RU2561469C1 - Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования - Google Patents

Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования Download PDF

Info

Publication number
RU2561469C1
RU2561469C1 RU2014127788/10A RU2014127788A RU2561469C1 RU 2561469 C1 RU2561469 C1 RU 2561469C1 RU 2014127788/10 A RU2014127788/10 A RU 2014127788/10A RU 2014127788 A RU2014127788 A RU 2014127788A RU 2561469 C1 RU2561469 C1 RU 2561469C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strains
pestis
strain
plague
locus
Prior art date
Application number
RU2014127788/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Георгий Николаевич Одиноков
Евгений Геннадьевич Оглодин
Константин Алексеевич Никифоров
Любовь Михайловна Куклева
Галина Александровна Ерошенко
Владимир Викторович Кутырев
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority to RU2014127788/10A priority Critical patent/RU2561469C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2561469C1 publication Critical patent/RU2561469C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биохимии, в частности к способу определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования. Заявленный способ предусматривает выделение хромосомной ДНК исследуемого штамма, амплификацию ДНК мишеней в полимеразной цепной реакции с использованием сконструированных праймеров, секвенирование амплифицированных фрагментов. Геновариант исследуемого штамма возбудителя чумы определяют по вариабельным нуклеотидам, маркерным для отдельных геновариантов. Способ позволяет эффективно и надежно определять геноварианты штаммов Y.pestis. 1 табл., 4 пр.

