RU2582941C1 - Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител - Google Patents

Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител Download PDF

Info

Publication number
RU2582941C1
RU2582941C1 RU2015108496/15A RU2015108496A RU2582941C1 RU 2582941 C1 RU2582941 C1 RU 2582941C1 RU 2015108496/15 A RU2015108496/15 A RU 2015108496/15A RU 2015108496 A RU2015108496 A RU 2015108496A RU 2582941 C1 RU2582941 C1 RU 2582941C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
diagnosticum
plague
composite
specific antibodies
Prior art date
Application number
RU2015108496/15A
Other languages
English (en)
Inventor
Андрей Виталиевич Бойко
Михаил Николаевич Киреев
Наталья Александровна Осина
Василий Евгеньевич Куклев
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority to RU2015108496/15A priority Critical patent/RU2582941C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2582941C1 publication Critical patent/RU2582941C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен диагностикум для индикации специфических антител к F1 антигену чумного микроба, который представляет собой взвесь композитных частиц, состоящих из углеродной метки размером не более 500 нм, заключенных в полимерную матрицу, представляющую собой привитой сополимер бычьего сывороточного альбумина с чумным капсульным антигеном F1, при соотношении компонентов, мг/мл: углеродная метка - 20-30, бычий сывороточный альбумин - 5-10, антиген F1 - 0,2-1,0; при этом полученные частицы композита стабилизированы в забуференном физиологическом растворе рН 7,0-7,4 высокомолекулярными полимерами и неионными детергентами. Изобретение направлено на повышение чувствительности метода дот-иммуноанализа за счет стабилизации антигена на поверхности углеродной метки, что приводит к повышению эффективности анализа, позволяющего выявлять специфические антитела в более низких титрах. 1 з.п. ф-лы, 2 ил., 1 табл., 3 пр.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к иммунобиотехнологии, и может быть использовано в иммунохимической диагностике чумы у людей и животных при эпизоотологическом обследовании природных очагов и при производстве иммунных сывороток для определения активности антител к фракции 1 (F1) чумного микроба in vitro методом дот-иммуноанализа.
Сущность выявления специфических антител заключается в образовании комплексов антител исследуемой сыворотки, фиксированной на твердом носителе (например, на нитроцеллюлозной мембране), с антигенами, конъюгированными с ферментной, радиоизотопной, люминесцентной или оптической меткой.
Известен диагностикум эритроцитарный чумной антигенный для обнаружения специфических антител к фракции 1 (F1) чумного микроба в сыворотке крови производства Казахского научного центра карантинных и зоонозных инфекций им. М. Айкимбаева РГКП (Казахстан) (регистрационный номер РК-МТ-5№003645). Диагностикум представляет собой взвесь фиксированных эритроцитов, сенсибилизированных чумным антигеном F1, и предназначен для использования в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
Среди недостатков эритроцитарных диагностикумов приводят следующие:
- трудность стандартизации эритроцитов и, как следствие, нестандартность эритроцитарных диагностикумов;
- отсутствие 100% специфичности для диагностикума чумного эритроцитарного поликлонального;
- возможность получения неспецифического результата за счет наличия в исследуемом материале протеолитических ферментов, гетероантигенов или некоторых химических примесей;
- возможность спонтанной агглютинации диагностикума в нормальной кроличьей сыворотке, используемой в качестве стабилизатора для разведения исследуемых материалов. [1, 2].
Известна тест-система иммуноферментная для выявления антител к чумному микробу (ИФА-АТ-Ф1 Yersinia pestis) [3, 4, 5]. Тест-система представляет собой полистироловые планшеты для ИФА однократного применения, сенсибилизированные чумным антигеном F1 и набор реактивов, необходимых для проведения ИФА. Для выявления специфического комплекса «антиген F1+антитела к F1» тест-система содержит стафилококковый белок А, конъюгированный с пероксидазой хрена. Тест-система предназначена для целей серодиагностики чумы путем выявления в сыворотке крови антител, специфичных к чумному F1 антигену методом прямого гетерогенного иммуноферментного анализа.
