to quantify bone marrow cells, the right femur was placed in formalin solution for subsequent histological examination. Bone marrow was taken from the sternum for counting myelograms, smears were fixed in methyl alcohol for 5 min and stained with azure II - eosin prepared according to Noht. To determine the total number of myelokaryocytes (OKM), 1 ml of a 5% solution of acetic acid was washed out of the bone marrow from the channel of the left femur and resuspended. Additional dilution was performed using leukocyte melanger (final dilution of 20,000 times). The calculation of OKM was carried out using a Goryaev camera [5].

Трехфазная сцинтиграфия с 99mТс-технефор (ООО «Диамед», Россия, 18,5 МБк) выполнена на 10 сутки эксперимента на однофотонном эмиссионном компьютерном томографе Philips BrightView (США). Исследование включало в себя радионуклидную ангиографию, мягкотканую фазу (blood-pool) и костную фазу исследования (остеосцинтиграфию).Three-phase scintigraphy with 99m Tc-technofor (LLC Diamed, Russia, 18.5 MBq) was performed on the 10th day of the experiment on a Philips BrightView single-photon emission computer tomograph (USA). The study included radionuclide angiography, a soft tissue phase (blood pool) and a bone phase study (osteoscintigraphy).

Для гистологического исследования кость декальцинировали по Грипу [6], обезвоживали в спиртах восходящей концентрации и заливали в парафин. Депарафинированные срезы толщиной 7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином.For histological examination, the bone was decalcified according to Gripp [6], dehydrated in ascending alcohols and embedded in paraffin. Deparaffined sections with a thickness of 7 μm were stained with hematoxylin and eosin.

Результаты экспериментальных исследований статистически обрабатывали в программе Statistica 10.The results of experimental studies were statistically processed in the Statistica 10 program.

К 6-7-му дню после проведения операции температура тела заболевших животных повысилась до 38,5°С, но к 20-му дню произошло снижение этого показателя до 36,9°С. На 2-й день у крыс группы-2 наблюдали малоподвижность, щадящее положение конечности, которые сохранялись на протяжении всего эксперимента. К 10 дню у всех крыс группы-2 появилась боль при пальпации, увеличение коленного сустава в 2-3 раза по сравнению со здоровой конечностью, гнойное отделяемое из раны. К 15 суткам у трех животных группы-2 образовались абсцессы в области правой бедренной кости. К 21 суткам животные стали более подвижны, уменьшились боль при пальпации и отек коленного сустава.By the 6-7th day after the operation, the body temperature of diseased animals increased to 38.5 ° C, but by the 20th day there was a decrease in this indicator to 36.9 ° C. On day 2, in rats of group 2, immobility was observed, sparing the position of the limb, which remained throughout the experiment. By day 10, all rats of group 2 had pain on palpation, an increase in the knee joint by 2-3 times compared with a healthy limb, purulent discharge from the wound. By 15 days, three animals of group 2 formed abscesses in the region of the right femur. By 21 days the animals became more mobile, pain on palpation and swelling of the knee joint decreased.

На развитие острого воспалительного процесса указывало достоверное увеличение в крови животных группы-2 количества лейкоцитов, нейтрофильных гранулоцитов и моноцитов на 7 сутки заболевания (табл. 1). Количество лимфоцитов достоверно снижалось по сравнению с интактными.The development of the acute inflammatory process was indicated by a significant increase in the blood of animals of group 2 of the number of leukocytes, neutrophilic granulocytes and monocytes on the 7th day of the disease (Table 1). The number of lymphocytes was significantly reduced compared to intact ones.

В результате сцинтиграфии на 10 сутки в группе здоровых крыс определялось одновременное поступление индикатора в магистральные сосуды задних конечностей, отсутствие участков гиперфиксации препарата в мягкотканную и костные фазы исследования. Во второй группе регистрировалось ускоренное и повышенное поступление препарата в артерии на стороне поражения, также определялись участки гиперфиксации индикатора в мягкотканую и костную фазы исследования (средняя разница счета по сравнению с симметричным участком 115±5% и 121±10% соответственно), что расценивалось нами как проявление острой стадии остеомиелита (Фиг. 1).As a result of scintigraphy on day 10 in the group of healthy rats, the simultaneous entry of the indicator into the main vessels of the hind limbs, the absence of drug hyperfixation sites in the soft tissue and bone phases of the study were determined. In the second group, accelerated and increased drug entry into the arteries on the affected side was recorded, and areas of indicator hyperfixation in the soft tissue and bone phases of the study were also determined (the average difference in counts compared to the symmetrical section was 115 ± 5% and 121 ± 10%, respectively), which was estimated by us as a manifestation of the acute stage of osteomyelitis (Fig. 1).