Description

Изобретение относится к области медицинской микробиологии, в частности, к внутривидовой дифференциации и молекулярному типированию штаммов возбудителя чумы, и может быть использовано в научно-исследовательских учреждениях медицинского профиля и службах Роспотребнадзора.
Бактерия Yersinia pestis является возбудителем чумы - особо опасной инфекционной природно-очаговой болезни, которая и в настоящее время представляет значительную угрозу для населения многих стран. Природные очаги чумы широко распространены на территориях многих континентов и государств, в том числе в Российской Федерации и других странах СНГ. На территории России противочумными учреждениями Роспотребнадзора осуществляется постоянный мониторинг природных очагов чумы, которые проводят профилактические меры по снижению их эпизоотической активности. В то же время во многих странах ближнего и дальнего зарубежья такая работа на должном уровне не ведется, что может привести к заносу в нашу страну этой особо опасной инфекции. Ввиду этого службы здравоохранения должны располагать современными высокоэффективными средствами быстрой индикации и идентификации возбудителя чумы, обеспечивающими определение эпидемической опасности штамма Y.pestis, установление его происхождения и выявление путей заноса инфекции.
В практике противочумных учреждений Российской Федерации и других стран СНГ используется внутривидовая классификация возбудителя чумы, принятая на совещании противочумных учреждений в 1985 г., которая делит штаммы Y.pestis на пять подвидов - основной и четыре неосновных - кавказский, гиссарский, алтайский и улегейский. В основной подвид входят высоковирулентные штаммы, которые могут вызывать эпидемии чумы. К неосновным подвидам относятся штаммы с избирательной вирулентностью, которые могут послужить причиной отдельных случаев болезни, но которые не обладают высоким эпидемическим потенциалом. Штаммы Y.pestis неосновных подвидов циркулируют в основном в очагах России, других стран СНГ, Грузии, Монголии, хотя известно о штаммах «microtus» из Китая с характеристиками неосновного подвида и единственном штамме неосновного подвида Angola из Африки. Кроме того, существует группа штаммов с характеристиками неосновного подвида из Таласского высокогорного очага чумы в Киргизии, систематическое положение которой остается в настоящее время неясным.
По широко используемой зарубежной классификации штаммы основного подвида делят на три биовара - античный, средневековый и восточный. Штаммы неосновных подвидов зарубежные авторы часто объединяют под общим названием пестоиды (pestoides).
Внедрение в практику исследований высокотехнологичной методики полногеномного секвенирования показало, что возбудитель чумы обладает значительно большим генетическим разнообразием, чем это было принято считать ранее. Секвенирование большого числа полных геномов штаммов Y.pestis разного происхождения позволило установить, что в пределах подвидов и биоваров чумного микроба существуют отдельные популяции, которые имеют фенотипические и генетические отличия и которые получили обозначение геновариантов возбудителя чумы [G. Morelli, Y. Song, С.J. Mazzoni et al. Phylo-genetic diversity and historical patterns of pandemic spread of Yersinia pestis II Nat Genet. - 2010. - V. 42 (12). - P. 1140-1143; Y. Cui, C. Yu, Y. Yan et al. Historical variations in mutation rate in an epidemic pathogen, Yersinia pesti sil PNAS. - 2013.- V. 110 (2). - P. 577-582; Г.Н. Одиноков, Г.А. Ерошенко, Я.М. Краснов и др. Анализ полногеномной последовательности штаммов Yersinia pestis на основе ступенчатого 680-SNP алгоритма // Проблемы особо опасных инф. - 2013. - №3. - С. 49-54].
Так, среди штаммов неосновных подвидов или пестоидов выделяют геноварианты 0.РЕ2а, 0.PE2b и 0.РЕ2 с кавказского подвида, 0.PE3 штамма Angola, группу 0.РЕ4 среди которой мы выделили геноварианты 0.РЕ4а - алтайский подвид, 0.PE4h - гиссарский подвид, 0.PE4t - таласские штаммы и 0.РЕ4 - штаммы microtus. Геноварианты штаммов улегейского подвида в литературе не представлены, и поэтому мы обозначили их как 0.РЕ5.
У античного биовара известны геноварианты 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, штаммы которых распространены в различных регионах Азии и Африки. У средневекового биовара, циркулирующего в большинстве очагов России, других стран СНГ и в очагах Центральной Азии выделяют геноварианты 2.MED0, 2 MED1, 2.MED2, 2MED3. Штаммы восточного биовара распространены в Северной и Южной Америках, в Юго-Восточной Азии, в Африке и включают три геноварианта 1.0RI1, 1.0RI2, 1.0RI3.
Таким образом, определение геноварианта штамма Y.pestis, вызвавшего вспышку или единичный случай чумы, важно для установления происхождения штамма (местный или завозной случай) и выявление вероятных путей заноса инфекции. Определение геновариантов штаммов, циркулирующих в различных природных очагах имеет и фундаментальное значение для реконструкции основных путей формирования современных границ ареала чумного микроба в период образования вида Y.pestis.
Все известные геноварианты возбудителя чумы выделены с помощью полногеномного секвенирования штаммов Y.pestis на основе анализа полиморфизма единичных нуклеотидов по всему геному этих штаммов. Однако секвенирование полного генома штамма бактерии является затратным методом и требует наличия дорогостоящего оборудования, реактивов, а также длительного времени на проведение этой процедуры. В то же время в результате анализа полиморфизма единичных нуклеотидов в секвенированных геномах штаммов Y.pestis был сделан вывод о том, что каждая мутация, вызвавшая замену единичного нуклеотида, произошла в истории эволюции возбудителя чумы лишь однажды, за исключением 28 из них, представляющих известные гомоплазии генома. Из этого следует, что каждая из этих точечных мутаций, возникших в отдельной популяции штаммов Y.pestis, является характерной генетической меткой (маркером) отдельного геноварианта. Ввиду этого очевидно, что дорогостоящая процедура определения геноварианта с помощью полногеномного секвенирования может быть на практике заменена гораздо более простым и экономичным способом определения геновариантов на основе выявления в их геноме генетической метки - замены единичного нуклеотида, маркерного для конкретного геноварианта. Таким образом, на основе мультилокусного секвенирования выбранных полиморфных участков генома с применением сконструированных на них праймеров можно быстро и надежно определить принадлежность исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов возбудителя чумы.