Данной тест-системе присущи те же недостатки, что и другим иммуноферментным тест-системам: необходимость наличия сложного и дорогостоящего оборудования, что требует дополнительной подготовки персонала; необходимость дополнительного этапа субстратного проявления комплексов антител с мечеными ферментом антигенами, что увеличивает время анализа; использование канцерогенных веществ.
Известен антигенный F1-диагностикум, разработанный на основе окрашенного полиакролеинового латекса [6]. Диагностикум представляет собой суспензию полиакролеиновых частиц, сенсибилизированных чумным антигеном F1, и предназначен для иммунодиагностики чумы в реакции непрямой суспензионной агглютинации пластинчатым методом (на предметном стекле) или пробирочным методом.
К недостаткам латексных диагностикумов относят то, что партии латекса разнятся по сорбционной активности, что затрудняет стандартизацию диагностикума; гидрофилизированные участки латексного носителя экранируют полимерные цепи иммунореагентов в поверхностном слое латексных частиц, что снижает чувствительность диагностикума; при использовании сорбционных методов нагрузки латексных частиц диагностикум снижает свою чувствительность в 4-8 раз уже в течение месяца; зачастую срок использования латексных диагностикумов сокращается за счет десорбции специфического белка с поверхности полимера из-за конкуренции с балластным белком, содержащимся в диагностикуме; и, наконец, латексным диагностикумам присущ недостаток, характерный для всех диагностикумов, используемых в иммуносуспензионных реакциях - неспособность выявить неполные антитела в прямых методах, что также уменьшает их чувствительность [6, 7, 8, 9].
Известен иммунодиагностикум для определения сывороточных антител к инфекционным агентам методом дот-иммуноанализа на пористых стрипах, представляющий собой водную взвесь частиц активированного угля с размерами менее 10 мкм, сорбционно связанных с одним из специфических иммунореагентов антигенами или антивидовыми антителами или стафилококковыми протеинами А или G при соотношении по массе маркера к иммунореагенту в диапазоне от 1000:1 до 10000:1 и стабилизированных высокомолекулярными полимерами. Основным недостатком является сравнительно низкая стабильность диагностикума из-за обратимости сорбционных связей в условиях длительного хранения и/или при хранении диагностикума без соблюдения «холодовой цепи».
Наиболее близким аналогом (прототипом) является диагностикум с углеродной меткой для дот-иммуноанализа, на которой сорбирован видоспецифический чумной капсульный антиген фракция 1 (F1), полученный из штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ [10]. Диагностикум представляет собой взвесь углеродных частиц неопределенного размера, сенсибилизированных чумным антигеном F1.
Основным недостатком прототипа является низкая стабильность диагностикума, приводящая к потере чувствительности при использовании в дот-иммуноанализе, и обусловлено это тем, что антиген F1 конъюгирован с углеродной частицей путем физической адсорбции, которая обратима и сопровождается процессом десорбции. При хранении диагностикума в нем устанавливается адсорбционное равновесие, выражающееся в том, что в диагностикуме всегда будет находиться некоторое количество антигена в свободном, несвязанном с оптической меткой состоянии. Несвязанные антигены будут конкурировать с сорбированным антигеном в иммунохимической реакции, тем самым снижая чувствительность диагностикума. Добавление в такой диагностикум неспецифических белков или полимеров, призванных блокировать свободные активные сорбционно-активные участки на оптической метке и предотвращать неспецифическое связывание диагностикума с выявляемыми антителами, приводит к конкуренции с сорбированным антигеном, что еще больше снижает чувствительность диагностикума. Кроме того, учитывая, что процесс десорбции зависит от температуры (чем выше температура, тем выше десорбция), то требуется соблюдение «холодовой цепи» при транспортировке и хранении такого диагностикума.