ОКМ в костном мозге заболевших крыс значительно снижалось в сравнении с интактными. В результате развития заболевания был нарушен преимущественно миелоидный росток, на что указывает уменьшение индекса созревания нейтрофилов (ИСН) заболевших в сравнении со здоровыми животными (табл. 2). При этом индекс созревания эритрокариоцитов (ИСЭ) животных обеих групп значительно не отличался. Вследствие этого лейкоэритробластическое отношение (ЛЭО) клеток костного мозга животных группы-2 смещалось в сторону значительного уменьшения клеток миелоидного ряда в сравнении с группой-1. Кроме того, в костном мозге заболевших животных снижалось количество мегакариоцитов на 73%, моноцитов на 61% и лимфоцитов на 51% в сравнении с контролем.OCM in the bone marrow of diseased rats was significantly reduced compared to intact rats. As a result of the development of the disease, a predominantly myeloid germ was impaired, as indicated by a decrease in the neutrophil maturation index (ISN) of the diseased in comparison with healthy animals (Table 2). At the same time, the erythrokaryocyte maturation index (ISE) of animals of both groups did not differ significantly. As a result, the leukoerythroblastic ratio (LEO) of the bone marrow cells of animals of group 2 shifted towards a significant decrease in the cells of the myeloid series in comparison with group 1. In addition, in the bone marrow of diseased animals, the number of megakaryocytes decreased by 73%, monocytes by 61% and lymphocytes by 51% compared with the control.

При морфологическом исследовании в диафизе бедренной кости отмечалась гнойная инфильтрация костного мозга. Происходил некроз и аутолиз костных перекладин, кортикального слоя кости, стенок каналов остеонов. Резорбция кости сопровождалась появлением в ней мелких дефектов, заполненных гноем, которые сливались в более крупные фокусы, содержащие секвестры (Фиг. 2). Одновременно с воспалительно-некротическими изменениями в костной ткани происходили репаративные процессы. По периферии остеомиелитического очага отмечалось образование грануляционной ткани, содержащей большое количество фибробластов и остеобластов. Участки некроза замещались молодой костной тканью (Фиг. 3). Полученные результаты характеризовали классическую картину хронического остеомиелита.A morphological examination of the femoral diaphysis revealed purulent bone marrow infiltration. There was necrosis and autolysis of the bone beams, the cortical layer of the bone, the walls of the channels of osteons. Bone resorption was accompanied by the appearance of small defects filled with pus in it, which merged into larger foci containing sequestra (Fig. 2). Along with inflammatory and necrotic changes in the bone tissue, reparative processes took place. On the periphery of the osteomyelitis lesion, the formation of granulation tissue containing a large number of fibroblasts and osteoblasts was noted. Necrosis sites were replaced by young bone tissue (Fig. 3). The results obtained characterized the classical picture of chronic osteomyelitis.

Источники информацииInformation sources

1. Стрелков Н.С. Моделирование гнойного остеомиелита в эксперименте: Труды Ижевского мед. ин-та. - 1995. - Т. 33. Ч. 3 - С. 114-115.1. Strelkov N.S. Modeling purulent osteomyelitis in the experiment: Proceedings of Izhevsky honey. in-that. - 1995. - T. 33. Part 3 - S. 114-115.

2. Переслыцких П.Ф. Экспериментально-теоретические аспекты патогенеза гематогенного остеомиелита. - Иркутск, 1993. - 145 с.2. Peresylsky P.F. Experimental and theoretical aspects of the pathogenesis of hematogenous osteomyelitis. - Irkutsk, 1993 .-- 145 p.

3. Масликов В.М. Сравнительная оценка методов хирургического лечения острого гематогенного остемиелита у детей: автореф. … к.м.н., М., 1979.3. Maslikov V.M. Comparative evaluation of surgical treatment methods for acute hematogenous osteomyelitis in children: author. ... candidate of medical sciences, M., 1979.