Ранее метод мультилокусного секвенирования применялся для определения видовой и внутривидовой принадлежности штаммов Y.pestis.
Известен способ дифференциации иерсиний методом мультилокусного сиквенс-типирования фрагментов генов жизнедеятельности glnA, gyrB, recA, F-HSP60, полученных в полимеразной цепной реакции [Kotetishvili M., Kreger Α., Wauters G. et al. Multilocus sequence typing for studying genetic relationships among Yersinia species // J. Clin. Microbiol. - 2005. - V. 43, N6 - Р. 2674-2684]. Использование этих генов позволяет проводить дифференциацию Y.pestis и других видов рода Yersinia, но не позволяет проводить внутривидовую дифференциацию возбудителя чумы и определять подвидовую принадлежность штамма Y.pestis.
Известен способ определения подвидовой принадлежности штаммов Y.pestis на основе секвенирования вариабельных последовательностей генов rhaS и araC [Патент №RU 2404256, опубликован 20.11.2010]. Способ обеспечивает определение подвидовой принадлежности штаммов возбудителя чумы, но он не может быть использован для определения геновариантов штаммов Y.pestis.
Известен способ подвидовой дифференциации штаммов Y.pestis методом мультилокусного сиквенс-типирования [Патент RU №2415948, опубликован 10.04.2011]. Способ основан на использовании вариабельности генов rhaS, araC, metB, aspA и thiH и позволяет быстро и надежно устанавливать подвидовую принадлежность штамма Y.pestis, но этот способ не предназначен для определения геновариантов возбудителя чумы.
Известен способ подвидовой и биоварной дифференциации штаммов Y.pestis методом ПЦР и мультилокусного сиквенс-типирования [Патент RU №2471872, опубликован 10.01.2013]. С помощью этого способа можно определить подвидовую и биоварную принадлежность исследуемого штамма Y.pestis. В то же время он не позволяет устанавливать принадлежность этого штамма к одному из геновариантов возбудителя чумы.
Определение геновариантов возбудителя чумы проводят на основе анализа полиморфизма единичных нуклеотидов в полногеномной последовательности штаммов Y.pestis [G. Morelli, Y. Song, С.J. Mazzoni et al., 2010; Y. Cui, C, Yu, Y. Yan et al., 2013]. Однако этот способ дорогостоящ и требует анализа большого числа генетических локусов, содержащих единичные полиморфные нуклеотиды, что значительно удлиняет время проведения анализа.
В научной и специальной литературе отсутствуют публикации об использовании метода мультилокусного секвенирования для определения геновариантов штаммов Y.pestis. Все вышеизложенное требует разработки простого и надежного способа определения геновариантов штаммов возбудителя чумы.
Технической задачей изобретения является разработка быстрого, эффективного и экономичного способа определения геновариантов штаммов Y.pestis с помощью мультилокусного секвенирования.
Технический результат заключается в обеспечении быстрого, простого и надежного способа определения геновариантов штаммов возбудителя чумы с помощью мультилокусного секвенирования. Вместо сложного, трудоемкого и дорогостоящего анализа полного генома исследуемого штамма Y.pestis по множеству локусов полиморфных единичных нуклеотидов для установления геноварианта изучаемого штамма достаточно провести у него секвенирование небольшого числа участков генома для выявления в их последовательности единичных замен нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов возбудителя чумы.
Технический результат достигается способом определения геновариантов штаммов Y.pestis на основе мультилокусного секвенирования, который предусматривает амплификацию ДНК мишеней у исследуемого штамма с помощью сконструированных праймеров SEQ ID NO: 1-26, секвенирование амплифицированных фрагментов, выявление в них замен единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов, и определение этих геновариантов в соответствии с таблицей.
Способ осуществляют следующим образом.
Выделение ДНК исследуемого штамма чумного микроба проводят по стандартной методике в соответствии с МУ 1.3.2569-09 «Организация работ лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности».
В качестве ДНК мишеней используются следующие участки генома: YPO0785, YPO0027, YP03637, YPO0126, YPO2232, YPO1548, YPO0057, YPO0310, YPO1120, YPO1404, YPO1437, YPO1758, YPO1418, YPO2499, YPO1708, YPO0154, YPO1394, YPO0956, YPO3506, YPO2744, YPO1299, YPO0652, YPO0436, YPO1537, YPO0032 и YPO1565. Номера участкам присвоены по последовательности референтного штамма Y.pestis CO92. Праймеры на выбранные ДНК мишени рассчитаны на основе нуклеотидных последовательностей этих участков генома у штаммов Y.pestis, представленных в базе данных NCBI GenBank, а также на основе нуклеотидных последовательностей полных геномов штаммов возбудителя чумы, полученных нами. Используемые ДНК мишени и сконструированные на них праймеры представлены в таблице. У полученных в ПЦР с помощью рассчитанных праймеров фрагментов определяют нуклеотидную последовательность и устанавливают наличие единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов штаммов возбудителя чумы. Определение геновариантов проводят в соответствии с таблицей.