Задача изобретения заключается в создании чумного антигенного F1 диагностикума, позволяющего повысить чувствительность при индикации специфических антител.
Технический результат обеспечивает повышение чувствительности метода дот-иммуноанализа за счет стабилизации антигена на поверхности углеродной метки, что приводит к повышению эффективности анализа, позволяющего выявлять специфические антитела в более низких титрах.
Указанный технический результат достигается разработкой диагностикума для индикации специфических антител к F1 антигену чумного микроба, представляющего собой взвесь композитных частиц, состоящих из углеродной метки размером не более 500 нм, заключенных в полимерную матрицу, представляющую собой привитой сополимер бычьего сывороточного альбумина с чумным капсульным антигеном F1, при следующем соотношением компонентов, мг/мл:
Углеродная метка 20-30
Бычий сывороточный альбумин 5-10
Антиген F1 0,2-1,0,
при этом полученные частицы композита стабилизированы в забуференном физиологическом растворе рН 7,0-7,4 высокомолекулярными полимерами и неионными детергентами.
В заявляемом диагностикуме антиген F1 стабилизирован на поверхности матрицы композитных частиц путем ковалентных связей. Ковалентные связи значительно превосходят по силе адсорбционные связи и не позволяют антигену F1 находиться в диагностикуме в свободном состоянии, как в диагностикуме-прототипе. В результате предотвращается конкурентное взаимодействие свободных, несвязанных с углеродной меткой, молекул антигена F1 с антителами исследуемой сыворотки, фиксированными в виде пятна (реакционная зона) на мембране.
Кроме того, белковые молекулы, содержащиеся в жидкой части диагностикума для его стабилизации, могут неспецифически связываться с белками сыворотки крови в реакционной зоне за счет белок-белкового взаимодействия и экранировать тем самым активные центры специфичных к антигену F1 антител, выступая, таким образом, в роли конкурентов специфической реакции антиген-антитело в области реакционной зоны.
Ковалентно связанный антиген F1 позволяет вводить в диагностикум поверхностно-активные вещества, относящиеся к группе неионных детергентов (например, твин 20), обеспечивающие дополнительную стабилизацию композитных частиц диагностикума и предотвращающие указанные белок-белковые взаимодействия в реакционной зоне, что также приводит к повышению чувствительности предлагаемого диагностикума.
Приготовление композитного диагностикума состоит из нескольких этапов:
A. Приготовление оптической метки с частицами заданного размера;
Б. Приготовление композитного носителя путем создания на поверхности метки полимерной матрицы и его активация путем присоединения спейсера;
B. Формирование привитого сополимера чумного антигена F1 на поверхности активированного композита;
Г. Блокирование свободных активных групп спейсера;
Д. Очистка композитных частиц диагностикума и его стабилизация.
А) 0,5 г активированного таблетированного угля измельчают до мелкодисперсного порошка. Порошок увлажняют этанолом и взвешивают в дистиллированной воде в соотношении 1:20-1:30 и проводят ультразвуковую дезинтеграцию при частоте излучения 22 кГц и мощности 400 Вт в течение 10-20 мин.
Полученную угольную суспензию трижды отмывают дистиллированной водой от наполнителя, содержащегося в таблетированной форме угля, путем центрифугирования при 19000 g по 5 минут. Полученный осадок ресуспендируют в начальном количестве дистиллированной воды и повторно проводят ультразвуковую дезинтеграцию при указанном режиме.
Полученную угольную суспензию центрифугируют при 4700 g 5 мин для удаления крупных частиц угля. Супернатант содержит угольные частицы размером не более 500 нм (контролируется микроскопией).