4. Матузов С.А., Бусоедов А.В., Котляров В.Н., Сизоненко В.А. Способ моделирования травматического остеомиелита, патент №2129735 от 27.04.1999.4. Matuzov S. A., Busoedov A. V., Kotlyarov V. N., Sizonenko V. A. Патент Patent No. 2139735 dated 04/27/1999.

5. Руководство к практическим занятиям по гематологи: учеб.пособие / Новицкий В.В., Уразова О.И. - Томск: Изд-во Томского университета, 2007. - 230 с.5. A guide to practical exercises in hematologists: a training manual / Novitsky VV, Urazova OI - Tomsk: Tomsk University Press, 2007 .-- 230 p.

6. Пирс Э. Гистохимия. М.: изд-во иностранной литературы, 1962, 690 с.6. Pierce E. Histochemistry. M .: publishing house of foreign literature, 1962, 690 p.

Таблица 1. Результаты анализов крови опытных животныхTable 1. The results of blood tests of experimental animals

Таблица 2. Миелограмма костного мозга опытных животныхTable 2. Bone marrow myelogram of experimental animals

Фиг. 1. Сцинтиграфия крысы на 20 сутки после моделирования остеомиелита. Повышенная концентрация радиофармацевтического препарата в мягкотканую фазу (а) и костную фазу (б) исследования в зоне поражения правой бедренной кости.FIG. 1. Scintigraphy of rats on the 20th day after modeling of osteomyelitis. The increased concentration of the radiopharmaceutical in the soft tissue phase (a) and the bone phase (b) of the study in the affected area of the right femur.

Фиг. 2. Бедренная кость крысы на 21 сутки после моделирования остеомиелита. Некроз и резорбция костной балки в зоне гнойного воспаления. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 100 х.FIG. 2. The femur of a rat on day 21 after modeling osteomyelitis. Necrosis and bone resorption in the area of purulent inflammation. Hematoxylin and eosin stain. SW 100 x

Фиг. 3. Бедренная кость крысы на 21 сутки после моделирования остеомиелита. Грануляционная ткань с большим количеством остеобластов. Участки остеогенеза. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 100 х.FIG. 3. The femur of a rat on day 21 after modeling osteomyelitis. Granulation tissue with a large number of osteoblasts. Plots of osteogenesis. Hematoxylin and eosin stain. SW 100 x

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Claims (1)

Способ моделирования травматического остеомиелита, включающий формирование дефекта костной ткани большеберцовой кости у экспериментального животного с последующим введением в место дефекта инфицирующего материала, отличающийся тем, что предварительно крыс сенсибилизируют путем трехкратного внутрибрюшинного введения ослабленной нагреванием при 60°С в течение 30 минут культуры слабовирулентного золотистого стафилококка, причем через каждые 3 дня сенсибилизацию проводят с постепенным увеличением дозы от 1 до 3 млн бактериальных тел, далее, через три дня после окончания сенсибилизации, в стерильных условиях, под наркозом производят разрез мягких тканей, через дистальный метафиз бедренной кости толстой иглой формируют отверстие в костно-мозговом канале, куда вводят активный стафилококк в дозе 6 млн бактериальных тел в 0,1 г 30%-ного раствора желатина, после этого мягкие ткани ушивают кетгутом, рану обрабатывают. A method of modeling traumatic osteomyelitis, including the formation of a defect in the bone tissue of the tibia in an experimental animal, followed by the introduction of an infectious material into the defect site, characterized in that the rats are preliminarily sensitized by triple intraperitoneal administration by attenuated heating at 60 ° C for 30 minutes of a culture of weakly virulent Staphylococcus aureus, and every 3 days, sensitization is carried out with a gradual increase in dose from 1 to 3 million bacterial bodies, d Then, three days after the end of sensitization, under sterile conditions, under soft anesthesia, an incision is made in the soft tissues, through the distal metaphysis of the femur with a thick needle, a hole is formed in the bone marrow canal, where active staphylococcus is injected at a dose of 6 million bacterial bodies in 0.1 g 30% gelatin solution, after which the soft tissue is sutured with catgut, the wound is treated.
RU2015109516/14A 2015-03-18 2015-03-18 Method for simulating traumatic osteomyelitis RU2584402C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015109516/14A RU2584402C1 (en) 2015-03-18 2015-03-18 Method for simulating traumatic osteomyelitis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015109516/14A RU2584402C1 (en) 2015-03-18 2015-03-18 Method for simulating traumatic osteomyelitis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2584402C1 true RU2584402C1 (en) 2016-05-20