Установление принадлежности штамма Y.pestis к одному из геновариантов неосновных подвидов или пестоидов: кавказский подвид - 0.РЕ2а, 0.PE2b, 0.РЕ2с; Angola - 0.PE3; microtus - 0.PE4m; алтайский подвид - 0.РЕ4а; гиссарский подвид - 0.PE4h; таласские штаммы - 0.PE4t осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 0.РЕ2а в локусе YPO0785 присутствует нуклеотид А, у 0.PE2b в локусе YPO0027 - А, у 0.РЕ2с в локусе YPO3637 - Т, у 0.РЕ3 в локусе YPO0126 - Т, у 0.PE4m в локусе YPO2232 - А, у 0.РЕ4а в локусе YPO1548 - А, у 0.PE4h в локусе YPO0057 - G, у 0.PE4t в локусе YPO0310 присутствует нуклеотид Т, у 0.РЕ5 в локусе YPO1120 - Т. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе этот штамм следует отнести к тому геноварианту неосновных подвидов, маркером которого является этот нуклеотид.
Определение принадлежности штаммов Y.pestis к геновариантам античного биовара 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 0.ANT1 в локусе YPO1404 присутствует нуклеотид Т, у 0.ANT2 в локусе YPO1437 - Т, у 0.ANT3 в локусе YPO1758 - Т, у 4.ANT в локусе YPO1418 - А, у 3.ANT1 в локусе YPO2499 - А, у 3.ANT2 в локусе YPO1708 - А, у 1.ANT в локусе YPO0154 - G, у 2.ANT3 в локусе YPO3506 - Т. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе, этот штамм следует отнести к тому геноварианту античного биовара, маркером которого является этот нуклеотид.
Принадлежность к геновариантам 2.ANT1 и 2.ANT2 определяют по единичным полиморфным нуклеотидам в двух локусах - YPO1394 и YPO0956. У геноварианта 2.ANT1 в локусе YPO1394 присутствует нуклеотид Т, а в локусе YPO0956 - А. У геноварианта 2.ANT2 в локусе YPO1394 присутствует нуклеотид G, а локусе YPO0956 - А. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из сочетаний вышеперечисленных нуклеотидных замен в локусах YPO1394 и YPO0956 этот штамм следует отнести либо к геноварианту 2.ANT1, либо 2.ANT2.
Определение принадлежности исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов средневекового биовара 2.MED1, 2.MED2, 2.MED3, 2.MED0 осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 2.MED1 в локусе YPO2744 присутствует нуклеотид Т, у 2.MED2 в локусе YPO1299 - А, у 2.MED3 в локусе YPO0652 - Т, у 2.MED0 в локусе YPO0436 - G. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе этот штамм следует отнести к тому геноварианту средневекового биовара, маркером которого является этот нуклеотид.
Принадлежность исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов восточного биовара 1.ORI1, 1.ORI2, 1 ORI3 определяют по единичным полиморфным нуклеотидам в трех локусах - YPO1537, YPO0032 и YPO1565 в соответствии с таблицей: У геноварианта 1.ORI1 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - С, в локусе YPO01565 - С. У геноварианта 1.ORI2 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - Т, в локусе YPO01565 - С. У геноварианта 1.ORI3 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - С, в локусе YPO01565 - А. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из сочетаний вышеперечисленных нуклеотидных замен в локусах YPO1537, YPO0032 и YPO1565 этот штамм следует отнести к тому геноварианту восточного биовара, маркерами которого являются эти замены.
Сущность изобретения поясняется следующими примерами.
Пример 1. Определение геноварианта штамма Y.pestis неосновного подвида.
У исследуемого штамма с помощью праймеров SEQ ID NO: 1-9 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO0785, YPO0027, YPO3637, YPO0126, YPO2232, YPO1548, YPO0057, YPO0310, YPO1120, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YPO1120 в позиции 142 от начала фрагмента присутствует нуклеотид Т, маркерный для геноварианта 0.РЕ5. Исследуемый штамм Y.pestis относится к геноварианту 0.РЕ5 неосновного (улегейского) подвида.
Пример 2. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида античного биовара.
У исследуемого штамма с помощью праймеров SEQ ID NO: 10-19 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO1404, YPO1437, YPO1758, YPO1418, YPO2499, YPO1708, YPO0154, YPO1394, YPO0956, YPO3506, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YP02499 в позиции 129 от начала фрагмента присутствует нуклеотид А, маркерный для геноварианта 3.ANT1. Исследуемый штамм относится к геноварианту 3.ANT1 основного подвида античного биовара.
Пример 3. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида средневекового биовара.
У исследуемого штамма Y.pestis с помощью праймеров SEQ ID NO: 20-23 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO2744, YPO1299, YPO0652 и YPO0436, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YP02744 в позиции 89 от начала фрагмента присутствует нуклеотид Т, маркерный для геноварианта 2.MED1. Исследуемый штамм Y.pestis относится к геноварианту 2.MED1 основного подвида средневекового биовара.
Пример 4. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида восточного биовара.
У исследуемого штамма Y.pestis с помощью праймеров SEQ ID NO: 24-26 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO1537, YPO0032 и YPO1565, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YPO1537 в позиции 76 присутствует нуклеотид Т, в YPO0032 в позиции 180 - С, в YPO01565 в позиции 216 - С, маркерные для геноварианта 1.ORI1. Исследуемый штамм Y.pestis относится относится к геноварианту 1.ORI1 основного подвида восточного биовара.
Таким образом, заявленный способ определения геновариантов штаммов Y.pestis с помощью мультилокусного секвенирования, основанный на выявлении маркерных единичных нуклеотидов в ряде участков генома возбудителя чумы, обеспечивает проведение быстрой и надежной идентификации этих геновариантов.
Разработанный метод является простым, высокоразрешающим и универсальным методом генодиагностического анализа штаммов Y.pestis, который найдет широкое применение при молекулярной экспертизе вспышек чумы, при эпидемиологическом мониторинге природных очагов чумы и в фундаментальных исследованиях, связанных с изучением внутривидовой эволюции возбудителя чумы.
Figure 00000001
Figure 00000002