Б) 5 мл угольной суспензии, приготовленной на первом этапе, содержащей 20-30 мг/мл угольных частиц, смешивают с 20 мл раствора бычьего сывороточного альбумина (БСА), содержащего 5-10 мг/мл белка в 0,1 М фосфатно-солевом буфере (ФСБ) рН 7,0-7,4, при постоянном интенсивном перемешивании путем пипетирования. Полученную смесь обрабатывают ультразвуком 10 сек при 22 кГц и мощности 400 Вт. Смесь инкубируют при 4-10°С в течение 16-24 часов для физической адсорбции БСА на частицах оптической метки. По окончании адсорбции угольно-белковую суспензию отмывают трехкратно ФСБ рН 7,0-7,4 центрифугированием при 19000 g 20 мин. Осадок ресуспендируют в 5 мл 0,1 М ФСБ рН 7,0-7,4.
Для формирования полимерной матрицы 20 мл 25-50% глутарового альдегида (или иного бифункционального спейсера в подходящей концентрации) смешивают с полученной угольно-белковой суспензией при постоянном мягком перемешивании (переворачивание пробирки каждые 5-10 мин). При этом угольно-белковую суспензию добавляют в раствор глутарового альдегида небольшими порциями. Смесь инкубируют 3-5 часов при мягком перемешивании при комнатной температуре для формирования полимерной формы БСА на поверхности угольных частиц и формирования на поверхности функциональных групп (-СОН), способных связываться со свободными аминогруппами белков (- NH2).
Образовавшуюся суспензию активированного композита отмывают от не прореагировавших компонентов 0,1 М ФСБ рН 7,0-7,4 дополнительно содержащим 0,01 - 0,005% неионного детергента (например, Твин 20), путем центрифугирования при 19000g 20 мин не менее 3-4 раз. Осадок ресуспендируют пипетированием в 5 мл 0,1 М ФСБ рН 7,0-7,4, содержащим 0,01-0,005% неионного детергента (Твин 20).
Добавление неионного детергента способствует стабилизации композитных частиц, что позволяет проводить многократное центрифугирование и ресуспендирование, обеспечивающее возможность полноценной очистки диагностикума от непрореагировавших реагентов.
В) К 5 мл полученной суспензии активированного композита добавляют 1 мл раствора чумного F1-антигена (концентрация 1-5 мг/мл) при постоянном перемешивании. Полученную смесь инкубируют при комнатной температуре 3-5 часов при мягком перемешивании (не использовать вортекс или ультразвук). При увеличении времени инкубации увеличивается количество ковалентно связанного антигена.
Г) К 5 мл полученных композитных частиц, содержащих полимерную матрицу в виде привитого сополимера F1, для блокировки свободных активных групп спейсера добавляют 3 мл 1М раствора лизина (рН 7,0). Смесь инкубируют 2-5 часов при мягком перемешивании.
Д) Полученную взвесь композитных частиц диагностикума отмывают от несвязавшихся реагентов центрифугированием при 19000g 20 мин (не менее 3-4 раз) 0,1 М ФСБ, рН 7,0 - 7,4, содержащим 0,01-0,005% Твина 20.
После отмывки частиц диагностикума осадок ресуспендируют пипетированием в 5 мл забуференного физиологического раствора, рН 7,2-7,4, содержащего 0,5% БСА и 0,01-0,005% Твина 20, а для консервации добавляют мертиолят натрия в конечном разведении 1:10000.
Возможность использования антигенного диагностикума подтверждается примерами его конкретного выполнения.
Пример 1. Использование приготовленного диагностикума для выявления антител к антигену F1 в сыворотке крови.