Family

ID=56012125

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015109516/14A RU2584402C1 (en) 2015-03-18 2015-03-18 Method for simulating traumatic osteomyelitis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2584402C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2814076C1 (en) * 2023-05-03 2024-02-21 Григорий Константинович Сергеев Method of comprehensive assessment of results of treatment of femoral osteomyelitis in laboratory rats

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1691876A1 (en) * 1989-10-30 1991-11-15 Крымский Медицинский Институт Method for simulation of posttraumatic osteomyelitis in small laboratory animals
RU2129735C1 (en) * 1995-07-19 1999-04-27 Читинская областная клиническая больница N 1 Method for modeling traumatic osteomyelitis
RU2233486C1 (en) * 2003-03-19 2004-07-27 Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР Method for modeling traumatic osteomyelitis

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1691876A1 (en) * 1989-10-30 1991-11-15 Крымский Медицинский Институт Method for simulation of posttraumatic osteomyelitis in small laboratory animals
RU2129735C1 (en) * 1995-07-19 1999-04-27 Читинская областная клиническая больница N 1 Method for modeling traumatic osteomyelitis
RU2233486C1 (en) * 2003-03-19 2004-07-27 Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР Method for modeling traumatic osteomyelitis

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LINDSEY BA et al. An animal model for open femur fracture and osteomyelitis: Part I. J Orthop Res. 2010 Jan;28(1):38-42, abstr. PASSL R et al. Acute and chronic experimental posttraumatic osteomyelitis in guinea pigs. Helv Chir Acta. 1979 May;46(1-2):163-5, abstr. *
ЛАДОНИН С.В. и др. Моделирование хронического остеомиелита. Вестник экспериментальной и клинической хирургии, 2011, т.4, N 2, с. 344-348. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2814076C1 (en) * 2023-05-03 2024-02-21 Григорий Константинович Сергеев Method of comprehensive assessment of results of treatment of femoral osteomyelitis in laboratory rats

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Martin-Sole et al. Effects of platelet-rich plasma (PRP) on a model of renal ischemia-reperfusion in rats
Hernandez-Fernandez et al. Effect of administration of platelet-rich plasma in early phases of distraction osteogenesis: an experimental study in an ovine femur model
Moazeni et al. Echinococcus granulosus: in vitro effectiveness of warm water on protoscolices
JPS63502035A (en) Methods and compositions for treating bone damage
Vogt et al. A scoping review of the evidence for the medicinal use of natural honey in animals
Nikitenko et al. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract in healthy and injured rats
Cui et al. Masquelet induced membrane technique for treatment of rat chronic osteomyelitis
RU2584402C1 (en) Method for simulating traumatic osteomyelitis
Warren The physiological effects of roentgen radiation upon normal body tissues
RU2622209C1 (en) Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit
Takahashi et al. Computed tomography (CT) observation of pulmonary emboli caused by long-term administration of ivermectin in dogs experimentally infected with heartworms
Dannikov et al. Morphometric parameters of nutria kidney structures in postnatal ontogeny
Noviana et al. Animal study and pre-clinical trials of biomaterials
Efosa et al. Histo-morphological examination of the visceral organs of albino wistar rats pre-exposed to Ocimum gratissimum crude decoction
CN111616106A (en) Method for establishing fracture-related staphylococcus aureus infected animal model
RU2720838C1 (en) Method for simulating chronic osteomyelitis
RU2129735C1 (en) Method for modeling traumatic osteomyelitis
RU2356224C1 (en) Combined method of bone graft sterilisation
RU179633U1 (en) Device for reproducing peritonitis in rats
Tanneberger et al. Decellularization and Recellularization Methods for Avian Lungs: An Alternative Approach for Use in Pulmonary Therapeutics
Oelofsen Renal function in the penguin (Spheniscus demersus) with special reference to the role of the renal portal system and renal portal valves
RU2622369C1 (en) Chronic traumatic osteomyelitis simulation method
Vigneulle et al. Nonuniform irradiation of the canine intestine: I. Effects
SU1683057A1 (en) Method for simulation of hematogenic osteomyelitis
Orwin New ultrastructural features in the wool follicle

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170319