Claims (1)

  1. Способ определения геновариантов 0.PE2а, 0.PE2b, 0.PE2с, 0.PE3, 0.PE4m, 0.PE4а, 0.PE4h, 0.PE4t, 0.PE5, 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, 2.MED1, 2.MED2, 2.MED3, 2.MED0, 1.ORI1, 1.ORI2, 1.ORI3 штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования, включающий выделение хромосомной ДНК исследуемого штамма, амплификацию ДНК мишеней в полимеразной цепной реакции с использованием сконструированных праймеров SEQ ID NO: 1-26, секвенирование амплифицированных фрагментов, выявление в них замен единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов, и определение геновариантов в соответствии с таблицей.
RU2014127788/10A 2014-07-08 2014-07-08 Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования RU2561469C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014127788/10A RU2561469C1 (ru) 2014-07-08 2014-07-08 Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014127788/10A RU2561469C1 (ru) 2014-07-08 2014-07-08 Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2561469C1 true RU2561469C1 (ru) 2015-08-27

Family

ID=54015657

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014127788/10A RU2561469C1 (ru) 2014-07-08 2014-07-08 Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2561469C1 (ru)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2415948C1 (ru) * 2009-12-11 2011-04-10 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") СПОСОБ ПОДВИДОВОЙ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ ШТАММОВ Yersinia pestis МЕТОДОМ МУЛЬТИЛОКУСНОГО СИКВЕНС-ТИПИРОВАНИЯ

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2415948C1 (ru) * 2009-12-11 2011-04-10 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") СПОСОБ ПОДВИДОВОЙ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ ШТАММОВ Yersinia pestis МЕТОДОМ МУЛЬТИЛОКУСНОГО СИКВЕНС-ТИПИРОВАНИЯ