Исследуемую сыворотку крови разводят забуференным физиологическим раствором до разведения 1:400. 2-3 мкл разведенной сыворотки крови наносят на стрип из нитроцеллюлозной мембраны (Владисарт, Россия) с размером пор 0,2 мкм. Стрип высушивают на воздухе в течение 15 минут. Высушенный стрип помещают в блокирующий раствор (1-3% раствор БСА в 0,1 М ФСБ) на 30 минут при комнатной температуре. Заблокированный стрип промывают физиологическим раствором с 0,05% Твина 20. На стрип наливают готовый диагностикум и инкубируют при комнатной температуре 30-60 мин. По окончании инкубации стрип промывают дистиллированной водой и высушивают на фильтровальной бумаге. При наличии в исследуемой сыворотке крови антител, специфичных к чумному капсульному антигену F1, на месте нанесения сыворотки крови образуется серое пятно, отличное от фона (фиг. 1). На фигуре 1 приведен дот-иммуноанализ с использованием заявляемого диагностикума. Цифрами обозначены ряды дот-иммуноанализа с различными образцами сыворотки крови. Ряд 1 - дот-иммуноанализ с образцами сыворотки крови, содержащими антитела к антигену F1 чумного микроба, Ряд 2 - дот-иммуноанализ с образцами сыворотки крови, не содержащими указанных антител.
На стрип может быть нанесено несколько проб сывороток крови от различных животных или людей.
Пример 2. Определение титра антител в сыворотке крови.
Готовят двукратные разведения исследуемой сыворотки крови. На нитроцеллюлозный стрип аликвотами по 2 мкл наносят каждое разведение сыворотки крови. Все дальнейшие манипуляции проведения дот-иммуноанализа идентичны примеру 1.
Результат приведен на фигуре 2. На фигуре цифрами обозначены столбцы проб, содержащих различные разведения испытуемой сыворотки. Верхний ряд содержит двухкратные разведения сыворотки, (слева направо) от 1:50 до 1:800, нижний ряд - разведения сыворотки от 1:1600 до 1:25000.
Учет результатов: Титр антител в сыворотке крови определяется по последнему разведению, в котором выявляется пятно серого цвета, хорошо отличимое от фона стрипа.
Пример 3. Сравнение чувствительности дот-иммуноанализа с использованием заявляемого композитного диагностикума и диагностикума-прототипа.
Готовят двукратные разведения сыворотки крови, содержащей антитела к фракции 1 (F1) чумного микроба. Из каждого разведения сыворотки по 2-3 мкл наносят на два стрипа из нитроцеллюлозной мембраны (Владисарт, Россия) с размером пор 0,2 мкм. Все дальнейшие манипуляции проведения дот-иммуноанализа идентичны примеру 1. За исключением того, что один стрип обрабатывается предлагаемым диагностикумом, а второй обрабатывается диагностикумом-прототипом. По окончании инкубации стрипов, их промывки и высушивания учитывают результат. Результат приведен в таблице, из которой видно, что полученный композитный чумной антигенный F1-диагностикум характеризуется более высокой чувствительностью в дот-иммуноанализе, чем прототип, позволяя выявлять специфические антитела в более высоких титрах.
Таким образом, за счет повышения стабильности диагностикума, достигаемого в результате включения чумного антигена F1 в состав матрицы композита в качестве привитого сополимера, чувствительность метода дот-иммуноанализа повышается в 4 раза, а эффективность выявления антител возрастает.
Источники патентной и научно-технической информации
1. Зайцев А.А. Теоретическое и научно-методическое обоснование использования белковых фракций чумного микроба при создании новых диагностических препаратов и тест-систем / Автореферат на соискание ученой степени доктора биологических наук по специальности 03.00.23 Биотехнология.- Ставрополь, 2006.
2. Патент РФ 2493871. - Способ получения эритроцитарного диагностикума для реакции непрямой гемагглютинации (РИГА) с целью индикации бруцелл в патматериале /Яникова Э.А., Юсупов О.Ю., Хаиров С.Г. - Опубликовано 27.09.2013.
3. ТУ 9388-041-01898109-2011 «Тест-система иммуноферментная для выявления антител к чумному микробу (ИФА-Ат_Ф1 Yersinia pestis».
4. Разработка иммуноферментной тест-системы для выявления антител к чумному микробу / Девдариани З.Л., Терешкина Н.Е., Голова А.Б., Шарова И.Н., Аленкина Т.В., Лобовикова О.А., Шульгина И.В., Ермаков Н.М., Терехова И.В., Полунина Т.А., Тараненко Т.М., Киреев М.Н. // Метериалы конференции 3-ей научно-практической школы-конференции молодых ученых и специалистов научно-исследовательских организаций Роспотребнадзора «Современные технологии обеспечения биологической безопасности».- 31 мая-2 июня, 2011 г. - Оболенск, 2011.- с. 178 - 180.
5. Результаты модельных экспериментов по конструированию тест-системы иммуноферментной для выявления антител к Ф1 чумного микроба (ИФА-Ат_Ф1 Yersinia pestis) / Девдариани З.Л., Терешкина Н.Е., Тараненко Т.М., Киреев М.Н., Терехова И.В., Григорьева Г.В., Исляева М.Н., Ермаков Н.М., Виноградова Н.А., Малахаева А.Н./ Проблемы особо опасных инфекций.- вып. 1, 2013.- с. 74-77.
6. Патент РФ 2199750. Способ получения диагностикума суспензионного антигенного на основе фракции 1. / Зайцев А.А. - Опубликовано 27.02.2003.
7. Патент РФ 2298798. Способ контроля биологической пробы в реакции латекс-агглютинации и аналитическая система осуществления./ Зимина Т.М. с соавт.- Опубликовано 10.05.2007.
8. Патент РФ 2231366. Иммунодиагностикум на основе полистирольного латекса./ Леонова В.Б., Розенфельд М.А. - Опубликован 27.06.2004.
9. Вершигора А.Е. Общая иммунология //Киев «Выща школа».- 1990.- 736 с.
10. Использование дот-иммуноанализа с углеродной меткой для тестирования специфических антител к возбудителям чумы и холеры / Полунина Т.А., Киреев М.Н., Тараненко Т.М., Громова О.В., Захарова Т.Л. //Биотехнология.- 2007.-№6.- С. 72-75.
Композитный чумной антигенный
F1-диагностикум для индикации
специфических антител
Figure 00000001

Claims (2)

1. Композитный чумной антигенный F1-диагностикум для индикации специфических антител, содержащий водную взвесь углеродных частиц, связанных с F1 антигеном, отличающийся тем, что углеродная метка размером не более 500 нм заключена в полимерную матрицу, представляющую собой привитой сополимер бычьего сывороточного альбумина с чумным капсульным антигеном F1, при следующем соотношением компонентов, мг/мл:
Углеродная метка 20-30 Бычий сывороточный альбумин 5-10 Антиген F1 0,2-1,0,

а полученные частицы композита стабилизированы в забуференном физиологическом растворе рН 7,0-7,4 высокомолекулярными полимерами и неионными детергентами.
2. Диагностикум по п. 1, отличающийся тем, что в качестве высокомолекулярного полимера используют 0,5% БСА, а в качестве неионного детергента 0,01-0,005% Твина 20.