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MORELLI G. et al., Phylogenetic diversity and historical patterns of pandemic spread of Yersinia pestis, Nat. Genet., 2010, vol.42 no.12, pp.1140-1143. *
ПЛАТОНОВ М.Е. и др., Молекулярное типирование Yersinia pestis, МОЛЕКУЛЯРНАЯ ГЕНЕТИКА, МИКРОБИОЛОГИЯ И ВИРУСОЛОГИЯ, 2013, N2, стр.3-12. ПОПОВ Ю.А. и др., Разработка комплексного алгоритма генотипирования и методов оценки генетического разнообразия природных штаммов возбудителей чумы и холеры, Проблемы особо опасных инфекций, 2009, вып. 102, стр.5-10 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20220325324A1 (en) Systems and methods for the detection of infectious diseases
Cheng et al. Development and characterization of expressed sequence tag-derived microsatellite markers for the wheat stripe rust fungus Puccinia striiformis f. sp. tritici
RU2504585C1 (ru) Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченного зонда для идентификации рнк коронавируса человека, ассоциированного с тяжелым острым респираторным синдромом
Belotindos et al. Molecular detection and characterization of Theileria species in the Philippines
CN107400736A (zh) 鸭2型腺病毒环介导等温扩增检测引物组及试剂盒
WO2019208691A1 (ja) カンジダ・アウリス検出用プライマーセット、カンジダ・アウリス検出キットおよびカンジダ・アウリスの検出方法
RU2612137C1 (ru) Способ идентификации подвидов возбудителя туляремии Francisella tularensis subsp. tularensis, Francisella tularensis subsp. mediasiatica и Francisella tularensis subsp. holarctica
Bodewes et al. An efficient molecular approach to distinguish chains of measles virus transmission in the elimination phase
RU2550257C2 (ru) СПОСОБ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ ТИПИЧНЫХ И АТИПИЧНЫХ ШТАММОВ Yersinia pestis СРЕДНЕВЕКОВОГО БИОВАРА МЕТОДОМ ПЦР С ГИБРИДИЗАЦИОННО-ФЛУОРЕСЦЕНТНЫМ УЧЕТОМ РЕЗУЛЬТАТОВ
RU2332464C1 (ru) Способ дифференциации чумного и псевдотуберкулезного микробов с одновременной внутривидовой дифференциацией штаммов чумного микроба
RU2561469C1 (ru) Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования
RU2565554C2 (ru) СПОСОБ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ БИОВАРОВ И ГЕНОВАРИАНТОВ ШТАММОВ Yersinia pestis ОСНОВНОГО ПОДВИДА С ПОМОЩЬЮ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
Grandjean Lapierre et al. rpoB targeted loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay for consensus detection of mycobacteria associated with pulmonary infections
RU2496882C2 (ru) Способ дифференциации штаммов возбудителя чумы основного подвида средневекового и античного биоваров методом полимеразной цепной реакции
Ravibalan et al. Characterization of katG and rpoB gene mutations in multi drug resistant Mycobacterium tuberculosis clinical isolates
RU2737775C1 (ru) Способ идентификации yersinia pestis и yersinia pseudotuberculosis и одновременной дифференциации yersinia pestis основного и центральноазиатского подвидов методом мультиплексной пцр
RU2736649C1 (ru) Способ генетической дифференциации штаммов Yersinia pseudotuberculosis путем молекулярно-генетического типирования
Kumar et al. Characterization and physical mapping of 18S and 5S ribosomal genes in Indian major carps (Pisces, Cyprinidae)
RU2552611C2 (ru) Способ подвидовой дифференциации штаммов возбудителя чумы методом полимеразной цепной реакции
JP6945200B2 (ja) Clostridium difficileの遺伝子型タイピング法及びこれに用いるプライマーセット
RU2404256C1 (ru) Способ подвидовой дифференциации штаммов возбудителя чумы методом секвенирования
RU2705813C1 (ru) Способ идентификации штаммов yersinia pestis средневекового биовара с последующей дифференциацией по филогенетической принадлежности методом полимеразной цепной реакции с гибридизационно-флуоресцентным учетом результатов
Faruk et al. Identification and molecular characterization of Echinococcus granulosus from domestic goat in Chittagong, Bangladesh.
RU2756854C1 (ru) Способ дифференциации штаммов Francisella tularensis путем молекулярно-генетического типирования
RU2738358C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых зондов и способ выявления ДНК возбудителей сапа и мелиоидоза методом ПЦР с детекцией продукта в режиме реального времени

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20160709