RU2015108496/15A 2015-03-11 2015-03-11 Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител RU2582941C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015108496/15A RU2582941C1 (ru) 2015-03-11 2015-03-11 Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015108496/15A RU2582941C1 (ru) 2015-03-11 2015-03-11 Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2582941C1 true RU2582941C1 (ru) 2016-04-27

Family

ID=55794768

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015108496/15A RU2582941C1 (ru) 2015-03-11 2015-03-11 Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2582941C1 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000073347A1 (en) * 1999-05-28 2000-12-07 Us Government As Represented By The Secretary Of The Navy Diagnostic monoclonal antibody for yersinia pestis
RU2420588C2 (ru) * 2009-06-25 2011-06-10 Открытое акционерное общество "Всероссийский научный Центр молекулярной диагностики и лечения" (ОАО ВНЦМДЛ) МЫШИНЫЕ МОНОКЛОНАЛЬНЫЕ АНТИТЕЛА, СВЯЗЫВАЮЩИЕСЯ С АНТИГЕНОМ F1 ИЗ Yersinia pestis, СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ДРОЖЖЕЙ, СПОСОБ И НАБОР ДЛЯ ДЕТЕКЦИИ Yersinia pestis

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000073347A1 (en) * 1999-05-28 2000-12-07 Us Government As Represented By The Secretary Of The Navy Diagnostic monoclonal antibody for yersinia pestis
RU2420588C2 (ru) * 2009-06-25 2011-06-10 Открытое акционерное общество "Всероссийский научный Центр молекулярной диагностики и лечения" (ОАО ВНЦМДЛ) МЫШИНЫЕ МОНОКЛОНАЛЬНЫЕ АНТИТЕЛА, СВЯЗЫВАЮЩИЕСЯ С АНТИГЕНОМ F1 ИЗ Yersinia pestis, СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ДРОЖЖЕЙ, СПОСОБ И НАБОР ДЛЯ ДЕТЕКЦИИ Yersinia pestis

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
S. SIMON et. al. Fast and Simple Detection of Yersinia pestis Applicable to Field Investigation of Plague Foci. PLoS One. 2013, 8, 1, e54947, PP. 1-11. *
ПОЛУНИНА Т.А. и др. Использование дот-иммуноанализа с углеродной меткой для тестирования специфических антител к возбудителям чумы и холеры. Биотехнология. 2007, 6, C. 72-75. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR102065387B1 (ko) 측방 유동 및 관련된 면역검정에서의 신호 증폭
JP4686611B2 (ja) 医療品中の非エンドトキシン性発熱物質夾雑物を検出することがより優れて可能となる改良された単球活性化試験
JPS6367661B2 (ru)
JP2009521690A5 (ru)
JPH07508102A (ja) アッセイ
JP4127724B2 (ja) リンパ球機能の測定方法
US20170328901A1 (en) Methods for detecting a marker for active tuberculosis
KR102505384B1 (ko) 다른 방식으로 항원을 고정화한 항원 담지 불용성 담체 입자를 사용하는 항체 측정법, 항체 측정용 시약
RU2582941C1 (ru) Композитный чумной антигенный f1-диагностикум для индикации специфических антител
Fici et al. A protein multiplex microarray substrate with high sensitivity and specificity
JPH09507577A (ja) 多対象同時測定用反応カラムと方法
JP3889045B2 (ja) Hivを検出するためのペプチド
JPH11500226A (ja) 抗体産生の検出
Viitala et al. Surface-activated microtiter-plate microarray for simultaneous CRP quantification and viral antibody detection
Xia et al. Protein self-assembly via Zr4+ ions on spore-based microspheres for immunoassays
CN112710826A (zh) 一种提高试剂稳定性的包被和封闭方法
RU2376604C2 (ru) Способ выявления антигена или антитела в иммуноферментном анализе
RU2490647C2 (ru) Способ дифференциальной диагностики бруцеллеза
RU2545909C2 (ru) Способ иммунохроматографического определения специфических антител
RU2305842C1 (ru) Гемагглютинационный тест на основе рекомбинантного антигена для серодиагностики сифилиса
RU2695525C1 (ru) Способ иммуноферментного выявления возбудителя псевдотуберкулеза 1 серотипа на основе моноклональных антител к о-боковым цепям липополисахарида
KR101311736B1 (ko) 샌드위치 면역분석 바이오칩 및 이를 사용한 면역분석법
Rudenko et al. Bluetongue Virus Detection Using Microspheres Conjugated with Monoclonal Antibodies against Group-Specific Protein Vp7 by Flow Virometry
RU2196335C1 (ru) Способ определения гетерогенных антигенов, сходных для микроорганизмов и органов человека и животного
JP2584924B2 (ja) 免疫学的凝集反応粒子の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170312